Name: Granulocytes-dépendante boursouflures la peau induite par autoanticorps (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-12T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 23 s
Description: Découvrez l'induction de cloques cutanées chez la souris par transfert passif d'anticorps spécifiques du collagène VII. Ce modèle reproduit l'épidermolyse bulleuse acquise humaine pour étudier la pathogenèse des maladies auto-immunes cutanées.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Les auteurs tiennent à remercier le soutien par des subventions du SI-1281/4-1 Deutsche Forschungsgemeinschaft et ESBIO de la Faculté de médecine de l&#39;Université de Fribourg (pour CS).

1. Préparation de l&#39;anticorps pathogène Remarque: La purification et la concentration des anticorps doit être effectuée le même jour, que les anticorps ne doivent pas être stockés dans la glycine 0,1 M pH 2,5 à 3 (tampon d&#39;élution) pendant la nuit (ON). La purification par affinité des IgG: utiliser 25 ml de sérum de lapin immunisé: <ol><li> Décongeler le sérum de lapin ON à 4 ° C, le mélanger 1:1 avec 1xPBS (tampon de migration) et centrifuger à 1260 xg pendant 10 min à 20 ° C. Éventuellement, une étape de filtrage avec du papier filtre pourraient être inclus après centrifugation dans le cas où le sérum est gras. </li><li> Pendant ce temps, lavez la protéine G matrice remplie la colonne avec 10 volumes de lit (volume de lit = volume de la matrice) de 1XPBS (tampon de migration). </li><li> Appliquez le sérum dilué et filtré à la colonne et incuber pendant 1 h sur un agitateur oscillant à la température ambiante (RT). </li><li> Recueillir le flux continu (FT) dans un tube de 50 ml Flacon. Ne pas le jeter jusqu&#39;à ce que la concentrationet le titre des IgG purifiée est connue. </li><li> Laver la matrice avec 5 volumes de lit de 1XPBS et en même temps préparer 50 ml tubes Falcon de collecte de la fraction éluée des IgG. Pipette 1 ml de tampon de neutralisation du pH: Tris 1 M pH 10 dans chaque tube (autrement la proportion de 1:20 tampon TRIS par rapport à la quantité d&#39;éluat à collecter). </li><li> Appliquer 100-150 ml de tampon d&#39;élution: 0,1 M de glycine à pH 2,5-3 et reçois la colonne 50 ml fraction (s). Retournez le tube de 2-3x, mesurer le pH et ajouter tampon de neutralisation jusqu&#39;à ce que vous avez atteint le pH 7,2-7,4. </li><li> Recueillir quelques gouttes d&#39;éluat IgG et en utilisant le tampon d&#39;élution comme étalon de mesurer la DO à 280 nm. Si la DO est la collecte &lt;arrêt 0,1. </li><li> Régénérer la matrice protéine G et le stocker en suivant les instructions du fabricant. </li></ol> Concentration par ultrafiltration Amicon avec des tubes: <ol><li> Laver l&#39;Ultra Amicon (15 ml / 30 kDa) des tubes d&#39;ultrafiltration par centrifugation avec 1XPBS 15-20 minà 3220 xg à 4 ° C. Jeter le FT de la Amicon. </li><li> Remplissez les Amicons avec 15 ml d&#39;IgG fraction éluée et centrifuger pendant 25-30 min à 3220 xg et à 4 ° C, le temps de centrifugation dépend toujours de la teneur en protéines de l&#39;éluat. </li><li> Jeter FT et répétez jusqu&#39;à ce ultrafiltration vous n&#39;avez pas de fraction éluée à gauche. </li><li> Laver le concentré d&#39;IgG largement, à deux reprises, avec 1XPBS 25-30 min par centrifugation. </li><li> Recueillir le &quot;collant&quot;, solution d&#39;anticorps jaunâtre du filtre Amicon dans un volume final de 1500-2000 ul de 1XPBS. </li><li> Mesure de la concentration préparation d&#39;IgG aide d&#39;un spectrophotomètre ou NanoDrop: Conc. (Mg / ml) = A (280 nm) x facteur de dilution / 1,4 </li><li> Nettoyez et rangez les Amicons en suivant les instructions du fabricant. </li></ol> 2. L&#39;injection de collagène VII IgG spécifiques dans Souris Avant de commencer la procédure expérimentale réelle, assurez-vous que le pro expérimentaleprotocole est rédigé et tous les matériaux sont préparés pour l&#39;expérience. <ol><li> Préparer les feuilles de données pour la notation des maladies, ELISA, immunofluorescence (IF) l&#39;analyse et la myéloperoxydase (MPO) test 4. </li><li> Etiqueter les tubes pour le sang et les organes, cryomolds ainsi que l&#39;histologie traitement et l&#39;incorporation de cassettes. </li><li> Les solutions d&#39;anticorps doivent être préparés frais ou décongelé des stocks et caractérisé à l&#39;égard de leur réactivité (titre par microscopie IF et / ou ELISA). La solution filtrée stérile d&#39;anticorps doit être dilué dans du PBS de façon que la dose requise pour l&#39;injection varie entre 250-1000 pl. Assurez-vous que vous avez assez d&#39;IgG d&#39;effectuer toute l&#39;expérience. </li><li> Préparer une nouvelle anticoagulant: héparine de 20 U / ml et 8,7 mg / ml de kétamine / xylazine 1,3 mélange mg / ml pour l&#39;anesthésie. Lorsque le sacrifice des souris ont marqué les tubes avec du formaldéhyde 3,7% préparée. </li><li> Stériliser les instruments chirurgicaux (scalpel, ciseaux, pointe fine et Curvforcipes ndlr) et de préparer les seringues (seringues à insuline, 1 et 2 seringues ml), aiguilles, appareil photo numérique et une carte mémoire supplémentaire. </li></ol> Remarque: Effectuez toutes les procédures de kétamine / xylazine ou à l&#39;isoflurane souris narcotized L&#39;isoflurane est l&#39;option préférée anesthésie pour les contrôles quotidiens de la peau, comme des souris de récupérer rapidement.. Toutefois, lorsque vous prenez des photos, 87 mg / kg de kétamine et 13 mg / kg de xylazine est habituellement injecté par voie sous cutanée. Pour l&#39;euthanasie de la dose de kétamine / xylazine est augmentée à 130 mg / kg de kétamine et 20 mg / kg de xylazine. <ol><li> Vérifiez les animaux déjà marqués pour leur état de santé général, la peau et l&#39;apparence de la fourrure, les peser et mesurer leur épaisseur de l&#39;oreille (toujours s&#39;en tenir à la même oreille). </li><li> S&#39;inscrire valeurs observées et des changements dans la fiche d&#39;évaluation clinique. </li><li> Recueillir 20-30 ul (2-3 gouttes) le sang de la veine de la queue dans une seringue contenant le même volume d&#39;anticoagulant. </li><li> Désinfecter la fourrure etpeau à l&#39;aide d&#39;éthanol à 80%. </li><li> Injecter la solution d&#39;anticorps voie sous-cutanée dans le dos à l&#39;aide d&#39;une seringue à insuline. (Pour certains sites (par exemple, les oreilles) que de faibles volumes (10-50 pi) sont réalisables à injecter.) </li></ol> Les injections doivent être répétées tous les deux jours, 4 fois. Balb / c et souris C57BL6 d&#39;un poids d&#39;environ 20 g de commencer à développer la maladie 3-4 jours après la première administration de 400-500 jusqu&#39;à 750 pg / g de poids corporel / injection auto-anticorps. Lors de la finition de l&#39;expérience: <ol><li> Mettez la souris sous narcose profonde en injectant 130 mg / kg et 20 mg / kg de kétamine / xylazine voie sous-cutanée, les être exsangue de la veine cave postérieure et arracher le coeur. </li><li> Recueillir des échantillons de tissus / organes tels que la peau: queue, les oreilles, le sang et l&#39;œsophage et les mettre dans des tubes préalablement marquées et le formaldéhyde, ou 3,7% de PBS remplie. </li></ol> En revenant à l&#39;laboratoire: <ol><li> Centrifuger le sang à 1200 xg, 10 min à température ambiante pour séparer le plasma, transférer le plasma dans des tubes correctement étiquetés et les stocker en conséquence. </li><li> Intégrer la biopsie cutanée en milieu Cut température optimale en utilisant cryomolds, étiqueter correctement, et de les stocker à -80 ° C. </li><li> Placer les échantillons de tissus destinés à l&#39;histologie dans les moules d&#39;enrobage étiquetés et les conserver dans du formol à 3,7% jusqu&#39;à inclusion en paraffine. </li></ol> 3. Évaluation clinique de la gravité de la maladie Les souris doivent être examinées quotidiennement pour les lésions de la peau et des muqueuses, et les résultats doivent être enregistrés en utilisant les formulaires appropriés. Les critères d&#39;euthanasie précoce les lésions cutanées qui affectent plus de 20% de la surface du corps et une perte de poids de 5-10% du poids total du corps en trois jours consécutifs, comptant pour un score de maladie 5 (Tableau 1). <ol><li> Placez la souris sur le ventre. Commencez avec la région de la tête, à savoir le droitoreille et vérifier les ampoules, les érosions, la croûte sur la face interne ainsi que sur le côté extérieur. Continuer de la même façon avec l&#39;oreille gauche. </li><li> Yeux droit et gauche sont contrôlés pour les signes d&#39;érythème, alopécie, des érosions et / ou croûte. </li><li> Le front et la zone de museau sont brossés prochaine, pour continuer avec la partie ventrale du museau, les lèvres et la muqueuse de la bouche. </li><li> Examiner la patte avant droite à partir de la patte, se déplaçant vers le haut; passer à la patte avant gauche. Même procédure avec les jambes droite et gauche de derrière. </li><li> Brosse à travers la fourrure sur le cou et le dos domaine avec une pince courbe à pointe fine. </li><li> Retournez la souris sur le dos et vérifier la partie ventrale ainsi que les côtés ventrales des membres de la même manière que précédemment. </li><li> Vérifiez la queue. </li><li> Prenez des photos de parties du corps sur lesquelles les souris développent une maladie. Une attention particulière doit être accordée à la qualité et la quantité des images. </li><li> Calculer les scores cliniques de la maladie. </li></ol> 4. Analyse des échantillons de peau et Plasma <ol><li> Préparer, stocker et / ou de traiter tous les tissus prélevés selon le plan. </li><li> Couper les coupes de tissus congelés pour IF détection des anticorps de lapin et de souris composants du système du complément. </li><li> Analyser le contenu en protéines et enzymes différentes (test FTU) de gelée de tissus et / ou des extraits d&#39;organes. </li><li> Section du tissu inclus en paraffine et colorer avec H &amp; E pour visualiser l&#39;étendue des lésions tissulaires. </li><li> Analyser le plasma par ELISA, immuno-empreinte. </li></ol>

<ol><li>Sitaru, C., Mihai, S., Otto, C., Chiriac, M. T., Hausser, I., Dotterweich, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+dermal-epidermal+separation+in+mice+by+passive+transfer+of+antibodies+specific+to+type+VII+collagen%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Induction of dermal-epidermal separation in mice by passive transfer of antibodies specific to type VII collagen.</a> J. Clin. Invest. 115, 870-878 (2005).</li>
<li>Kopecki, Z., Arkell, R. M., Strudwick, X. L., Hirose, M., Ludwig, R. J., Kern, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Overexpression+of+the+Flii+gene+increases+dermal-epidermal+blistering+in+an+autoimmune+ColVII+mouse+model+of+epidermolysis+bullosa+acquisita%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Overexpression of the Flii gene increases dermal-epidermal blistering in an autoimmune ColVII mouse model of epidermolysis bullosa acquisita.</a> J. Pathol. 225, 401-413 (2011).</li>
<li>Kulkarni, S., Sitaru, C., Jakus, Z., Anderson, K. E., Damoulakis, G., Davidson, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PI3K%CE%B2+plays+a+critical+role+in+neutrophil+activation+by+immune+complexes%5BTitle%5D)+AND+%22Sci.+Signal%22%5BJournal%5D)">PI3Kβ plays a critical role in neutrophil activation by immune complexes.</a> Sci. Signal. 4, 23-23 (2011).</li>
<li>Chiriac, M. T., Roesler, J., Sindrilaru, A., Scharffetter-Kochanek, K., Zillikens, D., Sitaru, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NADPH+oxidase+is+required+for+neutrophil-dependent+autoantibody-induced+tissue+damage%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pathol%22%5BJournal%5D)">NADPH oxidase is required for neutrophil-dependent autoantibody-induced tissue damage.</a> J. Pathol. 212, 56-65 (2007).</li>
<li>Mihai, S., Chiriac, M. T., Takahashi, K., Thurman, J. M., Holers, V. M., Zillikens, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+alternative+pathway+of+complement+activation+is+critical+for+blister+induction+in+experimental+epidermolysis+bullosa+acquisita%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">The alternative pathway of complement activation is critical for blister induction in experimental epidermolysis bullosa acquisita.</a> J. Immunol. 178, 6514-6521 (2007).</li>
<li>Sesarman, A., Sitaru, A. G., Olaru, F., Zillikens, D., Sitaru, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neonatal+Fc+receptor+deficiency+protects+from+tissue+injury+in+experimental+epidermolysis+bullosa+acquisita%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mol.+Med%22%5BJournal%5D)">Neonatal Fc receptor deficiency protects from tissue injury in experimental epidermolysis bullosa acquisita.</a> J. Mol. Med. 86, 951-959 (2008).</li>
<li>Huang, X. R., Holdsworth, S. R., Tipping, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Th2+responses+induce+humorally+mediated+injury+in+experimental+anti-glomerular+basement+membrane+glomerulonephritis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Soc.+Nephrol%22%5BJournal%5D)">Th2 responses induce humorally mediated injury in experimental anti-glomerular basement membrane glomerulonephritis.</a> J. Am. Soc. Nephrol. 8, 1101-1108 (1997).</li>
<li>Matsumoto, I., Staub, A., Benoist, C., Mathis, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Arthritis+provoked+by+linked+T+and+B+cell+recognition+of+a+glycolytic+enzyme%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Arthritis provoked by linked T and B cell recognition of a glycolytic enzyme.</a> Science. 286, 1732-1735 (1999).</li>
<li>Oswald, E., Sesarman, A., Franzke, C., Wölfle, U., Bruckner-Tuderman, L., Jakob, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+flavonoid+luteolin+inhibits+Fc%CE%B3-dependent+respiratory+burst+in+granulocytes%2C+but+not+skin+blistering+in+a+new+model+of+pemphigoid+in+adult+mice%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">The flavonoid luteolin inhibits Fcγ-dependent respiratory burst in granulocytes, but not skin blistering in a new model of pemphigoid in adult mice.</a> PLoS One. 7, e31066(2012).</li>
<li>Liu, Z., Diaz, L. A., Troy, J. L., Taylor, A. F., Emery, D. J., Fairley, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+passive+transfer+model+of+the+organ-specific+autoimmune+disease%2C+bullous+pemphigoid%2C+using+antibodies+generated+against+the+hemidesmosomal+antigen%2C+BP180%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">A passive transfer model of the organ-specific autoimmune disease, bullous pemphigoid, using antibodies generated against the hemidesmosomal antigen, BP180.</a> J. Clin. Invest. 92, 2480-2488 (1993).</li>
<li>Anhalt, G. J., Labib, R. S., Voorhees, J. J., Beals, T. F., Diaz, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pemphigus+in+neonatal+mice+by+passive+transfer+of+IgG+from+patients+with+the+disease%5BTitle%5D)+AND+%22N.+Engl.+J.+Med%22%5BJournal%5D)">Induction of pemphigus in neonatal mice by passive transfer of IgG from patients with the disease.</a> N. Engl. J. Med. 306, 1189-1196 (1982).</li>
<li>Toyka, K. V., Brachman, D. B., Pestronk, A., Kao, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myasthenia+gravis%3A+passive+transfer+from+man+to+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Myasthenia gravis: passive transfer from man to mouse.</a> Science. 190, 397-399 (1975).</li>
<li>Rose, N. R., Bona, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defining+criteria+for+autoimmune+diseases+%28Witebsky%27s+postulates+revisited%5BTitle%5D)+AND+%22Immunol.+Today%22%5BJournal%5D)">Defining criteria for autoimmune diseases (Witebsky's postulates revisited.</a> Immunol. Today. 14, 426-430 (1993).</li>
<li>Sitaru, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Experimental+models+of+epidermolysis+bullosa+acquisita%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Experimental models of epidermolysis bullosa acquisita.</a> Exp. Dermatol. 16, 520-531 (2007).</li>
<li>Sitaru, C., Kromminga, A., Hashimoto, T., Bröcker, E. B., Zillikens, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autoantibodies+to+type+VII+collagen+mediate+Fcgamma-dependent+neutrophil+activation+and+induce+dermal-epidermal+separation+in+cryosections+of+human+skin%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Autoantibodies to type VII collagen mediate Fcgamma-dependent neutrophil activation and induce dermal-epidermal separation in cryosections of human skin.</a> Am. J. Pathol. 161, 301-311 (2002).</li>
<li>Sesarman, A., Oswald, E., Chiriac, M. T., Csorba, K., Vuta, V., Feldrihan, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Why+human+pemphigoid+autoantibodies+do+not+trigger+disease+by+the+passive+transfer+into+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Immunol.+Lett%22%5BJournal%5D)">Why human pemphigoid autoantibodies do not trigger disease by the passive transfer into mice.</a> Immunol. Lett. , (2012).</li>
<li>Ishii, N., Recke, A., Mihai, S., Hirose, M., Hashimoto, T., Zillikens, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autoantibody-induced+intestinal+inflammation+and+weight+loss+in+experimental+epidermolysis+bullosa+acquisita%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Autoantibody-induced intestinal inflammation and weight loss in experimental epidermolysis bullosa acquisita.</a> J. Pathol. 224, 234-244 (2011).</li>
</ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

Le transfert passif d&#39;anticorps chez des animaux de laboratoire est une approche importante pour démontrer leur pathogénicité 7, -12. Les modèles animaux obtenus grâce à cette méthode, en plus d&#39;être l&#39;une preuve indirecte de l&#39;auto-immunité 13, permettre à l&#39;enquête de la phase efférente du mécanisme pathogène. Le modèle de transfert passif d&#39;anticorps induite par des granulocytes-dépendante la peau des cloques sur l&#39;épidermolyse bulleuse acquise (EBA) a été utilisé pou...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nom du réactif </td><td> Entreprise </td><td> Numéro de catalogue </td><td> Commentaires </td></tr><tr><td> antigène recombinant </td><td></td><td></td><td> L&#39;encodage des plasmides pour les formes recombinantes de murin du collagène VII sont disponibles auprès de l&#39;auteur correspondant. </td></tr><tr><td> sérum de lapin immunisé </td><td> <a href="http://www.eurogentec.com/" target="_blank">www.eurogentec.com</a> </td><td></td><td> Nous avons eu lapins New Zealand White immunisées avec 200 pg d&#39;antigène, 3 fois à 2 semaines d&#39;intervalle. À cette fin, nous avons utilisé les services d&#39;Eurogentec SA, Belgique. </td></tr><tr><td> Protéine G agarose </td><td> Roche Applied Science </td><td> 11243233001 </td><td></td></tr><tr><td> Souris Balb / c </td><td> Charles River Laboratories </td><td></td><td></td&gt; </tr><tr><td> Composé OCT, Tissue-Tek </td><td> Sakura Finetek </td><td> 4583 </td><td> PTOM, la température de coupe optimale </td></tr><tr><td> Cryomold norme </td><td> Sakura Finetek </td><td> 4557 </td><td> 25 mm x 20 mm x 5 mm </td></tr><tr><td> Cryomold intermédiaire </td><td> Sakura Finetek </td><td> 4566 </td><td> 15 mm x 15 mm x 5 mm </td></tr><tr><td> Uni-Link-Einbettkassette </td><td> R. Langenbrinck </td><td> 09-0503 </td><td> Traitement de l&#39;histologie et de cassettes d&#39;encastrement </td></tr><tr><td> Spezial-Tatowierfarbe Schwarz </td><td> H. Hauptnerund &amp; Richard Herberholz GmbH &amp; Co. KG </td><td> 71492000 </td><td> tatouage pâte </td></tr><tr><td> Tatowierzange TZ1 </td><td> Ebeco E. Becker &amp; Co GmbH </td><td></td><td> tatouage dispositif </td></tr><tr><td> L&#39;héparine </td><td> Carl Roth GmbH &amp; Co. </td><td> 7692.1 </td><td></td></tr><tr><td> Formaldéhyde 37% </td><td> Carl Roth GmbH &amp; Co. </td><td> 7386 </td><td></td></tr><tr><td> Le chlorhydrate de kétamine </td><td> Sigma-Aldrich Chemie GmbH </td><td> K2753-1G </td><td></td></tr><tr><td> Chlorhydrate de xylazine </td><td> Sigma-Aldrich Chemie GmbH </td><td> X1251-1G </td><td></td></tr><tr><td> PBS stérile </td><td> Biochrom </td><td> L182-50 </td><td></td></tr><tr><td> appareil photo numérique </td><td> Nikon </td><td> Coolpix 5400 </td><td></td></tr><tr><td> Seringue entraînée unité de filtre de 0,45 um </td><td> Millipore </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Pied à coulisse </td><td> Mitutoyo 7309 </td><td> 1667338 </td><td> Farnell (distributeur) </td></tr><tr><td> feuille de pointage maladie </td><td></td><td></td><td> Par exemple enclosed </td></tr></tbody></table>

granulocytes-dépendante boursouflures la peau induite par autoanticorps

Granulocyte-dependent Autoantibody-induced Skin Blistering

Phénomènes auto-immunes surviennent chez des personnes en bonne santé, mais quand la tolérance au soi échoue, la réponse auto-immune peut entraîner une pathologie spécifique. Selon Witebsky postulats, l&#39;un des critères de diagnostic d&#39;une maladie auto-immune est que la reproduction de la maladie chez les animaux de laboratoire par le transfert passif d&#39;autoanticorps. Pour l&#39;épidermolyse bulleuse acquise (EBA), un prototype spécifique d&#39;organe maladie auto-immune de la peau et des muqueuses, plusieurs modèles expérimentaux ont été récemment mis en place. Dans le modèle animal décrit dans notre travail actuel, purifié des anticorps IgG contre un tronçon de 200 acides aminés (aa 757-967) de collagène VII sont injectés à plusieurs reprises dans des souris reproduisant le phénotype des cloques ainsi que les caractéristiques de l&#39;histo-et immunopathologiques caractéristiques pour la santé humaine EBA 1. Véritable maladie répandue est généralement considérée 5-6 jours après la première injection et l&#39;étendue de la maladie est en corrélation avec la dose administrée de la collagen VII IgG spécifiques. Les lésions tissulaires (formation de bulles) dans le groupe expérimental EBA est en fonction sur le recrutement et l&#39;activation des granulocytes par des tissus assortis autoanticorps 2, -4. Par conséquent, ce modèle permet la dissection de la voie de granulocytes-dépendante inflammatoire impliquée dans les lésions tissulaires auto-immunes, comme le modèle ne reproduit que la cellule T-indépendante phase de la réponse auto-immune efférente. De plus, sa valeur est soulignée par un certain nombre d&#39;études démontrant le potentiel blister induisant des anticorps in vivo et étudier le mécanisme de la formation de bulles dans l&#39;EBA 1,3, -6. Enfin, ce modèle va grandement faciliter le développement de nouvelles thérapies anti-inflammatoires dans les maladies provoquées par des auto-anticorps. Dans l&#39;ensemble, le modèle de transfert passif des animaux de l&#39;EBA est un modèle de la maladie accessible et instructif et aidera les chercheurs à analyser non seulement la pathogenèse EBA mais pour répondre fondamentale biologiquement et cliniquementdes questions d&#39;auto-immunité essentielles.

Le transfert passif d&#39;anticorps spécifiques d&#39;antigènes résultats dans une maladie épanouie chez la souris, ressemblant à des niveaux cliniques, histologiques et immunopathologiques l&#39;ABE humaine. Cloques, de croûtes, des érosions et alopécie se développer sur les oreilles, le museau, les pattes, les jambes, le dos et autour des yeux des souris. Les premiers signes cliniques de la maladie sera très probablement apparaître dans les oreilles et / ou de la zone tête. Le dépôt de spécifique IgG de lapin, la sour...

Dans le modèle animal décrit dans notre travail actuel, purifié des anticorps IgG contre un tronçon de 200 acides aminés (aa 757-967) de collagène VII sont injectés à plusieurs reprises dans des souris reproduisant le phénotype des cloques ainsi que les caractéristiques de l&#39;histo-et immunopathologiques caractéristiques pour la santé humaine l&#39;épidermolyse bulleuse acquise (EBA)<sup&gt; 1</sup&gt;.

Granulocytes-dépendante boursouflures la peau induite par autoanticorps

Des phénomènes auto-immuns surviennent chez des individus sains, mais lorsque la tolérance au soi fait défaut, la réponse auto-immune peut entraîner une pathologie spécifique. Selon ...

Je suis Cassian RO du Département de dermatologie à l'Université de Fryberg, Allemagne. La recherche de notre laboratoire porte sur la pathogenèse des maladies cutanées auto-immunes. L'une des maladies auto-immunes qui nous intéresse est l'Épidermolyse BULLEUSE ou EBAA, une maladie auto-immune spécifique à l'organe, avec un système d'antigène auto-anticorps bien défini, et des modèles ex vivo et animaux mutuellement complémentaires sont disponibles pour cette maladie.La formation de bulles dans l'EBA peut être reproduite par le transfert passif d'anticorps dirigés contre le collagène de type sept dans des souris. Ainsi, dans cet article vidéo, nous présenterons l'induction et l'analyse de la formation de bulles cutanées chez la souris par transfert passif d'anticorps spécifiques du collagène sept. Bonjour, je suis King OBA du groupe CAS du service de dermatologie de l'hôpital universitaire de Freberg.Dans cette vidéo, nous allons vous montrer comment le modèle expérimental murin d'EBA est induit par le transfert passif d'auto-anticorps pathogènes. Nous utilisons cette procédure lors de l'étude des mécanismes pathogènes possibles dans les affections auto-immunes de la peau ou lors de la recherche d'épitopes pathogènes. Lors de la mise en place du modèle de transfert passif pour l'EBA, quelques étapes supplémentaires doivent être réalisées avant l'injection d'auto-anticorps chez des souris palp de type sauvage.Comme première étape, des lapins blancs sont immunisés par voie sous-cutanée avec l'antigène recombinant purifié. Les IgG totales provenant du sérum de lapin sont isolées par chromatographie sur colonne d'affinité, puis injectées dans des souris de type sauvage. Les injections sont administrées par voie sous-cutanée tous les deux jours, quatre fois au total, et des prélèvements sanguins sont effectués à intervalles de deux jours.Les souris sont examinées quotidiennement pour évaluer leur état général ainsi que la présence de lésions cutanées. Pendant l'expérience, des scores cliniques reflétant l'activité de la maladie sont calculés pour chaque individu, et deux semaines après la première injection, les animaux sont sacrifiés, des échantillons de sérum ainsi que des biopsies cutanées sont prélevés et analysés ultérieurement. Après le temps d'incubation, placer une colonne dans un support vertical, ouvrir le bas, taper doucement et recueillir l'écoulement.Dans des tubes Falcon de 50 millilitres, conservez le flux jusqu'à ce que vous obteniez la confirmation par analyse d'immunofluorescence qu'il s'agit d'un concentré exempt d'anticorps spécifiques, dilué en IgG par ultrafiltration dans des tubes Amicon spéciaux à 3 220 × g pendant 30 minutes à quatre degrés. La concentration consiste à laisser le liquide s'écouler à travers un filtre, à jeter le filtrat, à remplir à nouveau le tube et à répéter l'opération jusqu'à ce qu'il ne reste plus d'éluant. Comme dernière étape, lavez avec du PBS 1×, récupérez l'IgG concentrée de couleur jaunâtre et visqueuse, mesurez sa concentration et stockez-la dans des tubes correctement étiquetés.Avant de commencer l'injection proprement dite des autoanticorps, évaluer leur spécificité et leur titre par immunofluorescence indirecte. Incuber des coupes cryostatiques de peau normale de souris avec des dilutions sériées de la préparation d'IGT concentrée et visualiser leur dépôt à l'aide d'un anticorps secondaire marqué, puis documenter les résultats par acquisition d'images avant de se rendre au centre d'animaux. S'assurer que le protocole expérimental sur animaux est rédigé et que tous les matériaux sont prêts.Fiches de données pour l'évaluation clinique de l'activité de la maladie, tubes étiquetés pour les échantillons de sang et de tissus. Solution d'anticorps diluée de sorte que le volume approprié puisse être injecté. Anticoagulant frais et instruments chirurgicaux stérilisés ainsi que des seringues anesthésiées.Un pied à coulisse et un appareil photo numérique devraient également figurer sur la liste de contrôle. Après avoir nettoyé la surface de travail et préparé l'installation d'isoflurane, hépariniser la seringue destinée au prélèvement sanguin et remplir une seringue à insuline avec la solution d'anticorps. Sortir la souris de sa cage, vérifier son numéro d'identification et la peser.Noter toutes les données mesurées et observées dans la fiche de données personnelles et d'évaluation clinique des souris. Lorsque la souris est déjà sous anesthésie, mesurer l'épaisseur de l'oreille, puis vérifier l'aspect de la peau et du pelage de l'animal. Porter une attention particulière à la région postérieure de la tête, au ventre et aux membres.Prélevez du sang de la veine de la queue à travers une petite incision effectuée sur son tiers supérieur, désinfectez le pelage et, en soulevant la peau, injectez soigneusement la solution d'IgG par voie sous-cutanée. Une fois revenu au laboratoire, centrifugez le sang pendant 10 minutes à 1 200 × g à température ambiante afin d'obtenir le sérum. Transférez l'échantillon dans des tubes correctement étiquetés et stockez-les conformément au plan.Examinez les souris quotidiennement pour détecter les signes de maladie dès l'apparition de l'érythème, de l'alopécie et de lésions cutanées. En plus de mesurer leur poids, évaluez l'activité de la maladie. Injectez par voie sous-cutanée un mélange de cila-kétamine afin de placer la souris sous anesthésie.Mesurez l'épaisseur de l'oreille, puis procédez à l'examen général du corps. Utilisez une pince courbe à pointe fine pour brosser le pelage dans le sens inverse de sa pousse afin d'exposer d'éventuelles zones lésées. Passez progressivement à l'ensemble du visage.L’œil du museau se dirige vers la partie externe et interne de l’oreille, puis vérifiez également l’autre côté de la tête. Poursuivez avec la muqueuse de la cavité buccale, la partie ventrale du museau et la région abdominale. La région dorso-latérale, dorsale et cervicale, ainsi que les membres antérieurs et les mains.Quantifiez l'ampleur des lésions observées, enregistrant les résultats dans le formulaire selon la surface cutanée atteinte, le pourcentage de certaines parties et régions du corps par rapport à la surface cutanée totale de la souris. Un score clinique de maladie est calculé en fonction de la superficie totale de la peau et des muqueuses affectées. Enfin, prenez des photographies des parties du corps pertinentes et des zones malades.À la fin de l'expérience, sacrifier les animaux sous anesthésie profonde et prélever le sang ainsi que des échantillons de tissus. Les oreilles, la queue et l'œsophage sont les prélèvements les plus fréquemment effectués dans ce cadre expérimental. Couper les biopsies de peau lésionnelle en bandes plus petites.Placez-les dans des cassettes d'inclusion et de traitement histologique, puis conservez-les dans du formaldéhyde 3,7 % jusqu'à l'inclusion dans la paraffine. Ensuite, traitez les échantillons pour la coloration hématoxyline-éosine en vue d'une analyse en immunofluorescence. Incluez les bandes de peau pérale dans un milieu à température optimale de coupe (OCT) et utilisez un cryostat pour découper des sections de six micromètres.Effectuez une analyse de fluorescence immunitaire directe afin de visualiser les anticorps spécifiques de lapin liés aux tissus et les composants du complément de souris ; en complément de cet essai, réalisez un ELISA en utilisant des plaques de microtitration revêtues d’un antigène recombinant et des dilutions sériées du sérum de souris afin de mesurer les taux d’autoanticorps circulants. Le transfert passif d’anticorps spécifiques contre le collagène VII provoque une maladie complète chez la souris, simulant la pathologie humaine aux niveaux clinique, histologique et immunopathologique. Les bulles d’EBA humaine, croûtes, érosions et alopécie apparaissent sur les oreilles, autour des yeux, sur le museau, les pattes, les membres et le dos des souris.L'activité de la maladie, qui présente une tendance croissante tout au long de l'expérience, est calculée en fonction de la surface cutanée et de la membrane muqueuse affectées. Des résultats représentatifs illustrant le dépôt d'IgG de lapin spécifiques et du complément C3 de souris détectés par immunofluorescence indirecte au niveau de l'union dermo-épidermique sont montrés ici. Ces résultats proviennent de coupes cryogéniques de peau périphérique.Aucune IgG ni complément C3 n’a été détecté dans les témoins. L’analyse histologique ultérieure de la peau lésée révèle des cloques sous-épidermiques et un infiltrat inflammatoire. Toutefois, la formation de cloques sous-épidermiques n’est pas observée dans le témoin lorsque l’expérience est réalisée.Comme indiqué ici, le modèle d'auto-anticorps utilisé pour les bulles sous-épidermiques permettra grandement d'élucider les voies inflammatoires dépendantes de ROY activées par les auto-anticorps, conduisant à des lésions tissulaires. Sa conception robuste et son protocole simple le rendent également adapté au développement et à l'évaluation de nouvelles thérapies anti-inflammatoires dans les maladies induites par les auto-anticorps.

granulocyte-dependent-autoantibody-induced-skin-blistering

Research

Recherche

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie et infection

La dermatite herpétiforme (DH) est une maladie inflammatoire chronique caractérisée par une réaction auto-immune entre les IgA et épidermique transglutaminase (GTE). DH se développe dans une très petite partie des patients sensibles au gluten et / ou cœliaque. Les résultats de cette étude indiquent que la DH peut aussi se développer chez un hôte singe rhésus avec des symptômes de la dermatite idiopathique.

La reconnaissance de la transglutaminase épidermique par les IgA et Tissue Transglutaminase 2 anticorps dans un cas rare de Rhésus Dermatite

Immunofluorescence indirecte (IFI) les essais ont traditionnellement été utilisés pour la détection des anticorps antinucléaires (ANA) dans le sérum humain. La présence de ces anticorps peut aider au diagnostic de maladies rhumatismales auto-immunes systémiques (ADRD). Ce protocole montre comment effectuer efficacement la technique IIF pour détecter avec précision ces auto-anticorps.

Anti-nucléaire de dépistage des anticorps Utilisation cellules HEP-2

Le transfert de lymphocytes bm12 chez un receveur C57BL/6 est un modèle établi de lupus érythémateux disséminé. Nous décrivons ici comment initier une maladie à l’aide de ce modèle et comment caractériser les cellules auxiliaires folliculaires T, les cellules B du centre germinatif et les plasmocytes par cytométrie en flux.

Le bm12 inductible modèle du lupus érythémateux disséminé (SLE) dans C57BL / 6

Ici, nous fournissons une démonstration du modèle rappel cutanée vésiculeuse d’aspiration. Le modèle permet un accès simple étudier les humains in vivo les réponses immunitaires adaptatives, par exemple dans le cadre du développement de vaccins.

Un protocole de boursouflure d’aspiration pour étudier les cellules T humaines rappel Responses In Vivo

Ce protocole décrit la génération des chimères de moelle épinière murine mixte avec spontanée centres germinaux auto-immune, dans laquelle autoréactifs lymphocytes portent un reporter de la protéine fluorescente verte (GFP-PA) photoactivatable. Cela offre la possibilité de lier la localisation cellulaire dans les tissus avec des analyses moléculaires et fonctionnelles en aval.

Interroger les centres germinatifs autoréactifs individuels par Photoactivation dans un modèle mixte chimérique de l’auto-immunité

Le test d’activation des basophiles est un test de diagnostic in vitro complémentaire pour l’évaluation des réactions allergiques médiées par les IgE basé sur la détection de l’activation des basophiles en présence d’un stimulus spécifique par la mesure des marqueurs d’activation par cytométrie en flux.

Test d’activation basophile pour le diagnostic des allergies

L’étude démontre le rôle de la peau dans la modulation des réponses immunitaires chez la souris par l’immunisation épicutanée (EC). L’immunisation par EC avec un antigène protéique peut supprimer les réponses immunitaires en cas d’hypersensibilité de contact ou inverser la suppression induite par la peau lorsqu’elle est associée à des profils moléculaires associés à des agents pathogènes. L’immunisation EC est prometteuse en tant qu’approche efficace et sans aiguille de l’immunothérapie.

Modèle murin d’immunomodulation induite par l’épi-peau

Les lésions cutanées sont des caractéristiques courantes et importantes dans de nombreuses maladies rhumatismales, et la biopsie avec analyse pathologique joue un rôle essentiel dans le diagnostic. Cet article fournit un aperçu détaillé de la procédure standardisée de biopsie cutanée et, en utilisant le lupus érythémateux discoïde comme exemple, souligne le rôle essentiel de la dermatopathologie dans le diagnostic des maladies rhumatismales.

Biopsie cutanée pour diagnostiquer le lupus érythémateux discoïde

Optimisation du modèle hamster expérimental pour la leishmaniose cutanée par injection intradermique...

La leishmaniose cutanée dans la peau dorsale de Hamsters: un modèle utile pour le dépistage des drogues antileishmanienne

Cet article décrit une méthode pour visualiser la formation d'une synapse enveloppe du VIH-1 induite par le verre virologique soutenu bicouches planaires par fluorescence à réflexion interne totale (TIRF) microscopie. La méthode peut également être combiné avec immunofluorescence pour détecter l'activation et la redistribution des molécules de signalisation qui se produisent pendant le VIH-1 induite par l'enveloppe formation de la synapse virologique.

Imagerie de VIH-1 Enveloppe induite Synapse virologique et de signalisation sur bicouches lipidiques synthétiques

Découvrez l'induction de cloques cutanées chez la souris par transfert passif d'anticorps spécifiques du collagène VII. Ce modèle reproduit l'épidermolyse bulleuse acquise humaine pour étudier la pathogenèse des maladies auto-immunes cutanées.

Granulocytes-dépendante boursouflures la peau induite par autoanticorps

Explorer plus de vidéos