Name: Une nouvelle méthode pour la Culture et polarisé stimulation des explants de muqueuse intestinale de lhomme (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-05-01T12:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 38 s
Description: Apprenez une méthode de culture d'explants de muqueuse intestinale humaine avec stimulation apicale polarisée. Cette technique préserve la polarité tissulaire et permet l'analyse simultanée de jusqu'à 20 conditions pendant 24 à 36 heures.

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Nous remercions Erika Mileti pour un excellent support technique et le Dr Antonio Di Sabatino pour fournir des chambres à oxygène. Financement: Ce travail a été soutenu par des subventions du programme-cadre de l&#39;UE 7 (IBDase, ERC: Dendroworld) et la Fondazione Cariplo à MR et le soutien d&#39;un réseau international Marie Curie de formation à la mobilité (Cross-Talk, accord de subvention n °: 21553-2) à KT.

1. Obtention et préparation du tissu <ol><li> Tissue (saine ou IBD muqueuse) est obtenue pendant la chirurgie. Une fois que l&#39;échantillon est excisé transfert au laboratoire dès que possible, en le gardant dans + + tampon HBSS sans Ca + + / Mg complété avec Pen / Strep à 4 ° C ou sur de la glace. </li></ol> * La taille de l&#39;échantillon dépend de la disponibilité du tissu: la partie du tissu obtenu est strictement ce qui n&#39;est pas nécessaire pour le diagnostic et peut varier considérablement entre les sujets sains et les MII. Les tissus sains est excisé de patients subissant une chirurgie pour le cancer du côlon. <ol start="2"><li> Laver le tissu doucement et nettoyer tout le matériel mésentérique. Séparer la couche muqueuse de la sous-muqueuse avec des ciseaux et des pinces stériles tout en gardant le tissu dans un tampon HBSS dans une boîte de Pétri (pas nécessairement immergée). Touchez la surface de la muqueuse avec la pince aussi peu que possible. </li><li> Couper la muqueuse en bandes au moins 1 cm de large et le plus longtemps possible. Utilisez deux scalpels stériles, un peu comme si vous coupiez votre nourriture. </li><li> Laver nettoyer la muqueuse doucement dans HBSS et l&#39;étendre sur une boîte de Pétri avec le côté apical vers le haut. </li></ol> 2. Montage de la soie <ol><li> Préparer un milieu frais (tisDMEM). Utilisez DMEM supplémenté avec de la glutamine (2 mM) et NaPyr (1 mM), et ajouter 15% de FBS-Na (sérum de veau foetal - Amérique du Nord), 1% ITS-X et 200 ng / ml d&#39;EGF au moment de l&#39;utilisation. </li><li> Remplissez une boîte de Pétri 10 cm avec le reste de la FBS-Na (utiliser environ 30 ml de sorte que les grilles métalliques seront complètement immergés) et submerger les grilles métalliques. Gardez la plaque ouvrir et soutenir les bouteilles en plastique sur son robinet. </li></ol> * Les grilles en métal sont en fer. La maille est de forme carrée avec un côté de 0,5 mm. <ol start="3"><li> Prenez 3 pi de colle chirurgicale avec un 10 ou 20 pipette ul. Appliquez-le soigneusement à l&#39;une des frontières d&#39;un cylindre en plastique tout en le tenant f auIRM avec les forceps. </li><li> Placer doucement le cylindre sur le côté apical de la muqueuse, au plus près de l&#39;un des bords de la bande que possible. </li><li> Pour donner le temps de la colle pour fixer fermement le cylindre sur le tissu, préparer la plaque de culture orgue centre-bien: Verser 850 ml ul-1 de milieu dans le centre de bien et de soutenir la grille métallique sur les bords du puits central de la plaque. </li><li> Coupez l&#39;excès de tissu à partir des frontières du cylindre à l&#39;aide de deux scalpels stériles comme avant. </li><li> Soulever légèrement le cylindre avec le tissu joint et placer le côté basolatéral de la grille métallique dans le centre de la plaque. </li></ol> 3. Stimulation <ol><li> Utilisez les stimuli de votre choix dans votre concentration préférée. </li><li> Appliquer un volume approprié au centre du cylindre en matière plastique, sans perturber le cylindre ou la surface d&#39;une muqueuse avec la pointe de pipette. Assurez-vous que votre volume choisi couvre uniformément la surface à l&#39;intérieur du cylindre. Envolumes dicated: Grand cylindre en plastique: 200 pi Moyen plastique cylindre: 100 pi Petit cylindre en plastique: 50 pi </li><li> Incuber jusqu&#39;à 3 heures dans un incubateur classique. </li></ol> * Si vous souhaitez incuber points de plus longues périodes, assurez-vous d&#39;utiliser un volume beaucoup plus petit de stimuli (10-20 pi) et de placer directement le tissu dans une atmosphère de 100% d&#39;O 2 dans la pression de 1 atm (voir 3.5) . <ol start="4"><li> Prenez le milieu avec les stimuli de la surface apicale du tissu et ne remplacent pas un milieu frais, parce que le tissu ne reçoit pas assez d&#39;O 2 si une épaisse couche de support sur ​​la face apicale empêche les échanges gazeux. Recouvrir la plaque. </li><li> Placer le tissu dans une atmosphère de 100% d&#39;O 2 à la pression de 1 atm. </li></ol> 4. La récolte <ol><li> Après 24 h de temps de culture totale (± 2,5 h) retirer délicatement le cylindre de etissu e avec l&#39;aide d&#39;un scalpel colle grattant doucement et de le stocker en fonction de l&#39;analyse souhaitée (fixe pour l&#39;immunohistochimie et / ou immunofluorescence, ou refroidissement rapide en N2 liquides pour l&#39;ARN purification et le profilage de l&#39;expression génique ou la purification des protéines et des dosages de Western blot ). </li><li> Récolter le milieu basolatéral de la sécrétion de cytokines profilage. Centrifuger à 8000 rpm pendant 7 min de débris granulés, transférer le surnageant dans un tube Eppendorf (alternativement aliquote) et stocker immédiatement à -20 ° C. </li></ol> * Si vous voulez garder surnageants de plus, les stocker à -80 ° C.

<ol><li>Schuller, S., Lucas, M., Kaper, J. B., Giron, J. A., Phillips, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+ex+vivo+response+of+human+intestinal+mucosa+to+enteropathogenic+Escherichia+coli+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Cell.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">The ex vivo response of human intestinal mucosa to enteropathogenic Escherichia coli infection.</a> Cell. Microbiol. 11, 521-530 (2009).</li>
<li>Tsilingiri, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Probiotic+and+postbiotic+activity+in+health+and+disease%3A+comparison+on+a+novel+polarised+ex-vivo+organ+culture+model%5BTitle%5D)+AND+%22Gut%22%5BJournal%5D)">Probiotic and postbiotic activity in health and disease: comparison on a novel polarised ex-vivo organ culture model.</a> Gut. , (2012).</li>
<li>Tsilingiri, K., Rescigno, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Should+probiotics+be+tested+on+ex+vivo+organ+culture+models%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Gut+Microbes%22%5BJournal%5D)">Should probiotics be tested on ex vivo organ culture models?</a> Gut Microbes. , Manuscript in preparation (2012).</li>
<li>Mileti, E., Matteoli, G., Iliev, I. D., Rescigno, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+the+immunomodulatory+properties+of+three+probiotic+strains+of+Lactobacilli+using+complex+culture+systems%3A+prediction+for+in+vivo+efficacy%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Comparison of the immunomodulatory properties of three probiotic strains of Lactobacilli using complex culture systems: prediction for in vivo efficacy.</a> PLoS One. 4, e7056(2009).</li>
<li>Cencic, A., Langerholc, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+cell+models+of+the+gut+and+their+applications+in+food+microbiology--a+review%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Food+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Functional cell models of the gut and their applications in food microbiology--a review.</a> Int. J. Food Microbiol. 141, Suppl 1. S4-S14 (2010).</li>
<li>te Velde, A. A., Verstege, M. A., Hommes, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Critical+appraisal+of+the+current+practice+in+murine+TNBS-induced+colitis%5BTitle%5D)+AND+%22Inflamm.+Bowel+Dis%22%5BJournal%5D)">Critical appraisal of the current practice in murine TNBS-induced colitis.</a> Inflamm. Bowel Dis. 12, 995-999 (2006).</li>
<li>Senior, P. V., Pritchett, C. J., Sunter, J. P., Appleton, D. R., Watson, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crypt+regeneration+in+adult+human+colonic+mucosa+during+prolonged+organ+culture%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Anat%22%5BJournal%5D)">Crypt regeneration in adult human colonic mucosa during prolonged organ culture.</a> J. Anat. 134, 459-469 (1982).</li>
<li>Browning, T. H., Trier, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organ+culture+of+mucosal+biopsies+of+human+small+intestine%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Organ culture of mucosal biopsies of human small intestine.</a> J. Clin. Invest. 48, 1423-1432 (1969).</li>
<li>Besselink, M. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Probiotic+prophylaxis+in+predicted+severe+acute+pancreatitis%3A+a+randomised%2C+double-blind%2C+placebo-controlled+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Probiotic prophylaxis in predicted severe acute pancreatitis: a randomised, double-blind, placebo-controlled trial.</a> Lancet. 371, 651-659 (2008).</li>
<li>Lakhdari, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+NF-kappaB+modulation+capabilities+within+human+intestinal+commensal+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Identification of NF-kappaB modulation capabilities within human intestinal commensal bacteria.</a> J. Biomed. Biotechnol. 2011, 282356(2011).</li>
</ol>

Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

La nécessité pour les modèles physiologiquement pertinents sur lesquels les traitements pour la muqueuse intestinale humaine peuvent être valablement testées a longtemps été soulignée. De nombreux chercheurs ont identifié les artefacts et les défauts potentiels dans les deux cellules 5 et 6 modèles murins utilisés jusqu&#39;ici à cette fin. En effet, même si les données précliniques prometteurs sont souvent obtenus, ceux-ci se traduisent rarement à l&#39;avantage clinique significatif. <p class...

<table><tbody><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;Réactifs&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>HBSS 10X</td><td>Eurocalne</td><td>ECM4006XL</td><td></td></tr><tr><td>Pénicilline/Streptomycine</td><td>Lonza</td><td>DE17602E</td><td></td></tr><tr><td>Gentamicine</td><td>Gibco</td><td>15750-037</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Lonza</td><td>BE12614</td><td></td></tr><tr><td>FBS-Na</td><td>Gibco</td><td>16000-044</td><td></td></tr><tr><td>ITS-X 100X</td><td>Gibco</td><td>51500-056</td><td></td></tr><tr><td>EGF</td><td>Tebu-bio</td><td>100-15</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamine</td><td>Lonza</td><td>BE17605E</td><td></td></tr><tr><td>Acides aminés non essentiels 100X</td><td>Gibco</td><td>11140-035</td><td></td></tr><tr><td>NaPyr</td><td>Gibco</td><td>11360-039</td><td></td></tr><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;Matériel&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>Cylindres de clonage 6x8 mm</td><td>BellCo</td><td>2090-00608</td><td></td></tr><tr><td>Cylindres de clonage 8x8 mm</td><td>BellCo</td><td>2090-0080</td><td></td></tr><tr><td>Cylindres de clonage 10x10 mm</td><td>BellCo</td><td>2090-01010</td><td></td></tr><tr><td>Grilles métalliques</td><td>Confectionnées maison</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plaque de culture organique à puits central</td><td>BD Falcon</td><td>353037</td><td></td></tr><tr><td>Colle chirurgicale (Vetbond)</td><td>3M</td><td>1469SB</td><td></td></tr><tr><td>Bocaux à oxygène</td><td>Confectionnés maison</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Réservoirs d'oxygène</td><td>Air Liquid Sanit&amp;#224;</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

une nouvelle méthode pour la culture et polarisé stimulation des explants de muqueuse intestinale de l&#39;homme

A Novel Method for the Culture and Polarized Stimulation of Human Intestinal Mucosa Explants

Peu de modèles existent actuellement pour simuler de façon réaliste micro-environnement de la complexité humaine intestin, où une variété d&#39;interactions ont lieu. Homéostasie correcte dépend directement de ces interactions, comme elles façonnent une réponse immunologique toute tolérance inducteur contre des antigènes alimentaires tandis que dans le même temps de montage des réponses immunitaires efficaces contre les microbes pathogènes accidentellement ingéré avec les aliments. Homéostasie intestinale est préservée aussi à travers diverses interactions complexes entre le microbiote (y compris les souches bactériennes bénéfiques liés à des aliments) et l&#39;hôte, qui régulent l&#39;attachement / dégradation de mucus, la production de peptides antimicrobiens par la barrière épithéliale, et «l&#39;éducation» des cellules épithéliales »qui contrôlent le phénotype tolérogénique ou immunogène de cellules lymphoïdes uniques, gut-résidents» des populations. Ces interactions ont été jusqu&#39;à présent très difficile à reproduire avec des essais in vitroen utilisant soit des lignées de cellules en culture ou des cellules mononucléaires du sang périphérique. En outre, des modèles de souris diffèrent sensiblement dans les composants de la muqueuse intestinale (organisation de la couche de mucus, de la communauté des bactéries commensales) par rapport à l&#39;intestin humain. Ainsi, des études sur une variété de traitements soient traduits dans les cliniques pour les conditions importantes liées au stress ou pathologiques tels que le syndrome du côlon irritable, les maladies inflammatoires de l&#39;intestin ou de cancer colorectal ont été difficiles à réaliser. Pour répondre à ces questions, nous avons développé un nouveau système qui nous permet de stimuler des explants de muqueuse intestinale de l&#39;homme qui conservent leur in situ conditionné par le microbiote hôte et la réponse immunitaire, d&#39;une manière polarisée. Stimulation apicale polarisée est d&#39;une grande importance pour l&#39;issue de la réponse immunitaire provoquée. Il a été démontré à plusieurs reprises que les mêmes stimuli peuvent produire des réponses complètement différentes quand ils contournent la face apicale de l&#39;épidémie intestinalethelium, en stimulant les cellules épithéliales basolatéral ou d&#39;entrer en contact direct avec les composants de la lamina propria, le passage du phénotype de tolérogénique à immunogène et provoquant une inflammation excessive et inutile dans la région. Nous avons atteint stimulation polarisée par collage d&#39;une bouteille de cave qui délimitait la zone de stimulation sur la face apicale de la muqueuse comme cela sera décrit dans le protocole. Nous avons utilisé ce modèle pour examiner, entre autres, les effets différentiels des trois souches de lactobacilles différentes. Nous montrons que ce système modèle est très puissant pour évaluer les propriétés immunomodulatrices des probiotiques dans des conditions saines et la maladie.

Nous avons réussi à maintenir la muqueuse intestinale humaine saine et IBD en culture pendant au moins 24 heures en préservant le bien-être du tissu. Conformément à ses précédentes observations 1, cela n&#39;était possible que si la majorité du temps de culture (au moins 85% du total) a eu lieu en O 2, que le tissu n&#39;a pas survécu pendant 24 heures dans des incubateurs classiques (Figure 2). Nous avons aussi montré que les différentes réponses des explants peuvent être observés...

Nous introduisons une nouvelle méthode pour le maintien de la muqueuse intestinale humaine dans la culture et le suivi de la réponse à différents types de stimuli sur au moins 24 heures. Avec notre procédé, la polarité de la conservation du tissu, ce qui permet une stimulation physiologique par voie apicale.

Une nouvelle méthode pour la Culture et polarisé stimulation des explants de muqueuse intestinale de l&#39;homme

Peu de modèles existent actuellement pour simuler de manière réaliste le micro-environnement complexe de l'intestin humain, où se produisent diverses interactions. Un...

L'objectif général de l'expérience suivante est de reproduire la situation in vivo de stimulation de la muqueuse intestinale humaine. Ceci est réalisé en collant un cylindre cave sur le côté apical du tissu afin d'empêcher le stimulus d'entrer en contact basolatéral. Dans un deuxième temps, le stimulus est appliqué, ce qui permettra d'analyser la réponse immunitaire induite.Ensuite, le stimulus est retiré du côté apical du tissu afin de le maintenir viable pendant 24 à 36 heures. Les résultats obtenus peuvent montrer des effets différentiels de diverses souches probiotiques selon les données d'immunohistochimie, la sécrétion de cytokines, l'analyse de profil, entre autres. Le principal avantage de cette technique par rapport aux méthodes existantes comme la chambre ASIC est qu'elle permet l'analyse jusqu'à 20 conditions simultanément.Il permet d'étendre la durée de culture jusqu'à 36 heures et fournit également suffisamment de matériel pour diverses analyses de détection, telles que l'analyse ADN-ARN, l'immunohistochimie, la sécrétion de cytokines, entre autres. Bien que ce dispositif puisse apporter des informations dans le domaine des probiotiques, il peut également être utilisé pour d'autres technologies et pour étudier l'effet d'autres immunomodulateurs comme les produits biologiques, les médicaments anti-inflammatoires, etc. Des tissus de muqueuse intestinale provenant de sujets sains ou de patients atteints de maladies inflammatoires de l'intestin doivent être obtenus pendant une intervention chirurgicale.Une fois l'échantillon excisé, le transférer rapidement au laboratoire en le maintenant au frais dans du HBSS contenant de la pénicilline-streptomycine. Commencer ensuite par laver le tissu dans le tampon et retirer tout matériau mésentérique. Ensuite, séparer la couche de la muqueuse de la sous-muqueuse à l’aide de ciseaux et de pinces stériles, tout en maintenant le tissu dans le tampon HBSS.Dans une boîte de Pétri, il n'est pas nécessaire de maintenir le tissu complètement immergé, mais touchez la surface muqueuse aussi peu que possible avec la pince. Ensuite, découpez la muqueuse en bandes d'au moins un centimètre de large et aussi longues que possible, en utilisant deux scalpels stériles de manière analogue à la découpe d'aliments. Une fois découpée, rincez délicatement et nettoyez la muqueuse dans du HBSS sans calcium ni magnésium.Enfin, étendre les bandes de muqueuse dans une boîte de Pétri avec les faces apicales orientées vers le haut. Commencer par préparer du DMEM TIS frais. Ensuite, remplir une boîte de Pétri de 10 centimètres avec environ 30 millilitres de F-B-S-N-A et immerger complètement une grille en fer dans la solution.Laissez la plaque ouverte et positionnez des cylindres en plastique sur la plaque. Recouvrez. Aspirez maintenant trois microlitres de colle chirurgicale dans une pipette, puis appliquez soigneusement la colle sur l'un des bords d'un cylindre en plastique tout en le maintenant fermement avec la pince. Ensuite, placez délicatement le cylindre sur la face apicale de la muqueuse, aussi près que possible du bord d'une des bandes, pendant que la colle sèche.Distribuez de 850 à 1000 microlitres de milieu dans le puits central de la plaque tissulaire, puis placez la grille de fer sur les bords du puits central. À l’aide de deux scalpels, découpez l’excès de tissu au pourtour du cylindre. Soulevez maintenant délicatement le cylindre avec le tissu attaché et placez la face basolatérale du tissu sur la grille de fer située au centre de la plaque.Ensuite, procédez à la stimulation du tissu. Appliquez les stimuli d'intérêt au centre du cylindre en plastique à la concentration souhaitée. N'agitez pas le cylindre ni la surface muqueuse avec l'embout de la pipette et recouvrez uniformément la surface à l'intérieur du cylindre.Incubez maintenant le tissu pendant trois heures au maximum. Une incubation de plus de trois heures est également possible en utilisant un volume plus faible de solution d'induction. Après l'incubation, retirez l'inducteur de la surface apicale du tissu, mais ne le remplacez pas par du milieu frais.Ajouter du milieu asphyxierait le tissu. Remplissez maintenant le bocal à oxygène avec une pression d'une atmosphère d'oxygène pur (100 %) pendant une durée de culture de 24 heures. Soyez toujours prudent lors de la manipulation de la bouteille d'oxygène et assurez-vous de la fermer correctement après usage.Après une culture de stimulation de 24 heures, utilisez un scalpel pour retirer délicatement le cylindre du tissu en grattant doucement la colle. Ensuite, pour les analyses d'IHC ou d'immunofluorescence, fixez le tissu. Pour les analyses d'expression génique ou de protéines, congélez rapidement le tissu dans l'azote liquide.Ensuite, récoltez le milieu latéral basal pour le profilage de la sécrétion de cytokines. Transférez ensuite le milieu dans un tube de centrifugeuse et faites précipiter les débris en suivant le protocole décrit. La muqueuse intestinale humaine saine et celle des patients atteints de maladie inflammatoire de l'intestin (MII) ont été cultivées pendant au moins 24 heures afin de préserver l'intégrité des tissus.Cela n’était possible que si au moins 85 % du temps de culture s’écoulait dans un environnement riche en oxygène. La muqueuse cultivée de façon conventionnelle ne présente pas de résultats aussi bons. Le tissu sain était ensuite stimulé par une salmonelle invasive pro-inflammatoire.Deux heures après l'inoculation, la destruction de la couche supérieure de l'épithélium était déjà visible par rapport aux témoins. Après 24 heures, la dégénérescence était devenue assez étendue. Une discussion plus approfondie des applications expérimentales accompagnée de résultats publiés figure dans le manuscrit rédigé après son développement.Cette technique a ouvert la voie aux chercheurs travaillant dans le domaine de la gastro-entérologie pour étudier l'interaction hôte-microbe dans le tractus gastro-intestinal. Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la manière de maintenir une muqueuse intestinale humaine en culture et de la stimuler de façon topique. N'oubliez pas que le travail avec des échantillons humains peut être extrêmement dangereux et que les précautions nécessaires doivent toujours être prises lors de l'exécution de cette procédure.

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Biology

Biologie

Source : In, J. G., et al. Monocouches de colonoïdes humaines pour étudier les interactions entre agents pathogènes, commensaux et épithélium intestinal de l’hôte. J. Vis. Exp. (2019).Cette vidéo illustre la procédure de culture de cellules épithéliales dérivées du côlon sur un système Transwell recouvert de collagène afin de générer une monocouche productrice de mucus qui modélise la barrière intestinale et permet des études d’interaction hôte-pathogène.

Génération d’une monocouche colonoïde humaine avec fonction barrière pour étudier les interactions hôte-pathogène

Dans cette vidéo, nous décrivons la méthodologie de mise en place d’un système de culture d’organes intestinaux ex vivo pour étudier les interactions entre des fragments de tissu intestinal de souris et des bactéries intestinales spécifiques. Le dispositif se compose de deux paires de ports d'entrée-sortie, le premier connectant la lumière du tissu intestinal et y fournissant la suspension bactérienne spécifique, et le second fournissant en permanence des fluides aux puits du dispositif pour...

Un système de culture d’organes intestinaux ex vivo pour étudier les interactions hôte-microbiote

Nous décrivons une méthode pour établir des entéroïdes humains à partir de cryptes intestinales grêles et des colonoïdes à partir de cryptes du côlon prélevés à partir de tissus chirurgicaux et de biopsies. Dans cet article méthodologique, nous présentons les modalités de culture qui sont essentielles à la croissance et au maintien réussis des entéroïdes et des colonoïdes humains.

Mise en place d&#39;épithéliales humaines Enteroids et Colonoids de tout le tissu et la biopsie

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le<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Culture et Pattern Recognition Receptor Stimulation de la souris Intestinal organites

Nous décrivons un protocole in vitro de co-culture gut microbiome et villosités intestinales pendant une période prolongée en utilisant un système microphysiological humain gut-on-a-chip.

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Différenciation induite des cellules m Cell-like dans les monocouches entéroïdes ileal dérivées de cellules souches humaines

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Méthodes de culture pour étudier les interactions spécifiques aux apicales à l’aide de modèles organoïdes intestinaux

L’étude présente une méthode d’investigation in vitro des infections bactériennes à l’aide d’organoïdes intestinaux dérivés des cellules souches tissulaires. Le protocole décrit comment cultiver et différencier les organoïdes en deux dimensions, les infecter avec des Escherichia coli invasives par adhérents, et évaluer les données clés, notamment la rupture de la barrière épithéliale, l’imagerie d’infection et la réponse de l’ARN épithélial.

Une culture organoïde bidimensionnelle sur un extrait d’invasine ou de membrane basale pour étudier les interactions hôte-bactérie

Apprenez une méthode de culture d'explants de muqueuse intestinale humaine avec stimulation apicale polarisée. Cette technique préserve la polarité tissulaire et permet l'analyse simultanée de jusqu'à 20 conditions pendant 24 à 36 heures.

Une nouvelle méthode pour la Culture et polarisé stimulation des explants de muqueuse intestinale de l'homme

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