Name: Procédure de décellularisation de coeur de porc par perfusion coronaire rétrograde (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-12-06T12:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 30 s
Description: Découvrez la décellularisation cardiaque par perfusion coronaire rétrograde sur cœur de porc intact. Cette méthode produit un scaffold de matrice extracellulaire site-spécifique pour l'ingénierie tissulaire cardiaque et applications cliniques.

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Les auteurs tiennent à remercier Brogan Invité, Michelle Weaver, et Kristen Lippert. Le financement de cette étude a été fourni par des subventions du NIH R03EB009237, ainsi que les subventions de formation NIH T32EB001026-06 de l&#39;Institut national d&#39;imagerie biomédicale et de la bioingénierie et T32HL076124-05.

1. Préparation des tissus et Experiment Setup <ol><li> Organe porcin récolte immédiatement après l&#39;euthanasie d&#39;une installation abattoir ou de la recherche et de rincer l&#39;excès de sang. Coupez le cœur de l&#39;excès de graisse et de tissus, en gardant les oreillettes et l&#39;aorte intacte. Coupez le gras de séparer l&#39;artère pulmonaire à l&#39;aorte. S&#39;il ya des coupures dans le tissu, jeter de façon appropriée. </li><li> Enveloppez chaque coeur individuellement dans du papier congélateur et stocker tous les tissus dans un congélateur à -80 ° C pendant au moins 24 h à garantir une congélation complète. </li><li> Lorsque vous êtes prêt à l&#39;emploi (généralement moins de 3 mois), le dégel un cœur intact de porc congelé dans de l&#39;eau de type 1 nuit immergé dans un bêcher de 4 L à 4 ° C. </li><li> Après le cœur est complètement dégelé, caresser le cœur sec, peser le cœur, et noter le poids. Le cœur d&#39;un cochon poids de marché devrait peser environ 375-450 g. </li><li> Connectez taille 18 tube Masterflex à l&#39;¼ &quot;fin d&#39;un réducteur de fer barbelé. Insérez le réducteur de fer barbelé ettube intérieur de l&#39;aorte. Placer les pinces de serrage 2 ou attaches sécurisées autour de l&#39;aorte, juste en dessous du tronc brachio-céphalique. Le réducteur et la tubulure doit rester au-dessus de la valve aortique, de sorte que les artères coronaires peut être perfusé (figure 1). </li><li> Utilisez une seringue de 30 ou 60 ml pour remplir le tube avec de l&#39;eau de type I. Insérer le tube dans la cartouche d&#39;une pompe à galet Masterflex en son milieu approximatif. Plonger l&#39;extrémité d&#39;entrée du tube dans le fond d&#39;un bêcher rempli 4 L à 2,5 L d&#39;eau et fixer le tube. </li><li> Placez le cœur dans le bécher rempli d&#39;eau, et amorcer la pompe pour éliminer les bulles d&#39;air. Si des bulles sont observées en provenance de l&#39;aorte où le tube est inséré, l&#39;aorte peut être nécessaire de repositionner ou fixé avec des liens supplémentaires. Un joint étanche est important de maintenir une pression adéquate pendant le processus de décellularisation (Figure 2). </li><li> Placer le bécher contenant 4 L 3 L de 0,2% NaN% Trypsin/0.05 EDTA/0.05%3 solution sur plaque d&#39;agitation et le réchauffer à 37 ° C dans la préparation du processus décellularisation. </li></ol> 2. Se rince le tissu <ol><li> Régler la pompe à un débit de 400 ml / min, en veillant à ce que le diamètre de la conduite correcte est sélectionnée. Rincer le cœur avec Eau de type I pour 15-25 min. Comme la pompe est démarrée, le cœur doit gonfler et écouler le sang des ventricules. Une solution fraîche doit être remplacé tous les 5-10 minutes, ou selon les besoins en fonction de la quantité de sang prélevée à partir du cœur. Si le sang n&#39;est pas épanché du cœur, ajustez le tuyau et pinces si nécessaire. </li><li> Arrêter la pompe et de transférer le cœur à un bêcher séparé rempli de solution saline tamponnée au phosphate 2X (PBS). Après que le tuyau est immergé dans la solution, la pompe démarre et augmenter le débit de 700 ml / min. Le cœur doit rester dans la solution pendant 15 min, en changeant la solution toutes les 5 min. Une variation de la pompe solution nécessite d&#39;être arrêté temporairement tandis que les tissus et le tube est déplacéDans le bécher de nouveau. </li><li> Transfert au cœur de type I eau pendant 10 min et augmenter le débit à 750 ml / min. </li></ol> 3. Perfusion décellularisation et Solution <ol><li> Transférer le coeur dans le bécher contenant 0,2% Trypsin/0.05% EDTA/0.05% de NaN3 à 37 ° C. Augmenter la vitesse de la pompe à 1200 ml / min et démarrer la pompe. Utiliser un barreau d&#39;agitation placé au fond du bécher pour faire circuler la solution dans le bécher. Le cœur doit rester dans le 0,2% Trypsin/0.05% EDTA/0.05% de NaN3 solution à 37 ° C pour un total de trois heures. Après 1 h, augmenter la vitesse de la pompe à 1500 ml / min. Après une heure supplémentaire, augmenter la vitesse de la pompe à 1.800 ml / min. Le tissu est soumis à une lente vitesse de perfusion accrue à l&#39;état du tissu et d&#39;éviter la rupture des vaisseaux. Le cœur se gonfle et près du double de la taille lors de cette étape du protocole. Le tissu perd sa couleur naturelle, progressant de l&#39;oreillette vers le sommet tout au long èmee protocole (Figure 3). </li><li> Après chaque perfusion de solution, une étape de rinçage est effectuée deux pour éliminer les débris cellulaires, résidus chimiques, et la lyse des cellules de l&#39;aide. Chaque rinçage comprend un rinçage à 10 min de type I d&#39;eau suivie d&#39;un rinçage avec 10 min une solution de PBS 2X à température ambiante. Chaque lavage consiste en l&#39;élimination de la solution du bécher originale, l&#39;ajout des solutions de rinçage et de circulation du liquide de perfusion dans le bécher contenant le coeur immergé. Après l&#39;0,2% Trypsin/0.05% EDTA/0.05% de NaN3 solution, l&#39;eau perfuse à 1900 ml / min, puis perfuser 2X PBS à 1950 ml / min. </li><li> Transférer le cœur à une solution de 3% de Triton X-100/0.05% EDTA/0.05% de NaN3 à la température ambiante. Augmenter la vitesse de la pompe à 2.000 ml / min et la solution perfuse pendant une heure. Enlever la solution du bécher et la remplacer par une nouvelle solution, augmenter la vitesse de la pompe à 2100 ml / min, et perfuser la solution fraîche pendant une heure supplémentaire et demi, ce qui porte la durée totale en3% de Triton X-100/0.05% EDTA/0.05% NaN 3 à 2,5 heures. </li><li> Rincer le tissu à eau de type I à 2150 ml / min et 2X PBS au 2180 ml / min pendant 10 min à chaque fois. </li><li> Transférer le cœur à une solution de désoxycholate de sodium à 4% à la température ambiante. Augmenter la vitesse de la pompe à 2200 ml / min et la solution perfuse pendant 3 heures. </li><li> Rincer le tissu à eau de type I à X et 2X PBS à 2200 ml / min pendant 15 min à chaque fois, en changeant les solutions après 5-10 min pour chaque solution. Les étapes décrites perfusion peut être réparti sur plusieurs jours en effectuant l&#39;étape consistant à rincer deux fois et stocker le coeur avec un tube attaché pendant une nuit à 4 ° C et immergé dans l&#39;eau de type I. </li><li> Le lendemain, effectuer un rinçage à 5 min à eau de type I à 750 ml / min, suivi d&#39;un rinçage 5 min dans du PBS 1X à 1500 ml / min. Le protocole peut alors être repris à la vitesse d&#39;écoulement décrits dans la solution adéquate. </li></ol> 4. Désinfection et traitement final <ol><li> Transfert au cœur d&#39;un PERAC 0,1%acide étique / solution éthanolique 4% et perfuser une solution de 1,5 heure à 2.200 ml / min. </li><li> Les derniers rinçages pour les tissus sont tous effectués à 2.200 ml / min. Perfuser le tissu avec du PBS 1X pendant 15 min, suivie de deux lavages de 5 min dans de l&#39;eau de type I. Cette série de rinçages est répété une fois de plus afin de compléter la procédure de perfusion solution. </li><li> Mettez la pompe hors tension et retirez le cœur de la solution de vider le coeur. Coupez les attaches de l&#39;aorte, enlever tous les tuyaux, et placez le coeur dans un bécher vide égoutter pendant 1 heure. L&#39;excès de liquide doivent être vidangés périodiquement. Posez le coeur sur un tampon absorbant afin de décharger complètement le cœur (figure 4). </li><li> Après plus de l&#39;eau est éliminée, enregistrer le poids de la matrice extracellulaire cardiaque (C-ECM). Le cœur peut s&#39;attendre à perdre environ 20-25% de son poids initial au cours du processus décellularisation. </li><li> Disséquer les ventricules droit et gauche, ainsi que le septum ventriculaire de l&#39;ADN quantificatiet le traitement histologique dans le but de confirmer décellularisation complet du tissu (figure 5). </li><li> Congeler le C-ECM à -80 ° C pendant au moins 2 heures avant la lyophilisation. </li></ol>

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</ol>

Dr. Gilbert a siégé au conseil consultatif scientifique ACell, Inc tandis que l&#39;étude a été fait, et est récemment devenu le vice-président de la recherche et du développement. ACell, Inc vend matrice de la vessie et n&#39;a aucun intérêt commercial dans la présente étude.

La présente étude décrit la méthodologie pour décellularisation cohérente et efficace d&#39;un coeur de porc. Le protocole a été une modification à un rapport déjà publié 1, et comprenait une exposition plus longue à l&#39;écoulement et de la pression accrue, ce qui a donné des résultats plus reproductibles. Le tissu résultant décellularisé satisfait à tous les critères publiés pour décellularisation réussie de tissu 2. Changements fréquents de solution ont été réalisées afin de limiter la réintrod...

<table border="1"><tbody><tr><td> Nom de réactif / Matériel </td><td> Entreprise </td><td> Numéro de catalogue </td><td> Commentaires </td></tr><tr><td> Trypsine </td><td> Gibco </td><td> 15090 </td><td></td></tr><tr><td> EDTA </td><td> Pêcheur </td><td> BP120-500 </td><td></td></tr><tr><td> NaN 3 </td><td> Sigma </td><td> S2002-500G </td><td></td></tr><tr><td> Triton X-100 </td><td> Sigma </td><td> X100-1L </td><td></td></tr><tr><td> PBS 10X </td><td> Pêcheur </td><td> BP399-20 </td><td></td></tr><tr><td> Désoxycholate de sodium </td><td> Sigma </td><td> D6750-500G </td><td></td></tr><tr><td> L&#39;acide peracétique </td><td> Pfaltz et Bauer </td><td> P05020 </td><td> 35% N ° CAS 79-21-0 </td></tr><tr><td> L&#39;éthanol </td><td> Pharmco </td><td> 111000200 </td><td></td&gt; </tr><tr><td> Entraînement de pompe Masterflex </td><td> Cole Parmer </td><td> SI-07524-50 </td><td></td></tr><tr><td> Tubes Masterflex </td><td> Cole Parmer </td><td> 96400-18 </td><td> Taille 18 </td></tr><tr><td> Réducteur de fer barbelé </td><td> Cole Parmer </td><td> EW-30612-20 </td><td></td></tr><tr><td> Bécher 4L </td><td> Fisher Scientific </td><td> 02-540T </td><td></td></tr></tbody></table>

procédure de décellularisation de coeur de porc par perfusion coronaire rétrograde

Procedure for Decellularization of Porcine Heart by Retrograde Coronary Perfusion

Perfusion basée sur décellularisation organe entier a récemment suscité un intérêt dans le domaine du génie tissulaire comme un moyen de créer des sites spécifiques échafaudages de la matrice extracellulaire, bien que largement en préservant l&#39;architecture d&#39;origine de l&#39;échafaud. À ce jour, cette approche a été utilisée dans une variété de systèmes d&#39;organes, y compris le cœur, les poumons, le foie et 1-5. Décellularisation méthodes précédentes pour tissus sans un réseau facilement accessible vasculaire ont invoqué l&#39;exposition prolongée des tissus à des solutions de détergents, acides ou les traitements enzymatiques comme un moyen d&#39;éliminer les composants cellulaires et nucléaires de l&#39;environnement extracellulaire 6-8. Cependant, l&#39;efficacité de ces méthodes charnière sur la capacité des solutions à imprégner le tissu par diffusion. En revanche, la perfusion des organes à travers le système vasculaire naturel pour effet de réduire la distance de diffusion et de transport facilité de decellularizatides agents dans le tissu et les composants cellulaires sur le tissu. Nous décrivons ici une méthode pour bien decellularize un coeur de porc intacte grâce à une perfusion rétrograde coronaire. Le protocole donné entièrement décellularisé cardiaque matrice extracellulaire (ECM-c) d&#39;échafaudage avec la structure tridimensionnelle du coeur intact. Notre procédé utilisé une série d&#39;enzymes, les détergents, les acides et les produits de rinçage couplé avec hypertoniques et hypotoniques pour aider à la lyse et l&#39;élimination des cellules. Le protocole utilisé une solution de Trypsine pour détacher les cellules de la matrice, suivie par des solutions de Triton X-100 désoxycholate de sodium et d&#39;aider à l&#39;élimination de la matière cellulaire. Le protocole décrit utilise également des vitesses de perfusion de plus de 2 L / min pour des périodes de temps prolongées. La vitesse d&#39;écoulement élevée, associée à des changements souhaités solution transport d&#39;agents dans le tissu sans contamination des débris cellulaires et assurer un rinçage efficace du tissu. La méthode décrite enlevé toutes les matières nucléaires de native porcine tissu cardiaque, la création d&#39;un site spécifique cardiaque ECM échafaudage qui peut être utilisé pour une variété d&#39;applications.

L&#39;effet de décellularisation sur les cœurs de porc entières varie naturellement en raison de différences dans la taille, la pression, et la disposition des navires. Par conséquent, la composition exacte des échafaudages dérivés de la matrice extracellulaire ne sera pas la même chose de cœur à cœur. L&#39;achèvement du protocole décrit donnera un cœur qui apparaît en blanc ou translucide, indiquant la perte de matériel cellulaire. Cependant, il est largement admis qu&#39;un tissu peut être considéré comme «décellular...

Une méthode pour rapidement et complètement éliminer les composants cellulaires à partir d&#39;un coeur de porc intacte grâce à une perfusion rétrograde est décrite. Cette méthode permet d&#39;obtenir un site spécifique de la matrice extracellulaire cardiaque échafaudage qui a le potentiel pour être utilisé dans de multiples applications cliniques.

Procédure de décellularisation de coeur de porc par perfusion coronaire rétrograde

Perfusion-based  whole organ decellularization has recently gained interest in the field of  tissue engineering as a means to create site-specific ...

L’objectif global de cette procédure est d’éliminer rapidement et complètement les composants cellulaires d’un cœur porcin intact par profusion rétrograde afin d’obtenir un échafaudage de matrice extracellulaire cardiaque spécifique au site. Ceci est accompli par la canulation d’abord, l’aorte d’un cœur porcin intact. Ensuite, le tube est fixé à une pompe péristaltique, et le tissu est lavé avec des solutions d’eau et de sel à faible débit.Le cœur est ensuite perfusé avec une série de solutions détergentes et enzymatiques à un débit progressivement croissant pour éliminer les composants cellulaires. La dernière étape consiste à perfuser une solution désinfectante. Retirez le tube et coupez les parois ventriculaires pour le traitement.En fin de compte, le cœur est analysé pour confirmer l’élimination complète du matériel cellulaire et nucléaire des tissus. La démonstration visuelle de cette méthode est essentielle car les étapes de canulation et de profusion initiales sont difficiles à apprendre, car la position exacte du tube est la clé du succès de l’expérience. L’organe porcin est obtenu d’un abattoir ou d’un centre de recherche immédiatement après l’euthanasie.Commencez par rincer tout excès de sang. Ensuite, coupez le cœur de l’excès de graisse et de tissu, en gardant les oreillettes et l’aorte intactes. Séparez l’artère pulmonaire de l’aorte en enlevant la graisse supplémentaire.Une fois paré, enveloppez chaque cœur individuellement dans du papier de congélation et conservez-le à moins 80 degrés Celsius pendant au moins 24 heures pour assurer une congélation complète. Lorsque vous êtes prêt à l’utiliser, décongelez le cœur en le plongeant dans un bécher de quatre litres rempli d’eau de type 1 et laissez-le à quatre degrés Celsius pendant la nuit. Une fois le cœur complètement décongelé, séchez-le et notez son poids.Le cœur d’un porc de poids marchand devrait peser environ 375 à 450 grammes. Une fois que le cœur est prêt, connectez le tube flexible Master de taille 18 à l’extrémité d’un quart de pouce d’un réducteur cannelé. Ensuite, insérez le réducteur cannelé et le tube à l’intérieur de l’aorte.Placez deux colliers de serrage ou fixez des attaches zippées autour de l’aorte juste en dessous du tronc brachiocéphale. Le réducteur et la tubulure doivent rester au-dessus de la valve aortique afin que les artères coronaires puissent être perfusées. Ensuite, utilisez une seringue pour remplir le tube avec de l’eau de type un et insérez-le dans la cartouche d’une pompe à rouleaux flexible principale à son point médian approximatif.Ensuite, immergez l’extrémité d’entrée du tube, ainsi que le cœur au fond d’un bécher rempli de 2,5 litres d’eau et sécurisé. Les aspects les plus difficiles de cette procédure sont la canulation correcte du cœur et le maintien de vitesses de pompe adéquates tout au long de la procédure. Nous assurons le succès de notre expérience en inspectant visuellement les tissus à la recherche de bulles d’air tout au long de la procédure, ainsi qu’en maintenant un épanchement correct des ventricules tout au long de la procédure.Amorcez la pompe pour éliminer les bulles d’air du tube, repositionnez ou fixez des attaches supplémentaires autour de l’aorte et du tube si des bulles d’air sont observées. Un joint étanche à l’air est important pour maintenir une pression adéquate pendant le processus de décellularisation. À ce stade, réchauffez un bécher de quatre litres contenant trois litres de solution de trypsine équilibrée en sel en préparation du processus de décellularisation.Tout d’abord, réglez la pompe sur un débit de 400 millilitres par minute et assurez-vous que la bonne taille de tube est sélectionnée. Démarrez la pompe et rincez le cœur avec de l’eau de type 1 pendant 15 à 25 minutes, le cœur doit gonfler et diffuser le sang des ventricules, une solution fraîche doit être remplacée toutes les cinq à 10 minutes ou au besoin. Une fois le sang retiré, arrêtez la pompe et transférez le cœur dans un bécher séparé rempli de deux XPBS.Immergez le tube. Augmentez le débit à 700 millilitres par minute et démarrez la pompe. Laissez le cœur en solution pendant 15 minutes, en changeant de solution toutes les cinq minutes.Lorsque vous êtes prêt, transférez le cœur dans de l’eau de type un pendant 10 minutes et augmentez le débit à 750 millilitres par minute. Pour commencer le processus de décellularisation, transférez le cœur dans le bécher contenant une solution chaude d’essai d’équilibre salin. Augmentez la vitesse à 1200 millilitres par minute et démarrez la pompe.Placez un barreau au fond du bécher pour la circulation et laissez le cœur dans cette solution pendant trois heures. Les vitesses de perfusion sont augmentées lentement pour conditionner les tissus et éviter la rupture des vaisseaux. Après une heure, augmentez la vitesse de la pompe à 1500 millilitres par minute.Après une heure supplémentaire, la vitesse de la pompe est augmentée à 1800 millilitres par minute. Le cœur devrait gonfler et presque doubler de volume. Le tissu devrait perdre sa couleur naturelle en progressant des oreillettes à l’apex.Après chaque perfusion de solution, un rinçage en deux étapes est effectué pour éliminer les débris cellulaires, les résidus chimiques et faciliter la lyse cellulaire. Après les voyages équilibrés au sel et la solution, perfuser de l’eau à 1900 millilitres par minute, puis deux XPBS à 1950 millilitres par minute pendant 10 minutes chacun. Ensuite, transférez le cœur dans une solution d’équilibre salin à température ambiante de Triton X 100. Augmentez la vitesse de la pompe à 2000 millilitres par minute et perfuser pendant une heure.Après avoir rempli de solution fraîche, augmentez la vitesse de la pompe à 2100 millilitres par minute et perfuser pendant une heure et demie supplémentaire. Ensuite, rincez le tissu comme démontré précédemment, mais à des vitesses de pompe accrues. La perfusion suivante est avec du désoxy de sodium à température ambiante à 4 %.Augmentez la vitesse de la pompe à 2200 millilitres par minute et perfusez pendant trois heures. Après trois heures, répétez les étapes de rinçage, en changeant les solutions après cinq à 10 minutes pour chaque solution. Après la perfusion finale, transférez le cœur dans une solution d’acide paracétique à 0,1 %, d’éthanol à 4 % et perfuser pendant 1,5 heure à 2200 millilitres par minute à la même vitesse de pompe, perfuser le tissu avec un XPBS pendant 15 minutes, suivi de deux lavages de cinq minutes dans de l’eau de type un.Répétez l’opération une fois de plus pour terminer la procédure de perfusion de la solution, éteignez la pompe et retirez le cœur de la solution. Coupez les liens de l’aorte. Retirez tous les tubes et placez le cœur dans un bécher vide pour l’égoutter pendant une heure.Retirez l’excès de liquide périodiquement après une heure. Posez le cœur sur un tampon absorbant pour l’égoutter davantage. Une fois que la majeure partie de l’eau a été retirée, notez le poids final du cœur.Le cœur peut perdre environ 20 à 25 % de son poids initial pendant le processus de décellularisation. À la fin de ce processus, le cœur devrait apparaître blanc ou translucide, indiquant la perte de matériel cellulaire. Ensuite, le septum ventriculaire et les ventricules droit et gauche sont séparés et réservés à l’ADN.La quantification et le traitement histologique permettent de congeler les échantillons à moins 80 degrés Celsius pendant au moins deux heures avant la lyophilisation. La décellularisation réussie est démontrée ici par la diminution significative de la teneur en ADN par rapport aux ventricules natifs. Ce gel montre qu’il restait peu d’ADN résiduel dans les ventricules décellularisés par rapport à une matrice de vessie ou UBM.Dans cet exemple, la coloration de l’hémattoïne et de l’éosine montre l’élimination complète du matériel nucléaire des ventricules. La coloration de Masson confirme en outre la perte de faisceaux de muscle cardiaque et la rétention des réseaux de collagène lors de cette procédure. Il est important d’inspecter visuellement les tissus et les coronaires fréquemment.

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Dans cette vidéo, nous effectuons la perfusion rétrograde de Langendorff d’un cœur de souris isolé. Au cours de la procédure, l’activité cardiaque du cœur est maintenue en le perfusant rétrogradement avec une solution de perfusion via les artères coronaires à l’aide d’une canule insérée dans l’aorte ascendante. Le modèle est utilisé pour étudier la physiopathologie cardiaque du cœur.

Perfusion cardiaque rétrograde de Langendorff : une technique ex vivo pour perfuser un cœur de souris isolé

Dans cette vidéo, nous décrivons un protocole étape par étape pour extraire le cœur d’un modèle porcin pour une transplantation cardiaque.

Excision du cœur porcin : un protocole pour extraire le cœur porcin pour la transplantation cardiaque

Cette vidéo décrit une technique ex situ de préservation d’un cœur porcin isolé en le perfusant avec une solution de perfusat oxygénée et riche en nutriments. La technique permet l’évaluation complète des performances cardiaques dans des conditions physiologiques.

La perfusion cardiaque ex situ : une technique pour préserver la fonction cardiaque porcine isolée

Cette méthode permet de DÉCELLULARISATION d’un organe solide complexe à l’aide d’un protocole simple basé sur un choc osmotique et la perfusion de détergent ionique avec une interruption minimale orgue matrice. Elle compose d’une technique de DÉCELLULARISATION roman pour les coeurs humains à l’intérieur d’une poche sous pression avec un suivi en temps réel du débit de flux dynamique et cellulaires de débris.

DÉCELLULARISATION du cœur humain à l’intérieur d’une poche sous pression dans une Orientation inversée

Perfusion de coeur normothermique ex situ (ESHP), préserve le coeur dans un état semi-physiologique battant. Lorsque exécuté dans un mode de fonctionnement, ESHP offre la possibilité d’effectuer des évaluations sophistiquées du donneur viabilité de fonction et orgue de cœur. Nous décrivons ici, notre méthode d’évaluation du rendement myocardique durant ESHP.

Normothermique Ex Situ coeur Perfusion en Mode de travail : évaluation de la fonction cardiaque et le métabolisme

Ici, nous décrivons un modèle préclinique de grand animal (porcin) de transplantation orthotopic de coeur qui a été fermement établi et utilisé pour étudier de nouvelles stratégies cardioprotective.

Un modèle porcin préclinique de transplantation orthotopic de coeur

Nous avons développé une méthode simple pour isoler les cellules individuelles de coeur de souris de haute qualité par la technique antegrade de perfusion. Cette méthode est sans Langendorff et utile pour isoler les myocytes ventriculaires et auriculaires ou les cellules interstitielles, telles que les fibroblastes cardiaques ou les progéniteurs.

Procédé de perfusion antegrade pour l’isolement de cardiomyocytes de souris

Nous présentons un protocole pour l’utilisation d’un système de perfusion sanguin ex vivo normotherme pour l’administration de produits thérapeutiques à une allogreffe cardiaque entière dans un modèle de transplantation cardiaque hétérotopique porcine.

Protocole de transplantation cardiaque hétérotopique porcine pour l’administration de produits thérapeutiques à une allogreffe cardiaque

Le protocole décrit l’obtention chirurgicale et la décellularisation ultérieure des lambeaux porcins vascularisés par perfusion du détergent au dodécylsulfate de sodium à travers le système vasculaire du lambeau dans un bioréacteur de perfusion personnalisé.

Acquisition et perfusion-décellularisation de lambeaux vascularisés porcins dans un bioréacteur de perfusion personnalisé

Le dépistage des maladies coronariennes pourrait augmenter le nombre de cœurs de donneurs avec des critères élargis. Un protocole pour réaliser une coronarographie reproductible lors d’une perfusion cardiaque ex-situ est décrit ici dans un modèle porcin.

Angiographie coronaire lors de la perfusion cardiaque ex-situ dans un modèle porcin

Le protocole décrit ici un modèle porcin haute fidélité de transplantation cardiaque après un don après mort circulatoire en utilisant la perfusion ex vivo de l’allogreffe.

Un modèle porcin haute-fidélité de transplantation cardiaque orthotopique après don après mort circulatoire

Découvrez la décellularisation cardiaque par perfusion coronaire rétrograde sur cœur de porc intact. Cette méthode produit un scaffold de matrice extracellulaire site-spécifique pour l'ingénierie tissulaire cardiaque et applications cliniques.

Procédure de décellularisation de coeur de porc par perfusion coronaire rétrograde

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