Name: Lutilisation du modèle EpiAirway pour Caractériser long terme Interactions hôte-pathogène (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-09-02T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 12 s
Description: Découvrez la caractérisation des interactions hôte-pathogène à long terme avec le modèle EpiAirway utilisant des tissus épithéliaux respiratoires humains primaires. Cette méthode permet d'évaluer la survie de NTHI.

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Nous tenons à remercier Patrick Hayden (MatTek) pour des discussions utiles, et Robert Smith et Perry Libby de Géorgie Health Sciences University pour leurs compétences EM. Cette étude a été financée par subventions NIDCD DC010187 à la BDCP

1. Préparer le cabinet de biosécurité pour les tissus EpiAirway <ol><li> Le port d'un sarrau de laboratoire dédié, avec des cheveux attachés en arrière et de gants, démarrer le flux laminaire. Après 5 minutes, déplacez tous les outils dans l'armoire (pipettes, des astuces, des tubes de centrifugation, etc) d'un côté, par pulvérisation à l'intérieur du cabinet de biosécurité et l'écharpe à l'éthanol 70% et essuyer avec des serviettes en papier propre. Vaporiser l'intérieur nettoyé à nouveau avec 70% d'éthanol et laisser sécher. Déplacer les outils pour le côté propre et répétez la procédure d'éthanol. </li><li> Utilisez des aérosols embouts de pipette barrière et pipeteurs dédié dans l'armoire. Pour utiliser emballées individuellement stériles Pipettes sérologiques, passer l'extrémité est obstruée par le biais du flux laminaire, casser, et faites glisser la pipette dans l'armoire, en écartant l'extérieur de l'emballage. </li><li> Les inserts EpiAirway doivent être manipulés avec des pinces stériles. Placer 6 pouces fine pointe courbée dissection forceps dans des sachets de stérilisation auto-obturant et autoclave. Préparer suffit pas d'avoir au moins six par jour prêt à l'emploi. </li></ol> 2. Déballage des tissus EpiAirway <ol><li> Pulvériser la surface de travail dans l'armoire de la biosécurité à l'éthanol 70% et essuyer avec des serviettes en papier propre. Vaporiser à nouveau et laissez sécher la surface avant de l'utiliser. Ouvrez la boîte de EpiAirway et jeter le styromousse et le matériel d'emballage. </li><li> Les médias EpiAirway d'entretien sans antibiotique, AIR-100-MM ABF (MM), est la propriété de MatTek et est envoyé dans le kit avec les inserts. Dans le cabinet de biosécurité, l'étiquette six stérile de 50 ml avec des tubes à centrifuger le type de média et la date, et desserrer les bouchons. Vaporiser la bouteille médias avec 70% d'éthanol et d'ouvrir l'intérieur de l'armoire. Aliquote de 25 ml de MM dans chaque tube en utilisant une nouvelle pipette stérile sérologiques pour chaque tube, serrez les bouchons, et conserver à 4 ° C. Utilisez une autre partie aliquote de MM chaque jour. </li><li> Répétez 2.2 ci-dessus en utilisant une nouvelle bouteille de 1 X Dulbecco tampon phosphate salin (D-PBS) avec le calcium et le magnésium. Répétez à nouveau l'aide du D-PBS sans calcium et le magnésium. Stockez tous aliquotes à 4 ° C. </li><li> Les inserts EpiAirway AIR-100 arrivent dans une plaque de 24 puits à 4 ° C sur des supports solides contenant d'agarose, et doivent être placés dans des plaques 6 puits à l'emploi. Étiquetez chaque assiette avec la date et la description à l'aide d'un marqueur résistant à l'éthanol. Placer 1 millilitre de 4 ° C MM EpiAirway dans chaque puits. Retirer la plaque de transport de son emballage, de pulvérisation avec de l'éthanol à 70%, et les placer dans l'enceinte de biosécurité. Retirez la bande et ouvrez la plaque. En utilisant des pinces autoclavés, enlever la gaze humide sur les inserts EpiAirway. </li><li> Ramassez un insert avec une pince autoclave utilisant un mouvement de torsion afin d'aider à le libérer de l'agarose, et le placer dans un puits d'une plaque à 6 puits. Certains d'agarose peuvent adhérer à l'insert, d'autant que la température de la plaque de transport augmente la température ambiante. Utilisez un coton-tige stérile pour retirer soigneusement l'agarose de l'insert. Évitez de toucher la membrane, et vérifier qu'aucune bulle d'air sont piégées sous les inserts. Placer la plaque dans un incubateur humidifié 37 ° C avec 5% de CO 2. </li><li> Attendre au moins 24 heures pour les tissus de s'équilibrer dans l'incubateur avant de commencer les co-cultures. </li></ol> 3. Entretien des tissus EpiAirway <ol><li> En utilisant des pinces autoclavés, ramasser un insert et délicatement la pipette 200 microlitres de pré-chauffé D-PBS avec du calcium et de magnésium sur le tissu et le rock de l'insert. Inclinez l'insert à un angle et placez votre astuce pipette stérile P1000 contre l'anneau en plastique qui maintient la membrane au fond de l'insert. Ne pas toucher le tissu. Aspirer le D-PBS rincer et placer dans un cryovial étiqueté stérile. Les échantillons peuvent être congelés à -20 ° C et analysés pour la mucine et / ou l'expression des cytokines à une date ultérieure. </li><li> Changer le MM basale quotidiennement par aspiration et le remplacer par 1 millilitre de MM frais. Utiliser un embout de pipette nouvelle barrière pour chaque puits. Traiter les médias utilisés avec l'eau de Javel à 10% durant la nuit et le jeter. </li></ol> 4. L'inoculation de tissus EpiAirway <ol><li> Streak une culture fraîche de Haemophilus influenzae non typables (NTHi) du stock de glycérol gelé sur gélose chocolat. Cultivez la nuit dans un incubateur humidifié à 5% de CO 2. </li><li> Le lendemain, resuspendre colonies isolées de NTHi en pré-chauffée D-PBS avec du calcium et de magnésium pour une DO (600 nm) d'environ 0,7. Vortex vigoureusement avant de mesurer la densité optique. La relation de la densité optique d'unités formant colonie par ml (UFC / ml) de NTHi est que une DO (600 nm) de 0,2 équivaut à environ 1,0 x 10 8 UFC / ml. Par conséquent, une DO (600 nm) de 0,7 est d'environ 3,5 x 10 8 UFC / ml. Cet algorithme doit être validée pour chaque souche NTHi avant l'inoculation. </li><li> Les tissus EpiAirway AIR-100 sont cultivées sur des inserts d'une surface de 0,6 cm 2 et une membrane 0,4 micron. Les tissus sont composés de ~ 8,0 x 10 ~ 5 à 1,0 x 10 6 &lt;/ Sup&gt; Les cellules. Par conséquent, une inoculation de 1,0 x 10 7 UFC correspond à une multiplicité d'infection d'environ 10 - 12. Pour inoculer, rincer chaque insert EpiAirway comme dans 3.1, puis ajouter 28 microlitres de la suspension bactérienne préparée en 4.2 à la surface apicale de chaque insert EpiAirway dans l'armoire de la biosécurité. Ne pas inoculer le MM basale. Retour chaque plaque à l'incubateur. </li></ol> 5. La quantification de l'inoculum NTHi <ol><li> Préparer un tampon phosphate salin (PBS) avec 0,1% de gélatine (PBS-G), autoclave pour stériliser. Étiquette stérile de 1,5 ml tubes Eppendorf avec les dilutions 1:10 désiré sur la base des DO (600 nm) de l'inoculum et 900 microlitres de l'aliquote de PBS stérile-G dans chaque tube. </li><li> Déterminer le nombre de gélose chocolat nécessaire d'énumérer les NTHi inoculés. Placez ces plaques dans un incubateur à air à l'envers avec la partie inférieure de la plaque posée sur la moitié de la partie supérieure pendant une heure. Cela permettra à la fois à la plaque chaude à 37 ° C et la surface à sécher, ce qui facilite la chute de placage de NTHi. </li><li> Démarrez le dilutions 1:10 de l'inoculum en ajoutant 100 microlitres de la suspension bactérienne de 4,2 au premier tube. Vortex chaque dilution vigoureusement pendant 5 secondes avant de prendre la suivante. Baisse de 10 aliquotes microlitre sur les plaques pré-chauffé et asséchée en surface de gélose chocolat, en utilisant la moitié de la plaque pour chaque dilution. Cinq à six portions de 10 microlitre peuvent tenir sur une moitié de chaque plaque de 100 mm, sans courir ensemble. Une fois sec, placez à l'envers dans une humidifié 37 ° C incubateur à CO 2 pendant la nuit. </li><li> Le lendemain, de déterminer les UFC / ml en comptant les dilutions qui ont de 15 à 30 colonies distinctes dans chaque goutte et en calculant de nouveau à votre inoculum viable réelle de NTHi. </li></ol> 6. À long terme de co-culture avec NTHi <ol><li> Toutes les 24 heures, se laver les inserts comme dans 3.1, la piscine du lavage de chaque tissu qui a été inoculé avec la même souche de bactéries et de les congeler à -20 ° C dans un cryovial étiquetés pour analyse future. Ces échantillons peuvent être analysés pour la présence de mucine par dot blots ou pour l'expression de cytokines par ELISA. Alternativement, les tissus peuvent être récoltées pour l'ARNm et qPCR peut être effectuée sur des gènes d'intérêt. Changer le MM basale quotidienne comme dans 3.2. Continuez pour la durée de la co-culture. </li></ol> 7. La récolte des tissus EpiAirway <ol><li> Préparer une solution fraîche à 1% de saponine dans D-PBS sans calcium et de magnésium, filtre-stériliser et chaude à 37 ° C. </li><li> Chauffer un tube de 50 ml de MM et un autre de la D-PBS sans calcium et de magnésium à 37 ° C. </li><li> Préparer les tubes de dilution en 5.1, ainsi que d'un vide stérile de 1,5 ml par tube Eppendorf insérer, étiqueté avec le numéro d'insérer et de la souche NTHi. </li><li> Le EpiAirways peuvent être récoltées pour soit totale associée aux cellules des bactéries, qui comprend à la fois les organismes adhérents et intériorisé, ou pour les bactéries intériorisées seulement. </li><li> Déterminer le nombre de gélose chocolat nécessaires pour déposer la plaque associée aux cellules ou envahi NTHi, l'étiquette et sec pendant une heure dans un incubateur à air comme dans 5.2. </li><li> Pour la récolte totale associée aux cellules des bactéries, rincer la surface apicale de la EpiAirways trois fois avec 200 microlitres de D-PBS sans calcium ni magnésium, puis inclinez l'insert et rincer toute MM restant de la membrane basale. Le premier lavage peut être congelé pour une analyse ultérieure; jetez les lavages suivants. </li><li> Placer l'insert lavés dans une nouvelle 6-même plaque sans MM, et la pipette 250 microlitres de la solution stérile saponine à 1%, passant de 7,1 sur la surface apicale de chaque tissu. Retour à l'incubateur pendant 10 minutes. </li><li> Retirer de l'incubateur, et en utilisant une pipette stérile, P1000, frottez les tissus de la membrane en utilisant un back-et-vient, suivie par un mouvement circulaire pour enlever le tissu sur les bords de l'insert. L'utilisation d'un gros calibre pointe de pipette stérile P1000, place de la suspension dans le tube vide intitulée préparées en 7.3. Ajouter 250 microlitres de D-PBS sans calcium ni magnésium sur la surface apicale de l'insert. </li><li> Examiner l'insert en utilisant une inversé à contraste de phase microscope afin de déterminer s'il ya un tissu restant à être récoltés. Si nécessaire, frotter à nouveau avec une autre pointe de la pipette stérile, P1000, puis ajoutez cette suspension dans le tube de 7,8 en utilisant une pointe de gros calibre pipette stérile P1000. Porter le volume total du tube à l'aide de 1 millilitre de D-PBS sans calcium ni magnésium. </li><li> Vigoureusement tourbillon de la suspension cellulaire à grande vitesse pendant une minute. En utilisant une seringue de 1 ml stérile munie d'une aiguille de calibre 26, aspirer la suspension dans la seringue dans l'aiguille. Lentement passent la suspension à travers l'aiguille 3 fois, en prenant soin de ne pas créer des bulles. Vortex à nouveau vigoureusement pendant une minute. </li><li> En utilisant une pointe de gros calibre pipette, placer 100 microlitres de la suspension dans le tube de dilution d'abord préparé en 7.3. Vortex vigueur pendant cinq secondes, puis faire dilutions 1:10. Drop-plaques les dilutions désiré sur les plaques de surface séchées gélose chocolat. </li><li> Pour récolter les bactéries ne intériorisé, se laver chaque insert 3 fois avec 200 microlitres de D-PBS sans calcium ni magnésium. Retenir et congeler le premier lavage. Ajouter au sulfate de gentamicine préchauffé MM à une concentration finale de 100 microgrammes / ml. Préparer 1,5 ml de milieu par insert à être récoltés. Remplacer le MM basale avec la gentamicine MM contenant, et ajouter 300 microlitres de la gentamicine contenant mm sur la surface apicale. Placer la plaque arrière dans l'incubateur à CO 2 pendant une heure. </li><li> Retirez la gentamicine MM contenant de la surface apicale et laver la surface apicale et la membrane basale de l'insert intensivement avec préchauffé D-PBS sans calcium et magnésium. Procéder comme dans 7.7 à 7.11. </li></ol> 8. Les résultats représentatifs: Microscopie électronique à balayage de (A.) EpiAirway tissus infectés et (B.) des tissus après 5 jours de co-culture avec NTHi sont présentés dans la figure 1. Long terme de co-culture avec NTHi n'entraîne pas de dommages significatifs à l'apex tissus, en soulignant l'utilité du modèle EpiAirway. Un graphique illustrant le nombre de bactéries intériorisées quantifiés au fil du temps l'intérieur des tissus est montré dans la figure 2. Les deux résultats sont très reproductibles, ce qui rend les tissus EpiAirway une approche cohérente et biologiquement pertinent modèle in vitro de la voie aérienne supérieure humaine dans laquelle l'étude NTHi hôte-pathogène interactions. <img src="/files/ftp_upload/3261/3261fig1.jpg" alt="Figure 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 1"> Figure 1. Microscopie électronique à balayage des tissus EpiAirway. A. tissus témoins non infectés. Tissu B. après cinq jours de co-culture avec NTHi. Aucun dommage significatif à la surface apicale est observée dans les tissus infectés. <img src="/files/ftp_upload/3261/3261fig2.jpg" alt="Figure 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Figure 2"> Figure 2. Nombre de NTHi intériorisés au fil du temps au cours EpiAirway co-culture. Strain R2866 a été inoculé à environ 1,0 x 10 7 UFC / insert (jour 0), puis récoltés pour les bactéries intériorisées à chaque point indiqué. Les barres représentent n = 3 répétitions dans au moins double. Les barres d'erreur sont SD.

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</ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

Cette méthode permet l&#39;étude de long terme interactions hôte-pathogène dans un contexte biologiquement pertinentes de primaires humains tissus respiratoires à l&#39;interface air-liquide. Ici nous avons utilisé NTHi que l&#39;organisme infectant, mais l&#39;interaction de toute bactérie qui n&#39;introduit pas de cytotoxicité inacceptable au fil du temps peuvent être quantifiés avec cette méthode. Le modèle EpiAirway peut également être utilisé pour l&#39;étude des virus, des drogues ou des produits chimiques qui in...

<table border="1"><tbody><tr><th> Nom de réactif </th><th> Société </th><th> Catalogue # </th><th> Commentaires </th></tr><tr><td> La saponine </td><td> Calbiochem </td><td> 558255-25g </td><td> 1% en D-PBS sans calcium ni magnésium, stériliser par filtration </td></tr><tr><td> 1 X Dulbecco tampon phosphate salin avec du calcium et de magnésium </td><td> Lonza </td><td> 17-513Q </td><td></td></tr><tr><td> 1 X Dulbecco tampon phosphate salin sans calcium ni magnésium </td><td> Lonza </td><td> 17-515Q </td><td></td></tr><tr><td> EpiAirway sans antibiotique tissus </td><td> MatTek </td><td> AIR-100-ABF </td><td></td></tr><tr><td> Les médias EpiAirway entretien sans antibiotique </td><td> MatTek </td><td> AIR-100-MM-ABF </td><td> Livré avec un kit </td></tr><tr><td> Tampon phosphate 10X solution saline </td><td> EMD </td><td> 6506 </td><td> Diluer jusqu&#39;à 1X avant utilisation </td></tr><tr><td> Gélatine </td><td> JT Baker </td><td> 2124-01 </td><td> Ajouter à une concentration finale de 0,1% en 1 x PBS et autoclave </td></tr><tr><td> Base de Difco milieu GC (gélose chocolat) </td><td> VWR </td><td> 90002-016 </td><td> Autoclaver 36 g dans 500 ml ddH O 2 et refroidir à 60 ° C </td></tr><tr><td> Hémoglobine BBL (gélose chocolat) </td><td> VWR </td><td> 90000-662 </td><td> Autoclaver 10 g dans 500 ml ddH O 2, refroidir à 60 ° C et mélanger avec la base de milieu GC-dessus </td></tr><tr><td> BD BBL IsoVitaleX enrichissement (gélose chocolat) </td><td> VWR </td><td> 90000-414 </td><td> Refroidir le mélange de la base de milieu GC et de l&#39;hémoglobine à 55 ° C et ajouter 10 ml de IsoVitaleX réhydratés, versez gélose chocolat </td></tr><tr><td> Pince à disséquer, pointe fine, recourbée </td><td> VWR </td><td> 82027-406 </td><td></td></tr><tr><td> Sachets de stérilisation auto-obturant </td><td> VWR </td><td> 89140-802 </td><td></td></tr><tr><td> Sulfate de gentamicine, 10 mg / ml </td><td> Lonza </td><td> 17-519Z </td><td> Ajouter 10 microlitres / ml à MM EpiAirway pour le tuer gentamicine </td></tr></tbody></table>

l&#39;utilisation du modèle epiairway pour caractériser long terme interactions hôte-pathogène

Use of the EpiAirway Model for Characterizing Long-term Host-pathogen Interactions

Haemophilus influenzae non typables (NTHi) sont humains adaptés bactéries Gram-négatives qui peuvent causer des infections récurrentes et chroniques de la muqueuse respiratoire 1, 2. Pour étudier les mécanismes par lesquels ces organismes survivent et à l&#39;intérieur des tissus des voies respiratoires, un modèle dans lequel réussite à long terme de co-culture de bactéries et de cellules humaines peuvent être réalisées est nécessaire. Nous utilisons des primaires respiratoire humain tissus épithéliaux soulevées à l&#39;interface air-liquide, le modèle EpiAirway (MatTek, Ashland, MA). Ce sont des non-immortalisés, bien différencié, 3-dimensionnelle des tissus qui contiennent des jonctions serrées, cellules ciliées et non ciliées, des cellules caliciformes qui produisent la mucine, et conserver la capacité de produire des cytokines en réponse à l&#39;infection. Cette biologiquement pertinentes modèle in vitro de la voie aérienne supérieure humaine peut être utilisée dans un certain nombre de façons, l&#39;objectif global de cette méthode consiste à effectuer à long terme de co-culture de tissus EpiAirway avec NTHi et quantifier les bactéries associées aux cellules et intériorisé au fil du temps . De même, la production de mucine et le profil des cytokines de l&#39;infection co-cultures peuvent être déterminées. Cette approche améliore les méthodes existantes dans ce nombreux protocoles actuels utilisent des cultures monocouches ou submergés Transwell de cellules humaines, qui ne sont pas capables de soutenir les infections bactériennes sur de longues périodes 3. Par exemple, si un organisme peut se répliquer dans les médias sus-jacent, ce qui peut entraîner des niveaux inacceptables de la cytotoxicité et la perte de cellules de l&#39;hôte, en arrêtant l&#39;expérience. Le modèle permet de caractériser EpiAirway long terme interactions hôte-pathogène. En outre, depuis la source de la EpiAirway est normal humaine trachéo-bronchique cellules plutôt que d&#39;une ligne immortalisé, chacun est une excellente représentation de tissus humains réels des voies respiratoires supérieures, tant dans sa structure et dans la fonction 4. Pour cette méthode, les tissus sont EpiAirway sevrés de composés anti-microbiens et anti-fongique pour 2 jours avant la livraison, et toutes les procédures sont exécutées sous antibiotique sans conditions. Cela nécessite des considérations spéciales, puisque les bactéries et les principaux tissus humains sont utilisés dans la même armoire de biosécurité, et sont co-cultivées pendant des périodes prolongées.

Cette méthode permet la caractérisation des bactéries étendu co-culture avec EpiAirways, des tissus humains primaires épithéliales respiratoires grandi à l&#39;interface air-liquide, une biologiquement pertinentes<em&gt; In vitro</em&gt; Modèle. L&#39;approche peut être utilisée avec n&#39;importe quel microbe qui se prêtent à long terme de co-culture.

L&#39;utilisation du modèle EpiAirway pour Caractériser long terme Interactions hôte-pathogène

Les souches de *Haemophilus influenzae* non typables (NTHi) sont des bactéries à Gram négatif adaptées à l'humain, capables de provoquer des infections respiratoires récurrentes et chroniques...

Le but général de l'expérience suivante est de réaliser une co-culture à long terme de l'Haemophilus influenza de type non typable, ou NTHI, avec des tissus épithéliaux respiratoires humains primaires en utilisant le modèle epi airway. Cela est accompli en inoculant la surface apicale avec le NTHI afin de permettre aux bactéries d'adhérer aux tissus et d'y pénétrer, lors d'une deuxième étape. Les inserts sont rincés toutes les 24 heures avec du DPBS préchauffé afin de simuler l'écoulement normal du mucus et d'éliminer les déchets de mucine ainsi que les débris cellulaires.Ensuite, les tissus sont prélevés au moment souhaité et la survie des cellules totales associées ou des NTHI internalisés est déterminée. Enfin, grâce à cette méthode, les caractéristiques spécifiques aux souches de la survie des NTHI dans les tissus au fil du temps, basées sur le nombre de bactéries viables, peuvent être évaluées. Bien que cette méthode puisse fournir des informations sur les infections à long terme causées par l’*Haemophilus influenzae* non typable.Il peut également être utilisé pour l'étude d'autres pathogènes humains tels que Moraxella Alis. Cette procédure sera démontrée par le Dr. Doin Ran, chercheur postdoctoral dans mon laboratoire. Retirez la plaque de transport de son emballage et préparez-vous à commencer l'expérience. Vaporisez la plaque de transport avec de l'éthanol à 70 % et placez la plaque dans la hotte de sécurité biologique.Prélevez un millilitre de milieu de maintien épi-airways à quatre degrés Celsius et répartissez-le dans chaque puits d'une plaque à six puits. Ensuite, après avoir retiré le ruban, ouvrez la plaque et enlevez le tampon qui recouvre les inserts épi-airways. À l’aide d’un mouvement de rotation, utilisez une pince pour extraire un insert des aros.Placer l'insert dans l'un des puits de la plaque à six puits, si nécessaire. Utiliser un coton-tige stérile pour retirer soigneusement les aros de l'insert, en évitant de toucher la membrane. Vérifier qu'aucune bulle d'air n'est piégée sous les inserts.Ensuite, placer la plaque à six puits dans une étuve. Laver les inserts quotidiennement selon le protocole suivant : préchauffer le DPBS contenant du calcium et du magnésium, puis remplir une pointe avec le DPBS. À l’aide de pinces stériles, prendre délicatement un insert et pipeter 200 microlitres du DPBS préchauffé sur le tissu.Ensuite, agitez doucement l'insert pour répartir uniformément le DPBS sans toucher le tissu. Puis, inclinez l'insert selon un angle et placez la pointe d'une pipette P 1000 contre l'anneau en plastique qui maintient la membrane au fond de l'insert. Aspirez ensuite soigneusement la solution tampon et transférez-la dans un tube cryogénique pour une analyse ultérieure.Enfin, aspirez le milieu de maintenance basal et remplacez-le par un millilitre de milieu frais. Préchauffez davantage de DPBS contenant du calcium et du magnésium. Ajoutez trois millilitres de DPBS préchauffé dans un tube de 15 millilitres, puis resuspendez les colonies isolées d'influenza non typable ou de NTHI cultivées toute une nuit sur gélose au chocolat dans le tube.Agitez maintenant vigoureusement le tube pendant au moins 10 secondes, puis mesurez la densité optique. Continuez à ajouter des colonies isolées de NTHI jusqu'à ce que la concentration bactérienne atteigne une DO à 600 nanomètres d'environ 0,7. Ensuite, lavez chaque insert respiratoire EPI avec du DPBS préchauffé comme précédemment, puis ajoutez 28 microlitres de la suspension bactérienne sur la surface apicale de chaque insert.Évitez d'ensemencer les milieux de maintenance basaux. Remettez ensuite la boîte au thermostat pour quantifier d'abord le NTHI en préchauffant, puis en séchant en surface des boîtes de gélose au chocolat. Ensuite, diluez en série l'inoculum de NTHI à l'aide de PBS stérile contenant 0,1 % de gélatine ou de PBSG.Déposez des aliquotes de 10 microlitres de l'inoculum sur les boîtes, puis incubez les boîtes toute la nuit à 37 degrés Celsius en présence de 5 % de dioxyde de carbone. Le lendemain, déterminez les UFC par millilitre en comptant la dilution présentant de 15 à 30 colonies distinctes dans chaque goutte, puis en effectuant un calcul rétroactif pour obtenir votre inoculum viable réel de NTHI afin de récolter l'ensemble des bactéries associées aux cellules. Rincez la surface apicale des épi-voies respiratoires trois fois avec 200 microlitres de DPBS sans calcium ni magnésium.Ensuite, inclinez l'insert et rincez tout milieu de maintenance résiduel de la membrane basale. Placez l'insert lavé dans une nouvelle plaque de six puits et ajoutez 250 microlitres de solution stérile de saponine à 1 % sur la surface apicale de chaque tissu. Remettez la plaque dans l'incubateur pendant 10 minutes, pendant que la plaque s'incube.Préparer des tubes pour une dilution sérielle en ajoutant 900 microlitres de PBSG dans chaque tube de dilution. Ensuite, frotter le tissu sur la membrane à l’aide d’une pipette P 1000 en effectuant un mouvement de va-et-vient, suivi d’un mouvement circulaire pour détacher le tissu des bords de l’insert. Puis, à l’aide d’une pipette P 1000 stérile à orifice large, transférer la suspension dans un tube einor stérile de 1,5 millilitre vide.Ajoutez maintenant 250 microlitres de DPBS sur la surface apicale de l'insert, puis examinez l'insert à l'aide d'un microscope inversé à contraste de phase afin de déterminer si des tissus restent à prélever. Ajoutez la suspension dans le tube einor et recouvrez de 500 microlitres de DPBS de manière vigoureuse. Vortexez la suspension cellulaire pendant une minute.Ensuite, à l’aide d’une seringue stérile d’un millilitre munie d’une aiguille de calibre 26, aspirer la suspension dans la seringue par l’aiguille. Faire passer lentement la suspension à travers l’aiguille trois fois, en prenant soin de ne pas créer de bulles.Ensuite, vortexer vigoureusement la suspension pendant une minute supplémentaire. Puis, utiliser une pipette à embout large pour transférer 100 microlitres de la suspension dans le premier tube de dilution. Vortexer le tube vigoureusement pendant cinq secondes, puis effectuer une dilution sérielle de un à dix et déposer une goutte de la dilution sur des géloses au chocolat.Incuber ensuite les plaques toute la nuit à 37 degrés Celsius dans une atmosphère contenant 5 % de dioxyde de carbone afin d'obtenir des dénombrements bactériens viables pour récolter les bactéries internalisées. Laver chaque insert uniquement trois fois avec 200 microlitres de DPBS. Remplacer le milieu de maintenance basal par un milieu contenant 100 microgrammes par millilitre de sulfate de gentamicine, puis ajouter 300 microlitres du milieu de maintenance contenant la gentamicine sur la surface apicale.Remettez les inserts dans l’incubateur pendant une heure ; pendant que les inserts s’incubent, préchauffez un peu de PBSDP. Ensuite, retirez le milieu de maintenance contenant la gentamicine de la surface apicale. Puis, lavez abondamment la surface apicale et la membrane basale des inserts avec le PBSDP préchauffé.Enfin, répétez la procédure de brossage et de récolte qui vient d'être démontrée avant d'effectuer des dilutions sérielles et la mise en place des bactéries internalisées sur boîte dans cette figure. En comparant les images de microscopie électronique à balayage de tissus épithéliaux respiratoires non infectés à gauche avec des tissus épithéliaux respiratoires infectés par le NTHI depuis cinq jours à droite, on observe qu'une co-culture prolongée avec le NTHI ne provoque pas de dommages importants aux tissus apicaux, soulignant ainsi l'utilité du modèle épithélial respiratoire.Ici, un graphique illustre le nombre de NTHI internalisés au cours du temps lors d'une co-culture en épithélium respiratoire. La souche R 2 8 6 6 a été inoculée à environ une fois 10 à la puissance sept UFC par insert. Ensuite, les bactéries internalisées ont été récoltées et dénombrées à chaque point temporel indiqué.Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la manière d'effectuer une co-culture à long terme de NTHI avec les tissus respiratoires hormonaux primaires en utilisant un modèle A PRE.

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JoVE Journal

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Immunologie et infection

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