Name: Ex Vivo modèle organotypique cornéenne aiguë de lherpès simplex virus type épithéliales je infection (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-11-03T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 55 s
Description: Découvrez la culture ex vivo de cornées de lapins et de donneurs humains pour étudier l'infection aiguë par l'herpès simplex virus de type I. Ce modèle organotypique offre une alternative physiologiquement pertinente aux cultures cellulaires traditionnelles pour la recherche en virologie cornéenne.

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L&#39;appui de la Banque d&#39;yeux des Lions du Delaware Valley a été inestimable pour ce travail. Anticorps de souris monoclonal primaire contre ICP8 était un gentil cadeau du Dr David Knipe (Harvard Medical School). Nous remercions également le Dr Stephen Jennings (Drexel University College of Medicine) et le Dr Peter Laibson (Wills Eye Institute) pour des discussions utiles et d&#39;expertise.

Tous les réactifs et du matériel ont été achetés stérile ou ont été stérilisés avant la procédure. Cet article décrit les étapes de mise en place du modèle ex vivo en commençant par un œil énucléé avant. Dans nos expériences, nous utilisons de nouveaux globes oculaires entières de jeunes (8-12 semaines) lapins albinos (Pel-Freez Biologicals, Rogers, AR). En outre, nous utilisons des cornées humaines obtenues à partir de la banque des yeux locale. Si vous effectuez vous-même l&#39;énucléation, prenez soin de ne pas endommager la cornée ou du limbe lors de la procédure. Protocoles énucléation de lapin peuvent être trouvés ailleurs 2. Partie 1: excision du bouton cornéosclérale <ol><li> Mouiller une étroite bande de gaze avec du PBS et l&#39;enrouler autour du globe oculaire pour faciliter sa préhension lors de la procédure. </li><li> Utiliser un scalpel pour faire une incision dans la sclère tangentielle, environ 0,5 cm du limbe. </li><li> Utiliser des ciseaux bien aiguisés pour prolonger l&#39;incision et complètement exciser la cbouton orneoscleral. </li><li> Une fois sur le bouton cornéosclérale est isolé, loin taquiner l&#39;iris tout en maintenant le bord scléral avec une pince. Éviter d&#39;endommager l&#39;endothélium ou exerçant un stress excessif sur la cornée. </li></ol> Partie 2: Introduction de la cornée en culture organotypique <ol><li> Cornées explantées sont cultivées dans un milieu essentiel minimum (MEM) additionné de non-acides aminés essentiels (1X), L-glutamine (2 mM), la pénicilline (200 U / ml) et de streptomycine (200 ug / ml). Un agent antifongique, tels que l&#39;amphotéricine, peuvent également être ajoutés si nécessaire. </li><li> Préparer une solution à 1% d&#39;agarose dans un milieu de culture et le tenir prêt à 55 ° C. </li><li> Rincer soigneusement la cornée stérile pénicilline PBS contenant (200 U / ml) et de streptomycine (200 ug / ml). </li><li> Placez le côté cornée épithéliale dans un puits d&#39;une plaque à godets stérile. </li><li> Ajouter le support d&#39;agarose contenant de la concavité endothéliale de la cornée juste assez pourle remplir complètement. Permettez ~ 1 min pour le agarose à se solidifier. </li><li> Placez la cornée avec le milieu de culture soutenir gel échafaudage côté épithélial vers le haut dans une boîte de culture tissulaire de 35 mm et d&#39;ajouter à couvrir la surface épithéliale. </li><li> La cornée peut être cultivé de cette manière depuis plus d&#39;une semaine, avec tous les changements de milieu h 48. </li></ol> Partie 3: L&#39;infection par le HSV-1 et le traitement avec des médicaments expérimentaux <ol><li> Ajouter 1 ml de milieu contenant la quantité souhaitée de virus dans une boîte de culture de tissus 35 mm. En général, nous infecter avec 1x10 4 PFU de la souche KOS de HSV-1 par la cornée. Nos titres boursiers sont déterminés par des essais de plaque sur des monocouches de CV-1. </li><li> Placer la cornée avec le côté échafaudage agarose épithéliale vers le bas dans le milieu contenant le virus. </li><li> Placez la cornée dans un incubateur de culture tissulaire pour infecter pendant 1 heure avec balancement intermittent toutes les 10-15 minutes. </li><li> Après 1 heure, aspirer le virus contaiNing moyennes et rincer 2-3 fois avec du PBS pour éliminer les particules résiduelles virales. </li><li> Placer la cornée dans sa position précédente et ajouter un milieu de culture frais pour couvrir la surface de l&#39;épithélium. </li><li> Traitements expérimentaux peuvent être commencée avant ou après l&#39;infection, en fonction de la nature de l&#39;expérience. </li><li> Le milieu de culture est changé tous les 48 h. </li></ol> Partie 4: Prélèvement des échantillons <ol class="lalpha"><li> Moyen pour l&#39;analyse dosage de la plaque. Mélangez bien le support et l&#39;utiliser immédiatement pour un essai de plaque ou de conserver à -80 ° C pour une utilisation ultérieure si la collecte d&#39;échantillons à différents moments. </li><li> ADN, ARN, protéines, ou des cellules de l&#39;épithélium cornéen <ol><li> Retirer l&#39;échafaud agarose et rincer la cornée et avec du PBS. </li><li> L&#39;excision de la bague de tissu scléral de la cornée afin de faire en sorte que seul matériau épithéliale cornéenne est recueillie. </li><li> Uchanter un scalpel, gratter les cellules épithéliales cornéennes dans le tampon approprié, en fonction du type de matériau devant être isolé. Pour l&#39;isolement de l&#39;ADN et de l&#39;ARN, on utilise le kit DNeasy Blood &amp; Tissue et le kit RNeasy Mini, respectivement (QIAGEN, Hilden, Allemagne). Pour la collecte des lysats protéiques, nous utilisons tampon de Laemmli. Pour l&#39;analyse par cytométrie en flux des cellules épithéliales cornéennes, nous pré-incuber les cornées dans une petite quantité de trypsine pour détacher les cellules, puis les déloger en trypsine avec un scalpel. Depuis racler l&#39;épithélium cornéen ne donne pas des quantités égales de tissu, il est important d&#39;inclure des contrôles appropriés lors de l&#39;analyse des échantillons. Nous utilisons ARNr 18S comme une transcription de référence dans qRT-PCR, GAPDH comme gène de référence dans RCQP et nucléoline comme un contrôle de chargement pour Western blot. </li></ol></li><li> Des échantillons de tissus pour l&#39;immunohistochimie ou immunofluorescence <ol><li> Retirer l&#39;échafaud agarose et rincer le maïseo bien avec du PBS. </li><li> En fonction de votre objectif expérimental, utilisez la cornée afin de faire un bloc de paraffine de tissu ou d&#39;un bloc de tissu congelé, comme le montre la vidéo. Nous suivre les procédures standard lors de la préparation des coupes de tissus cornéens. </li></ol></li></ol> Les résultats représentatifs La plupart des méthodes disponibles pour l&#39;étude des cellules en culture de tissus peut être facilement adapté pour une utilisation dans la cornée in vivo infectées par le HSV-1 ex. On voit ici des résultats représentatifs pour quelques-unes des techniques les plus communes applicables à l&#39;étude de l&#39;infection HSV-1 - qPCR (figure 1D), qRT-PCR (figure 1B), Western blot (figure 1F), dosage de la plaque (figure 1C), et tissus par immunofluorescence (figure 1E). <img src="/files/ftp_upload/3631/3631fig1.jpg" alt="Figure 1" /> Figure 1. Analyse des cornées infectées par le HSV-1 v exivo. Représentation schématique (A) du modèle ex vivo de épithéliale cornéenne aiguë infection HSV-1. (BF) Analyse des cornées infectées en utilisant la méthode décrite dans cet article la vidéo. Cornées de lapin explantés ont été infectées par le 1x10 4 UFP / cornée de souche KOS de HSV-1 et cultivées en présence (AAP) ou l&#39;absence (Mock) d&#39;acide phosphonoacétique (400 pg / ml), un inhibiteur connu de la réplication du HSV. (B) L&#39;ARN total ont été recueillies aux points de temps indiqués, et la transcription virale a été évaluée par qRT-PCR avec des amorces pour le HSV-1 polymérase. Primaires contre l&#39;ARNr 18S ont été utilisés comme référence. n = 3. Les barres d&#39;erreur indiquent ± SEM. (C) Le milieu de culture a été recueilli à 48 hpi, et la production de particules infectieuses a été évaluée par dosage de plaque sur des monocouches de CV-1. (D) L&#39;ADN total a été recueilli à 48 hpi, et la réplication du génome viral a été évaluée dans un test PCR quantitative avec des amorces pour le génome de HSV-1. PrIMERS contre GAPDH ont été utilisés comme référence. n = 3. Les barres d&#39;erreur indiquent ± SEM. (E) Maquette cornées ont été traités par flash-gelé à 48 hpi, sectionnées et analysés par immunofluorescence indirecte pour la présence d&#39;une protéine virale précoce (ICP8) dans l&#39;épithélium infecté. Les noyaux sont contre-Höchst 33258. (F) lysats protéiques ont été recueillies à 48 hpi, et l&#39;expression d&#39;une protéine virale (ICP0) a été évaluée par Western blot. BCA a été utilisé pour assurer un chargement égal d&#39;échantillons. hpi = heures après l&#39;infection.

<ol><li>Kaye, S., Choudhary, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Herpes+simplex+keratitis%5BTitle%5D)+AND+%22Prog.+Retin.+Eye+Res%22%5BJournal%5D)">Herpes simplex keratitis.</a> Prog. Retin. Eye Res. 25, 355-380 (2006).</li>
<li>Holmberg, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enucleation+of+exotic+pets%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Exotic+Pet+Medicine%22%5BJournal%5D)">Enucleation of exotic pets.</a> Journal of Exotic Pet Medicine. 16, 88-94 (2007).</li>
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</ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

Dans cet article, vidéo, nous décrivons une méthode pour étudier aiguë épithélium cornéen infection HSV-1 dans un modèle ex vivo. Ce modèle est un tremplin utile entre le in vitro et dans des modèles in vivo de l&#39;, car elle permet de valider physiologiquement précise des résultats de culture cellulaire et, par conséquent, limite le montant de l&#39;expérimentation animale qui doit être effectuée. En outre, le modèle ex vivo fournit une occasion unique et précieuse pour ét...

<table border="1"><tbody><tr><td> Réactifs / fournitures </td><td> Entreprise </td><td> Catalogue # </td></tr><tr><td> Minimum Essential Medium (MEM) </td><td> Mediatech </td><td> 10-010-CV </td></tr><tr><td> Non-acides aminés essentiels (solution 100x) </td><td> Mediatech </td><td> 25-025-CI </td></tr><tr><td> L-Glutamine </td><td> Mediatech </td><td> 25 à 005-CI </td></tr><tr><td> Sel de sodium de pénicilline G </td><td> Sigma </td><td> P3032 </td></tr><tr><td> Sel de sulfate de streptomycine </td><td> Sigma </td><td> S9137 </td></tr><tr><td> Agarose </td><td> Invitrogen </td><td> 15510-027 </td></tr><tr><td> Phosphate Buffered Saline (PBS) </td><td> Préparé dans le laboratoire </td><td> N / A </td></tr><tr><td> Trypsine EDTA (1x) &lt;/ Td&gt; <td> Mediatech </td><td> 25 à 053-CI </td></tr><tr><td> Sang DNeasy Tissue Kit &amp; </td><td> QIAGEN </td><td> 69504 </td></tr><tr><td> RNeasy Mini Kit </td><td> QIAGEN </td><td> 74104 </td></tr><tr><td> Tampon Laemmli </td><td> Préparé dans le laboratoire </td><td> N / A </td></tr><tr><td> Température optimale de coupe (PTOM) composé </td><td> Tissue-Tek </td><td> 4583 </td></tr><tr><td> Yeux lapin entier (Young) </td><td> Pel-Freez </td><td> 41211-2 </td></tr><tr><td> Les cornées humaines et Yeux entiers </td><td> Banque des yeux locale </td><td> N / A </td></tr><tr><td> 12 Plaque Bien spot Porcelaine </td><td> Alimentation de laboratoire d&#39;Avogadro </td><td> 1877 </td></tr><tr><td> Boîte de 35 mm Tissue Culture </td><td> Faucon </td><td> 353001 </td></tr><tr><td> 6 BienPlaque de culture cellulaire </td><td> Greiner Bio-One </td><td> 657160 </td></tr><tr><td> Cryomold intermédiaire </td><td> Tissue-Tek </td><td> 4566 </td></tr></tbody></table>

ex vivo modèle organotypique cornéenne aiguë de l&#39;herpès simplex virus type épithéliales je infection

Ex Vivo Organotypic Corneal Model of Acute Epithelial Herpes Simplex Virus Type I Infection

Kératite herpétique est une des pathologies les plus sévères associés au virus de l&#39;herpès simplex de type 1 (HSV-1). Kératite herpétique est actuellement la principale cause de cécité cornéenne deux dérivés et associée à l&#39;infection dans le monde développé. Présentation typique de kératite herpétique comprend également l&#39;infection de l&#39;épithélium cornéen et parfois le stroma cornéen profond et l&#39;endothélium, conduisant à de telles pathologies cornéennes permanents comme des cicatrices, l&#39;éclaircissage et l&#39;opacité 1. Cornée infection HSV-1 est traditionnellement étudiée dans deux types de modèles expérimentaux. Le modèle in vitro, dans lequel monocouches de culture de cellules épithéliales cornéennes sont infectées dans une boîte de Pétri, offre simplicité, niveau élevé de reproductibilité, des expériences rapides et des coûts relativement faibles. D&#39;autre part, le modèle in vivo, dans lesquelles les animaux comme les lapins ou les souris sont inoculés directement dans la cornée, propose un état ​​physiologique hautement sophistiquésystème, mais coûte plus cher, plus les expériences, les soins aux animaux nécessaires, et un plus grand degré de variabilité. Dans cet article, vidéo, nous fournissons une démonstration détaillée d&#39;un modèle ex vivo nouvelle épithélium cornéen infection HSV-1, qui combine les forces des deux in vitro et la le des modèles in vivo. Le modèle ex vivo utilise des cornées intactes organotypically maintenues en culture et infectées par le HSV-1. L&#39;utilisation du modèle ex vivo permet de tirer des conclusions très base physiologique, mais il est assez peu coûteux et exige un engagement de temps comparable à celle du modèle in vitro.

Dans cet article, nous décrivons vidéo l&#39;utilisation d&#39;une nouvelle<em&gt; Ex vivo</em&gt; Modèle de l&#39;herpès simplex virus de type aiguës je cornée infection épithéliale.

Ex Vivo modèle organotypique cornéenne aiguë de l&#39;herpès simplex virus type épithéliales je infection

La kératite herpétique est l'une des pathologies les plus graves associées au virus herpès simplex de type 1 (HSV-1). La kératite herpétique est actuellement la principale...

Je suis Jane Clifford, économiste. Je suis professeure et présidente de biochimie et de biologie moléculaire au Collège de médecine de l'Université Drexel. Et moi, c'est Ola Iv, et je suis étudiante en médecine et doctorante dans le laboratoire de la Dre Clifford. La vidéo qu'Oli et moi avons préparée pour vous démontre la culture ex vivo de cornées obtenues à partir de lapins et de donneurs humains.Nous avons utilisé ces cornées pour étudier l'infection par le virus de l'herpès, et elles sont certainement applicables à d'autres maladies de la cornée afin d'étudier d'autres pathologies cornéennes. Ce modèle est particulièrement pertinent ex vivo par rapport aux cellules en culture monocouche. La kératite herpétique est l'une des pathologies les plus graves associées au virus de l'herpès simplex de type 1. Elle constitue actuellement la principale cause de cécité d'origine cornéenne et associée à une infection dans les pays développés.La kératite herpétique est traditionnellement étudiée selon deux types de modèles expérimentaux. Le modèle in vitro, dans lequel des monocouches de cellules épithéliales cornéennes cultivées sont infectées dans une boîte de Pétri, offre une grande simplicité, un haut niveau de reproductibilité, des expériences rapides et des coûts relativement faibles. En revanche, le modèle in vivo de la kératite herpétique, dans lequel des animaux tels que des lapins ou des souris sont inoculés directement dans la cornée, fournit un système physiologique hautement sophistiqué, mais implique des coûts plus élevés, des expériences plus longues, des soins aux animaux obligatoires et un degré de variabilité plus important.Dans cet article vidéo, nous présentons une démonstration détaillée d'un nouveau modèle ex vivo d'infection aiguë de l'épithélium cornéen par l'HSV de type 1, qui combine les avantages des modèles in vitro et in vivo. Ce modèle ex vivo utilise des cornées intactes, généralement maintenues en culture, et infectées par l'HSV. L'utilisation du modèle ex vivo permet d'obtenir des conclusions hautement pertinentes sur le plan physiologique, tout en étant relativement peu coûteuse et nécessitant un engagement en ressources comparable à celui du modèle in vitro.Préparez les éléments suivants avant de commencer la procédure : boîte de Pétri, solution saline tamponnée au phosphate (PBS), milieu de culture cornéen et milieu pour échafaudage, plaque de culture multipuits, bandelette de gaze, globe oculaire frais, scalpel, pinces et ciseaux pointus. Humidifiez une bande étroite de gaze avec du PBS et enroulez-la autour du globe oculaire pour le maintenir fermement.Pendant la procédure, utilisez un scalpel bien aiguisé pour pratiquer une incision tangentielle dans la sclérotique à environ un demi-centimètre du limbe. Utilisez des ciseaux pour exciser complètement le bouton cornéo-scléral. Lorsque l'incision est étendue, la pression intraoculaire diminue, ce qui rend difficile la manipulation et la tenue du tissu.Pour cette raison, nous recommandons d'utiliser une paire de ciseaux fiables et bien aiguisés à cette étape. Une fois le bouton cornéoscléral isolé, séparez délicatement l'iris tout en tenant le rebord scléral avec une pince. Évitez d'endommager l'endothélium ou d'exercer une pression excessive sur la cornée.Préparez une solution à 1 % d'agarose dans le milieu et tenez-la prête. À 55 degrés Celsius, rincez soigneusement la cornée dans du PBS stérile contenant de la pénicilline et de la streptomycine. Placez la cornée, côté épithélial vers le bas, dans la cavité d'un Spotlite stérile.Ajouter de l'agar contenant du milieu dans la concavité endothéliale de la cornée. Juste assez pour la remplir complètement. Laisser environ une minute pour que l'agar durcisse.Placer la cornée avec le support en échafaudage d'agarose, côté épithélial vers le haut, dans une boîte de culture tissulaire et ajouter du milieu MEM supplémenté pour recouvrir la surface épithéliale. La cornée peut être cultivée de cette manière pendant plus d'une semaine avec un changement de milieu toutes les 48 heures. Ajouter un millilitre de milieu contenant la quantité souhaitée de virus dans une boîte de culture tissulaire.Placer la cornée avec le côté épithélial du support agro vers le bas dans le milieu contenant le virus. Placer la cornée dans l'incubateur de culture tissulaire pour une infection d'une heure avec un basculement intermittent tous les 10 à 15 minutes après la première heure. Aspirer le milieu contenant le virus et rincer deux à trois fois avec du PBS pour éliminer les particules virales résiduelles.Lors du rinçage avec du PBS, veillez à ne pas déloger la cornée du support agro. Ajoutez du milieu frais pour recouvrir la surface épithéliale. Les traitements expérimentaux peuvent être initiés avant ou après l'infection, selon la nature de l'expérience.Le milieu de culture est changé toutes les 48 heures. Bien mélanger le milieu et l'utiliser immédiatement pour un dosage par plaque, ou le conserver à moins 80 degrés Celsius pour une utilisation ultérieure. Si des échantillons sont prélevés à différents moments, rincer soigneusement la cornée avec du PBS.Retirez la charpente d'agarose, excisez l'anneau de tissu scléral de la cornée afin de s'assurer que seul le matériel épithélial cornéen est collecté. À l'aide d'un scalpel, grattez les cellules épithéliales cornéennes dans le tampon approprié, selon le type de matériel à isoler. La suppression du rebord scléral permet à la cornée de gonfler rapidement par absorption d'eau.Étant donné que le gonflement peut compliquer le prélèvement, nous recommandons d'effectuer rapidement cette étape et de rincer la boîte de Pétri afin de s'assurer que l'ensemble de l'échantillon a été collecté. Retirez l'échafaudage agro et rincez soigneusement la cornée avec du PBS.Utilisez la cornée pour préparer un bloc tissulaire paraffiné ou un bloc tissulaire congelé, comme illustré ici, selon votre objectif expérimental. Incorporez la cornée dans un composé optimal de température de coupe (OCT) à l’intérieur d’un moule à échantillons. Congelez rapidement la cornée dans un bain d’éthanol et de glace sèche. Ce que nous avons montré ici, dans cette vidéo, c’est la préparation des cornées, la dissection de la cornée, son placement en culture ex vivo et l’infection des cornées par le virus de l’herpès.Cela a permis d'élaborer une technique pour un modèle qui s'est révélé très utile pour l'étude de l'infection par le virus de l'herpès, ex vivo, et nous espérons qu'il sera utile à d'autres pour leurs expériences avec des cellules cornéennes.

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La plupart des études de la maladie de la cornée herpétique utiliser un modèle d'infection primaire. Cependant, la primo-infection par le HSV-1 habituellement, n'aboutit pas à la maladie humaine. Nous décrivons ici un modèle récurrent de la maladie herpétique cornée, ce qui rapproche le plus de la maladie humaine.

Kératite herpétique récurrente stromale chez la souris, un modèle pour l&#39;étude de l&#39;homme HSK

Cette vidéo décrit un protocole permettant de mettre en place un modèle ex vivo de kératite bactérienne à l’aide d’un bouton cornéoscléral disséqué dans l’œil porcin. Les bactéries inoculées traversent les incisions épithéliales cornéennes pour envahir le stroma sous-jacent et établir une infection dans les tissus cornéens qui imitent l’infection in vivo.

Modèle de cornée porcine ex vivo de kératite bactérienne : une technique pour établir une infection bactérienne dans les cellules épithéliales cornéennes

Cette vidéo montre la méthode pour effectuer un test de plaque à l’aide d’un virus obtenu à partir d’une cornée porcine infectée. La cornée porcine est utilisée pour tester l’efficacité antivirale de médicaments expérimentaux.

Détermination de l’efficacité antivirale de médicaments expérimentaux à l’aide d’un test sur plaque

Nous avons établi un protocole fluorescent in situ d'hybridation pour la détection dans un génome de virus de la persistance de l'ADN dans des coupes de tissus de modèles animaux. Ce protocole permet l'étude de processus de l'infection par co-détection du génome viral, de ses produits d'ARN, et les protéines virales ou cellulaires à l'intérieur des cellules individuelles.

Détection du génome et des transcriptions d&#39;un virus à ADN persistant dans neuronaux tissus par fluorescence In situ L&#39;hybridation combinée avec immunocoloration

La peau est un tissu cible du virus de l’herpès simplex de type 1 (HSV-1). Pour explorer la voie d’invasion du HSV-1 dans les tissus, nous avons établi un modèle d’infection ex vivo de feuillets épidermiques murins qui représentent la couche la plus externe de la peau.

Ex Vivo infection de murin épiderme avec le virus Herpes simplex de type 1

Un protocole pour un ancien modèle de culture de cornée orgue vivo utile pour la cicatrisation des études est exposée. Ce système de modèle peut servir à évaluer les effets des agents pour favoriser la guérison régénératrice ou toxicité des médicaments dans un environnement 3D organisé de multicellulaire.

Ex Vivo, modèle de Culture d’organes cornéenne pour la cicatrisation des études

Cet article décrit un protocole étape par étape pour mettre en place un modèle ex vivo porcin de kératite bactérienne. Pseudomonas aeruginosa est utilisé comme un organisme prototypique. Ce modèle novateur imite l’infection in vivo car la prolifération bactérienne dépend de la capacité de la bactérie à endommager le tissu cornéen.

Établissement d’un modèle de cornée Porcine Ex Vivo pour l’étude des traitements médicamenteux contre la kératite bactérienne

Nous décrivons l’utilisation d’une cornée porcine pour tester l’efficacité antivirale de médicaments expérimentaux.

L’explantation de tissu cornéen porcin étudiera l’efficacité des antiviraux du virus de l’herpès simplex-1

Ici, un protocole pour créer une plaie d’abrasion épithéliale cornéenne centrale chez la souris à l’aide d’une tréphine et d’un spud de club de golf émoussé est décrit. Ce modèle de cicatrisation des plaies cornéennes est hautement reproductible et est maintenant utilisé pour évaluer la cicatrisation des plaies cornéennes compromises dans le contexte de maladies.

Un modèle d’abrasion épithéliale pour étudier la cicatrisation des plaies cornéennes

Ici, des modèles animaux basés sur la souris et le lapin sont développés pour les lésions mécaniques et chimiques de l’épithélium cornéen afin de cribler de nouveaux traitements et le mécanisme sous-jacent.

Modèles animaux ex vivo et in vivo pour les lésions mécaniques et chimiques de l’épithélium cornéen

Nous avons développé un modèle chez le rat d’inflammation cornéenne sévère par curetage de l’épithélium cornéen combiné à des sutures cornéennes. L’étude a évalué les modèles d’inflammation cornéenne, la prolifération épithéliale et les changements dans les cellules souches limbiques dans des conditions inflammatoires.

Etablissement d’un modèle d’inflammation cornéenne sévère chez le rat basé sur le curetage de l’épithélium cornéen combiné à des sutures cornéennes

Découvrez la culture ex vivo de cornées de lapins et de donneurs humains pour étudier l'infection aiguë par l'herpès simplex virus de type I. Ce modèle organotypique offre une alternative physiologiquement pertinente aux cultures cellulaires traditionnelles pour la recherche en virologie cornéenne.

Ex Vivo modèle organotypique cornéenne aiguë de l'herpès simplex virus type épithéliales je infection

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