Name: La croissance de la Mycobacterium tuberculosis Les biofilms (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-02-15T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 3 s
Description: Découvrez une méthode de culture de biofilms de Mycobacterium tuberculosis à l'interface air-milieu et l'évaluation de la fréquence des persisters tolérants aux antibiotiques. Cette technique permet d'étudier les mécanismes de tolérance aux médicaments.

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Le travail a été réalisé avec le soutien financier de l&#39;Institut national de la Santé et l&#39;American Lung Association.

1. Biofilms plus en plus de M. la tuberculose dans une bouteille de 250 mL vis plafonné <ol><li> La préparation des médias: Dissoudre 0,5 g de KH 2 PO 4, 0,5 g de MgSO 4, 4 g de L-asparagine, 2g d&#39;acide citrique, 0,05 g de citrate d&#39;ammonium ferrique, 60mL de glycérol dans 900 ml d&#39;eau. Ajuster le pH à 7,0 avec NaOH. Autoclave, frais et juste avant de commencer l&#39;expérience, ajouter stérile ZnSO 4 à une concentration finale de 0,1% p / v Depuis mc 2 7000 est un auxotrophe pantothénate cette souche nécessite également de l&#39;acide pantothénique à 10μg/mL de concentration finale. </li></ol> Note: Ceci est une composition standard des médias Sauton utilisés pour M. tuberculosis. Toutefois, si nécessaire d&#39;autres médias spécialisés peuvent également être utilisés pour d&#39;autres espèces de mycobactéries. <ol start="2"><li> La préparation des inoculums: Grow M. la tuberculose dans 7H9OADC avec 0,05% de Tween-80 pendant une semaine, ou DO 600 de 0,7 à 1,0. Le culture peut être directement utilisée comme inoculum à une dilution de 1:100. </li><li> Distribuer 25 ml de Sauton médias à une bouteille de 250 ml en polystyrène vis plafonné (Corning). Ajouter 250μl de l&#39;inoculum dans le milieu, bouchon de la bouteille très serré et le placer tranquillement dans un incubateur humidifié 37 ° C pendant 3 semaines. Observez la bouteille une fois par jour pour s&#39;assurer qu&#39;il n&#39;y a pas de contamination. </li><li> A la fin de la troisième semaine, dévisser le bouchon de la bouteille afin de permettre une nouvelle croissance de M. la tuberculose à l&#39;interface. Si le bouchon n&#39;est pas desserré, à ce stade, puis la concentration en oxygène insuffisante dans le conteneur va retarder la croissance des bactéries encore. </li></ol> 2. La croissance de M. biofilms tuberculose dans des plaques 12 puits <ol><li> Préparer les médias et l&#39;inoculum de mc 2 7000 tel que décrit dans les sections A1 et A2. </li><li> Mélanger 60 ml de médias avec 600μl d&#39;inoculum. Distribuer 4,5 millions deL du mélange dans chaque puits de la plaque. Recouvrir la plaque avec un couvercle. Envelopper la plaque à plusieurs reprises avec du parafilm. Incuber la plaque tranquillement dans incubateur humidifié à 37 ° C pendant 5 semaines. </li></ol> 3. Détermination de la fréquence des persistants de drogues tolérantes en M. la tuberculose biofilms <ol><li> Grow M. biofilms tuberculose dans un format de 12 puits comme décrit dans la section B. Cela va prendre un total d&#39;environ 5 semaines de. </li><li> Une fois que les biofilms sont élevés (après 5 semaines d&#39;incubation) d&#39;injecter votre choix de l&#39;antibiotique à une concentration désirée dans les médias sous les biofilms en utilisant une microsonde dans une pipette. </li></ol> Remarque: Le volume des médias sous les pellicules réduit à environ 3.0mL. Donc, les enquêteurs devraient donc calculer la quantité de médicament. <ol start="3"><li> Swirl doucement la plaque de sorte que l&#39;antibiotique est bien diffusé dans le milieu. Pour obtenir des résultats statistiquement significatifs, injecter le antibiotiquesotique dans quatre puits. En parallèle, injecter le même volume de solvant dans lequel l&#39;antibiotique a été dissous dans quatre autres puits, et de laisser les quatre derniers puits de la plaque vierge. Recouvrir la plaque avec un couvercle et de mettre de nouvelles couches de parafilm autour de la plaque. Placez-le revenir dans l&#39;incubateur pour la période désirée. </li><li> À la fin de l&#39;incubation, ouvrir la plaque et ajouter le Tween-80 à la concentration finale de 0,1% (volume / volume) dans chacun des puits. Swirl toute la plaque en douceur pour la dispersion uniforme du détergent. Incuber la plaque à température ambiante pendant 15 minutes. Mélanger le contenu de chaque puits avec la pipette plusieurs fois afin que le contenu entier peut être uniformément transférés à un tube de 15 ml conique. </li><li> Centrifuger le contenu du tube à 4000rpm pendant 10 minutes à température ambiante. Reprendre le culot dans 5 ml de tampon de lavage fraîche (PBS avec 10% de glycérol et 0,05% de Tween-80). Répétez les trois temps de lavage. Reprendre le culot dans 5 ml de tampon de lavage. Gardez-le sur la bascule pour overnight à 4 ° C. </li></ol> Remarque: Bien que basse température a été initialement développé pour M. smegmatis (afin de minimiser sa croissance lors de la dispersion) et utilisé pour M. tuberculosis ainsi, les espèces à croissance lente peut très probablement être secoué à la température ambiante sans aucun impact sur ​​le résultat. Rocking à la température ambiante pourrait être nécessaire si vous travaillez dans BSL-3 installation. <ol start="6"><li> Préparer une seringue stérile équipée micropointe (2-200 pl), en coupant son extrémité la plus large à la taille appropriée, en l&#39;adaptant à la seringue et l&#39;envelopper avec du parafilm. Passez l&#39;ensemble du contenu du tube à travers la seringue à embout-équipée et recueillir dans un des tubes de 15 ml frais. Répétez cette étape 5 à 6 fois jusqu&#39;à ce que vous observez une suspension assez homogène. </li><li> Préparer des dilutions en série de la suspension et la plaque des dilutions sur la plaque 7H11OADC pour déterminer le nombre de colonies viables dans chaque puits. Incuber les boîtes pendant trois semaines à 37 ° C incubateur. Déterminer la fréCY d&#39;objets persistants dans la population biofilm en calculant le rapport du nombre de colonies obtenues dans antibiotique traitée à celles obtenues lors de solvant plaques traitées. </li></ol> 4. Les résultats représentatifs Lorsqu&#39;elle est cultivée dans une bouteille, la croissance de M. la tuberculose peut être vu à la base de la bouteille à la fin de la première semaine. À la fin de la deuxième semaine, la croissance inégale des bactéries sur l&#39;interface air-support peut être vu, même si la croissance à l&#39;interface air-media est toujours visible à la fin de la troisième semaine (fig. 1A). À ce moment de la fixation des bactéries à la paroi du récipient est également observée. A partir de ce point de la croissance de la culture se fait principalement sur l&#39;interface air-médias. Le liquide sous la surface de la croissance est clair. En règle générale, la structure évolue d&#39;ici la fin de la cinquième semaine (figure 1B). Si l&#39;incubation est prolongée, les structures de va commencer à couler au fond du récipient. Curieusement,serrage du bouchon jusqu&#39;à la fin de la troisième semaine est une étape importante dans le processus, et pour des raisons inconnues une bouteille lâche-capped retarde significativement l&#39;initiation de la croissance sur l&#39;interface 9. Dans le format de 12 puits, un biofilm robuste à l&#39;interface air-médiatique est perçue dans chacun des puits à la fin de cinq semaines (figure 2A). Si les plaques ne sont pas enveloppés complètement, puis la croissance du biofilm différentiel est observée. Dans le pire des cas, l&#39;évaporation importante des médias peuvent retarder la croissance des bactéries (figure 2B). Ainsi, l&#39;emballage de la plaque est nécessaire à la fois pour empêcher l&#39;évaporation ainsi que de fournir un environnement pour la formation de biofilm (voir paragraphe précédent). Le nombre de bacilles viables dans les biofilms déterminés avec cette technique est tout à fait reproductible. Réponse de M. tuberculose biofilms varie avec la nature des antibiotiques. Pour un antibiotique bactéricide tels que la rifampicine, la perte de la viabilité suit une bipha<html> tendance sic 9. Un déclin rapide de la viabilité au cours des trois à quatre premiers jours, suivie d&#39;une phase persistante dans laquelle un petit pourcentage de la population restent totalement récalcitrant aux antibiotiques, quelle que soit la concentration de l&#39;antibiotique ou le temps d&#39;exposition. La figure 3 montre le nombre de bacilles viables dans les biofilms matures après une exposition de 7 jours à 50μg/mL (50 fois plus élevé que le MIC) de la rifampicine. <img alt="Figure 1A." src="/files/ftp_upload/3820/3820fig1A.jpg" /> Figure 1A. Apparition précoce de M. bacilles de la tuberculose sur l&#39;interface air-media de bactéries après 3 semaines d&#39;incubation. <img alt="Figure 1B." src="/files/ftp_upload/3820/3820fig1B.jpg" /> La figure 1B. Elevage biofilms de M. la tuberculose sur l&#39;interface air-médias après cinq semaines d&#39;incubation. 820/3820fig2A.jpg &quot;/&gt; Figure 2A. 5-semaine biofilms vieux de M. la tuberculose cultivé dans 12 puits de format. <img alt="La figure 2B." src="/files/ftp_upload/3820/3820fig2B.jpg" /> La figure 2B. Une tentative a échoué à croître M. biofilms tuberculose dans 12 puits de plaque sans parafilm. <img alt="Figure 3." src="/files/ftp_upload/3820/3820fig3.jpg" /> Figure 3. Un graphique représentatif sur la fréquence des persistants de drogues tolérantes en M. la tuberculose biofilms cultivés dans 12 puits format et exposées à 50μg/mL de rifampicine pendant sept jours.

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</ol>

Nous n&#39;avons rien à communiquer.

La tuberculose (TB), causée par l&#39;infection de Mycobacterium tuberculosis, demeure une menace majeure pour la santé publique mondiale. Près d&#39;un tiers de la population mondiale est estimée à asymptomatique infecté par l&#39;agent pathogène, environ 9 millions de nouveaux cas apparaissent chaque année dans la clinique avec des symptômes de tuberculose évolutive et environ 1,7 million de personnes meurent de l&#39;infection chaque année 11. Le lourd fardeau de la maladie est principalement cont...

<table><tbody><tr><td>Incubateur</td><td>VWR international</td><td>Modèle n° 1923/25</td><td></td></tr><tr><td>Bouteilles de culture en polystyrène</td><td>Fisher Scientific</td><td>03-374-300</td><td></td></tr><tr><td>Plaque de culture tissulaire à 12 puits</td><td>VWR international</td><td>62406-165</td><td></td></tr><tr><td>Tubes coniques de 50 mL</td><td>VWR international</td><td>89039-660</td><td></td></tr><tr><td>Agitateur rotatif</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>57019-662</td><td></td></tr><tr><td>Frigo chromatographique</td><td>VWR international</td><td>55702-520</td><td></td></tr><tr><td>Boîte de Pétri</td><td>VWR international</td><td>25384-342</td><td></td></tr><tr><td>KH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt; (monobasique)</td><td>EMD Millipore</td><td>PX1565-1</td><td></td></tr><tr><td>MgSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td>Fisher Scientific</td><td>M65-500</td><td></td></tr><tr><td>L-asparagine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A4284-100G</td><td></td></tr><tr><td>Acide citrique</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>C1857-100G</td><td></td></tr><tr><td>Citrate d'ammonium ferrique</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F5879-100G</td><td></td></tr><tr><td>Glycérol</td><td>EMD Millipore</td><td>GX0185-5</td><td></td></tr><tr><td>NaOH</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S8045-500G</td><td></td></tr><tr><td>ZnSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z4750-500G</td><td></td></tr><tr><td>Acide D-pantothénique</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P2250-25G</td><td></td></tr><tr><td>Bouillon Difco Middlebrook 7H9</td><td>BD Biosciences</td><td>271310</td><td></td></tr><tr><td>Enrichissement Middlebrook OADC</td><td>BBL</td><td>212351</td><td></td></tr><tr><td>Tween-80</td><td>Fisher Scientific</td><td>T164-500</td><td></td></tr><tr><td>Bouteille de stockage de 250 mL</td><td>Corning</td><td>430281</td><td></td></tr><tr><td>Plaques à 12 puits</td><td>Falcon BD</td><td>353043</td><td></td></tr><tr><td>Rifampicine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>R3501-1G</td><td></td></tr><tr><td>Méthanol</td><td>JT Baker</td><td>9070-05</td><td></td></tr><tr><td>Seringue de 10 mL</td><td>BD Biosciences</td><td>301604</td><td></td></tr><tr><td>Pointes de pipette de 1-200&amp;mu;L</td><td>VWR international</td><td>89079-458</td><td></td></tr><tr><td>Parafilm M</td><td>VWR international</td><td>PM-996</td><td></td></tr><tr><td>Tube centrifuge de 15 mL</td><td>Greiner Bio-One</td><td>188-285</td><td></td></tr><tr><td>Agar Difco Mycobacteria 7H11</td><td>BD Biosciences</td><td>283810</td><td></td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP358-1</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9333-500G</td><td></td></tr><tr><td>Na&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;HPO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt; (dibasique)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S0876-500G</td><td></td></tr></tbody></table>

la croissance de la mycobacterium tuberculosis les biofilms

Growth of Mycobacterium tuberculosis Biofilms

Mycobacterium tuberculosis, l&#39;agent étiologique de la tuberculose humaine, a une capacité extraordinaire de survivre contre les stress environnementaux, notamment des antibiotiques. Bien que la tolérance au stress de M. la tuberculose est l&#39;une des contributeurs susceptibles à la chimiothérapie de 6 mois à long de la tuberculose 1, les mécanismes moléculaires qui sous-tendent ce phénotype caractéristique de l&#39;agent pathogène restent floues. Beaucoup d&#39;espèces microbiennes ont évolué pour survivre dans des environnements stressants par auto-assemblage en très organisée, la surface fixée, et la matrice des structures encapsulées appelé biofilms 2-4. La croissance dans les collectivités qui semble être une stratégie de survie préféré des microbes, et est réalisé grâce à des composants génétiques qui régulent la surface de fixation, les communications intercellulaires, et la synthèse de substances polymériques extracellulaires (EPS) 5,6. La tolérance au stress environnemental est probablement facilité par EPS, et peut-être par le physiol&#39;adaptation logique de bacilles individu à microenvironnements hétérogènes au sein de l&#39;architecture complexe des biofilms 7. Dans une série d&#39;articles récents, nous avons établi que M. la tuberculose et le Mycobacterium smegmatis ont une forte propension à se développer dans des structures multicellulaires organisés, appelés biofilms, qui peuvent tolérer plus de 50 fois les concentrations minimales inhibitrices des médicaments anti-tuberculeux isoniazide et 8-10 rifampicine. M. la tuberculose, cependant, nécessite curieusement conditions spécifiques à former des biofilms matures, en particulier de rapport de 9:01 espace de tête: les médias ainsi que l&#39;échange limité de l&#39;air avec l&#39;atmosphère 9. Exigences de conditions environnementales spécialisées pourrait être lié au fait que M. la tuberculose est un agent pathogène obligatoire humaine et a donc adapté aux environnements de tissus. Dans cette publication, nous la démonstration de méthodes de culture de M. tuberculosebiofilms dans une bouteille et un format de plaque à 12 puits, ce qui est pratique pour les études bactériologiques ainsi que génétiques. Nous avons décrit le protocole d&#39;une souche atténuée de M. la tuberculose, mc 2 7000, avec la suppression dans les deux locus, panCD et RD1, qui sont cruciaux pour la croissance in vivo de la 9 pathogène. Cette souche peut être utilisé sans danger dans une enceinte BSL-2 pour la compréhension de la biologie de base de l&#39;agent pathogène tuberculose évitant ainsi l&#39;exigence d&#39;un coûteux BSL-3 installation. La méthode peut être étendue, moyennant des modifications appropriées dans les médias, à se développer un biofilm d&#39;autres espèces de mycobactéries cultivables. Dans l&#39;ensemble, un protocole uniforme de biofilms culture mycobactérienne aidera les enquêteurs s&#39;intéressent à l&#39;étude des caractéristiques de base élastiques de mycobactéries. En outre, une méthode claire et concise de la croissance des biofilms mycobactériens aidera également le inv clinique et pharmaceutiqueestigators pour tester l&#39;efficacité d&#39;un médicament potentiel.

Mycobacterium tuberculosis forme des biofilms de drogues tolérantes quand elles sont cultivées dans certaines conditions. Nous décrivons ici les méthodes de culture, M. biofilms tuberculose et la détermination de la fréquence des persistants de drogue tolérante. Ces protocoles seront utiles pour d&#39;autres études sur les mécanismes de la tolérance au médicament chez M. la tuberculose.

La croissance de la Mycobacterium tuberculosis Les biofilms

*Mycobacterium tuberculosis*, l'agent étiologique de la tuberculose humaine, possède une capacité extraordinaire à survivre face aux stress environnementaux, notamment...

L'objectif général de cette procédure est de démontrer une méthode de culture de biofilms de M. tuberculosis à l'interface air-milieu, et de déterminer la fréquence des bacilles tolérants aux médicaments dans les biofilms. Cela est réalisé en préparant tout d'abord le milieu approprié et les inoculums. La deuxième étape consiste à faire croître des biofilms de M. tuberculosis dans des plaques de 12 puits.Ensuite, un antibiotique d'essai est ajouté à une concentration souhaitée, et la fréquence des persistants tolérants au médicament est mesurée. Chez *M. tuberculosis*, les biofilms peuvent être déterminés. En définitive, la technique peut être exploitée pour aider à comprendre les bases du développement des biofilms et pour décrypter les mécanismes de tolérance aux médicaments chez *M. tuberculosis*. Le principal avantage de la culture in vitro de biofilm de *M. tuberculosis* dans un milieu exempt de détergent est que la croissance spontanée de l'architecture multicellulaire complexe de la souche de base révèle des propriétés uniques de l'organisme non observées en culture planctonique.Celles-ci incluent l'attachement à la surface, les interactions intercellulaires, la synthèse de

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Cet article présente un protocole complet pour PmbExM, une technique de microscopie à expansion conçue spécifiquement pour les biofilms de Proteus mirabilis . PmbExM utilise un traitement enzymatique par étapes des échantillons de biofilm pour obtenir une expansion isotrope de 4,3 fois, permettant une analyse en super-résolution de l’organisation spatiale des structures cellulaires et subcellulaires au sein de ces communautés microbiennes sessiles.

Imagerie super-résolution du biofilm de Proteus mirabilis par microscopie à expansion

Découvrez une méthode de culture de biofilms de Mycobacterium tuberculosis à l'interface air-milieu et l'évaluation de la fréquence des persisters tolérants aux antibiotiques. Cette technique permet d'étudier les mécanismes de tolérance aux médicaments.

La croissance de la Mycobacterium tuberculosis Les biofilms

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