Name: Roux-en-Y Opération Bypass gastrique chez le rat (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-11T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 37 s
Description: Apprenez le modèle de bypass gastrique Roux-en-Y chez le rat pour étudier les mécanismes physiologiques de l'obésité. Cette méthode reproduit fidèlement la chirurgie humaine et permet d'analyser la perte de poids et les hormones intestinales postprandiales.

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Marco Bueter et Florian Seyfried ont été pris en charge par la Deutsche Forschungsgemeinschaft (DFG). Thomas Lutz A a été soutenue par le Fonds national suisse de recherche scientifique (FNS). Marco Bueter et Thomas A. Lutz en outre bénéficier d&#39;un financement de l&#39;Institut national de la santé (NIH) et du Centre de Zurich pour la physiologie humaine intégrative (ZIHP) Carel W le Roux a été soutenu par un ministère de la bourse de scientifique clinicien de la santé. Imperial College de Londres reçoit le soutien du régime INDH recherche biomédicale financement du Centre.

1. Soins préopératoires <ol><li> Retirer les aliments du rat durant la nuit avant la chirurgie. </li><li> Induire une anesthésie dans la chambre avec un débit isoflurane et O2 4-5% de 2 l / min. </li><li> Rasage l&#39;abdomen du sternum au bassin à l&#39;aide de rasoir électrique. </li><li> Placez rat anesthésié en décubitus dorsal sur un coussin chauffant isotherme. </li><li> Appliquer une pommade ophtalmique (Vitagel) avant de placer le museau des rats dans les coiffe. </li><li> Maintenir l&#39;anesthésie avec la concentration d&#39;isoflurane de 2-3% et le débit d&#39;O2 de 2 l / min. </li><li> Désinfectez la peau à la Bétadine-Solution. </li><li> Confirmez profondeur de l&#39;anesthésie avec une pincée pince entre les doigts de la patte arrière. </li><li> Administrer 5,7 mg / kg par voie intrapéritonéale enrofloxacine que l&#39;antibioprophylaxie péri-opératoire, et 1 mg / kg Flunixine pour l&#39;analgésie. </li></ol> 2. Laparotomie médiane <ol><li> Effectuer une incision médiane en utilisant un scalpel à partir juste en dessous de processus xyphoïde (lame n ° 10). </li><li> Mobiliser la peau de la circonférence underlying muscles abdominaux avec des ciseaux de Metzenbaum. </li><li> Ouvrez la cavité abdominale. </li><li> Installez écarteurs pour faciliter l&#39;exposition optimale du champ opératoire. </li></ol> 3. Biliopancréatique et Limb Alimentary <ol><li> Identifier où le jéjunum proximal duodénum ou passe sous le côlon. </li><li> Transect de l&#39;intestin grêle d&#39;environ 10 cm d&#39;ici et d&#39;aborally ligaturer les deux extrémités de l&#39;intestin (PDS 5-0). </li><li> Placez moignon proximal des deux extrémités dans le quadrant supérieur gauche de l&#39;abdomen comme il sera plus tard utilisés pour former la branche biliopancréatique de Roux-en-Y reconstruction. </li><li> Placez moignon distal des deux extrémités dans le quadrant supérieur droit de l&#39;abdomen comme il sera plus tard utilisés pour former la branche alimentaire de Roux-en-Y reconstruction. </li></ol> 4. Jéjuno-jéjunostomie <ol><li> Identifier le caecum avec vanne ileocoecal et de l&#39;iléon. </li><li> Suivez l&#39;iléon par voie orale pendant environ 25 cm. La jéjuno-Jéjunostomie sera placé ici comme point de départde la voie commune de Roux-en-Y reconstruction. </li><li> Récupérer membre biliopancréatique de quadrant supérieur gauche de l&#39;abdomen et le positionner à côté de canal commun où vous prévoyez d&#39;effectuer jéjuno-jéjunostomie. </li><li> Membre biliopancréatique sécurisé et le canal commun avec la rétention de point (PDS 6-0). </li><li> Incisez les deux boucles plus d&#39;environ 10 mm en utilisant des ciseaux micro. </li><li> Créer jéjuno-jéjunostomie en effectuant un côté à l&#39;anastomose en utilisant des sutures interrompues (PDS 6-0). </li><li> D&#39;abord côté complet dorsale, puis la face ventrale de l&#39;anastomose. </li></ol> 5. Poche gastrique <ol><li> Identifier la jonction gastro-œsophagien. </li><li> Mobiliser ce domaine en disséquant ligaments gastro-hépatiques et gastro-splénique l&#39;aide de ciseaux de Metzenbaum. </li><li> Déplacer à gauche artère gastrique et les fibres vagales de gauche par-oesophagien faisceau latéralement pour éviter saignements majeurs et des dommages du nerf vague lorsque la petite poche gastrique est créée. </li><li> Exposer gastro-œsophagien junction en plaçant un coton-tige rétro-oesophageally. </li><li> Coaguler petits vaisseaux de l&#39;estomac frontal à l&#39;aide de dispositif de cautérisation disponible dans le commerce - aussi pour éviter des saignements. </li><li> Sectionner l&#39;estomac d&#39;environ 5 mm au-dessous de jonction gastro-oesophagienne créer poche gastrique d&#39;une taille de pas plus de 2-3% de la taille d&#39;origine en utilisant l&#39;estomac délicats, des ciseaux courbes. </li><li> Fermer gastrique reste (PDS 5-0). </li></ol> 6. Gastro-jéjunostomie <ol><li> Récupérer branche alimentaire du quadrant supérieur droit de l&#39;abdomen et le positionner à côté de la poche gastrique. </li><li> Créer gastro-Jéjunostomie en effectuant bout-à-côte anastomose (PDS 7-0). </li><li> Première partie arrière complète, puis face avant de l&#39;anastomose. </li></ol> 7. Fermeture abdominale <ol><li> Réduire l&#39;anesthésie en réduisant la concentration d&#39;isoflurane à 1,5%. </li><li> Fermez la couche musculaire de la paroi abdominale en utilisant des sutures continues (PDS 4-0). </li><li> Administrer 100 ul de 0,3 mg / mlsolution la buprénorphine sous-cutanée pour l&#39;analgésie. </li><li> Continuer à réduire la concentration d&#39;isoflurane à 1%. </li><li> Fermer la peau avec des sutures interrompues (Vicryl 4-0). </li></ol> 8. Soins post-opératoires <ol><li> Arrêtez l&#39;isoflurane et de continuer avec O2. </li><li> Administrer 5 ml de sérum physiologique chaud pour le remplacement du fluide dans les dépôts sous-cutanés trois. </li><li> Position du rat sous une lumière rouge jusqu&#39;à la guérison complète. </li><li> Retour chez le rat en cage à la maison. </li></ol> 9. Les résultats représentatifs Animaux et le logement Des rats Wistar mâles (Harlan Laboratories Inc, Blackthorn, Royaume-Uni;. Elevage Janvier, Le Genest-Saint-Isle, France) pesant entre 350 et 500 g ont été logés individuellement en vertu d&#39;un 12 h / 12 h cycle lumière-obscurité à une température ambiante de 21 ± 2 ° C. L&#39;eau et le niveau chow étaient disponibles ad libitum, sauf indication contraire. Toutes les expériences ont été effectuées en vertu d&#39;une licence délivrée par l&#39;Offi AccueilCE, Royaume-Uni (PL70-6669) ou approuvé par l&#39;Office vétérinaire du canton de Zurich, en Suisse. Tous les rats ont été donné une semaine d&#39;acclimatation avant d&#39;être randomisés pour le bypass gastrique ou fictive-opération. Après la chirurgie, les rats ont reçu diète liquide pendant 3 jours avant que l&#39;accès à la normale chow a été réinstallé. Le poids corporel Les données de notre modèle de dérivation gastrique chez le rat sont conformes aux constatations précédentes que la chirurgie de pontage gastrique est efficace pour réduire le poids corporel et surtout à maintenir la perte de poids corporel (figure 2). Moyenne de poids corporel pré-opératoire des rats utilisés pour le pontage gastrique et simulacres des opérations a été similaire (simulacre: 433,4 ± 8,3 g vs pontage: 420,7 ± 8,4 g, p = 0,28). Cinq jours après la chirurgie opérés de manière fictive contrôles pesé significativement plus par rapport à des rats bypass gastrique (trompe-l&#39;œil: 422,2 ± 8,3 g vs pontage: 374,7 ± 7,6 g, p &lt;0,001). Le jour postopératoire 60, différence de poids corporel était de près de 170 g (simulacre: 533,2 ± 8,1 g vs pontage: 366,2 ± 10,8 g, p &lt;0,001). L&#39;apport alimentaire L&#39;apport alimentaire suivi une évolution similaire que le poids du corps et a été réduite chez les rats bypass gastrique par rapport à des rats opérés de manière fictive nourris ad libitum. La figure 3 montre l&#39;apport alimentaire quotidien moyen pour les deux groupes (jour postopératoire 1-60). La ration alimentaire quotidienne était toujours plus faible après un pontage gastrique (trompe-l&#39;œil: 29,9 ± 0,2 g vs pontage: 25,7 ± 0,3 g, p &lt;0,001). Gut hormones Le sang de tous les rats ont été recueillis le jour de 8,16 fin de l&#39;étude. Les animaux ont accès ad libitum des aliments la veille et ont été décapités au début du cycle de la lumière au premier jour postopératoire 60. Du sang a été obtenu, immédiatement centrifugé à 3000 rpm pendant 10 minutes à 4 ° C, et stocké à -20 ° C jusqu&#39;à ce que les échantillons ont été dosés en double exemplaire, en un seul passage. PYY immunoréactivité semblable était measured avec un dosage radio-immunologique spécifique et sensible, qui mesure, à la fois sur toute la longueur (PYY1-36) et le fragment (-PYY3 36). GLP-1 a été mesurée par établie dans les maisons radioimmunologiques 17,18. Les différences dans l&#39;apport alimentaire peut s&#39;expliquer en partie par une augmentation des concentrations plasmatiques postprandiales de peptide YY (PYY) et le glucagon-like peptide 1 (GLP-1) que les rats ont montré des niveaux bypass gastrique significativement plus élevés pour PYY (trompe-l&#39;œil: 26 ± 2 pmol / L vs . de dérivation: 141 ± 14 pmol / L, p &lt;0,001) et le GLP-1 (trompe-l&#39;œil: 40 ± 5 pmol / L vs pontage: 215 ± 23 pmol / L, p &lt;0,001; Figure 4). <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig1.jpg" /> Figure 1. L&#39;anatomie bypass gastrique. Illustration schématique de l&#39;anatomie de l&#39;intestin grêle avant (A) et après (B) l&#39;opération de dérivation gastrique. Les différentes nuances de rouge d&#39;environ représentent des segments correspondants de l&#39;intestin grêle avec le rouge moyen représentant l&#39;intestin antérieur(Duodénum estomac oesophage, et le jéjunum proximal), la lumière rouge qui représente l&#39;intestin moyen (jéjunum proximal et mi, l&#39;iléon proximal) et le rouge foncé représentant le gros intestin (l&#39;iléon, le caecum). <img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig2.jpg" /> Figure 2. . Perte de poids corporel après un pontage gastrique chez le rat changement de poids corporel pour un groupe représentatif de rats après un pontage gastrique (-) (n = 52) et les rats opérés de manière fictive (-) (n = 52) à travers une période d&#39;observation de la 60 jours. Les données ont été regroupées à partir de publications antérieures 6,8-10 et sont présentées comme des valeurs moyennes ± SEM (*** = p &lt;0,001). <img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig3.jpg" /> Figure 3. Ration alimentaire moyenne après la chirurgie de pontage gastrique chez le rat. La ration alimentaire moyenne d&#39;un groupe représentatif de rats après un pontage gastrique (noir, n = 52) et les rats opérés de manière fictive (blanc, n = 52) à travers unpériode post-opératoire de 60 jours. Les données ont été regroupées à partir de publications antérieures 6,8-10 et sont présentées comme des valeurs moyennes ± SEM. <img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/3940/3940fig3.jpg" /> Figure 4. Postprandiale PYY et GLP-1 les taux sériques après une chirurgie de pontage gastrique chez le rat. Postprandiale PYY et le niveau du GLP-1 sérique chez les rats bypass gastrique (noir, n = 18) et les rats opérés de manière fictive (blanc, n = 22). Les données ont été regroupées à partir de publications antérieures 8,16 et sont présentées comme des valeurs moyennes ± SEM.

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<li>Abbott, C. R., Monteiro, M., Small, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+inhibitory+effects+of+peripheral+administration+of+peptide+YY%283-36%29+and+glucagon-like+peptide-1+on+food+intake+are+attenuated+by+ablation+of+the+vagal-brainstem-hypothalamic+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Brain+Res%22%5BJournal%5D)">The inhibitory effects of peripheral administration of peptide YY(3-36) and glucagon-like peptide-1 on food intake are attenuated by ablation of the vagal-brainstem-hypothalamic pathway.</a> Brain Res. 1044, 127-131 (2005).</li>
<li>Adrian, T. E., Ballantyne, G. H., Longo, W. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deoxycholate+is+an+important+releaser+of+peptide+YY+and+enteroglucagon+from+the+human+colon%5BTitle%5D)+AND+%22Gut%22%5BJournal%5D)">Deoxycholate is an important releaser of peptide YY and enteroglucagon from the human colon.</a> Gut. 34, 1219-1224 (1993).</li>
<li>Nakatani, H., Kasama, K., Oshiro, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Serum+bile+acid+along+with+plasma+incretins+and+serum+high-molecular+weight+adiponectin+levels+are+increased+after+bariatric+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Metabolism%22%5BJournal%5D)">Serum bile acid along with plasma incretins and serum high-molecular weight adiponectin levels are increased after bariatric surgery.</a> Metabolism. 58, 1400-1407 (2009).</li>
<li>Ashrafian, H., le Roux, C. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Metabolic+surgery+and+gut+hormones+-+a+review+of+bariatric+entero-humoral+modulation%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Behav%22%5BJournal%5D)">Metabolic surgery and gut hormones - a review of bariatric entero-humoral modulation.</a> Physiol. Behav. 97, 620-631 (2009).</li>
<li>Choban, P. S., Flancbaum, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+Roux+limb+lengths+on+outcome+after+Roux-en-Y+gastric+bypass%3A+a+prospective%2C+randomized+clinical+trial.+Obes%5BTitle%5D)+AND+%22Surg%22%5BJournal%5D)">The effect of Roux limb lengths on outcome after Roux-en-Y gastric bypass: a prospective, randomized clinical trial. Obes.</a> Surg. 12, 540-545 (2002).</li>
<li>Gleysteen, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Five-year+outcome+with+gastric+bypass%3A+Roux+limb+length+makes+a+difference%5BTitle%5D)+AND+%22Surg.+Obes.+Relat.+Dis%22%5BJournal%5D)">Five-year outcome with gastric bypass: Roux limb length makes a difference.</a> Surg. Obes. Relat. Dis. 5, 242-247 (2009).</li>
<li>Lee, S., Sahagian, K. G., Schriver, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Relationship+between+varying+Roux+limb+lengths+and+weight+loss+in+gastric+bypass%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Surg%22%5BJournal%5D)">Relationship between varying Roux limb lengths and weight loss in gastric bypass.</a> Curr. Surg. 63, 259-263 (2006).</li>
<li>Hayes, M. R., Kanoski, S. E., De Jonghe, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+common+hepatic+branch+of+the+vagus+is+not+required+to+mediate+the+glycemic+and+food+intake+suppressive+effects+of+glucagon-like-peptide-1%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Regul.+Integr.+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">The common hepatic branch of the vagus is not required to mediate the glycemic and food intake suppressive effects of glucagon-like-peptide-1.</a> Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol. 301, R1479-R1485 (2011).</li>
</ol>

Pas de conflits d&#39;intérêt déclarés.

La procédure de Roux-en-Y bypass gastrique chez l&#39;homme a d&#39;abord été décrite par Mason en 1967 et modifié à sa forme actuelle par Torres en 1983 19. Actuellement, la procédure se compose d&#39;une petite poche gastrique et la dérivation de l&#39;intestin grêle proximal. Une représentation schématique de l&#39;anatomie pré-et postopératoire est donnée à la figure 1. Le bypass gastrique chez l&#39;homme induit et maintient la perte de poids d&#39;environ 15...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nom générique </td><td> Nom de marque </td><td> Entreprise </td><td> Numéro de catalogue </td></tr><tr><td> L&#39;enrofloxacine </td><td> Baytril 2,5% </td><td> Provet AG </td><td> 1036 </td></tr><tr><td> Flunixine </td><td> Finadyne </td><td> Graeub </td><td> 908040 </td></tr><tr><td> Buprénorphine </td><td> Temgésic </td><td> Reckitt Benckiser </td><td> 138976 </td></tr><tr><td> L&#39;isoflurane </td><td> IsoFlo </td><td> Graeub </td><td> 902035 </td></tr><tr><td> La vitamine A </td><td> Vitagel </td><td> Bausch &amp; Lomb </td><td> 690 </td></tr><tr><td> Solution d&#39;iode </td><td> Betadine </td><td> Mundipharma </td><td> 111141 </td></tr><tr><td> NaCl 0,9% </td><td> NaCl 0,9% </td><td> B. Braun </td><td> 534534 </td></tr></tbody></table> Tableau 1. Drogues. <table border="1"><tbody><tr><td> Nom </td><td> Taille </td><td> Entreprise </td><td> Numéro de catalogue </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 4-0 </td><td> Ethicon </td><td> Z924H </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 5-0 </td><td> Ethicon </td><td> Z925H </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 6-0 </td><td> Ethicon </td><td> PUU2971E </td></tr><tr><td> PDS II </td><td> 7-0 </td><td> Ethicon </td><td> Z1370E </td></tr><tr><td> Vicryl </td><td> 4-0 </td><td> Ethicon </td><td> V451H </td></tr></tbody></table> Tableau 2. Sutures. <table border="1"><tbody><tr><td> Nom </td><td> Entreprise </td><td> Numéro de catalogue </td></tr><tr><td> Scalpel manche n ° 3 </td><td> Aesculap </td><td> BB073R </td></tr><tr><td> Pas de lames de bistouri. 10 </td><td> Swann-Morton </td><td> 0301 </td></tr><tr><td> Porte-aiguille </td><td> Aesculap </td><td> BM124R </td></tr><tr><td> Pince tissus </td><td> Aesculap </td><td> BD555R </td></tr><tr><td> Ciseaux de Metzenbaum, droite </td><td> Aesculap </td><td> BC022R </td></tr><tr><td> Ciseaux de Metzenbaum, courbé </td><td> Aesculap </td><td> BC023R </td></tr><tr><td> Des ciseaux courbes délicates, </td><td> Aesculap </td><td> BC061R </td></tr><tr><td> Pinces hémostatiques, courbé </td><td> Aesculap </td><td> BH109R </td></tr><tr><td> Pinces hémostatiques, des courbes, des dents 1x2 </td><td> Aesculap </td><td> BH121R </td></tr><tr><td> Probe, à double extrémité </td><td> Aesculap </td><td> BN113R </td></tr><tr><td> Porte-aiguille de micro </td><td> Aesculap </td><td> FM 541R </td></tr><tr><td> Micro pince </td><td> Aesculap </td><td> FM571R </td></tr><tr><td> Ciseaux Micro </td><td> Aesculap </td><td> FM470R </td></tr><tr><td> Cautérisation oeil jetable </td><td> John Weiss international </td><td> 0111122 </td></tr><tr><td> Cotons-tiges </td><td> Hartmann AG </td><td> 9679369 </td></tr></tbody></table> Tableau 3. Matériel chirurgical.

roux-en-y opération bypass gastrique chez le rat

Roux-en-Y Gastric Bypass Operation in Rats

Actuellement, la thérapie la plus efficace pour le traitement de l&#39;obésité morbide pour induire significative et maintenu une perte de poids avec un avantage de mortalité est de 1,2 éprouvée la chirurgie bariatrique. Par conséquent, il ya eu une augmentation régulière du nombre d&#39;opérations bariatriques pratiquées dans le monde ces dernières années avec le Roux-en-Y bypass gastrique (by-pass gastrique) étant le plus souvent effectué l&#39;opération 3. Dans ce contexte, il est important de comprendre les mécanismes physiologiques par lesquels le pontage gastrique induit et maintient la perte de poids corporel. Ces mécanismes sont pas encore entièrement compris, mais peut inclure réduire la faim et de satiété augmenté 4,5, augmentation des dépenses énergétiques 6,7, de préférence modifiées pour des aliments riches en graisses et en sucres 8,9, le sel et modifié traitement de l&#39;eau du rein 10 comme ainsi que des modifications dans 11 microbiote intestinal. Ces changements observés après bypass gastrique peut au moins en partie provenir de la façon dontla chirurgie modifie le milieu hormonal, car le bypass gastrique augmente la libération post-prandiale du peptide-YY (PYY) et le glucagon-like-peptide-1 (GLP-1), les hormones qui sont libérées par l&#39;intestin en présence de nutriments et qui réduisent les manger 12. Au cours des deux dernières décennies de nombreuses études sur des rats ont été menées pour étudier plus avant les changements physiologiques après un pontage gastrique. Le modèle de pontage gastrique chez le rat s&#39;est avérée être un outil précieux expérimentale au pas comme il suit de près le profil de temps et de l&#39;ampleur de la perte de poids de l&#39;homme, mais aussi permet aux chercheurs de contrôler et de manipuler des facteurs critiques anatomiques et physiologiques, y compris l&#39;utilisation de contrôles appropriés. Par conséquent, il ya un large éventail de modèles de rats pontage gastrique disponibles dans la documentation examinée plus en détail ailleurs dans 13-15. La description de la technique chirurgicale exacte de ces modèles est très variable et diffère, par exemple en termes de taille de pochette, un membrelongueurs, et la préservation du nerf vagal. Si indiqué, les taux de mortalité semblent aller de 0 à 35% 15. En outre, la chirurgie a été effectuée presque exclusivement chez les rats mâles de souches et d&#39;âges différents. Régimes pré-et post-opératoire variait aussi considérablement. Variations techniques et expérimentales dans les modèles gastriques publiés rat de contournement compliquer la comparaison et l&#39;identification des potentiels mécanismes physiologiques impliqués dans le bypass gastrique. Il n&#39;ya pas de preuve claire que n&#39;importe lequel de ces modèles est supérieur, mais il ya un besoin émergent pour la normalisation de la procédure pour obtenir des données cohérentes et comparables. Cet article vise donc à résumer et à discuter des détails techniques et expérimentales de notre modèle précédemment validé et publié le bypass gastrique chez le rat.

De nombreuses études utilisant des modèles de rats de dérivation gastrique ont été récemment menées pour découvrir les mécanismes physiologiques sous-jacents de Roux-en-Y des opérations de pontage gastrique. Cet article vise à démontrer et discuter des détails techniques et expérimentales de notre modèle de dérivation gastrique du rat publié à comprendre les avantages et les limites de cet outil expérimental.

Roux-en-Y Opération Bypass gastrique chez le rat

Actuellement, la thérapie la plus efficace pour le traitement de l'obésité morbide afin d'induire une perte de poids corporelle significative et durable, avec une réduction prouvée de la mortalité...

L'objectif général de l'expérience suivante est de démontrer un modèle reproductible de dérivation gastrique de type roux-en-Y chez le rat, nécessaire pour élucider ses mécanismes physiologiques sous-jacents chez l'humain. Cela est réalisé en créant d'abord une anse bilio-pancréatique et une anse alimentaire. Ensuite, une anastomose latérolatérale de type doxostomie est réalisée entre l'anse bilio-pancréatique et l'anse alimentaire, établissant ainsi un futur canal commun.Ensuite, l'estomac est transversé près de la jonction gastro-œsophagienne afin de créer une petite poche gastrique, qui est ensuite anastomosée par sa partie distale au limb élémentaire pour compléter la reconstruction en Y de Roux de la procédure de dérivation. Les résultats montrent une réduction durable de la prise alimentaire et du poids corporel chez les animaux soumis à la dérivation gastrique, associée à une augmentation des concentrations plasmatiques postprandiales du peptide YY et du peptide un. Le principal avantage de cette technique par rapport aux méthodes existantes, telles que les modèles de dérivation gastrique avec une poche gastrique plus volumineuse, est que notre modèle reproduit fidèlement la procédure chirurgicale utilisée chez l'humain en créant une poche gastrique très petite, constituée de moins de 5 % du volume gastrique initial. Cette méthode peut permettre de répondre à des questions essentielles dans le domaine de la physiologie et de la physiopathologie de l'obésité alimentaire et des maladies associées, telles que le diabète de type deux ou les maladies cardiovasculaires.La veille de la chirurgie de dérivation gastrique, retirez toute nourriture de la cage du rat le lendemain, après avoir anesthésié l'animal dans une chambre à flux avec 4 à 5 % de fluorure, en utilisant un rasoir électrique pour raser l'abdomen du sternum au bassin. Placez ensuite le rat en position supine sur un tapis chauffant isothermique. Appliquez une pommade oculaire adaptée à la taille du rat et placez son museau dans un embout nasal.Assurez l’anesthésie avec 2 à 3 % d’isoflurane et d’oxygène à deux litres par minute. Ensuite, désinfectez la peau avec une solution de Bétadine. Puis vérifiez le niveau d’anesthésie à l’aide de pinces en pinçant entre les orteils de la patte postérieure, et administrez des antibiotiques périopératoires par voie intrapéritonéale : de l’enrofloxacine.Et pour l’analgésie, ajoutez un milligramme par kilogramme de flunixine. Pour commencer la chirurgie, utilisez un scalpel afin de pratiquer une incision médiane à partir juste en dessous du processus xiphoïde, puis, à l’aide de pinces et de ciseaux, disséquez circulairement et mobilisez la peau par rapport aux muscles abdominaux sous-jacents. Ouvrez la cavité abdominale et placez des rétracteurs pour exposer le champ opératoire afin de créer un anneau pancréatique et un segment élémentaire.Tout d'abord, déterminez si le duodénum ou le jéjunum proximal passe sous le côlon à environ 10 centimètres en amont de ce point, sectionnez l'intestin grêle et ligaturez les deux extrémités des intestins. Placez les moignons proximal et distal des deux extrémités respectivement dans les cadrans supérieur gauche et supérieur droit de l'abdomen, pour une utilisation ultérieure. Pour former les branches biliaire et entérale de la reconstruction en Y de Roux, repérez le caecum avec la valve iléocæcale et l'iléon.Suivez l'iléon par voie orale sur environ 25 centimètres. Ensuite, récupérez l'anse pancréatique biale à partir du quadrant supérieur gauche de l'abdomen et positionnez-la à côté du canal commun. À ce stade, placez un point de suture de rétention.Pour fixer l’anse bilio-pancréatique et le canal commun. Utiliser des ciseaux microchirurgicaux pour inciser les deux boucles sur environ 10 millimètres. Ensuite, utiliser des points séparés pour réaliser une anastomose latérale bout à bout.D'abord le côté postérieur, puis le côté antérieur. Identifier la jonction gastro-œsophagienne afin de créer la poche gastrique. Utiliser des ciseaux à disséquer de type Matson pour mobiliser cette région en disséquant les ligaments hépato-gastrique et spléno-gastrique.Ensuite, déplacer latéralement l'artère gastrique gauche et les fibres vagales du faisceau paraœsophagien gauche afin de prévenir les hémorragies importantes et les lésions du nerf vague lors de la création de la petite poche gastrique. Exposer la jonction gastro-œsophagienne en plaçant un coton-tige rétro-œsophagien. À l’aide d’un dispositif chirurgical commercial, coaguler les petits vaisseaux de la face antérieure de l’estomac pour prévenir les saignements, en utilisant des ciseaux courbes fins.Transecter l'estomac à environ cinq millimètres en dessous de la jonction gastro-œsophagienne, créant une poche gastrique dont la taille ne dépasse pas 2 à 3 % de la taille initiale de l'estomac. Fermer ensuite le résidu gastrique pour la gastrostomie. Récupérer l'ans élémentaire du quadrant supérieur droit de l'abdomen et le positionner à côté de la poche gastrique.Réalisez une anastomose latérale, en commençant par la paroi postérieure, puis la paroi antérieure. Réduisez l'isoflurane à 1,5 % en utilisant des sutures continues. Fermez la couche musculaire de la paroi abdominale comme mesure analgésique par voie sous-cutanée.Administrer 100 microlitres de 0,3 milligramme par millilitre. La buprénorphine réduit davantage l'isoflurane à 1 %. Puis, à l’aide de points de suture intermittents, fermer la peau, interrompre l’anesthésie et poursuivre avec de l’oxygène. Ensuite, administrer cinq millilitres de sérum physiologique tiède en trois sites sous-cutanés.Placer le rat sous une lumière rouge jusqu'à ce qu'il se réveille complètement. Enfin, remettre le rat dans sa cage d'origine et administrer un régime liquide pendant trois jours avant de permettre aux animaux d'accéder à une nourriture normale. Ce graphique montre que cinq jours après la chirurgie, les animaux témoins soumis à une opération factice pèsent significativement plus lourd que les rats ayant subi un bypass gastrique.Et au jour 60, la différence de poids corporel était nettement plus marquée, suggérant que le bypass gastrique est efficace pour réduire le poids et maintenir la perte de poids. Ce graphique montre que l'ingestion alimentaire quotidienne était constamment plus faible chez les rats ayant subi un bypass gastrique par rapport aux rats opérés de manière factice et nourris ad libitum. Les différences d'ingestion alimentaire pourraient être en partie expliquées par une augmentation des concentrations plasmatiques postprandiales du peptide YY et du peptide glucagon-like 1, comme indiqué ici.Les rats soumis à un bypass gastrique ont montré des niveaux significativement plus élevés de peptide YY et de peptide glucagon-like un. Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée en environ une heure si elle est effectuée correctement après son développement. Cette technique a ouvert la voie aux chercheurs dans le domaine de l'obésité et du diabète pour explorer les modifications chirurgicalement dépendantes de l'endocrinologie intestinale chez les rats et les souris.

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Cette vidéo décrit une procédure de chirurgie bariatrique-Roux-en-Y. Cela implique la coupe du jéjunum - la partie centrale de l’intestin - pour générer deux membres intestinaux. Le membre biliaire est attaché à l’anse intestinale existante et le membre digestif est attaché à l’estomac, créant un pontage gastrique. Le pontage gastrique créé ici aide à diminuer l’absorption de nutriments et réduit efficacement le poids corporel.

Procédure de pontage gastrique Roux-en-Y : une procédure chirurgicale bariatrique pour la résection gastrique dans un modèle murin

La chirurgie bariatrique est le moyen le plus efficace de réduire le poids corporel et les complications métaboliques mortelles (diabète, obésité et dyslipidémie) fréquemment associées à l’obésité morbide. Les modèles murins de chirurgie bariatrique représentent un atout unique pour déchiffrer les mécanismes moléculaires à l’origine des effets bénéfiques de ces chirurgies sur le diabète, l’hypertension et la dyslipidémie.

Techniques de sleeve gastrectomie et modification Roux-en-Y bypass gastrique chez la souris

La section suivante décrit les performances de gastrectomie verticale chez les souris. Il s’agit d’un type de chirurgie de perte de poids qui implique le retrait d’environ 70 % de l’estomac.

Un modèle murin de gastrectomie verticale

Ce protocole est pour l’exécution de celui-anastomose pontage gastrique (OAGB) chez le rat. L’opérateur effectue une poche gastrique longue et tubulaire-agrafé suivie d’anastomose cousus à la main. Pour ce modèle, l’opérateur a reproduit le même rapport entre la dérivation biliopancréatique et branche commune chez l’être humain ; par conséquent, la branche de dérivation biliopancréatique mesure 35 cm.

Un-anastomose pontage gastrique (OAGB) chez le rat

La prévalence du diabète et de l’obésité ne cesse d’augmenter dans le monde entier. Les mécanismes entre le diabète, l’obésité et leur mortalité et leurs comorbidités associées doivent faire l’objet d’une étude plus approfondie. Ici, nous présentons un protocole pour la gastrectomie de manche (SG) dans les animaux comme modèle préclinique simple de chirurgie bariatrique.

Gastrectomie à manches chez les souris à l’aide de clips chirurgicaux

Le pontage gastrique de Roux-en-Y (RYGB) est effectué pour traiter l’obésité et le diabète. Cependant, les mécanismes sous-jacents à l’efficacité du RYGB ne sont pas entièrement compris, et les études sont limitées par des difficultés techniques conduisant à une mortalité élevée chez les modèles animaux. Cet article fournit des instructions sur la façon d’exécuter RYGB chez les rats avec des taux de réussite élevés.

Un protocole pour le pontage gastrique de Roux-en-Y chez le rat à l’aide d’agrafeuses linéaires

Le pontage duodéno-iléal par anastomose unique (ISAD-S) est une procédure bariatrique émergente ayant des effets métaboliques importants. Dans cet article, nous présentons un modèle fiable et reproductible de l’ISAD-S chez la souris.

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Le modèle de rat d'infarctus aigu du myocarde (IAM) est utile d'étudier la conséquence d'un MI sur la fonction physiopathologiques et physiologiques cardiaque.

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Une transplantation hépatique orthotopique chez le rat

Dans le cancer gastrique précoce, le but de la chirurgie est d’enlever précisément l’estomac distal, y compris la tumeur primitive. Pour ce faire, une localisation précise de la tumeur est cruciale, en particulier en chirurgie totalement laparoscopique. Ce protocole décrit une procédure de gastroscopie peropératoire dans la gastrectomie subtotale totalement laparoscopique.

Gastroscopie peropératoire pour Tumor Localization en chirurgie laparoscopique pour adénocarcinome gastrique

Apprenez le modèle de bypass gastrique Roux-en-Y chez le rat pour étudier les mécanismes physiologiques de l'obésité. Cette méthode reproduit fidèlement la chirurgie humaine et permet d'analyser la perte de poids et les hormones intestinales postprandiales.

Roux-en-Y Opération Bypass gastrique chez le rat

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