Name: Un système 3D pour les chondrocytes articulaires humains Culture dans le liquide synovial (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-31T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 58 s
Description: Découvrez une culture 3D de chondrocytes articulaires humains dans du liquide synovial pour étudier la régénération cartilagineuse. Cette méthode en billes d'alginate permet une analyse physiologique à long terme.

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Nous tenons à remercier Robin Nye (Tufts Medical Center), Tomoya Uchimura et Dana Cairns (Tufts University) pour fournir une aide au stockage du liquide synovial et la centrifugation. Ce travail a été financé par le NIH (1R01AR059106-01A1) pour LZ

Un système 3D pour les chondrocytes articulaires humains en culture dans le liquide synovial Dans ce travail, nous avons encapsulé chondrocytes articulaires humains en billes d&#39;alginate en utilisant une modification de fabrication-a suggéré d&#39;encapsulation de protocole (Lonza, et 31). En utilisant ces constructions 3D, nous avons développé un système de culture de cellules dans un milieu de culture contenant des pourcentages variés de liquide synovial humain et ont évalué ces constructions 3D pour l&#39;expression des gènes du cartilage. 1. Préparer chondrocytes articulaires humains (HAC) pour trois dimensions (3D) d&#39;encapsulation <ol><li> Décongelez un flacon (1 ml) de chondrocytes articulaires humains (HAC) (Lonza) (passage 2) dans 37 ° C l&#39;eau de bain pendant 1 min. </li><li> Mélanger avec 1ml de milieu de croissance de chondrocytes (Lonza) et centrifuger à 3000 rpm pendant 3-5 min pour recueillir les cellules. Jeter le surnageant. </li><li> Resuspendre le culot cellulaire dans les milieux de croissance de chondrocytes (Lonza). </li><li> Cellules de la plaque dans un tissu de 10 cmplaque de culture (BD Biosciences), et la culture dans les milieux de croissance de chondrocytes (Lonza) jusqu&#39;à ce que les cellules sont confluentes. HAC devrait être utilisé à un nombre de passage ne dépasse pas 3 ou 4 (P3 ou P4). </li><li> Lavez CAH sur la plaque avec 155mm de NaCl au lieu de la PBS standard, suivie par trypsinzation pour recueillir des cellules pour l&#39;encapsulation d&#39;alginate de perles. Une fois que les cellules sont détachées, ralentit les cellules à 3000rpm pendant 5 min. Les cellules sont maintenant prêts pour l&#39;encapsulation 3D. </li></ol> 2. Encapsuler HAC en perles 3D Reprendre le HAC dans une solution d&#39;alginate de 1,2% (Sigma) à une densité de 8x10 5 cellules / ml. Les nombres de cellules ont été déterminés avant encapsulation, utilisant un compteur de cellules standard. Il est très important de bien mélanger afin d&#39;assurer une répartition homogène des cellules dans les billes. <ol><li> Pipeter le HAC / mélange de solution d&#39;alginate dans une seringue de 12 ml attachée à une aiguille de calibre 22 (Tyco Healthcare, Inc.) </li><li> Pendant ce temps, préparer un bécher de 50 mL avec 102 mM CaCl 2 à 5 fois le volume que de la solution HAC / aginate. Placer un barreau aimanté à l&#39;intérieur du bécher et agiter le 102 mM de CaCl2 solution lentement (à environ 150 rpm). </li><li> Tenez le bout de la seringue d&#39;environ 6 pouces au-dessus de la surface de la solution de CaCl 2 et ajouter le mélange HAC / alginate dans le CaCl 2 goutte à goutte une solution. En général, les billes d&#39;alginate qui en résultent sont de 2mm de diamètre avec une densité d&#39;encapsulation d&#39;environ 10 4 cellules / perle. Note: La hauteur de la seringue sur la solution de CaCl 2 est important. Courte distance se traduira par la déchirure en forme de goutte au lieu de perles sphériques en forme, causant inégale intégrité mécanique et l&#39;encapsulation cellulaire. </li><li> Laissez les perles remous dans le solution de CaCl 2 pendant 20-25 min. Alors que d&#39;autres protocoles d&#39;encapsulation d&#39;alginate indiquent un temps d&#39;incubation beaucoup plus courte de 10min, nous avons constaté que le temps d&#39;incubation plus longue avec la solution de CaCl 2 amélioré l&#39;intégrité de l&#39;êtreannonces. </li><li> Retirer la solution de CaCl 2, lavez-les perles 2-3 fois en 2-3 volumes de NaCl, puis une fois dans le milieu de différenciation des chondrocytes (Lonza). Alors que d&#39;autres protocoles d&#39;encapsulation perles d&#39;alginate impliquent l&#39;utilisation d&#39;un filtre pour le lavage des procédures ci-dessus, nous avons constaté que les billes d&#39;alginate deviennent souvent piégés dans le filtre et sèche, réduisant ainsi l&#39;efficacité de l&#39;encapsulation. Nous avons trouvé le plus efficace pour permettre aux billes de se déposer au fond du bécher avant de jeter la solution. </li><li> Utilisez une spatule standards pour transférer les billes dans des boîtes de culture. En général, nous la culture 12 perles par cm 3 ainsi pendant 2 jours dans un milieu de croissance de chondrocytes pour permettre de s&#39;adapter à des chondrocytes du processus d&#39;encapsulation dans la moyenne, ils ont été cultivés en avant de passer au milieu de différenciation de chondrocytes (Lonza) avec le liquide synovial. </li></ol> 3. Chondrocytes culture en milieu liquide synovial de la culture <ol><li> Frais liquide synovial peut être obtenu à partir d&#39;un oClinique utpatient (Nous avons obtenu le liquide synovial de la Tufts Medical Center). Le liquide synovial peuvent être transférées dans des tubes Falcon de 15 ml au laboratoire, et immédiatement centrifugé à 3000 rpm pendant 15min pour enlever les débris cellulaires. Aliquoter acellulaire du liquide synovial dans 1,5 ml microtubes, pour éviter répétés de congélation-décongélation. Surnageant peut être conservé à -80 ° C jusqu&#39;à utilisation. </li><li> Avant de se cultiver, mélanger le liquide synovial avec un milieu de différenciation des chondrocytes (MDP, Lonza) à différents rapports volumétriques, avec une concentration constante de l&#39;acide ascorbique 100mm et 9 mM CaCl 2 (ce montant trace de CaCl 2 est de garantir l&#39;intégrité de l&#39;alginate perles). </li><li> Conservez la plaque sur une plateforme à bascule dans un incubateur à 37 ° C (fréquence bascule: environ 75 fois / min) pour aider à la distribution des nutriments dans les billes d&#39;alginate, et pour réduire l&#39;agglutination des billes. Ceci est particulièrement important que nous la culture de ces chondrocytes pour une période de temps prolongée (jusqu&#39;à 4 semaines). Remarque: Alors que la croissance des chondrocytes et des médias de différenciation (Lonza) contiennent deux antibiotiques couramment utilisés gentamycine et amphotéricine, nous n&#39;avons pas compléter toute antibiotiques lorsque nous avons utilisé des pourcentages différents du liquide synovial pour la culture des chondrocytes. Aucune contamination n&#39;a jamais été observé. </li><li> Changer mélanges des médias tous les 2-3 jours. La viscosité du liquide synovial a été un obstacle majeur dans les chondrocytes en culture encapsulés dans des billes d&#39;alginate lors de cultures à long terme. Nous avons trouvé le plus efficace pour diluer le liquide synovial, complétés avec des moyennes de 102 mm de CaCl 2 (50% V / V), ce qui renforce également l&#39;intégrité des billes d&#39;alginate. De cette façon, le milieu peut être retiré lentement avec une pipette, sans endommager les perles. </li></ol> 4. HAC récolte dans des billes d&#39;alginate pour l&#39;analyse de l&#39;expression des gènes Des précautions particulières doivent être prises lors de la récolte de la CAH à partir des billes d&#39;alginate pour l&#39;analyse de l&#39;expression génique. <ol><li> Laver les billes d&#39;alginate 3 tiMES dans 102 mM de CaCl 2 pendant environ 5 min à chaque fois. </li><li> Récupérer les chondrocytes en ajoutant 55 mM NaCitrate à un volume 4-5 fois que des perles. Il est important que les billes d&#39;alginate sont totalement immergés dans la solution NaCitrate. Agiter ou de roche pour 20-30 min. </li><li> Isoler les cellules et jeter le surnageant. </li><li> Pour l&#39;analyse par RT-PCR, remettre en suspension les cellules dans un tampon de lyse cellulaire culot (Qiagen ARN kit d&#39;isolement), et de procéder à la purification d&#39;ARN. </li></ol> 5. Fix HAC en billes d&#39;alginate pour l&#39;analyse histologique Un soin particulier doit être pris à la récolte de la CAH à partir des billes en 3D pour l&#39;analyse histologique. <ol><li> Laver les billes d&#39;alginate 3 fois dans 102 mM de CaCl 2 pendant environ 5 min à chaque fois. Pour complètement laver le fluide visqueux synoviale, nous avons trouvé le plus efficace de se laver avec un milieu de différenciation des chondrocytes (Lonza) pendant la nuit, bascule dans un incubateur à 37 ° C (fréquence bascule: environ 75 foiss / min). Le milieu de croissance des chondrocytes a été utilisé pour assurer la survie de chondrocytes dans cette lave et prolongée pour permettre une pénétration maximale de l&#39;agent de fixation. </li><li> Fixer les perles dans de l&#39;éthanol 70% pendant la nuit, et procéder à une analyse histologique. Pour effectuer coloration DAPI, incuber avec des billes d&#39;alginate Dapi solution (500ng/ml) pendant 1 heure sous doux balancement, et laver 3 fois avec 102mm de CaCl 2 pendant 15 min à chaque fois. Dapi images peuvent ensuite être visualisées sous un microscope à fluorescence. Les billes peuvent également être sectionnés pour bleu alcian et coloration H &amp; E. </li></ol> 6. Les résultats représentatifs Notre méthode de culture en 3D pour des chondrocytes humains dans des pourcentages élevés de liquide synovial est représentée dans le schéma indiqué dans la Fig.1. Après chondrocytes humains ont été encapsulés dans des billes d&#39;alginate, ils ont été autorisés à croître en milieu supplémenté avec différents ratios de liquide synovial. En raison de la viscosité du liquide synovial, il est essentiel dechondrocytes culture dans des conditions à bascule constamment pour empêcher l&#39;agglutination des constructions de cartilage et d&#39;assurer une répartition homogène des nutriments. Il est également essentiel de se laver les billes d&#39;alginate longuement avant de récupérer les chondrocytes, de sorte que la fixation ou du tampon de lyse peuvent pénétrer les perles (Fig.1). Lumineux terrain (BF) des images de chondrocytes dans les billes d&#39;alginate sont présentés sur la Fig.2. Coloration DAPI a été réalisée pour confirmer la distribution usniform des cellules dans les billes (Fig. 2). A la fin de la période de culture de 21 jours, l&#39;analyse d&#39;expression génique a été réalisée par qRT-PCR. La référence gène GAPDH a été utilisée pour la normalisation de tous les rapports d&#39;achèvement, comme il a été déterminé à être l&#39;un des gènes de référence les plus fiables pour l&#39;analyse qPCR sur les chondrocytes 32. Un exemple est montré dans la Fig. 3, où nous avons analysé les résultats de chondrocytes articulaires humains en culture dans le liquide synovial poolées de six patients souffrant d&#39;arthrose. Cohérent avec le fait que les chondrocytes à partirLonza ont été élargis dans les cultures en 2D, ce qui conduirait inévitablement à la dédifférenciation 33, nous avons constaté que le jour 0 chondrocytes ont exprimé un niveau minimal de gènes matrice cartilagineuse (Fig. 3). Culture 3D de chondrocytes avec un milieu de différenciation des chondrocytes (Lonza) ou milieu supplémenté avec du liquide synovial augmenté de façon significative l&#39;expression du gène du collagène du cartilage, aggrécane et MMP13, qui indique chondrocytes re-différenciation par Jour 21 (Fig.3) 34. Augmenter le pourcentage de liquide synovial dans les médias a entraîné des niveaux comparables de marqueurs matrice cartilagineuse II de collagène et d&#39;expression de l&#39;ARNm aggrécane (Fig.3A et 3B). Par ailleurs, les chondrocytes cultivés dans 100% de liquide synovial, même présentaient une diminution dans le cartilage d&#39;enzymes dégradant l&#39;expression des ARNm MMP13 par rapport à celles cultivées en milieu seul (Fig.3C). Fait intéressant, le niveau d&#39;expression de la mort cellulaire indicateur de la caspase 3 a progressivement diminué avec l&#39;augmentation des ratios de liquide synovial, ce qui suggère que sculture du liquide ynovial a conduit à des niveaux diminution de l&#39;apoptose (Fig. 3D). Par conséquent, nos résultats montrent que les chondrocytes articulaires humains en culture dans les niveaux élevés de liquide synovial, dans un cadre 3D est une technologie réalisable. Tableaux et figures <img alt="Figure 1." src="/files/ftp_upload/3587/3587fig1.jpg" /> Figure 1. Schéma de la méthode à la culture de chondrocytes articulaires humains en pourcentages élevés de liquide synovial dans des billes d&#39;alginate 3D. Premièrement, les chondrocytes et la solution d&#39;alginate sont mélangés. Lorsqu&#39;il est appliqué goutte à goutte à la solution de CaCl 2, les chondrocytes sont immobilisées dans des billes d&#39;hydrogel réticulé Ca-alginate. Ces constructions en 3D sont ensuite cultivées dans le milieu de différenciation de chondrocytes (Lonza) avec différents ratios de liquide synovial humain. Après 21 jours de culture dans une condition à bascule, des billes d&#39;alginate contenant des cellules sont lavées abondamment après quoi les cellules sont récupérées pour le gèneanalyse de l&#39;expression. <img alt="Figure 2." src="/files/ftp_upload/3587/3587fig2.jpg" /> Figure 2. Fond clair (BF) et des images Dapi des chondrocytes articulaires humains cultures encapsulées avec 0%, 30%, 50%, 70% et 100% liquide synovial. Les chondrocytes ont été de forme sphérique dans toutes les conditions de culture. Images du champ clair (BF) et Dapi ont été superposées pour confirmer l&#39;emplacement et la distribution des chondrocytes. EISN, des images agrandies. Pointes de flèches, colocalisation des chondrocytes au BF et images coloration DAPI. <img alt="Figure 3." src="/files/ftp_upload/3587/3587fig3.jpg" /> Figure 3. QRT PCR analyse des encapsulée chondrocytes articulaires humains au jour 0 (J0) une après 21 jours de culture (D21) en milieu supplémenté avec des proportions variables de liquide synovial (SF) (0%, 30%, 50%, 70 % et 100%). Les résultats de quatre échantillons indépendants sont montrés ici. GAPDH a été utilisé comme référence interne pour toutes les PCR. <strong&gt; A. L&#39;expression du collagène ARNm II. B. Expression de l&#39;ARNm aggrécane. C. MMP13 expression de l&#39;ARNm. D. L&#39;expression d&#39;ARNm Caspase 3. La signification statistique a été évaluée pour la Journée des échantillons et 0 Jour 21 échantillons de 0% et 100% liquide synovial (SF) en culture, en utilisant le logiciel INSTAT. * Indique P &lt;0,05.

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Nous n&#39;avons rien à révéler.

Dans ce rapport, nous avons développé une méthode qui permet la culture de chondrocytes articulaires humains dans un environnement 3D en milieu contenant des concentrations élevées de liquide synovial humain. Le liquide synovial est l&#39;un des principaux composants qui constituent l&#39;environnement naturel dans la cavité articulaire, où résident les chondrocytes articulaires. Cependant, la viscosité du liquide synovial a été un défi majeur pour trois dimensions à long terme de culture des chondrocytes. Pour surmonte...

Table des réactifs spécifiques et des équipements: <table border="1"><tr><th> Le nom du réactif </th><th> Société </th><th> Numéro de catalogue </th><th> Commentaires </th></tr><tr><td> Alginate (sel de sodium d&#39;acide alginique) </td><td> Sigma </td><td> A2158-250G </td><td> Solution de 2,4% stockés à 40 ° C </td></tr><tr><td> Chlorure de calcium granulaire </td><td> JT Baker </td><td> A19339 </td><td></td></tr><tr><td width="239" rowspan="2" > Les milieux de croissance chondrocytaire </td><td width="254" rowspan="2" > Lonza </td><td width="182" > CC-3156 (base des médias) </td><td width="141" rowspan="2" ></td></tr><tr><td width="182" > CC-4409 (supplément) </td></tr><tr><td width="239" rowspan="2" > Médias différenciation chondrocytaire </td><td width="254" rowspan="2" > Lonza </td><td width="182" > CC-3226 (base des médias) </td><td width="141" rowspan="2" ></td></tr><tr><td width="182" > CC-4408 (supplément) </td></tr><tr><td> Chondrocytes articulaires humains </td><td> Lonza </td><td > CC-2550 </td><td></td></tr><tr><td> DAPI (4 &#39;,6-diamidino-2-phénylindole dichlorhydrate) </td><td> Sigma-Aldrich </td><td > D9542 </td><td></td></tr><tr><td> RNeasy mini kit (pour l&#39;extraction de l&#39;ARN) </td><td> Qiagen </td><td > 74104 </td><td></td></tr><tr><td> Réactifs de PCR: SYBR-vert </td><td> Quanta </td><td > 95053-500 </td><td></td></tr><tr><td> Seringue 12 ml </td><td> Tyco-Kendall-Monoject </td><td > 512852 </td><td></td></tr><tr><td> Aiguille hypodermique de 22 Gague </td><td> Tyco-KendalL-Monoject </td><td > 8881 </td><td></td></tr><tr><td> Microscope </td><td> Olympus </td><td > IX71 </td><td></td></tr><tr><td> Rocker plate-forme </td><td> Thermolyne Thermoscientific </td><td > Vari-mix </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td ></td><td></td></tr><tr><td> Séquences amorces </td><td></td><td ></td><td></td></tr><tr><td> Collagène IIa-forward </td><td> 5&#39;-TTC ATC CCA CCC TCT CAC AGT-3 &#39; </td><td ></td><td></td></tr><tr><td> Collagène IIa-reverse </td><td> 5&#39;-CCTCTGCCTTGACCCGAA-3 &#39; </td><td ></td><td></td></tr><tr><td> MMP13-forward </td><td> 5&#39;-TGT GCC CTT CTT CAC GAC ACA ACT-3 &#39; </td><td ></td><td></td></tr><tr><td> MMP13-reverse </td><td> 5&#39;-GAG CAG AGA CTT TGA GTC ATT GCC-3 &#39; </td><td ></td><td></td></tr><tr><td> Caspase 3-forward </td><td> 5&#39;-TCA TTA TTC AGG CCT GCC GTG GTA-3 &#39; </td><td ></td><td></td></tr><tr><td> Caspase 3-reverse </td><td> 5&#39;-TGG ATG CAA ACG GAG CCA TCC TTT -3 &#39; </td><td ></td><td></td></tr></table>

un système 3d pour les chondrocytes articulaires humains culture dans le liquide synovial

A 3D System for Culturing Human Articular Chondrocytes in Synovial Fluid

Cartilage de destruction est un élément central pathologiques de l&#39;arthrose, une des principales causes d&#39;invalidité dans les Etats-Unis. Cartilage de l&#39;adulte ne se régénère pas très efficace in vivo, et par conséquent, l&#39;arthrose conduit à une perte irréversible du cartilage et est accompagné par la douleur chronique et 1,2 immobilité. Génie tissulaire du cartilage offre un potentiel prometteur pour régénérer et restaurer la fonction des tissus. Cette technologie implique généralement chondrocytes semis dans des échafaudages naturel ou synthétique et la culture de la 3D résultant de construire dans un milieu équilibré sur une période de temps avec un but de l&#39;ingénierie biochimique et un tissu biomécaniquement matures qui peuvent être transplantées dans un site de la lésion in vivo 3-6 . Atteindre une condition optimale pour la croissance des chondrocytes et dépôt de matrice est essentiel pour la réussite de l&#39;ingénierie tissulaire du cartilage. Dans la cavité natale, conjointe du cartilage à l&#39;articla surface de l&#39;os EXCLUES baigne dans le liquide synovial. Ce liquide clair et visqueux fournit des nutriments au cartilage articulaire avasculaire et contient des facteurs de croissance, des cytokines et des enzymes qui sont importants pour le métabolisme des chondrocytes 7,8. Par ailleurs, le liquide synovial facilite faible coefficient de frottement entre les surfaces cartilagineuses mouvement principalement par sécrétant deux éléments clés, le hyaluronane et Lubricin 9 10. En revanche, l&#39;ingénierie tissulaire du cartilage est le plus souvent cultivés en milieu artificiel. Bien que ces médias sont vraisemblablement en mesure d&#39;offrir des conditions plus définies pour étudier le métabolisme des chondrocytes, le liquide synovial reflète le plus fidèlement l&#39;environnement naturel, dont les chondrocytes articulaires résident po En effet, le liquide synovial a l&#39;avantage d&#39;être facile à obtenir et à stocker, et peut souvent être régulièrement réapprovisionné par le corps. Plusieurs groupes ont complété le milieu de culture avec du liquide synovial dans la croissance humaine, bovine, lapin et chien chondrocytes, mais surtout utilisé seulement de faibles niveaux de liquide synovial (inférieur à 20%) 11-25. Alors que les chondrocytes de poulet, de cheval et humaines ont été cultivées dans le milieu avec des pourcentage plus élevé de liquide synovial, ces systèmes de culture ont été à deux dimensions 26-28. Ici, nous présentons notre méthode de culture de chondrocytes articulaires humains dans un système 3D avec un pourcentage élevé de liquide synovial (jusqu&#39;à 100%) sur une période de 21 jours. Ce faisant, nous avons surmonté un obstacle majeur présenté par la haute viscosité du liquide synovial. Ce système offre la possibilité d&#39;étudier des chondrocytes humains dans le liquide synovial, dans un cadre 3D, qui peut être combiné avec deux autres facteurs importants (la tension d&#39;oxygène et le chargement mécanique) 29,30 qui constituent l&#39;environnement naturel pour le cartilage d&#39;imiter le milieu naturel pour la croissance du cartilage. Par ailleurs, ce système peut également être utilisé pour le dosage de l&#39;activité du liquide synovial sur les chondrocytes et de fournir une plateforme pour le développementcartilage de technologies de régénération et les options thérapeutiques pour l&#39;arthrite.

Un système 3D de chondrocytes articulaires humains en culture dans les niveaux élevés du liquide synovial est décrite. Le liquide synovial reflète le microenvironnement plus naturelle pour le cartilage articulaire, et peut être facilement obtenu et stocké. Ce système peut donc être utilisée pour étudier la régénération du cartilage et de dépistage pour les thérapies pour traiter l&#39;arthrite.

Un système 3D pour les chondrocytes articulaires humains Culture dans le liquide synovial

La destruction du cartilage est une caractéristique pathologique centrale de l'arthrose, l'une des principales causes d'invalidité aux États-Unis. Le cartilage chez l'adulte ne...

L'objectif général de l'expérience suivante est de cultiver des chondrocytes articulaires humains dans du liquide synovial en cultures à long terme. Cela est réalisé en encapsulant d'abord les chondrocytes dans des billes d'alginate. Ensuite, les chondrocytes sont cultivés dans du liquide synovial, ce qui leur permet de proliférer dans un environnement tridimensionnel qui imite leurs conditions de croissance normales.Le milieu doit être changé périodiquement afin de permettre aux cellules un accès suffisant aux nutriments. La dernière étape de la procédure consiste à récolter les chondrocytes à partir des billes d'alginate pour des analyses d'expression génique et histologiques. Ces analyses confirment que les chondrocytes cultivés dans des billes d'alginate sont viables, prolifèrent et expriment une quantité importante de matrice cartilagineuse.Les principaux avantages de l'utilisation de cette technique par rapport aux méthodes existantes sont que nous analysons les cellules du cartilage dans un environnement tridimensionnel au lieu d'un environnement bidimensionnel. De plus, nous utilisons du liquide synovial comme milieu plutôt qu'un milieu artificiel. Ainsi, la combinaison de la structure tridimensionnelle et du liquide synovial nous permet de les analyser dans un environnement plus naturel, par opposition au système bidimensionnel sur une plaque et au milieu artificiel.La méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la biologie du cartilage et du génie tissulaire. Par exemple, comment les cellules cartilagineuses, ou chondrocytes, se comportent-elles dans le liquide synovial à long terme ? Et également, devrions-nous habituer les cellules cartilagineuses au liquide synovial avant de les transplanter dans les organismes hôtes ?Préparez un flacon de un millilitre de chondrocytes articulaires humains ou de hacks en les décongelant dans de l'eau tiède pendant une minute. Ensuite, mélangez les hacks dans un flacon contenant deux millilitres de milieu de croissance pour chondrocytes préalablement réchauffé. Pour éliminer le milieu de congélation contenant du DMSO, centrifugez les cellules à 3000 tr/min pendant trois à cinq minutes, jetez le surnageant et remettez en suspension les cellules dans sept millilitres de milieu de croissance pour chondrocytes.Ensuite, transférez les cellules dans une plaque de 10 centimètres et faites-les cultiver jusqu'à ce qu'elles soient confluentes. Les cellules doivent être utilisées à un numéro de passage n'excédant pas trois ou quatre. Une fois confluentes, lavez les cellules avec une solution de chlorure de sodium plutôt qu'avec du PBS.Ensuite, récolter les cellules par trypsine en utilisant 0,5 millilitre de solution standard de trypsine-EDTA. Une fois que les cellules se sont détachées, les centrifuger et elles seront prêtes pour l'encapsulation en 3D. En reprenant les cellules en culot, éliminer le surnageant, puis les resuspendre dans une solution d'alginate à 1,2 % à une densité de 800 000 cellules par millilitre.Préparez maintenant une solution de chlorure de calcium avec un volume cinq fois supérieur à celui de la solution d'alginate hack. Maintenez un léger brassage de la solution pendant la préparation de l'alginate hack. Prélevez la solution d'alginate hack à l’aide d’une seringue de 12 millilitres munie d’une aiguille de calibre 22.Lorsque le chlorure de calcium est prêt, maintenez l'extrémité de la seringue à environ quinze centimètres au-dessus de la surface de la solution de chlorure de calcium. La hauteur de la seringue est excessive. La solution de chlorure de calcium est très importante.Si vous ne le maintenez pas suffisamment haut, les billes ne seront pas sphériques ni bien formées. Ajoutez ensuite le mélange d'alginate hack, goutte à goutte. Généralement, les billes obtenues ont un diamètre de deux millimètres, contenant environ 10 puissance 4 cellules par bille.Pour améliorer l'intégrité des billes, laissez-les agiter en solution pendant 20 à 25 minutes. Une fois l'agitation terminée, laissez les billes se déposer, puis décantez la solution de chlorure de calcium. Ensuite, lavez les billes deux à trois fois avec une solution de chlorure de sodium d'environ deux à trois fois le volume des billes.Au lieu d'utiliser des filtres, maintenez les billes humides en les laissant décanter entre les changements de solution de lavage. Après les lavages au chlorure de calcium, effectuez un lavage avec le milieu de différenciation des chondrocytes. Ensuite, à l'aide d'une spatule, transférez les billes dans des boîtes de culture et cultivez-les pendant 48 heures dans le milieu de croissance des chondrocytes avant de les passer au milieu de chondrocytes.Milieu de différenciation contenant du liquide synovial : le liquide synovial doit être préparé juste après sa récolte. Transférez le liquide synovial frais dans des tubes de 15 millilitres et centrifugez-les immédiatement à 3000 tr/min pendant 15 minutes. Pour éliminer les débris cellulaires, le surnageant est propre ; aliquotez le liquide synovial dans des tubes microcentrifugeurs de 1,5 millilitre afin de les conserver à moins 80 degrés Celsius jusqu'à ce qu'une concentration optimale de liquide synovial soit déterminée.Utilisez différents milieux de culture composés de liquide synovial et de milieu de différenciation des chondrocytes, à des rapports volumétriques variables, avec une concentration constante d'acide ascorbique et de chlorure de calcium. Incubez les plaques sur une plateforme agitée à 37 degrés Celsius. Changez le milieu toutes les deux à trois journées avant de retirer l'ancien milieu.Le diluer avec une solution de chlorure de calcium pour réduire sa viscosité et, par la même occasion, renforcer l'intégrité des billes. Ensuite, prélever lentement le mélange des plaques à l’aide d’une pipette. Les billes peuvent être cultivées jusqu’à quatre semaines avant la récolte, selon leur production de matrice de prolifération et les objectifs de l’expérience.Lors de la récupération des explants à partir des billes d'alginate pour une analyse d'expression génique ou une analyse histologique, laver les billes d'alginate trois fois dans une solution de chlorure de calcium sans utiliser de filtre pour l'analyse d'expression génique. Isoler les chondrocytes en les immergeant dans du citrate de sodium à un volume quatre à cinq fois supérieur à celui des billes. Agiter le mélange pendant 20 à 30 minutes, puis centrifuger les cellules dans des tubes de 15 millilitres.Jetez le surnageant et resuspendez le culot cellulaire dans le tampon de lyse fourni avec un kit classique, puis poursuivez selon le protocole standardisé de purification de l'ARN afin de préparer les billes lavées avant fixation. Après les lavages au chlorure de calcium, effectuez un lavage nocturne dans le milieu de différenciation chondrale de Wash Inc.Fixer les billes dans deux millilitres d'éthanol à 70 % pendant plus de 15 minutes à quatre degrés Celsius, puis procéder à l'analyse histologique pour la coloration dappy. Incuber les billes d'alginate dans la solution de DAPI pendant une heure sous agitation douce. Laver ensuite les billes trois fois avec une solution de chlorure de calcium avant de visualiser les billes d'alginate au microscope à fluorescence.Les billes peuvent également être sectionnées pour une histologie avec coloration à l’Ian Blue et à l’hématoxyline-éosine. La superposition des images de billes d’alginate colorées au DAPI avec des images en champ clair a montré une distribution uniforme des cellules à l’intérieur des billes cultivées dans toutes les conditions, du milieu dépourvu de liquide synovial au milieu entièrement basé sur le liquide synovial. À la fin de la période de culture de 21 jours, l’expression génique a été mesurée à partir de chondrocytes articulaires humains cultivés dans du liquide synovial, regroupé à partir de six patients atteints d’ostéoarthrite, ce qui est conforme aux rapports antérieurs. Les chondrocytes du jour zéro exprimaient des niveaux minimaux de gènes de la matrice cartilagineuse. La culture tridimensionnelle de chondrocytes avec un milieu de différenciation des chondrocytes, ou un milieu supplémenté en liquide synovial, a significativement augmenté l’expression des gènes du cartilage tels que le collagène II, l’ACAN et la MMP-13, ce qui indique une redifférenciation des chondrocytes.Vers le jour 21, l'augmentation du pourcentage de liquide synovial dans le milieu a conduit à des niveaux comparables de marqueurs de la matrice cartilagineuse. L'expression des ARNm du collagène de type II et de l'ANDCAN dans les chondrocytes cultivés en présence de 100 % de liquide synovial a même montré une diminution de l'expression de l'ARNm de la métalloprotéinase MMP-13, enzyme dégradant le cartilage, par rapport aux chondrocytes cultivés dans le milieu seul. Fait intéressant, le niveau d'expression de la caspase-3, indicateur de la mort cellulaire, a diminué progressivement avec des rapports croissants de liquide synovial, suggérant que la culture en présence de liquide synovial a entraîné une réduction des niveaux d'apoptose.Ainsi, la culture de chondrocytes articulaires humains et de concentrations élevées de liquide synovial dans un environnement tridimensionnel constitue une technologie réalisable. Une fois maîtrisée, la technique d'encapsulation pourrait prendre moins d'une heure à compléter. Vous devez vous assurer de rincer soigneusement les billes entre chaque changement de milieu.Et vous devez également faire attention à ne pas endommager les billes lors de l'utilisation de la pipette.

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