Name: In vivo des macrophages imagerie utilisant MR ciblée agent de contraste pour lévaluation longitudinale darthrite septique (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-10-20T21:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 15 s
Description: Découvrez l'imagerie IRM des macrophages avec agent de contraste USPIO pour évaluer l'infiltration cellulaire dans l'arthrite septique du lapin. Cette méthode permet un suivi longitudinal non invasif de l'efficacité thérapeutique.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Nous remercions sincèrement F. Bierry pour l&#39;aide à la production et le montage vidéo.

Toutes les procédures impliquant des sujets animaux ont été approuvés par le comité d&#39;Institutional Animal Care Centre Hospitalier Universitaire. 1. L&#39;inoculation bactérienne intra-articulaire <ol><li> Avant l&#39;injection, anesthésier lapins par injection intramusculaire de kétamine (30 mg / kg de poids corporel) mélangé avec de la xylazine (4 mg / kg) dans les muscles spinaux. S&#39;assurer que les animaux sont complètement anesthésiés en vérifiant qu&#39;ils ne parviennent pas à répondre aux pincée de patte. Ce protocole permet l&#39;anesthésie suffisante pour l&#39;injection intra-articulaire de l&#39;articulation du genou. Placez les animaux sous masque à oxygène pendant l&#39;anesthésie. </li><li> Raser le genou animaux. Préparation du genou pour une injection aseptique par trois lingettes alternées de gommage povidone-iode et de l&#39;alcool suivie de l&#39;application d&#39;une solution de povidone-iode. </li><li> Identifier manuellement le tendon rotulien comme une structure élastique à la face antérieure du genou à l&#39;aide d&#39;un capuchon d&#39;aiguille stérile comme indiqué ou une sonde stérile. </li><li&gt; Avec un contrôle visuel et en utilisant une approche antérieure, placez une aiguille de calibre 25 par voie percutanée dans le genou droit de chacun des 12 lapins à travers le tendon rotulien. </li><li> Injecter chaque genou avec 1 ml d&#39;une suspension bactérienne de Staphylococcus aureus (souche Neumann) à une concentration de 10 6 UFC / ml. Une injection sans résistance confirme la localisation intra-articulaire de la pointe de l&#39;aiguille. </li><li> Après les procédures d&#39;injection, garder l&#39;animal en vertu source de convection pour éviter les pertes de chaleur et de suivre le rythme respiratoire en observant le mouvement de la poitrine. Une fois réveillé, garder les animaux dans des cages avec un accès libre à la nourriture et à l&#39;eau. </li><li> Gérer la douleur par administration d&#39;une injection intramusculaire de 0,1 mg / kg toutes les 8 heures buprénorphine. </li><li> Cliniquement observer les lapins chaque jour, contrôle des quantités consommées de nourriture et d&#39;eau, perte de poids, la température et le comportement général. </li><li> Pour l&#39;image de la phase aiguë de l&#39;infection à effectuer la première séance d&#39;imagerie RM dèscomme un animal présente une perte de poids importante (10%), généralement cela se produit après environ 2 jours. </li><li> Si l&#39;administration de drogues par voie intraveineuse est nécessaire avant l&#39;examen IRM, un accès veineux auriculaire peut être installé (cf. ci-dessous). </li></ol> 2. L&#39;examen IRM Quand l&#39;imagerie des animaux vivants, une installation animal attention est un élément clé pour assurer le confort des animaux et de l&#39;anesthésie optimale. Cela permettra d&#39;obtenir de meilleurs résultats d&#39;imagerie et d&#39;assurer une acquisition d&#39;image de reproduction pour les études longitudinales. En raison de la taille de l&#39;animal, l&#39;utilisation d&#39;une unité MR clinique taille (1,5 T ou 3 T) est le plus approprié. Bobine de genou clinique 8 canaux est utilisée car elle offre la résolution appropriée et le rapport contraste sur bruit pour le lapin exploration du genou. <ol><li> Avant l&#39;installation du système d&#39;imagerie, installer un accès veineux périphérique à travers une veine auriculaire. Cet accès permettra d&#39;injecter l&#39;agent de contraste. <ol><li> Rasage et désinfecter l&#39;oreille. </li><li&gt; Perform anesthésie locale par injection sous-cutanée de lidocaïne. </li><li> Insérer un cathéter 25 G à l&#39;intérieur de la veine auriculaire latérale. </li><li> Évaluer la perméabilité par injection de 1 ml de sérum physiologique stérile. </li><li> Maintenir le cathéter avec taraudage adhésif. </li></ol></li><li> Anesthésier des animaux au moyen d&#39;une injection intramusculaire de kétamine (30 mg / kg de poids corporel) mélangé avec la xylazine (4 mg / kg). Les animaux sont entièrement anesthésié une fois qu&#39;ils ne parviennent pas à répondre aux pincée de patte. Placer un masque facial sur le lapin, en lui donnant l&#39;oxygène avec un débit de 200 ml / min. </li><li> Une fois complètement anesthésié, prendre l&#39;animal à l&#39;unité IRM. Placer les animaux de manière que les genoux sont situés dans le centre de la bobine MR. Placer les pattes de l&#39;animal en extension complète, de sorte que le grand axe du tibia est parallèle à la table d&#39;unités d&#39;imagerie MR. Utilisez des attaches velcro ou des sacs de sable pour maintenir la position optimale de la jambe. </li><li> Surveillance cardio-respiratoire des animaux n&#39;est pas nécessaire que l&#39;protocole d&#39;anesthésie permet une anesthésie profonde sur la respiration spontanée, mais les animaux doivent être couverts pour éviter la perte de chaleur induite par l&#39;anesthésie. </li><li> M. protocole est détaillé dans le tableau 1. Le délai moyen d&#39;acquisition total, y compris une installation optimale est d&#39;environ 20 min. </li><li> Effectuez l&#39;IRM dans des plans différents. Néanmoins, le plan transversal des genoux (orthogonal au tibia) est le plan de référence car elle garantit la reproductibilité anatomique de la position de l&#39;image pour des examens longitudinaux successifs et permet corrélation optimale avec des tranches histologiques. </li><li> À la fin de séquences non améliorées, injecter le produit de contraste UPSIO grâce à l&#39;accès veineux auriculaire. Lentement administrer des particules d&#39;oxyde de fer en une seule dose de 150 pmol de Fe / kg. Rincer le cathéter par injection de 1 ml de sérum physiologique stérile. </li><li> Répétez la séquence pondérée améliorée GRE 24 heures après l&#39;injection. Ce délai permet aux particules d&#39;être phagocytées parles macrophages. </li><li> Pour les études longitudinales évaluant l&#39;effet de médicaments (antibiotiques, des stéroïdes, des anticorps anti-macrophages, etc.), Répéter les examens IRM séquentielles selon le protocole décrit ci-dessus. </li></ol> 3. Analyse d&#39;Image <ol><li> Pour l&#39;évaluation longitudinale effectuer des mesures au même niveau anatomique, et de définir un point de repère facilement identifiable. Par exemple, l&#39;acquisition par le plan axial où l&#39;on observe le plus grand diamètre de la rotule est un moyen fiable pour obtenir des mesures reproductibles (figure 1). </li><li> Procéder à l&#39;analyse d&#39;image en utilisant un logiciel DICOM basée (comme Osirix) ou un logiciel de traitement d&#39;image (ImageJ). </li><li> En utilisant le logiciel ImageJ, effectuer la segmentation de l&#39;espace synovial qui démontre la perte de signal sur USPIO-image améliorée GRE pondérée en T2 en utilisant l&#39;outil de dessin «irrégulière de la zone&quot;. Une fois la membrane synoviale avec signal d&#39;obscurité est décrit, cliquez sur &quot;Analyser&quot; pour obtenir la région /nombre de pixels (figure 2). </li></ol>

<ol><li>Madri, J. Inflammation and healing. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMadri%2C+J+%22Anderson%27s+Pathology%22">Anderson's Pathology</a>. Kissane, J. , 67-110 (1990).</li>
<li>Sephel, G., Woodward, S. Repair, regeneration, and fibrosis. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSephel%2C+G+%22Rubin%27s+Pathology%22">Rubin's Pathology</a>. Rubin, R., Strayer, D. , 5th ed, Lippincott Williams & Wilkins. Philadelphia, PA. 71-98 (2008).</li>
<li>Verdrengh, M., Tarkowski, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+macrophages+in+Staphylococcus+aureus-induced+arthritis+and+sepsis%5BTitle%5D)+AND+%22Arthritis+Rheum%22%5BJournal%5D)">Role of macrophages in Staphylococcus aureus-induced arthritis and sepsis.</a> Arthritis Rheum. 43 (10), 2276-2282 (2000).</li>
<li>Heale, J., Speert, D. Macrophages in bacterial infection. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aHeale%2C+J+%22The+Macrophage%22">The Macrophage</a>. Burke, B., Lewis, C. , Oxford University Press. Oxford, England. 210-252 (2008).</li>
<li>Bierry, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macrophage+activity+in+infected+areas+of+an+experimental+vertebral+osteomyelitis+model%3A+USPIO-enhanced+MR+imaging--feasibility+study%5BTitle%5D)+AND+%22Radiology%22%5BJournal%5D)">Macrophage activity in infected areas of an experimental vertebral osteomyelitis model: USPIO-enhanced MR imaging--feasibility study.</a> Radiology. 248 (1), 114-123 (2008).</li>
<li>Bierry, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MRI+of+macrophages+in+infectious+knee+synovitis%5BTitle%5D)+AND+%22AJR+Am.+J.+Roentgenol%22%5BJournal%5D)">MRI of macrophages in infectious knee synovitis.</a> AJR Am. J. Roentgenol. 194 (6), W521-W526 (2010).</li>
<li>Lutz, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+synovial+macrophages+in+an+experimental+rabbit+model+of+antigen-induced+arthritis%3A+ultrasmall+superparamagnetic+iron+oxide-enhanced+MR+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Radiology%22%5BJournal%5D)">Detection of synovial macrophages in an experimental rabbit model of antigen-induced arthritis: ultrasmall superparamagnetic iron oxide-enhanced MR imaging.</a> Radiology. 233 (1), 149-1457 (2004).</li>
<li>Weissleder, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrasmall+superparamagnetic+iron+oxide%3A+an+intravenous+contrast+agent+for+assessing+lymph+nodes+with+MR+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Radiology%22%5BJournal%5D)">Ultrasmall superparamagnetic iron oxide: an intravenous contrast agent for assessing lymph nodes with MR imaging.</a> Radiology. 175 (2), 494-498 (1990).</li>
<li>Lefevre, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Septic+arthritis%3A+monitoring+with+USPIO-enhanced+macrophage+MR+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Radiology%22%5BJournal%5D)">Septic arthritis: monitoring with USPIO-enhanced macrophage MR imaging.</a> Radiology. 258 (3), 722-728 (2011).</li>
<li>Sigovan, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid-clearance+iron+nanoparticles+for+inflammation+imaging+of+atherosclerotic+plaque%3A+initial+experience+in+animal+model%5BTitle%5D)+AND+%22Radiology%22%5BJournal%5D)">Rapid-clearance iron nanoparticles for inflammation imaging of atherosclerotic plaque: initial experience in animal model.</a> Radiology. 252 (2), 401-409 (2009).</li>
</ol>

Les auteurs n&#39;ont rien à révéler.

Alors que les agents de contraste à base de gadolinium non spécifiques fournissent des informations sur le volume et la perfusion de l&#39;espace extracellulaire, l&#39;imagerie macrophage par USPIO-enhanced MR permet une localisation anatomique précise et une évaluation qualitative de l&#39;infiltration macrophagique au sein de la synoviale infecté sans avoir besoin de prélèvement de tissu 9. En raison de leur grande sensibilité, USPIO peut démontrer, même subtile infiltrat cellulaire présent dans les phases...

L&#39;imagerie par résonance magnétique (IRM) est considéré comme la modalité d&#39;imagerie de choix pour la manifestation de la synovite infectieuse due à sa haute résolution spatiale et le contraste des tissus mous. changements de signaux observés à l&#39;IRM dans l&#39;arthrite faible T1 et un signal élevé T2 reflète la présence accrue de la teneur en eau extracellulaire et une amélioration marquée après l&#39;administration de l&#39;agent à base de gadolinium, en conformité avec les histologiquement conclusions d&#39;augmentation de la vascularisation en raison de la vasodilatation et l&#39;angiogenèse 1. Néanmoins, l&#39;IRM est souvent incapable de démontrer la résolution de l&#39;infection pendant le traitement antibiotique que l&#39;amélioration persistante peut être observé dans les articulations des patients atteints d&#39;arthrite septique cliniquement et biologiquement guéri en raison de la persistance de l&#39;espace extracellulaire agrandie (tissu de granulation, cicatrice fibreuse) 2. Outre les changements extracellulaires, les cellules inflammatoires, notamment un recrutement intense de macrophages infiltrent massivement dans l&#39;infectés synovie. Les macrophages jouent un rôle majeur à la fois dans la phase aiguë et chronique de l&#39;infection bactérienne 3. Ils induisent la réaction inflammatoire nécessaire pour éliminer les micro-organismes pathogènes, et de coordonner la résolution de l&#39;inflammation, comme l&#39;inflammation des macrophages induite persiste aussi longtemps que les tissus nécrotiques ne sont pas supprimés, ce qui empêche la réparation de commencer 4. Ainsi, la réduction de l&#39;infiltration macrophagique au sein de synovie infecté après un traitement efficace peut être un indicateur fiable de la résolution de l&#39;infection. L&#39;imagerie cellulaire est capable de démontrer infiltration cellulaire spécifique à l&#39;intérieur de tissu pathologique. Spécifique IRM macrophage aide ciblée agent de contraste a été largement étudié et a démontré sa capacité à démontrer l&#39;inflammation des articulations ou d&#39;infection 5-7. Après injection intraveineuse, ces agents de contraste ciblées comme USPIO particules (ultrapetites oxydes de fer superparamagnétiques) sont absorbés par les cellules phagocytaires telles que les macrophages et,en raison de leurs propriétés magnétiques, induire des changements de signaux dans les tissus présentant infiltration macrophagique 8. Le suivi longitudinal de ceux MR signal de modifications traitement permet une évaluation non invasive in vivo à l&#39;infiltration des macrophages, et une réduction des USPIO-macrophages chargés changements de signal liées démontrerait le succès de la thérapie. Le but de ce rapport est de présenter comment effectuer l&#39;IRM macrophage de surveiller de manière non invasive arthrite septique en démontrant la réduction de l&#39;infiltration des macrophages dans le liquide synovial.

<table><tbody><tr><td>Nom du réactif/matériel</td><td>Entreprise</td><td>Numéro de catalogue</td><td>Commentaires</td></tr><tr><td>P904</td><td>Guerbet</td><td></td><td>Dose : 150 &mu ; mol Fe/kg</td></tr><tr><td>de kétamine (500 mg/ml de kétamine)</td><td>Virbac</td><td></td><td>Dose : 30 mg/kg</td></tr><tr><td>Rompun (20 mg/ml de xylazine)</td><td>Axience</td><td></td><td>Dose : 4 mg/kg</td></tr><tr><td>Buprénorphine</td><td>Vetoquinol</td><td></td><td>Dose : 0,1 mg/kg/8 h</td></tr><tr><td>BD 22 G, 1 pouce</td><td>BD Biosciences</td><td>381423</td><td></td></tr><tr><td>BD 25 G, 5/8 pouce</td><td>BD Biosciences</td><td>305122</td><td></td></tr></tbody></table>

in vivo des macrophages imagerie utilisant mr ciblée agent de contraste pour l&#39;évaluation longitudinale d&#39;arthrite septique

In vivo Macrophage Imaging Using MR Targeted Contrast Agent for Longitudinal Evaluation of Septic Arthritis

Les macrophages sont des cellules clés dans l&#39;initiation, le développement et la régulation de la réponse inflammatoire à une infection bactérienne. Les macrophages sont de plus en plus intensive et recrutés dans les articulations septiques dès les premières phases de l&#39;infection et l&#39;infiltration est censé régresser une fois l&#39;élimination efficace des agents pathogènes est obtenue. La capacité d&#39;identifier l&#39;activité des macrophages in vivo dans une articulation infectée peut donc fournir deux applications principales: la détection précoce de la synovite aiguë et le suivi du traitement. In vivo, la détection non invasive des macrophages peut être réalisée avec l&#39;imagerie par résonance magnétique en utilisant des nanoparticules de fer tels que ultrapetites oxyde de fer superparamagnétique (USPIO). Après administration intravasculaire ou intra-articulaire, USPIO sont spécifiquement phagocytées par des macrophages activés, et, en raison de leurs propriétés magnétiques, induire des changements de signaux dans les tissus présentant une infiltration macrophagique. A quantitativl&#39;évaluation de l&#39;e de l&#39;infiltrat est possible, que la zone de perte de signal (nombre de pixels noirs) observée sur gradient echo images par résonance magnétique après que les particules d&#39;injection est en corrélation avec la quantité de fer dans le tissu et reflète donc le nombre de cellules USPIO-chargés. Nous présentons ici un protocole pour réaliser une imagerie de macrophages en utilisant USPIO-l&#39;IRM dans un modèle animal d&#39;arthrite septique, ce qui permet une première et longitudinales dans l&#39;évaluation non invasive in vivo des macrophages infiltration et une évaluation des mesures de thérapie.

Sur les images non améliorés, la synoviale des genoux infectés présente un gonflement diffus du signal intermédiaire qui est non distinguée de tissu mou environnant, tandis que le fémur et la rotule apparaissent comme des structures de signal bas (figure 1). Sur les images USPIO-améliorées, 24 heures après l&#39;administration de l&#39;agent de contraste, la zone synovial contenant macrophages USPIO chargés fera la démonstration de la perte de signal (figures 1</stro...

Nous démontrons comment effectuer l&#39;IRM macrophages en utilisant ultrapetites agent de contraste superparamagnétique (USPIO) dans l&#39;arthrite septique, ce qui permet une première et longitudinale<em&gt; In vivo</em&gt; Évaluation non invasive de macrophages infiltration et une évaluation de l&#39;efficacité du traitement.

In vivo des macrophages imagerie utilisant MR ciblée agent de contraste pour l&#39;évaluation longitudinale d&#39;arthrite septique

Macrophages are key-cells in the initiation, the development and the regulation of the inflammatory response to bacterial infection. Macrophages are ...

L'objectif général de cette expérience est d'évaluer longitudinalement l'infiltration des macrophages au sein du tissu synovial. Dans le modèle de lapin d'arthrite septique A utilisant l'imagerie par résonance magnétique, cela peut être réalisé à l'aide de particules d'oxyde de fer qui marquent les macrophages et révèlent leur présence. Les macrophages sont des cellules clés dans le développement, l'amplification et la résolution de l'arthrite, notamment dans l'arthrite septique.La mise en évidence in vivo de leur présence et de leur distribution au sein d'une articulation infectée pourrait constituer un outil précieux pour le suivi. La thérapie antibiotique appliquée à une articulation malade ne devrait pas entraîner une infiltration massive par les macrophages. Les macrophages peuvent être disponibles en perdant des cytes.Les agents de contraste He R tels que les US PIO, les oxydes de fer superparamagnétiques ultrafins. Après administration intravasculaire, ils sont spécifiquement captés par les microphages activés. Les USPIO sont composés d'un noyau en oxyde de fer avec une taille cristalline d'environ 40 nanomètres.Ils agissent comme de petits aimants générant des modifications du signal RMN dans les tissus contenant des macrophages. Vous pouvez observer sur ces deux images axiales de RMN du genou d'un lapin qu'après 24 heures suivant l'administration d'USPIO, la présence du synovium et la perte intense et diffuse du contraste apparaissent. En raison de la présence de macrophages chargés d'USPIO, le nombre de pixels sombres observés sur les images de RMN est corrélé à la teneur en fer dans le tissu et, par conséquent, au nombre de macrophages.Le suivi longitudinal des modifications du signal R liées à l'U-S-P-I-O pourrait ainsi permettre une évaluation in vivo de la présence de macrophages au sein du John pendant le traitement. Bonjour, je m'appelle Guian Bii. Je suis professeur assistant en radiologie à l'Hôpital universitaire de Strat, en France.Aujourd'hui, nous allons vous présenter comment réaliser un imagerie des macrophages par IRM dans un modèle animal d'arthrite septique. Dans une première partie, avec notre chercheur, nous allons vous expliquer comment induire une arthrite septique dans le genou d'un lapin par administration interarticulaire directe de staphylocoque. Ensuite, dans une seconde partie, nous vous montrerons comment effectuer l'examen par IRM, comment injecter l'agent de contraste, et enfin, comment exploiter les résultats.Placer l'animal dans une cage de confinement dédiée, puis anesthésier l'animal par une injection de tine et de kéta­mine, ce qui permet une anesthésie chirurgicale de 30 minutes. Raser le genou et le désinfecter avec de la povidone. Identifier le ligament patellaire comme un élastique antérieur.Ensuite, introduire une aiguille de calibre 35 à travers cette zone pour pénétrer dans l'articulation. Injecter un millilitre de la suspension bactérienne. L'injection doit s'effectuer sans résistance, ce qui confirme la position intra-articulaire correcte de l'aiguille.Remettez l'animal dans sa cage et administrez une thérapie antalgique par injection intramusculaire de bovin chaque jour. Après une période intermédiaire, nous avons deux jours. L'animal présente une réduction des mouvements spontanés pendant le sommeil, confirmant la présence d'une infection articulaire.L'examen R peut donc être effectué. Placer l'animal dans une cage de contention dédiée. Nettoyer la zone avec du pov.Insérez un cathéter de calibre 24 dans une veine périphérique et fixez-le avec un adhésif. Cette voie veineuse servira à administrer le produit de contraste. Anesthésiez l'animal à l'aide d'une injection intramusculaire de kétamine.Ensuite, placer l'animal en position ventrale dans la bobine d'imagerie du genou. Avec les genoux en extension complète, les jambes doivent être fixées à la table d'IRM et peuvent être scotchées pour maintenir l'extension. Le protocole d'IRM consiste en des séquences pondérées en T2 en écho de gradient.La séquence est préférée car elle permet la détection la plus sensible des U-S-P-I-O. Voici un exemple des paramètres IRM que nous utilisons actuellement. À la fin de ce premier examen IRM, injecter lentement les U-S-P-I-O par la voie veineuse et rincer avec un millilitre de solution saline.Le deuxième examen IRM est réalisé 24 heures après l'administration de l'agent de contraste, en utilisant les mêmes procédures que celles décrites précédemment. Vous pouvez voir ici deux images axiales en écho de gradient pondérées en T2 du genou de lapin, à gauche sans agent de contraste et à droite 24 heures après l'administration d'USPO.Comme vous pouvez le voir sur l'image à droite, dans sa zone avec des macrophages chargés en USPI, on observerait une perte de signal avec des pixels sombres. Le nombre de pixels sombres est corrélé à la teneur en fer, puis à la quantité d'infiltration MicroAge. Les macrophages chargés en USPI peuvent être démontrés histologiquement à l'aide d'une coloration au bleu de Prussian, qui révèle les cellules chargées en fer sous forme de points bleus. Le nombre de pixels sombres observés sur une image unique peut être compté à l'aide de différents logiciels.Voici un exemple utilisant le logiciel M SGA qui fournit son décompte après seuil manuel ou automatique des zones d'activité courantes. L'IRM OS USPA permet une évaluation indirecte de la distribution des macrophages pouvant être prise en compte pendant le suivi thérapeutique. Une réduction de l'infiltration macrophagique sera associée à une diminution du nombre de pixels sombres en imagerie IRM in vivo.L'utilisation d'un agent de contraste spécifique permet d'évaluer de manière non invasive la population de macrophages au sein du genou. Pendant le traitement, on peut alors suivre la présence et la distribution des macrophages sans prélèvement tissulaire et dans un environnement naturel, ce qui est particulièrement intéressant pour les études longitudinales.

in-vivo-macrophage-imaging-using-mr-targeted-contrast-agent-for

Research

Recherche

JoVE Journal

Medicine

Médecine

Nous décrivons une méthode d'imagerie non-invasive permettant de distinguer les stades inflammatoires. Administration systémique de luminol révèle des zones d'inflammation aiguë dépendent activité MPO dans les neutrophiles. En revanche, l'injection de lucigénine permet de visualiser l'inflammation chronique dépend de l'activité Phox dans les macrophages.

In vivo méthode d&#39;imagerie à distinguer inflammation aiguë et chronique

Nous décrivons un multi-angle de rotation du système optique d'imagerie (Maroi) pour la quantification in vivo d'un marqueur fluorescent émis par la saposine C (SAPC), dioléoylphosphatidylsérine (DOPS) nanovésicules. En utilisant des modèles murins de cancer et l'arthrite, nous montrons comment la Maroi analyse de la courbe du signal peut être utilisé pour la cartographie et la caractérisation biologique précis des processus pathologiques.

In Vivo L&#39;imagerie optique de tumeurs cérébrales et l&#39;arthrite Utilisation fluorescent SAPC-DOPS nanovésicules

Ensemble d'imagerie optique et μCT dans un modèle murin de l'infection de l'implant orthopédique, en utilisant un bioluminescente souche génétiquement de Staphylococcus aureus, à condition que la capacité de surveiller de manière non invasive et longitudinalement la dynamique de l'infection bactérienne, ainsi que de la réponse inflammatoire correspondant et modifications anatomiques dans l' os.

Combiné<em&gt; In vivo</em&gt; Optique et μCT imagerie pour surveiller l&#39;infection, l&#39;inflammation, et Bone Anatomy dans une infection orthopédique Implant souris

Nous détaillons un protocole pour surveiller le comportement des neutrophiles et des monocytes dans les veines mésentériques à l’état d’équilibre et dans des conditions inflammatoires en utilisant la microscopie confocale intravitale sur des souris anesthésiées.

Imagerie neutrophiles et des monocytes dans les veines mésentérique par Microscopie intravitale sur des souris anesthésiées en temps réel

Cet article explique l'application de l'imagerie fluorescente à l'aide d'une sonde d'imagerie optique activable pour visualiser l'activité in vivo des métalloprotéinases matricielles clés dans deux modèles expérimentaux différents d'inflammation.

Non invasif<em&gt; In Vivo</em&gt; Imagerie optique à fluorescence d&#39;une activité MMP inflammatoire à l&#39;aide d&#39;un agent d&#39;imagerie fluorescente activable

Spécifique à la cible sondes représentent un outil innovant pour l’analyse des mécanismes moléculaires, comme expression de la protéine dans divers types de maladie (p. ex., inflammation, infection et tumorigenèse). Dans cette étude, les auteurs décrivent une évaluation quantitative de tomographie tridimensionnelle d’infiltration de macrophages intestinaux dans un modèle murin de colite en utilisant la tomographie de F4/80-spécifique induite par fluorescence.

Tomographie médiée par fluorescence pour la détection et la Quantification de l’Inflammation intestinale Murine axés sur les macrophages

Nous présentons des méthodes pour évaluer la capacité phagocytaire des primaires macrophages dérivés de la moelle osseuse murines utilisant des débris de la myéline fluorescent étiquetés et coloration de gouttelettes de lipides intracellulaires.

In Vitro Phagocytose des débris de la myéline par les Macrophages dérivés de la moelle osseuse

L’évaluation du développement des tissus dans le CAL de fracture au cours de la guérison osseuse endochondrale est indispensable pour surveiller le processus de guérison. Nous rapportons ici l’utilisation d’une résonance magnétique imagerie (IRM)-fixateur externe compatible pour le fémur de la souris pour permettre à MRI scans pendant la régénération osseuse chez la souris.

In Vivo Évaluation du développement de cals de Fracture au cours de la guérison osseuse chez la souris en utilisant un dispositif d’ostéosynthèse IRM-compatible pour le fémur de souris

L’imagerie in vivo des articulations est une technique précieuse pour découvrir le comportement migratoire des leucocytes et la dynamique moléculaire des articulations enflammées. Nous présentons ici un protocole détaillé pour l’imagerie in vivo des articulations à l’aide d’un modèle murin de l’arthrite induite par le collagène de type II (ACI).

In vivo L’imagerie révèle le comportement migratoire des leucocytes à l’intérieur des articulations

Nous avons développé un système transwell ex vivo humain capable d’évaluer les modifications inflammatoires aiguës, infectieuses et structurelles du synovium.

Un modèle préclinique de la synovite utilisant un tissu synovial humain ex vivo avec fonction et architecture préservées

Ici, nous présentons un protocole pour l’imagerie intravitale d’un Mycobacterium tuberculosis atténué approuvé par BSL-2. Souche dans le poumon murin utilisant une fenêtre pulmonaire permanente. Cette approche permet une analyse longitudinale à résolution unicellulaire des interactions précoces hôte-pathogène, y compris la localisation bacillaire, la dynamique vasculaire et l’absorption des macrophages dans le même microenvironnement pulmonaire.

Imagerie intravitale de Mycobacterium tuberculosis auxotrophe atténué dans le poumon murin lors d’une infection intravasculaire précoce

Découvrez l'imagerie IRM des macrophages avec agent de contraste USPIO pour évaluer l'infiltration cellulaire dans l'arthrite septique du lapin. Cette méthode permet un suivi longitudinal non invasif de l'efficacité thérapeutique.

In vivo des macrophages imagerie utilisant MR ciblée agent de contraste pour l'évaluation longitudinale d'arthrite septique

Explorer plus de vidéos