Name: Remplacement ovariectomie et 17β-estradiol chez les rats et les souris: une démonstration visuelle (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-07T12:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 51 s
Description: Découvrez l'ovariectomie et le remplacement hormonal par 17β-estradiol chez les rats et souris. Cette méthode utilise des capsules de silastique ou un mélange oral Nutella pour contrôler les concentrations sériques d'œstrogènes.

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L&#39;étude a été financée par l&#39;Université de Linköping et le Conseil du comté d&#39;Östergötland.

1. L&#39;ovariectomie par la Route dorsale <ol><li> Anesthésier l&#39;animal, par exemple en utilisant 1,5% d&#39;isoflurane (4% pour l&#39;induction) dans un oxyde d&#39;oxygène / protoxyde d&#39;azote de 30% / 70% mélange. Placer l&#39;animal en position couchée sur une plaque de chauffage relié à un thermomètre rectal. Il est important d&#39;avoir une fine couche d&#39;isolation entre l&#39;animal et la plaque, et que le thermomètre de feed-back du système maintient la température du corps au sein de 37 ± 0,5 ° C. Appliquer le gel de protection des yeux et d&#39;administrer 5 mg Rimadyl / kg de poids corporel dilués dans une solution saline sous-cutanée sur la face latérale du cou de l&#39;animal pour soulager la douleur postopératoire. </li><li> Shave a 4 * 4 cm (3 * 3 cm pour les souris) zone cephally de la crête iliaque. Laver soigneusement la zone rasée avec pour Jodopax par exemple avant de couvrir l&#39;animal avec un 4 * 4 feuille de chirurgie cm d&#39;ouverture. </li><li> Faire une incision de 2-3 cm la ligne médiane et carrément disséquer la peau de l&#39;aponévrose sous-jacente. Un cm latérales de la ligne médiane, faire une autre incision through le fascia. Pour dire les choses disséquer latéralement sous ce fascia superficiel que possible jusqu&#39;à la cavité abdominale. </li><li> L&#39;aide de pincettes, récupérer le tissu adipeux qui entoure l&#39;ovaire dans la cavité abdominale et retirez-le doucement. Identifier l&#39;ovaire et ligaturer les trompes utérines et des vaisseaux 0,5-1 cm proximal de cette structure. Couper l&#39;ovaire et le tissu adipeux et ligaturé remettre le tissu restant dans la cavité abdominale. Faites une autre incision dans le fascia controlatéral et répétez la procédure. </li><li> Fermez les plaies, de préférence en utilisant un fil de suture monofilament, et laisser l&#39;animal se réveiller de l&#39;anesthésie. Placer l&#39;animal dans une cage chauffée (25-27 ° C) pendant au moins 2 heures après la chirurgie. Les animaux doivent être logés séparément les premiers jours après l&#39;opération. Il est impératif que la cage est fréquemment nettoyé / remplacé au cours de la phase de récupération. Vingt-quatre heures après la chirurgie, injection sous-cutanée des animaux avec un autre 5 mg Rimadyl / kg de poids corporel dilués dansune solution saline. </li></ol> 2. Administration sous-cutanée de 17β-estradiol par le biais Capsules Silastic <ol><li> Bien mélanger la quantité désirée de 17β-estradiol dans de l&#39;huile de sésame. Pour des concentrations physiologiques chez les rats et les souris, nous vous recommandons 180 mg / ml et 18-36 pg / mL, respectivement. Capsules placebo sont remplis d&#39;huile de sésame pur. </li><li> Couper 3 cm (2 cm pour les souris) de longueur de tube en silastic et 5 mm (3 mm pour les souris) longueurs de bâtons applicateurs en bois pour brancher. Utilisation pince, presser un bouchon en bois dans la capsule silastique avant l&#39;injection de la solution d&#39;huile 17β-estradiol/sesame à remplir toute la longueur. Doucement plafonner la capsule de silastic dans l&#39;extrémité ouverte avec un autre bouchon en bois (les bouchons sont censés rester en permanence dans la capsule). Incuber les capsules dans le reste de 17β-estradiol solution du jour au lendemain avant l&#39;implantation. </li><li> Implantation de la capsule peut être effectuée pendant l&#39;anesthésie utilisée à l&#39;ovariectomie chez les rats. Pour miCE, cependant, une période de récupération de 14 jours après une ovariectomie est fortement recommandée afin de minimiser le risque de la capsule en saillie à travers la peau fragile. </li><li> Après préparations chirurgicales comme dans 1.1, ou après la fermeture de l&#39;incision ovariectomie, de se raser et laver une superficie de 2 * cm 2 sur la face dorsale du cou de l&#39;animal. Faire une incision de 1 cm et carrément disséquer un poche sous-cutanée caudolaterally, avec amplement d&#39;espace pour la capsule. Essuyer la capsule silastique (que jusqu&#39;à ce point de temps a été incubé dans la solution 17β-estradiol) et lentement l&#39;installer à travers l&#39;incision, qui est ensuite fermée par une suture. Il est essentiel de s&#39;assurer que les souches de la peau capsule aussi peu que possible, en particulier dans la zone proche de la plaie. De la production de capsules à l&#39;implantation, il est important que la contamination est évitée. </li></ol> 3. Administration par voie orale de 17β-estradiol par l&#39;intermédiaire du Nutella noix de crème <ol><li> Bien dissoudre 17β-estradiol dans l&#39;huile de sésame, puis mélanger l&#39;huile de sésame avec le Nutella. Nous recommandons que chaque portion contient 28 mg par jour 17β-estradiol, 5 ul d&#39;huile de sésame et 1 g par Nutella kilogramme de poids corporel pour le rat et de 1,12 mg 17β-estradiol, l&#39;huile de sésame 0,312 pi et 60 mg Nutella pour chaque souris de 30 g. Placebo écrou-crème est préparée de manière identique mais sans le 17β-estradiol. </li><li> Former les animaux de manger sans hormones de noix de crème pendant cinq jours avant l&#39;expérience. Les trois premiers jours de la formation, les rats doivent être formés de manière optimale dans des groupes (environ 0,5 g de Nutella à 2-5 animaux), dans leurs cages à domicile. Sur les quatrième et cinquième jours de formation, les animaux sont mis dans des cages séparées avant de recevoir la portion journalière de ressembler à la situation expérimentale. </li><li> Pendant l&#39;expérience, les animaux sont mis dans des cages séparées pour chaque occasion l&#39;alimentation, après quoi la partie Nutella est servi sur de petits carreaux de céramique. Si la formation a été réalisée comme ci-dessus, our l&#39;expérience, c&#39;est que plus de 95% des rats et des souris d&#39;accepter l&#39;écrou-crème, et une fois totalement habitués, la plupart des animaux la consomment en quelques secondes. </li></ol> 4. Les résultats représentatifs Sérum physiologique 17β-estradiol concentrations, ce qui les méthodes actuelles visent à reproduire, sont d&#39;environ 5 à 140 pg / mL pour les rats et les 5-35 pg / mL pour les souris 4,6. Les capsules sous-cutanées silastic selon les instructions ci-dessus, lorsqu&#39;il est administré à 300 g femelles Sprague-Dawley, de produire diminue lentement 17β-estradiol concentrations sériques de l&#39;ordre de 40 pg / ml le jour 2 à 10 pg / ml de 35 jours. Cependant, immédiatement après l&#39;administration, un pic de concentration sérique d&#39;environ 1000 pg / ml peut être prévu, tombant à la gamme physiologique dans les 8 heures (figure 1A) 4,5. Les capsules en silastic pour les souris décrites ci-dessus avec 36 ug 17β-estradiol/mL, lorsqu&#39;il est administré à 25 g C57BL / 6 femelles souris, de rendre le sérum concentréentrations que lentement diminuer d&#39;environ 90 pg / ml Jour 2 au 25 pg / ml Jour 35. Ceci est probablement précédée par un pic similaire a été trouvé chez les rats, même si cela n&#39;a pas été étudiée (figure 1B) 6. La méthode Nutella par voie orale avec les dosages décrits ci-dessus, lorsqu&#39;il est administré à 300 g femelles Sprague-Dawley, rend les niveaux physiologiques de 17β-estradiol avec des fluctuations quotidiennes entre 10-70 pg / mL (figure 2A) 4. Pour les souris en utilisant le dosage ci-dessus, les niveaux quotidiens varient entre environ 20 et 120 pg / mL (figure 2B) 6. <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/4013/4013fig1.jpg" /> <st<html> rong.&gt; Figure 1 graphiques stylisés présentant 17β-estradiol concentrations chez le rat (A, n = 10 dans le temps des points jusqu&#39;à 24 h, n = 15 dans les derniers temps les points) 4,5 et souris (B, n = 10) 6 après l&#39;implantation capsule. Les capsules en silastic produisent un pic initiale de courte durée des concentrations sériques jusqu&#39;à 1000 pg / mL, mais diminution dans les heures à des niveaux inférieurs à 100 pg / mL. Pour les prochaines semaines 4-5, les capsules rendement stable, même si en constante diminution, les concentrations sériques. Les zones ombrées correspondent à physiologiques 17β-estradiol concentrations sériques en intactes rats et des souris femelles, respectivement. Même si pas visuellement démontré dans les graphiques, il ya variabilité inter-individuelle des concentrations 17β-estradiol, ce qui rend les coefficients de variation de 27 à 183% chez le rat et de 28 à 115% chez la souris avec la méthode capsule de silastic (moyenne très faible concentrations génèrent souvent des coefficients de variation élevés). iles/ftp_upload/4013/4013fig2.jpg &quot;/&gt; Figure 2 graphiques stylisées présentant 17β-estradiol concentrations chez le rat (A, n = 15). 4 et souris (B, n = 10) 6 à la suite de l&#39;administration journalière de l&#39;hormone de Nutella. La méthode Nutella par voie orale rend pics journaliers, mais pas de loin plus élevé que produit par voie sous-cutanée ou intraveineuse méthodes. Cela imite la pharmacocinétique de l&#39;hormonothérapie de remplacement de l&#39;homme, et le traitement par voie orale peut procéder aussi longtemps que nécessaire, même si l&#39;exemple ci-dessus ne présentent environ 96 heures initiales. Les zones ombrées correspondent à physiologiques 17β-estradiol concentrations sériques en intactes rats et des souris femelles, respectivement. Même si pas visuellement démontré dans les graphiques, il ya variabilité inter-individuelle des concentrations 17β-estradiol, ce qui rend les coefficients de variation de 40 à 132% chez le rat et de 13 à 219% chez la souris avec la méthode Nutella (très faibles concentrations moyennes génèrent souvent de hautles coefficients de variation).

<ol><li>Strom, J. O., Theodorsson, A., Theodorsson, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dose-related+neuroprotective+versus+neurodamaging+effects+of+estrogens+in+rat+cerebral+ischemia%3A+a+systematic+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cereb.+Blood+Flow+Metab%22%5BJournal%5D)">Dose-related neuroprotective versus neurodamaging effects of estrogens in rat cerebral ischemia: a systematic analysis.</a> J. Cereb. Blood Flow Metab. 29, 1359-1372 (2009).</li>
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<li>Levin-Allerhand, J. A., Sokol, K., Smith, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Safe+and+effective+method+for+chronic+17beta-estradiol+administration+to+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Contemp.+Top+Lab+Anim.+Sci%22%5BJournal%5D)">Safe and effective method for chronic 17beta-estradiol administration to mice.</a> Contemp. Top Lab Anim. Sci. 42, 33-35 (2003).</li>
</ol>

Les auteurs n&#39;ont rien à révéler.

Les modes d&#39;administration présentés ci-dessus dans des études antérieures ont prouvé supérieur à libération lente commerciales boulettes et les injections en termes de production physiologiques des concentrations sériques de 17β-estradiol. Alors que l&#39;granulés à libération lente de très haute et prolongée des pics de concentration sérique, les injections sont extrêmes, les fluctuations hormonales quotidiennes et nécessitent des manipulations répétées de stress des animaux 4-6. L&#39;importance de cho...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nom du réactif </td><td> Entreprise </td><td> Numéro de catalogue </td><td> Commentaires </td></tr><tr><td> Rimadyl, 50 mg / ml </td><td> Pfizer </td><td> 462986 </td><td> L&#39;analgésie postopératoire après ovariectomie. </td></tr><tr><td> Gel pour les yeux Lubrithal </td><td> Laboratoires Leo </td><td></td><td> Protection des yeux pendant la chirurgie. </td></tr><tr><td> Vétérinaire Jodopax </td><td> Pharmaxim </td><td></td><td> Chirurgie de désinfection. </td></tr><tr><td> Vicryl suture 4-0 </td><td> Johnson &amp; Johnson </td><td></td><td> Enroulé de suture et de ligature des ovaires. </td></tr><tr><td> 17β-estradiol,&gt; 98% </td><td> Sigma </td><td> E8875-1G </td><td> Dans l&#39;huile de sésame pour les capsules en silastic et Nutella. </td></tr><tr><td> Huile de sésame </td><td> Sigma </td><td> S3547-1L </td><td> Dissolution de la 17β-estradiol. </td></tr><tr><td> Tube en Silastic, ID / OD: 1.575/3.175 mm </td><td> Dow Corning </td><td> 508-008 </td><td> La production de capsules en silastic. </td></tr><tr><td> Bâtonnet applicateur en bois </td><td> Selefatrade </td><td> 12-0783 </td><td> Le plafonnement des capsules en silastic. </td></tr><tr><td> Nutella </td><td> Ferrero </td><td></td><td> Moyen pour perorale 17β-estradiol. </td></tr></tbody></table>

remplacement ovariectomie et 17β-estradiol chez les rats et les souris: une démonstration visuelle

Ovariectomy and 17&beta;-estradiol Replacement in Rats and Mice: A Visual Demonstration

Les œstrogènes sont une famille des hormones sexuelles féminines avec un spectre exceptionnellement large d&#39;effets. Lorsque les rats et les souris sont utilisés dans la recherche d&#39;œstrogènes, ils sont souvent une ovariectomie en vue de l&#39;ablation de la production d&#39;hormones cycle rapide, le remplacement de la 17β-estradiol exogène. Il ya, cependant, l&#39;absence de consensus sur la façon dont l&#39;hormone doit être administré pour obtenir des concentrations sériques physiologiques. Ce point est crucial puisque le 17β-estradiol niveau / administration méthode influe profondément sur ​​les résultats expérimentaux 1-3. Nous avons dans une série d&#39;études ont caractérisé les différents modes de 17β-estradiol administration, constatant que sous-cutanés capsules en silastic et par-orale de noix de crème Nutella sont supérieurs aux commercialement disponibles à libération lente pellets (produit par la société Research innovante d&#39;Amérique) et injections quotidiennes en termes de production physiologiques des concentrations sériques de 17β-estradiol 4-6. Parmi les advantages de la méthode de noix de crème, qui a déjà été utilisé pour la buprénorphine administration 7, c&#39;est que lorsqu&#39;il est utilisé pour l&#39;administration d&#39;œstrogènes par voie orale il ressemble à l&#39;hormonothérapie substitutive et est non-invasive. Les capsules sous-cutanées en silastic sont pratiques et de produire des concentrations sériques les plus stables. Cet article contient étape vidéo-par-étape des démonstrations de l&#39;ovariectomie et le remplacement d&#39;hormone 17β-estradiol par des capsules en silastic et Nutella par voie orale chez le rat et la souris, suivi par une discussion sur des aspects importants des procédures d&#39;administration.

Ovariectomie et le remplacement ultérieur de la 17β-estradiol par voie de capsules en silastic et Nutella par voie orale sont mises en évidence chez des rats et des souris.

Remplacement ovariectomie et 17β-estradiol chez les rats et les souris: une démonstration visuelle

Les œstrogènes constituent une famille d'hormones sexuelles femelles présentant un spectre d'effets exceptionnellement large. Lorsque des rats et des souris sont utilisés dans la recherche sur les œstrogènes, ils sont...

L'objectif général de cette procédure est d'obtenir un contrôle strict des concentrations sériques d'œstrogènes, qui varient normalement chez les rats et souris femelles. Ceci est réalisé en retirant d'abord les ovaires par la racine dorsale. Ensuite, des capsules élastiques en céramique et un mélange de Nutella sont préparés.Enfin, une capsule est insérée par voie sous-cutanée, ou bien le mélange Nutella est administré par voie orale. En définitive, les résultats peuvent être obtenus par radioimmunoessai, qui montre des concentrations stables ou variables d’œstradiol 17 bêta sérique, respectivement pour la méthode de la capsule et celle du Nutella. Le principal avantage de ces techniques par rapport aux méthodes existantes, telles que les comprimés à libération lente, est qu’elles se sont révélées capables de produire des concentrations physiologiques d’œstradiol pendant de longues périodes.Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine des œstrogènes, telles que les différences d'effets entre les voies d'administration, les origines et les doses. Après avoir anesthésié l'animal, placez-le en position prona sur une plaque chauffante reliée à un thermomètre rectal. Appliquez l'IGEL et un analgésique postopératoire sur la face latérale du cou de l'animal par voie sous-cutanée.Administrer cinq milligrammes par kilogramme d'IL dans du sérum physiologique par voie antérieure à partir de la crête iliaque sur une zone de quatre centimètres sur quatre centimètres. Ensuite, désinfecter la zone avec un antiseptique avant de recouvrir l'animal d'un champ opératoire de quatre centimètres sur quatre centimètres comportant une ouverture. Réaliser une incision médiane de deux à trois centimètres et disséquer par émoussage la peau de la fascia sous-jacente, à un centimètre latéralement par rapport à la ligne médiane.Effectuez une autre incision à travers la fascia. Ensuite, aussi superficiellement que possible, disséquez latéralement par dissection émoussée sous cette fascia jusqu'à atteindre la cavité abdominale. À l'aide de pinces, saisissez le tissu adipeux qui entoure l'ovaire dans la cavité abdominale et tirez-le doucement vers l'extérieur.Identifier l'ovaire et ligaturer les cornes utérines et les vaisseaux à 0,5 à un centimètre proximalement par rapport à cette structure. Enlever l'ovaire et le tissu adipeux ligaturé, puis remettre le tissu restant dans la cavité abdominale.Effectuez une autre incision dans la fascia controlatérale et retirez l'autre ovaire. Fermez les plaies, puis laissez l'animal se réveiller de l'anesthésie, s'il ne reçoit pas immédiatement du 17 bêta-estradiol.Placer l'animal dans une cage chauffée pendant au moins deux heures après la chirurgie. Héberger le rat séparément pendant les premiers jours suivant l'intervention. 24 heures après la chirurgie, par voie sous-cutanée.Injectez les animaux avec cinq milligrammes par kilogramme d'IL afin d'administrer de l'estradiol 17 bêta par des capsules scolastiques. Mélangez soigneusement la quantité souhaitée dans de l'huile de sésame. Découpez des morceaux de tube scolastique de trois centimètres de longueur et des morceaux de bâtonnets applicateurs en bois de cinq millimètres de longueur pour boucher à l'aide de pinces.Insérez un bouchon en bois dans la capsule scolaire avant d'y injecter la solution d'œstradiol 17 bêta dans l'huile de sésame. Pour remplir toute la longueur, obturez délicatement l'extrémité ouverte de la capsule scolaire avec un autre bouchon en bois. Incubez les capsules dans la solution restante d'œstradiol 17 bêta toute la nuit avant l'implantation.Après la fermeture des incisions d'ectomie, raser et désinfecter une zone carrée de deux sur deux centimètres sur l'aspect dorsal du cou du rat. Réaliser une incision d'un centimètre et écarteler latéralement par dissociation prudente. Disséquer une poche sous-cutanée en ménageant un espace suffisant pour la capsule.Essuyez la capsule scolaire et insérez-la délicatement par l'incision. Fermez ensuite l'incision à l'aide d'un point de suture. Veillez à ce que la capsule exerce une tension minimale sur la peau, en particulier autour de la plaie.Pour utiliser la crème de noix Nutella comme support d'administration d'œstrogène, dissoudre complètement l'estradiol 17 bêta dans de l'huile de sésame, puis mélanger l'huile de sésame avec la crème de noix. Préparer une crème de noix placebo sans l'estradiol 17 bêta cinq jours avant l'expérience. Habituer les rats à consommer la crème de noix sans hormone du premier au troisième jour.Entraînez les animaux par groupes les quatrième et cinquième jours. Nourrissez-les avec la crème de noix dans des cages séparées tout au long des expériences. Placez les animaux dans des cages séparées lorsqu'ils reçoivent la crème de noix en sérum physiologique.Les concentrations en 17 bêta-estradiol que les méthodes actuelles visent à reproduire sont d'environ cinq à 140 picogrammes par millilitre chez le rat, et de cinq à 35 picogrammes par millilitre chez la souris. Comme indiqué ici, lorsqu'elles sont administrées à des rates femelles de 300 grammes de souche Sprague-Dawley.Les capsules élastiques sous-cutanées produisent une diminution lente des concentrations sériques d'estradiol 17 bêta, passant d'environ 40 picogrammes par millilitre au jour 2 à 10 picogrammes par millilitre au jour 35. Toutefois, immédiatement après l'administration, on observe un pic de concentration sérique d'environ 1000 picogrammes par millilitre, qui retombe dans la plage physiologique dans les huit heures suivant l'administration chez des souris femelles C57BL/6 de 25 grammes.La concentration sérique a lentement diminué d'environ 90 picogrammes par millilitre au jour 2 à 25 picogrammes par millilitre au jour 35 lorsqu'elle a été administrée via la crème de noix à 300 grammes. Spra de rats. Les niveaux physiologiques de 17 bêta-estradiol ont varié quotidiennement entre 10 et 70 picogrammes par millilitre chez la souris.Les taux d'œstradiol 17 bêta ont varié entre 20 et 120 picogrammes par millilitre. Une fois maîtrisée, la technique d'ectomie et d'implantation de la capsule peut être réalisée en 10 minutes si elle est effectuée correctement. Lors de la réalisation de cette procédure, il est important de se rappeler de respecter strictement les consignes d'hygiène.

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Deux paradigmes de l'exercice ont été testés sur un modèle de souris de la ménopause induite chimiquement nouvellement mis au point pour examiner l'impact de la ménopause sur la capacité d'exercice et l'adaptation cardiaque à l'exercice.

Une méthode pour étudier l&#39;impact de l&#39;échec ovarien chimiquement induite sur la capacité d&#39;exercice et cardiaque adaptation chez la souris

Nous présentons ici un protocole pour vivre-imagerie des fragments de l’endomètre humains fluorescent étiquetés greffés chez des souris. La méthode permet d’étudier les effets des médicaments de choix sur la taille de la lésion endometriotic grâce à la surveillance et la quantification de la fluorescence émise par le journaliste fluorescent en temps...

Surveillance non invasive de la taille de la lésion dans un modèle murin hétérologues d’endométriose

Cliniquement, l'insuffisance d'oestrogène dans les femmes ménopausiques peut aggraver l'incidence de la perturbation de lipide et de l'athérosclérose. Nous avons établi un modèle in vivo d'insuffisance d'oestrogène par ovariectomy bilatéral par l'intermédiaire d'une double incision dorsal-latérale dans apoE-/- souris. Le modèle de souris est applicable pour le dépistage des traitements exogènes exogènes de dysfonctionnement cardio-vasculaire après la ménopause.

Un modèle in vivo de souris d'insuffisance d'oestrogène pour le criblage des traitements exogènes exogènes de la dysfonction cardio-vasculaire après ménopause

Cet article décrit comment effectuer des tests de comportement sexuel chez les souris mâles.

Évaluation du comportement sexuel des souris mâles

Ce protocole décrit la construction d’un système de micro-injection à faible coût, son implantation stéréotaxique dans les structures cérébrales profondes et la procédure de microinjections chronométrées de tétrodotoxine chez des rats éveillés et non effrénés. L’objectif est de révéler la participation des structures hypothalamiques à la régulation de l’ovulation en inhibant leur activité neuronale.

Démêler le rôle des zones discrètes du cerveau du rat dans la régulation de l’ovulation par inactivation réversible par des microinjections de tétrodotoxines

Ce manuscrit décrit une façon cohérente d’effectuer rapidement des orchiectomies et des ovariectomies de rongeurs de survie.

Orchidectomie murine et ovarictomie pour réduire la production d’hormones sexuelles

L’établissement de la grossesse est un processus dynamique impliquant une diaphonie embryonnaire et utérine complexe. Les contributions précises de l’environnement utérin maternel à ces processus restent un domaine de recherche actif. Ici, des protocoles détaillés sont fournis pour aider à concevoir des modèles animaux in vivo pour répondre à ces questions de recherche.

Méthodes d’étude des contributions utérines à l’établissement de la grossesse dans un modèle murin ovariectomisé

Voici un protocole pour montrer que la capsule de Bazi Bushen (BZBS) peut réguler la voie de signalisation RANKL/OPG dans le modèle de rongeur ovariectomisé grâce à son effet semblable à celui des œstrogènes.

Effet semblable à celui de l’œstrogène de la capsule de Bazi Bushen chez le rat ovariectomisé

L’hormone folliculo-stimulante (FSH) dans divers tissus et organes extragonadiques est associée à la pathogenèse de multiples maladies. Le modèle de souris ovariectomisé et traité à la FSH (OVF) peut être utilisé pour explorer les actions extragonadiques de la FSH.

Exploration des effets indépendants de l’hormone folliculo-stimulante in vivo dans un modèle murin

Ce protocole introduit une technique permettant d’induire des modèles de syndrome des ovaires polykystiques (SOPK) chez la souris par une libération contrôlée de létrozole à l’aide de mini-pompes. Sous anesthésie adéquate, la mini-pompe a été implantée par voie sous-cutanée et le SOPK a été induit avec succès chez les souris après une certaine période de libération de la mini-pompe.

Une technique modifiée pour induire le syndrome des ovaires polykystiques chez la souris

Découvrez l'ovariectomie et le remplacement hormonal par 17β-estradiol chez les rats et souris. Cette méthode utilise des capsules de silastique ou un mélange oral Nutella pour contrôler les concentrations sériques d'œstrogènes.

Remplacement ovariectomie et 17β-estradiol chez les rats et les souris: une démonstration visuelle

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