Name: Lanalyse in vitro de PDZ-dépendants complexes macromoléculaires CFTR de signalisation (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-08-13T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 5 s
Description: Apprenez à assembler des complexes macromoléculaires de signalisation CFTR dépendants de PDZ in vitro. Cette méthode utilise des protéines de fusion recombinantes purifiées et du western blot pour visualiser directement la formation des complexes.

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Notre travail a été soutenu par des subventions de l&#39;American Heart Association (Grand Sud-affiliation) Début-grant-in-aid 0765185B, l&#39;Elsa U. Pardee Fondation une subvention de recherche, et la Wayne State University intra-muros de fonds de démarrage et de recherche cardiovasculaire de l&#39;Institut d&#39;attribution Initiative Isis. Cette méthode in vitro CFTR assemblage complexe macromoléculaire a été initialement mis au point par le Dr AP Naren (Université du Tennessee Health Science Center).

1. Expression et purification de protéines recombinantes de fusion associés à des bactéries <ol><li> Amplification des régions définies du C-queue (les 50-100 derniers acides aminés contenant des motifs PDZ à extrémité C-terminale) pour CFTR, APL 2, MRP2, MRP4, β 2 AR, et NHERFs (pleine longueur ou PDZ1 ou PDZ2 domaines ) par l&#39;approche de PCR. </li><li> Cloner les produits de PCR en pGEX4T-1 vecteur de la TPS-protéines de fusion (comme la TPS-NHERFs, TPS-MRP4 CT), pMAL-C2 vecteur de protéines de fusion MBP (comme MBP-β 2 AR CT, MBP-CFTR CT ), et pour ses pET30-S-protéines de fusion (tel que son-S-CFTR CT, Son-S-PDZK1). </li><li> Transformer dans un E. déficiente en protéase souche de E. coli (BL21-DE3) pour minimiser la dégradation possible de protéines recombinantes. </li><li> Cultiver la culture pendant une nuit à 37 ° C dans du milieu Luria-Bertani (pH 7,0) contenant des antibiotiques appropriés (tels que l&#39;ampicilline ou la kanamycine). Diluer la culture de nuit à 1:10 et se développer pendant encore 2 h à 37 ° C. Dansduire avec 0,5-1 m M IPTG pour le prochain 4 h à 30 ° C. Pellet les cellules par centrifugation à 8000 xg pendant 10 min à 4 ° C. </li><li> Lyse des cellules dans le tampon de saccharose (50 m M Tris-HCl, pH 8,0, 1 m M EDTA, 1 m M PMSF, et 10% de saccharose) contenant du lysozyme (1 mg / ml), 0,2% de Triton X-100, et de la protéase inhibiteurs. Utilisez 20 ml pour culot cellulaire provenant de 1 L de la culture. </li><li> Mélanger sur un agitateur rotatif pendant 30 min à 4 ° C. </li><li> Centrifuger à 20000 g pendant 30 min à 4 ° C. Recueillir le surnageant clair. </li><li> Dans le surnageant clair, ajouter 1 ml de résine les suivantes / agarose perles (coulis 50% dans le tampon de saccharose): <ul><li> Glutathion billes d&#39;agarose pour les protéines de fusion GST. </li><li> Talon perles pour Ses-S protéines de fusion. </li><li> Résine d&#39;amylose pour les protéines de fusion MBP. </li></ul></li><li> Mix pendant 4 h à 4 ° C sur un agitateur rotatif. </li><li> Laver les billes en remettant en suspension dans du PBS 1X (15 ml), mélanger pendant 2 min, tournant à 800 × g pendant 2 min, et élimination du surnageant. Répétez cette étape pour six fois. </li><li> Eluer la protéine à partir des billes en utilisant un tampon d&#39;élution respectifs (2 ml de tampon d&#39;élution pour 1 ml de billes). <ul><li> Tampon d&#39;élution des protéines de fusion GST: 25 m M Tris-HCl (pH 8,0), 140 m M de NaCl, et 20 m M glutathion réduit. </li><li> Tampon d&#39;élution pour ses protéines de fusion: 20 m M Tris-HCl (pH 8,0), à 500 m M de NaCl, et à 200 m M d&#39;imidazole. </li><li> Un tampon d&#39;élution pour des protéines de fusion MBP: 20 m M de Tris-HCl (pH 8,0), 200 m M de NaCl, 1 m M d&#39;EDTA, de 1 m M DTT, et 10 m M maltose. </li></ul></li><li> Dialyser les protéines éluées contre 2 L de PBS 1x à 4 ° C (pour éviter la dégradation des protéines du possible). Changer PBS toutes les 4 h, quatre fois. Concentrer la protéine à l&#39;aide d&#39;un filtre Centricon (10.000 MW de coupure, Millipore) et le magasin en tant que de petites aliquotes à -80 ° C. </li><li> Dethermine de la concentration en protéines par la méthode de Bradford. Évaluer la qualité des protéines par SDS-PAGE en utilisant la BSA comme normes. Si l&#39;intégrité de la protéine n&#39;est pas satisfaisante, les procédures de purification secondaires telles que la filtration sur gel ou d&#39;échange d&#39;ions peut être utilisé. (Par exemple, nous avons utilisé une colonne G-75 Sepharose pour purifier davantage la TPS-protéine de fusion). </li></ol> 2. Culture cellulaire et préparation lysat cellulaire <ol><li> Culture rein de bébé hamster (BHK) que de manière stable sur-expriment la protéine CFTR-poids et CFTR-his10 ou des cellules BHK que transitoirement sur-expriment le drapeau-APL 2-poids ou Drapeau-APL 2-ΔSTL, et Madin-Darby Canine Kidney (MDCK cellules) que de manière stable sur-express MRP2 à Eagle du milieu essentiel minimum (MEM) contenant 10% sérum de veau foetal et de la pénicilline / streptomycine dans des flacons en polystyrène à 37 ° C avec 5% de CO 2. </li><li> Culture embryonnaires humaines de rein 293 (HEK293) des cellules qui expriment de manière stable sur-CFTR-poids et CFTR-his10 dans Dulbecco«Moyen s de Eagle modifié (DMEM) supplémenté avec 10% de sérum bovin et de la pénicilline / streptomycine dans des flacons en polystyrène à 37 ° C avec 5% de CO 2. </li><li> Lyse des cellules dans le tampon de lyse (PBS - 0,2% de Triton-X-100 complété par un mélange d&#39;inhibiteurs de la protéase contenant 1 m M phénylméthylsulfonyle fluorure, 1 ug / ml d&#39;aprotinine, 1 ug / ml de leupeptine, 1 ug / ml de pepstatine); utilisation 500 ul de tampon de lyse pour chaque plat de 60 mm de Petri, et 1000 ul de tampon de lyse pour chaque plat de 100 mm de Petri. </li><li> Rock the lysats cellulaires pendant 20 min à 4 ° C, et de supprimer l&#39;insoluble par centrifugation à 16.000 g pendant 15 min à 4 ° C. Déterminer la concentration en protéines par la méthode de Bradford. </li></ol> 3. Assemblage in vitro d&#39;un complexe macromoléculaire CFTR contenant (CFTR-PDZK1-MRP4) <ol><li> Dans 200 ul de tampon de lyse (PBS - 0,2% de Triton X-100 + inhibiteurs de la protéase), ajouter 20 pg purifiée GST-MRP4-C-terminal50 bis (CT50) protéine de fusion. </li><li> Additionner les montants différents (0-40 mg) de purifier Son-S-PDZK1 protéine de fusion. </li><li> Mélanger les deux protéines sur un mélangeur rotatif à 22 ° C pendant 1-2 h. </li><li> Ajouter 20 billes de glutathion pi (50% suspension) dans le mélange de protéines, et continuer à mélanger pour un autre h 1. Cette étape est aussi appelée par paire de liaison. </li><li> Pendant ce temps, préparer les lysats cellulaires HEK293 qui surexpriment la protéine CFTR-Drapeau (en poids) tel que décrit ci-dessus à l&#39;étape 2). </li><li> Laver le complexe à deux reprises avec un tampon de lyse. Centrifuger à 800 xg pendant 1 min pour chaque lavage et aspirer délicatement le surnageant après chaque lavage. Faites preuve de prudence pour ne pas sucer les billes dans le fond. </li><li> Ajouter les HEK293 préparés ci-dessus lysats cellulaires aux billes, et mélanger délicatement à 4 ° C pendant 3 h (ou toute la nuit). </li><li> Laver les billes extensive trois fois avec un tampon de lyse telles que décrites à l&#39;étape 3.6). </li><li> Éluer les protéines en utilisant 30 uL tampon d&#39;échantillon (5 ×): 0,6 M<html> Tris-HCl (pH 6,8), glycérol 50%, 2% de SDS, et 0,1% de bleu de bromophénol, contenant 5% β-mercaptoéthanol. </li><li> Incuber à 37 ° C bain-marie pendant 10-15 min, et de spin à 5000 × g pendant 30 s pour précipiter les perles. </li><li> Chargez tous l&#39;éluat sur un gel de 4-15%. </li><li> Exécuter SDS-PAGE pour environ 30-40 min. </li><li> Transfert des bandes de protéines à la membrane PVDF, pendant 1,5 heures. </li><li> Bloquer la membrane dans du TBS-Tween contenant 5% de matière grasse du lait non. </li><li> Incuber la membrane avec l&#39;anticorps primaire (comme les anti-IgG CFTR, R1104) à 4 ° C, pendant la nuit. </li><li> Laver la membrane avec du TBS-Tween pendant 5 min, à six reprises. </li><li> Incuber la membrane avec un anticorps secondaire (par exemple la chèvre anti-souris conjugué à HRP 2 anticorps e) pendant 45 min à 22 ° C. </li><li> Laver la membrane avec du TBS-Tween pendant 5 min, à six reprises. </li><li> Visualisez les bandes de protéines par ECL. </li><li> Les données représentatives sont présentés dans la figure 1. </li></ol>jove_title &quot;&gt; 4. Les résultats représentatifs Un exemple de complexe macromoléculaire contenant du CFTR de signalisation qui a été assemblé in vitro est représenté sur la figure 1. Un complexe macromoléculaire a été formé entre MRP4 C-terminales de 50 acides aminés (MRP4-CT50), les PDZK1 et pleine longueur du gène CFTR (figure 1, en ​​bas). La formation d&#39;un complexe augmentation de la dose-dépendante avec des quantités croissantes de la protéine intermédiaire, PDZK1 (Figure 1, en ​​bas) 18. <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/4091/4091fig1.jpg" /> Figure 1. La représentation graphique de l&#39;analyse complexe macromoléculaire (en haut). Un complexe macromoléculaire a été détectée in vitro avec trois protéines (TPS-MRP4-CT50, Son-S-PDZK1, et Flag-CFTRwt) d&#39;une manière dose-dépendante (en bas) 18. <table border="1"><tbody><tr><td></td><td><strong&gt; CFTR-NHERF1-β 2 AR (réf. 14) </td><td> CFTR-NHERF2-APL 2 (réf. 15) </td><td> CFTR-PDZ protéines-MRP 2 (réf. 17) </td><td> CFTR-PDZK1-MRP4 (réf. 16) </td></tr><tr><td> Perles d&#39;affinité </td><td> Résine d&#39;amylose </td><td> S-protéine d&#39;agarose </td><td> Résine d&#39;amylose </td><td> Le glutathion agarose </td></tr><tr><td> Protéine purifiée-1 </td><td> MBP-β 2 AR CT </td><td> Son-S-CFTR CT </td><td> MBP-CFTR CT </td><td> TPS-MRP4 CT </td></tr><tr><td> Protéine purifiée-2 </td><td> TPS-NHERF1 </td><td> TPS-NHERF2 </td><td> TPS-PDZ protéines </td><td> Son-S-PDZK1 </td></tr><tr><td> Protéine purifiée-3 (ou lysats cellulaires) </td><td> CFTR-poids ou CFTR-his10 (BHK ou lysats cellulaires HEK) </td><td> DrapeauLPA-2-poids ou Drapeau-APL 2-ΔSTL (lysats cellulaires BHK) </td><td> MRP2 (lysats de cellules MDCK) </td><td> Purifiée Drapeau-CFTR-poids ou CFTR-his10 (ou lysats cellulaires) </td></tr><tr><td> Anticorps </td><td> Anti-IgG CFTR </td><td> Anti-Flag HRP </td><td> Anti-IgG MRP2 </td><td> Anti-Flag HRP </td></tr></tbody></table> Tableau 1. Résumé des différents complexes macromoléculaires CFTR contenant assemblés in vitro.

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<li>Naren, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Methods+for+the+study+of+intermolecular+and+intramolecular+interactions+regulating+CFTR+function%5BTitle%5D)+AND+%22Met.+Molecul.+Med%22%5BJournal%5D)">Methods for the study of intermolecular and intramolecular interactions regulating CFTR function.</a> Met. Molecul. Med. 70, 175-186 (2002).</li>
<li>Li, C., Roy, K., Dandridge, K., Naren, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+assembly+of+cystic+fibrosis+transmembrane+conductance+regulator+in+plasma+membrane%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+biological+chemistry%22%5BJournal%5D)">Molecular assembly of cystic fibrosis transmembrane conductance regulator in plasma membrane.</a> The Journal of biological chemistry. 279, 24673-24684 (2004).</li>
<li>Li, C., Naren, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+CFTR+Interactome+in+the+Macromolecular+Complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Met.+Molecul.+Med%22%5BJournal%5D)">Analysis of CFTR Interactome in the Macromolecular Complexes.</a> Met. Molecul. Med. 741, 255-270 (2011).</li>
<li>Wu, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+chemokine+receptor+CXCR2+macromolecular+complex+regulates+neutrophil+functions+in+inflammatory+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">A chemokine receptor CXCR2 macromolecular complex regulates neutrophil functions in inflammatory diseases.</a> J. Biol. Chem. , (2011).</li>
</ol>

Pas de conflits d&#39;intérêt déclarés.

Dans ce protocole, nous avons démontré une méthode in vitro le montage et la détection d&#39;une protéine CFTR contenant un complexe macromoléculaire de signalisation utilisant des protéines purifiées (ou fragments de protéines) et / ou de lysats cellulaires comme indiqué précédemment 16-19,29,30. Pour obtenir les meilleurs résultats sur les points suivants critiques au cours du processus de préparation nécessitent une attention particulière: <ul><li> Il est important que le pH du tampon d&#39;él...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nom du réactif </td><td> Entreprise </td><td> Le numéro de catalogue </td><td> Commentaires </td></tr><tr><td> pGEX4T-1 vecteur </td><td> GE Healthcare </td><td> 28-9545-49 </td><td> anciennement Amersham Biosciences </td></tr><tr><td> pMAL-C2 vecteur </td><td> New England Biolabs </td><td></td><td></td></tr><tr><td> pET30 vecteur </td><td> EMD Chemicals </td><td> 69077-3 </td><td> anciennement Novagen </td></tr><tr><td> Glutathion billes d&#39;agarose </td><td> BD Biosciences </td><td> 554780 </td><td></td></tr><tr><td> Résine d&#39;amylose </td><td> New England Biolabs </td><td> E8021S </td><td></td></tr><tr><td> Perles Talon </td><td> Clontech </td><td> 635501 </td><td></td></tr><tr><td> glutathion réduit </td><td> BD Biosciences </td><td> 554782 </td><td></td&gt; </tr><tr><td> imidazole </td><td> Pêcheur </td><td> BP305-50 </td><td></td></tr><tr><td> maltose </td><td> Pêcheur </td><td> BP684-500 </td><td></td></tr><tr><td> S-protéine d&#39;agarose </td><td> EMD Chemicals </td><td> 69704-3 </td><td> anciennement Novagen </td></tr><tr><td> Anti-Flag HRP </td><td> Sigma </td><td> A8592 </td><td></td></tr><tr><td> Anti-IgG CFTR </td><td> Fait sur mesure </td><td> R1104 </td><td> mAb reconnaissant CFTR épitope à aa 722-734 </td></tr><tr><td> Anti-IgG MRP2 </td><td> Chemicon International </td><td> MAB4148 </td><td> Maintenant une partie de Millipore </td></tr></tbody></table> Tableau 2. Réactifs et équipements spécifiques.

l&#39;analyse in vitro de pdz-dépendants complexes macromoléculaires cftr de signalisation

In Vitro Analysis of PDZ-dependent CFTR Macromolecular Signaling Complexes

Kystique régulateur de la conductance transmembranaire de la fibrose (CFTR), un canal chlorure situés principalement au niveau des membranes apicales des cellules épithéliales, joue un rôle crucial dans l&#39;homéostasie du fluide transépithélial 1-3. CFTR a été impliqué dans deux maladies majeures: la fibrose kystique (CF) 4 et la diarrhée sécrétoire 5. Dans FC, la synthèse ou l&#39;activité fonctionnelle de la protéine CFTR Cl-canal est réduite. Ce trouble affecte environ 1 sur 2500 personnes de race blanche aux États-Unis 6. Activité de la CFTR excessive a également été impliquée dans des cas de toxine induit une diarrhée sécrétoire (par exemple, par la toxine du choléra et de la chaleur entérotoxine stable de E. coli) qui stimule la production de GMPc AMPc ou dans l&#39;intestin 7. Les preuves qui s&#39;accumulent suggèrent l&#39;existence d&#39;interactions physiques et fonctionnelles entre CFTR et un nombre croissant d&#39;autres protéines, y compris les transporteurs, canaux ioniques, récepteurs, les kinases, les phosphatases, de signauxmolécules ING et éléments du cytosquelette, et ces interactions entre la protéine CFTR et de ses protéines de liaison ont été montré à la critique impliquée dans la régulation de CFTR-médiée transport des ions transépithélial in vitro et également in vivo 8-19. Dans ce protocole, nous nous concentrons uniquement sur les méthodes que l&#39;aide dans l&#39;étude des interactions entre la queue CFTR carboxyle terminal, qui possède un motif liaison aux protéines [dénommé PSD95/Dlg1/ZO-1 (PDZ) motif], et une un groupe de protéines échafaudage, qui contiennent un module de liaison spécifique dénommé domaines PDZ. Jusqu&#39;à présent, plusieurs différentes protéines d&#39;échafaudage PDZ ont été signalés à se lier à la queue carboxyle terminal de la protéine CFTR avec des affinités différentes, telles que NHERF1, les NHERF2, les PDZK1, les PDZK2, CAL (CFTR associée à un ligand), Shank2, et le GRASP 20-27. Le motif PDZ dans CFTR qui est reconnu par PDZ protéines d&#39;échafaudage est les quatre derniers acides aminés à l&#39;extrémité C-terminale (c.-à-1477-DTRL-1480 chez l&#39;homme CFTR) 20. Il est intéressant,CFTR peut se lier plus d&#39;un domaine PDZ des deux NHERFs et PDZK1, quoique avec plus ou moins d&#39;affinités 22. Cette polyvalence à l&#39;égard de la protéine CFTR contraignant a été démontré que de l&#39;importance fonctionnelle, ce qui suggère que PDZ protéines d&#39;échafaudage peuvent faciliter la formation de complexes de signalisation macromoléculaire CFTR pour la signalisation spécifiques / sélective et efficace dans les cellules 16-18. Multiples dosages biochimiques ont été développées pour étudier la protéine CFTR-impliquant les interactions entre protéines, telles que la co-immunoprécipitation, pull-down assay, par paire test de liaison, colorimétrique paires test de liaison, et le dosage assemblage macromoléculaire complexe 16-19,28,29 . Nous nous concentrons ici sur les procédures détaillées d&#39;assemblage d&#39;une PDZ motif-dépendante CFTR contenant macromoléculaire complexe in vitro, qui est largement utilisé par notre laboratoire pour étudier protéine-protéine ou un domaine à domaine interactions impliquant la protéine CFTR 16-19,28,29.

Kystique régulateur de la conductance transmembranaire de la fibrose (CFTR), un canal chlorure épithéliale, a été signalé à interagir avec des protéines et de réglementer divers processus cellulaires importants, parmi lesquels les CFTR PDZ motif-médiées par les interactions ont été bien documentés. Ce protocole décrit les méthodes que nous avons développés pour assembler un macromoléculaire CFTR PDZ-dépendante complexe de signalisation<em&gt; In vitro</em&gt;.

L&#39;analyse in vitro de PDZ-dépendants complexes macromoléculaires CFTR de signalisation

Le régulateur de la conductance transmembranaire de la fibrose kystique (CFTR), un canal chlorure situé principalement au niveau des membranes apicales des cellules épithéliales, joue un...

L'objectif général de cette procédure est de reconstituer in vitro un complexe macromoléculaire de signalisation dépendant d'un domaine PDZ de la régulation de la conductance transmembranaire de la fibrose kystique, ou CFTR. Pour ce faire, des protéines de fusion recombinantes marquées sont exprimées dans des bactéries et purifiées. Ensuite, des lysats cellulaires sont obtenus à partir de cultures exprimant CFTR ou des protéines interagissant avec CFTR.Ensuite, le CFTR et les protéines de liaison sont combinés in vitro afin d'assembler le complexe macromoléculaire de signalisation contenant le CFTR. Une immunotransfert est ensuite réalisée, ce qui démontre la formation de complexes macromoléculaires de CFTR, puis évaluée par immunotransfert. Le principal avantage de cette technique par rapport aux méthodes existantes est que nous pouvons détecter directement et visualiser la formation d'un complexe macromoléculaire individuel riche en protéines contenant le CFTR.Ainsi, cette méthode peut fournir des informations sur la formation du complexe macromoléculaire contenant le CT R. Elle peut également être appliquée à l'assemblage de complexes non protéiques n'impliquant pas le CFTR, tel

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Isolement du labiles complexes multi-protéiques par des In vivo Contrôlée Cellulaire réticulation et chromatographie d&#39;affinité immuno-magnétiques

Pour tester l'interaction d'une protéine avec ses cibles lipidiques nous avons utilisé MACS et l'annexine V conjuguée à des billes magnétiques et les vésicules lipidiques synthétisées à partir des lipides cible et l'annexine V-contraignante phosphatidylsérine. Protéines liées à l'lipidiques cibles sont co-purifiés et analysés après élution à partir des perles.

Chromatographie d&#39;affinité lipidique des vésicules médiée utilisant magnétique tri cellulaire activé (LIMACS): une nouvelle méthode pour analyser les interactions protéines-lipides

Une procédure efficace pour évaluer la propension d'oligomérisation des domaines transmembranaires un seul passage (TMDS) est décrite. Des protéines chimères comprenant le TMD fusionnée à ToxR sont exprimés dans une souche E. coli journaliste. TMD induite oligomérisation provoque la dimérisation du ToxR, activation de la transcription et la production de la protéine rapporteur,-galactosidase.

Propension oligomérisation domaine transmembranaire déterminée par dosage ToxR

L'analyse par cytométrie de complémentation de fluorescence bimoléculaire fournit une méthode quantitative à haut débit pour étudier l'interaction protéine-protéine. Cette méthode peut être appliquée à des sites de liaison aux protéines de cartographie et de criblage de facteurs qui régulent l'interaction protéine-protéine.

L&#39;analyse par cytométrie de flux par fluorescence bimoléculaire complémentation: une méthode quantitative à haut débit pour étudier l&#39;interaction protéine-protéine

Expression hétérologue et purification du régulateur de la conductance transmembranaire de la fibrose kystique (CFTR) sont des défis importants et les facteurs limitants dans le développement de thérapies pour la fibrose kystique. Ce protocole décrit deux méthodes pour l'isolement de quelques milligrammes de CFTR appropriés pour des études fonctionnelles et structurelles.

Purification de la fibrose kystique régulateur de la conductance transmembranaire protéine exprimée dans<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em

Décrit ici est un procédé rapide et efficace pour la reconstitution fonctionnelle de type sauvage purifiée et une protéine de CFTR mutante qui conserve l'activité de ce canal de chlorure, qui est défectueux dans la fibrose kystique. Efflux d'iodure de protéoliposomes reconstituées médiées par CFTR permet des études de l'activité du canal et les effets de petites molécules.

Reconstitution fonctionnelle et Activité du Chan mesures de type sauvage purifiée et Mutant protéine CFTR

Nous présentons ici un protocole visant à contrôler le montage et le démontage de la toxine du charbon à l’aide de biolayer l’interférométrie (BLI). Suite de montage/démontage sur la surface du biocapteur, les complexes de protéine importante sont dispensés de la surface pour la visualisation et l’identification des composantes des complexes à l’aide de la microscopie électronique et microanalyse, respectivement.

Analyse des Complexes protéiques dynamique assemblés sur et libéré de Biolayer interférométrie biocapteur à l’aide de la spectrométrie de masse et de microscopie électronique

Nous fournissons un protocole pour in vitro tests d’auto-organisation de l’esprit et le mien sur une double couche lipidique pris en charge dans une chambre ouverte. En outre, nous décrivons comment placer le dosage microcompartments PDMS revêtu de lipides à reproduire in vivo des conditions de confinement de la réaction.

In Vitro Reconstitution d’auto-organisationnelle profils protéiques sur bicouches lipidiques pris en charge

Ce protocole décrit les techniques utilisées pour déterminer les structures de canal d’ion par cryo microscopie électronique, y compris un système baculovirus utilisé pour exprimer efficacement gènes dans des cellules de mammifères avec le minimum d’effort et de toxicité, d’extraction de protéine, de purification, contrôle qualité, préparation des échantillons grille et dépistage, ainsi que collecte de données et traitement.

Expression et Purification de l’homme sensible lipides canal de Cation TRPC3 pour la détermination de structure par particule Cryo microscopie électronique

Nous décrivons ici un protocole pour une méthode de chasse générale qui permet l’analyse cinétique de pliage, le transport et la dégradation des protéines qui doivent être suivies dans des cellules vivantes.

Analyse de repliement des protéines, des transports et dégradation dans les cellules vivantes par radioactifs Pulse Chase

Ce protocole présente une méthode de mesure de la liaison des nucléotides adénine aux récepteurs en temps réel dans un environnement cellulaire. La liaison est mesurée par le transfert d’énergie de résonance de Förster (FRET) entre les dérivés nucléotidiques du trinitrophényle et la protéine marquée avec un acide aminé fluorescent non canonique.

Mesure de la liaison des nucléotides aux protéines membranaires fonctionnelles intactes en temps réel

Apprenez à assembler des complexes macromoléculaires de signalisation CFTR dépendants de PDZ in vitro. Cette méthode utilise des protéines de fusion recombinantes purifiées et du western blot pour visualiser directement la formation des complexes.

L'analyse in vitro de PDZ-dépendants complexes macromoléculaires CFTR de signalisation

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