Name: Lévaluation de la fonction cardiaque et la morphologie du myocarde en utilisant de petits Inversion Recovery Look-casier animale (SALLI) IRM chez les rats (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-07-19T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 41 s
Description: Découvrez l'IRM cardiaque SALLI pour évaluer la fonction et la morphologie myocardique chez le rat. Cette technique multimodale permet d'étudier les maladies cardiovasculaires avec précision.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

1. Préparation 1.1. Anesthésie des rats <ol><li> Placer le rat dans une chambre remplie au préalable avec de l&#39;isoflurane (en fonction de la taille de la chambre d&#39;environ 3 minutes à 5%) pour anesthésier le rat. </li><li> Une fois anesthésié, retirez le rat et le peser. </li><li> Placez le nez du rat dans le masque d&#39;anesthésie (isoflurane 2-3% en oxygène 1 L / min) pour maintenir l&#39;anesthésie. Pendant l&#39;anesthésie avec l&#39;isoflurane, les fréquences cardiaques de rats diminuent à 300-340 bpm (380-420 bpm chez la souris). </li></ol> 1.2. Insérez une veine de la queue canule <ol><li> Laver la queue du rat avec de l&#39;eau tiède (38 ° C) et du savon pour permettre aux vaisseaux sanguins pour être plus facilement visibles. </li><li> Cathétériser soit veine, qui peut être facilement visible sur la face latérale de la queue. L&#39;utilisation d&#39;un cathéter iv G 22-24, commencer tentatives d&#39;environ 1/3 de la distance entre la pointe. </li><li> Si les premiers efforts ont échoué, réessayez plus proximale. </li><li> Prenez sam de sangsonnes pour l&#39;analyse de l&#39;hématocrite (nécessaire pour calculer la fraction du volume extracellulaire = ECV). </li><li> Fixer le cathéter iv avec de la colle de peau et de ruban adhésif. </li></ol> 1.3. Le positionnement des électrodes <ol><li> Nettoyez toutes les coussinets avec un tampon d&#39;alcool saturé ou avec de l&#39;eau et du savon. </li><li> Quatre électrodes sont nécessaires, une pour chaque pied. </li><li> Fixez les électrodes sur le milieu de la patte et fixez-les avec du ruban adhésif. </li><li> Twist ou tresser les câbles ECG autour de l&#39;autre afin de minimiser la formation de boucles qui causer des interférences avec le signal ECG. </li></ol> 2. Numérisation 2.1. Le positionnement de l&#39;animal et de surveillance <ol><li> Placez le rat en décubitus dorsal ou sujettes sur le tube de l&#39;imagerie et de positionner le coeur au centre de la bobine. </li><li> Disposer le rat de sorte que son nez se repose dans le cône qui délivre isoflurane (2-3% en oxygène 1 L / min). Le rat est autorisé à respirerlibrement dans l&#39;ensemble de la procédure d&#39;imagerie. </li><li> Placer la sonde du thermomètre à l&#39;orifice anal et le fixer sur la table avec du ruban adhésif. </li><li> La température corporelle est maintenue à 38 ± 1 ° C par un système de chauffage à eau chaude. Le tapis chauffant est placé sous l&#39;aspect inférieur de l&#39;animal, qui s&#39;étend à l&#39;extérieur de la bobine. S&#39;il vous plaît voir la représentation schématique du dispositif expérimental IRM (figure 2) pour plus de détails. </li><li> Connecter les électrodes ECG, une fois que le signal ECG est stable commencer imagerie. </li></ol> 2.2. Paramètres de protocole scan / Imaging <ol><li> Dans cette étude, un système Philips Ingenia 3.0T IRM clinique avec une bobine de solénoïde avec un diamètre intérieur de 70 mm a été utilisée [configuration système requise MR sont un petit trou (par exemple 16 cm) ou gros calibre (taille humaine, par exemple 65 cm) avec dédiée petit animal bobine, les capacités de déclenchement ECG pour le rythme cardiaque jusqu&#39;à 500/min, l&#39;approvisionnement en oxygène et un système d&#39;évacuation des gaz anesthésiques]. </li><li> Commencez par une enquête pour localiser le coeur au centre du champ IRM de vue. </li><li> Une fois que la position est correcte, continuer avec deux chambres et quatre chambre ciné vues IRM pour déterminer la géométrie de l&#39;empilement des images de l&#39;axe court. </li><li> Pour SALLI, la position mi-cavité tranche de l&#39;axe court sur les images en deux et à quatre chambre (PreSALLI). Une combinaison de la durée d&#39;acquisition 4000 ms et 4000 ms Durée de relaxation permet un recouvrement suffisant de l&#39;aimantation le long de l&#39;axe z et évite la surchauffe des gradients. Pour permettre l&#39;analyse fonctionnelle, phases devraient être fixés à au moins 12, avec sous-échantillonnage temporel de facteur 2 pour accélérer l&#39;acquisition. </li><li> Injecter l&#39;agent de contraste à base de gadolinium dans le cathéter à demeure, sans déplacer le rat. Attendez cinq minutes. </li><li> Commencez à planifier SALLI comme multislice pile de l&#39;axe court, composé d&#39;au moins 7 tranches (tranche épaisseur 2,4 mm). Positionner les tranches de telle sorte que la plus distale est en dessous de la pointe du coeur et til haut niveau est juste en aval des valves cardiaques. Faire en sorte que les axes courts sont perpendiculaires à la cloison. Presque toutes les 30 minutes (environ trois Sallis) d&#39;injecter une nouvelle dose de produit de contraste. </li><li> Lorsque l&#39;acquisition de l&#39;image est terminée, retirez le rat à partir du scanner et lui permettre de se remettre de l&#39;anesthésie. </li></ol> 3. Reconstruction de l&#39;image reconstruction de l&#39;image peut être effectué soit en ligne en utilisant les paramètres de reconstruction prédéfinis ou hors ligne à l&#39;aide d&#39;un outil dédié à la reconstruction de l&#39;image: 3.1. Reconstruction en ligne <ol><li> Différents paramètres peuvent être définis, notamment: </li></ol><ul><li> Pour la cartographie T1: emplacement et la largeur de la fenêtre de reconstruction à l&#39;intérieur du cycle cardiaque (par exemple de 50 à 100 ms pour atteindre systolique carte T1 à 300/min taux de coeur) </li><li> Pour IR-préparés (LGE) images: l&#39;emplacement et la largeur du temps d&#39;inversion (TI) fenêtre et nombre d&#39;images à wi reconstruitmince que la fenêtre (par exemple TI 100-300 ms, 5 images, de générer 5 images LGE avec TI 100-150-200-250-300 msec). </li></ul> 3.2. Hors ligne reconstruction <ol><li> Lorsque vous utilisez un logiciel dédié (GyroTools, Zürich, Suisse) pour la reconstruction de l&#39;image, extraire les trois ensembles de données (Cine MR, récupération inversion et cartes T1) d&#39;une manière plus interactive. </li><li> Ajustez la définition de bout en systole ou à la fin de diastole pour le T1 en sélectionnant l&#39;image de ciné correspondant. </li><li> Visualiser des cartes T1 sous forme de cartes de couleur. Trouvez les valeurs exactes en passant la souris sur une zone d&#39;intérêt. Les images peuvent être stockées dans différents formats d&#39;image pour une analyse plus poussée (par exemple, le calcul de l&#39;ECV de pré-et post-contraste valeurs T1 du myocarde et une piscine de sang) 12. </li></ol>

<ol><li>Messroghli, D. R., Nordmeyer, S., Buehrer, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+animal+Look-Locker+inversion+recovery+%28SALLI%29+for+simultaneous+generation+of+cardiac+T1+maps+and+cine+and+inversion+recovery-prepared+images+at+high+heart+rates%3A+initial+experience%5BTitle%5D)+AND+%22Radiology%22%5BJournal%5D)">Small animal Look-Locker inversion recovery (SALLI) for simultaneous generation of cardiac T1 maps and cine and inversion recovery-prepared images at high heart rates: initial experience.</a> Radiology. 261 (1), 258-2565 (2011).</li>
<li>Messroghli, D. R., Nordmeyer, S., Dietrich, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessment+of+diffuse+myocardial+fibrosis+in+rats+using+small-animal+Look-Locker+inversion+recovery+T1+mapping%5BTitle%5D)+AND+%22Circ.+Cardiovasc.+Imaging%22%5BJournal%5D)">Assessment of diffuse myocardial fibrosis in rats using small-animal Look-Locker inversion recovery T1 mapping.</a> Circ. Cardiovasc. Imaging. 4 (6), 636-640 (2011).</li>
<li>Flett, A. S., Hayward, M. P., Ashworth, M. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Equilibrium+contrast+cardiovascular+magnetic+resonance+for+the+measurement+of+diffuse+myocardial+fibrosis%3A+preliminary+validation+in+humans%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Equilibrium contrast cardiovascular magnetic resonance for the measurement of diffuse myocardial fibrosis: preliminary validation in humans.</a> Circulation. 122 (2), 138-144 (2010).</li>
<li>Arheden, H., Saed, M., Higgins, C. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+the+distribution+volume+of+gadopentetate+dimeglumine+at+echo-planar+MR+imaging+to+quantify+myocardial+infarction%3A+comparison+with+99mTc-DTPA+autoradiography+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Radiology%22%5BJournal%5D)">Measurement of the distribution volume of gadopentetate dimeglumine at echo-planar MR imaging to quantify myocardial infarction: comparison with 99mTc-DTPA autoradiography in rats.</a> Radiology. 211 (3), 698-708 (1999).</li>
<li>Messroghli, D. R., Walters, K., Plein, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myocardial+T1+mapping%3A+application+to+patients+with+acute+and+chronic+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Magn.+Reson.+Med%22%5BJournal%5D)">Myocardial T1 mapping: application to patients with acute and chronic myocardial infarction.</a> Magn. Reson. Med. 58 (1), 34-40 (2007).</li>
<li>O H-Ici, D., Ridgway, J., Kuehne, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiovascular+magnetic+resonance+of+myocardial+edema+using+a+short+inversion+time+inversion+recovery+%28STIR%29+black-blood+technique%3A+Diagnostic+accuracy+of+visual+and+semi-quantitative%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Cardiovascular magnetic resonance of myocardial edema using a short inversion time inversion recovery (STIR) black-blood technique: Diagnostic accuracy of visual and semi-quantitative.</a> 14 (1), (2012).</li>
<li>Sagar, S., Liu, P. P., Cooper, L. T. Jr <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myocarditis%5BTitle%5D)+AND+%22Lancet%22%5BJournal%5D)">Myocarditis.</a> Lancet. 379, 738-747 (2012).</li>
<li>Skouri, H. N., Dec, G. W., Friedrich, M. G., Cooper, L. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noninvasive+imaging+in+myocarditis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Coll.+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Noninvasive imaging in myocarditis.</a> J. Am. Coll. Cardiol. , 2085-2093 (2006).</li>
<li>Zagrosek, A., Abdel-Aty, H., Boyé, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+magnetic+resonance+monitors+reversible+and+irreversible+myocardial+injury+in+myocarditis%5BTitle%5D)+AND+%22JACC+Cardiovasc.+Imaging%22%5BJournal%5D)">Cardiac magnetic resonance monitors reversible and irreversible myocardial injury in myocarditis.</a> JACC Cardiovasc. Imaging. 2 (2), 131-138 (2009).</li>
<li>Friedrich, M. G., Sechtem, U., Schulz-Menger, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiovascular+magnetic+resonance+in+myocarditis%3A+a+JACC+White+Paper%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Am.+Coll.+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Cardiovascular magnetic resonance in myocarditis: a JACC White Paper.</a> J. Am. Coll. Cardiol. 54, 1475-1487 (2009).</li>
<li>Korkusuz, H., Esters, P., Naguib, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Acute+myocarditis+in+a+rat+model%3A+late+gadolinium+enhancement+with+histopathological+correlation%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+Radiol%22%5BJournal%5D)">Acute myocarditis in a rat model: late gadolinium enhancement with histopathological correlation.</a> Eur. Radiol. 19 (11), 2672-2678 (2009).</li>
<li>Ugander, M., Oki, A. J., Hsu, L. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+volume+imaging+by+magnetic+resonance+imaging+provides+insights+into+overt+and+sub-clinical+myocardial+pathology%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+Heart+J%22%5BJournal%5D)">Extracellular volume imaging by magnetic resonance imaging provides insights into overt and sub-clinical myocardial pathology.</a> Eur. Heart J. 33 (10), 1268-1278 (2012).</li>
<li>Gilson, W. D., Kraitchman, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+magnetic+resonance+imaging+in+small+rodents+using+clinical+1.5%5BTitle%5D)+AND+%22T+and%22%5BJournal%5D)">Cardiac magnetic resonance imaging in small rodents using clinical 1.5.</a> T and. 3 (1), 35-45 (2007).</li>
<li>Messroghli, D. R., Radjenovic, A., Kozerke, S., Higgins, D. M., Sivananthan, M. U., Ridgway, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modified+Look-Locker+inversion+recovery+%28MOLLI%29+for+high-resolution+T1+mapping+of+the+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Magnetic+resonance+in+medicine%22%5BJournal%5D)">Modified Look-Locker inversion recovery (MOLLI) for high-resolution T1 mapping of the heart.</a> Magnetic resonance in medicine. 52 (1), 141-146 (2004).</li>
</ol>

Toutes les procédures d&#39;animaux ont été effectuées en conformité avec les lignes directrices pour le soin et l&#39;utilisation des animaux de laboratoire, et approuvés par les autorités locales de protection des animaux. Aucun conflit d&#39;intérêt déclaré.

Nous présentons ici une méthode pour générer des multi-modalité (ciné MR, inversion-récupération et T1 cartes) IRM chez les petits animaux. La recherche du petit animal joue un rôle de plus en plus important dans la recherche de la maladie cardio-vasculaire, et CMR est un outil puissant qui nous permet d&#39;étudier la composition fonction, la structure et le tissu du myocarde. Toutefois, les petites CMR animal a un certain nombre de défis uniques en raison de la fréquence cardiaque élevée et la petite taille du cœur. A...

La myocardite est une cause majeure d&#39;insuffisance cardiaque aiguë, la mort subite, et une cardiomyopathie dilatée chronique 7. CMR a été établi que la technique de référence pour la mesure de la fonction et à l&#39;analyse des tissus in vivo. Techniques et les améliorations en matière d&#39;imagerie imagerie novatrices pourraient non seulement améliorer le diagnostic de myocardite, mais aussi aider l&#39;étude de la physiopathologie et l&#39;identification de la vitesse des cibles thérapeutiques 8-10. Imagerie du petit animal est un outil important pour l&#39;étude des maladies cardio-vasculaires. Techniques couramment utilisées dans les essais cliniques CMR, comme la fin de gadolinium (LGE) ne peuvent pas facilement être transférés à petit CMR animaux en raison des taux élevés de coeur de l&#39;animal, mais pourraient déjà être présentés 11. La petite reprise d&#39;inversion Look-Locker animale (SALLI) approche génère des données d&#39;image multi-modales fixe permettant l&#39;évaluation globale de fois la fonction cardiaque et de la morphologie (Figures 1 ae 3). Ici, nous montrons, dans le détail, la procédure et la configuration pour imagerie du petit animal avec un protocole typique SALLI. En particulier, nous montrons la reconstruction et l&#39;analyse des ensembles de données d&#39;imagerie T1.

<table><tbody><tr><td>Ruban adhésif (Silkafix)</td><td>Lohmann und Rauscher</td><td>34327</td><td></td></tr><tr><td>Gadopentetat-Dimeglumin (Magnevist)</td><td>Bayer</td><td>G-00012163</td><td>2mmol/Kg</td></tr><tr><td>Introcan Safety-W (G24)</td><td>B. Braun</td><td>4254503-01</td><td></td></tr><tr><td>Red Dot, Électrode de surveillance néonatale avec fil de plomb pré-attaché</td><td>3M</td><td>2269T</td><td></td></tr><tr><td>Colle pour la peau (Histoacryl)</td><td>B. Braun</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1050052 Balances (Typ 440)</td><td>Kern</td><td>95088</td><td></td></tr><tr><td>Désinfection cutanée (Softasept, N)</td><td>B. Braun Petzold</td><td>360250</td><td></td></tr><tr><td>Thermomètre </td><td>LumaSense Technologies</td><td>Luxtron 812</td><td></td></tr></tbody></table>

l&#39;évaluation de la fonction cardiaque et la morphologie du myocarde en utilisant de petits inversion recovery look-casier animale (salli) irm chez les rats

Assessment of Cardiac Function and Myocardial Morphology Using Small Animal Look-locker Inversion Recovery (SALLI) MRI in Rats

L&#39;imagerie par résonance magnétique du petit animal est un outil important pour étudier la fonction cardiaque et des changements dans le tissu myocardique. Les fréquences cardiaques élevées de petits animaux (200 à 600 battements / min) ont déjà limité le rôle de l&#39;imagerie CMR. Petit récupération d&#39;inversion Look-Locker animale (SALLI) est une séquence de cartographie T1 pour les petits animaux de surmonter ce problème 1. Cartes T1 fournissent des informations quantitatives sur les altérations des tissus et de la cinétique de l&#39;agent de contraste. Il est également possible de détecter les processus du myocarde diffuses telles que la fibrose interstitielle ou un œdème 1-6. En outre, à partir d&#39;un seul ensemble de données d&#39;image, il est possible d&#39;examiner la fonction cardiaque et la cicatrisation du myocarde en générant ciné et l&#39;inversion récupération préparés fin de gadolinium amélioration de type IRM 1. La vidéo présentée montre, étape par étape, les procédures à effectuer des petits imagerie CMR animal. Ici, il est présenté avec une Sprague-Dawl santéey rat, mais naturellement elle peut être étendue à des petits modèles animaux cardiaques.

Ici, nous démontrons les résultats d&#39;une saine Sprague Dawley. Avec une installation animal bien préparés, nous avons décrit précédemment, il est possible d&#39;obtenir un signal ECG stable. Semblable à des protocoles d&#39;IRM cardiaques humaines, nous commençons par une enquête pour localiser le cœur. Si la position du rat dans la bobine est correcte, nous continuons avec une vue à deux chambres et une vue à quatre chambre à détecter la géométrie de la pile SALLI. La technique SALLI pr...

Contraste amélioré l&#39;imagerie par résonance magnétique cardiaque (CMR) permet complet<em&gt; In vivo</em&gt; Évaluation du cœur dans les petits modèles animaux de maladies cardiovasculaires. Ici, nous détaillons les procédures à effectuer CMR imagerie, la reconstruction et l&#39;analyse en utilisant Petit Inversion Recovery Lock-Locker animale (SALLI) chez le rat.

L&#39;évaluation de la fonction cardiaque et la morphologie du myocarde en utilisant de petits Inversion Recovery Look-casier animale (SALLI) IRM chez les rats

Small animal magnetic resonance  imaging is an important tool to study cardiac function and changes in myocardial  tissue. The high heart rates of small ...

L'objectif général de cette procédure est de générer des ensembles de données d'imagerie par résonance magnétique multimodale permettant une évaluation complète de la fonction cardiaque et de la morphologie chez le rat. Cela est réalisé en fixant d'abord des électrodes aux coussinets des pattes du rat. Ensuite, l'animal est positionné dans l'appareil d'IRM.L'analyse est ensuite lancée selon une acquisition multislice, à temps d'accès court, adaptée aux petits animaux. Des séquences de type inversion de récupération ou de récupération Sally sont nécessaires. Enfin, les images sont reconstruites en ligne ou hors ligne.En fin de compte, des résultats peuvent être obtenus permettant l'étude de la fonction et de la morphologie cardiaque chez un petit modèle animal par imagerie par résonance magnétique cardiaque. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine des études fonctionnelles et morphologiques du cœur chez les petits animaux, telles que la myocardite ou l'infarctus. Moulage dans les inscriptions.Après avoir anesthésié un rat dans une chambre d'induction remplie de 5 % d'ISO fluoré, vérifiez le niveau de sédation à l'aide d'une pincée sur l'orteil, puis pesez-le, fixez un embout nasal et administrez 2 à 3 % d'ISO fluoré dans de l'oxygène afin de maintenir l'anesthésie pendant le reste de la procédure. À l'aide d'eau tiède et de savon, nettoyez la queue du rat pour rendre les vaisseaux sanguins plus visibles.À l’aide d’un cathéter intraveineux de calibre 22 à 24, pénétrer dans l’une des veines à environ un tiers de la distance depuis l’extrémité de la queue. Si la tentative échoue, effectuer la canulation plus en amont. Prélever un échantillon sanguin pour l’analyse de l’hématocrite et utiliser une colle cutanée ainsi que du ruban adhésif pour fixer le cathéter intraveineux.Ensuite, nettoyez les coussinets de l'animal à l’aide d’alcool ou d’eau savonneuse. Fixez ensuite une électrode au centre de chaque coussinet et utilisez du ruban adhésif pour la maintenir en place afin de minimiser la formation de boucles pouvant interférer avec le signal du ECG. Torsadez étroitement les câbles du ECG les uns autour des autres afin de maintenir la température corporelle du rat à 38 ± 1 degré Celsius.Placez d'abord un tapis chauffant dans le contenant d'imagerie. Insérez ensuite le capteur du thermomètre dans l'orifice anal d'environ un à deux centimètres. Le système utilisé dans cette étude est un système IRM clinique Phillips Engenia 3,0 T équipé d'une bobine en forme de solénoïde de 70 millimètres de diamètre intérieur. Placez le rat en position dorsale ou ventrale dans le contenant d'imagerie, de sorte que son cœur se trouve au centre de la bobine.Ensuite, connectez les électrodes de l'ECG et attendez un signal stable avant de commencer l'acquisition d'images. Commencez par une vue d'ensemble afin de localiser le cœur au centre du champ de vision de l'IRM. Une fois la position correcte obtenue, poursuivez avec les vues IRM de Sydney à deux et quatre chambres pour déterminer la géométrie de la série d'images en coupes axiales courtes. Positionnez la coupe axiale courte de la cavité ventriculaire au milieu sur les images à deux et quatre chambres. Utilisez une combinaison de durée d'acquisition de 4 000 millisecondes et de durée de relaxation de 4 000 millisecondes afin de permettre une récupération suffisante de l'aimantation selon l'axe Z et d'éviter toute surchauffe des gradients.Pour permettre l'analyse fonctionnelle, réglez les phases à au moins 12 avec un sous-échantillonnage temporel d'un facteur deux afin d'accélérer l'acquisition. Ensuite, sans déplacer le rat, injectez l'agent de contraste à base de gadolinium dans le cathéter indwelling. Attendez ensuite cinq minutes pour permettre le signal du pool sanguin dans la cavité du VG.Diminuer. Établir Sally comme une coupe multislice en coupe courte, composée d'au moins sept coupes de 2,4 millimètres d'épaisseur. Positionner les coupes de manière à ce que la plus distale se situe sous l'apex du cœur et que le niveau supérieur soit juste distal aux valves cardiaques, en veillant à ce que les axes courts soient perpendiculaires au septum.Après environ trois cycles de cellules ou à des intervalles de 30 minutes, injectez des doses supplémentaires d'agent de contraste. Enfin, lorsque l'acquisition d'images est terminée, retirez l'animal du scanner et laissez-le se remettre de l'anesthésie avant de le ramener dans sa cage. Dans l'établissement d'hébergement, pour effectuer la reconstruction hors ligne des images, choisissez la phase cardiaque à partir de laquelle extraire les données.Par exemple, pour les cartes T1 en phase systolique ou diastolique, ajustez la définition de la fin de la systole ou de la fin de la diastole pour TT1 en sélectionnant l'image ciné correspondante. Utilisez des cartes de couleurs pour visualiser les valeurs de T1, qui fournissent des mesures exactes en passant la souris sur une zone d'intérêt. Enfin, stockez les images dans différents formats d'image pour une analyse ultérieure.La technique Sally présentée dans cette vidéo produit simultanément trois types d'images. Les premières sont des images d'arsine pouvant être utilisées pour étudier la fonction ventriculaire gauche locale et globale. Les paramètres du VG évalués à l'aide d'un logiciel d'IRM cardiaque comprennent les volumes systolique et en fin de diastole, la fraction d'éjection et la masse. Les multiples images IR avec différents temps TI nominaux constituent le deuxième type de jeu de données obtenu, à partir duquel on peut sélectionner les images présentant une annulation optimale du myocarde normal.Cela permet une amélioration maximale des zones présentant une fibrose myocardique focale ou des cicatrices, comme requis pour l'imagerie LGE. Troisièmement, comme illustré ici, des cartes de T1 sont générées et doivent montrer des temps de relaxation homogènes dans le myocarde sain. Avant l'administration de l'agent de contraste à base de gado-pentéate DTPA, le myocarde présente un T1 plus court que celui du sang dans la cavité du VG ; dans les premières minutes suivant l'injection du produit de contraste, le T1 du sang diminue plus que celui du myocarde. Les données présentées ici, provenant d'un animal sain, montrent un comportement homogène du T1 sur l'ensemble du myocarde. En présence d'une lésion myocardique, par exemple un infarctus du myocarde, le T1 est raccourci dans la région affectée. Les cartes de T1 peuvent être reconstruites pour n'importe quelle phase du cycle cardiaque.Dans cette figure, le panneau supérieur montre un schéma de séquence d'impulsions après une impulsion d'inversion de 180 degrés. Les données d'image pour le premier segment radial, représentées par des secteurs colorés de cercles, sont échantillonnées en continu pour des phases cardiaques consécutives représentées par des cercles de tailles différentes et des cycles cardiaques illustrés par des couleurs de cercles distinctes, durant une période prédéfinie de publicité. Pendant que l'aimantation récupère avec une constante de temps T un astérisque, la résolution temporelle.Par exemple, le nombre de phases cardiaques est théoriquement limité par le temps de répétition minimal après un rd prédéfini, durant lequel la remise en place de la magnétisation se produit sans perturbations induites par des lectures, avec une constante de temps T un. Le processus est répété pour le segment radial suivant, et ainsi de suite. Dans la première étape de la reconstruction des cartes de T un, les images brutes correspondant au nombre de cycles cardiaques inclus dans AD sont reconstruites à partir de toutes les données d'image disponibles acquises durant une fenêtre temporelle prédéfinie à l'intérieur de l'intervalle RRR.Par exemple, lors de la systole, dans une deuxième étape, un ajustement non linéaire de courbe est effectué pixel par pixel, et les valeurs T1* obtenues sont corrigées afin de tenir compte de l'écart induit par la lecture sur la courbe de récupération de l'aimantation, permettant ainsi de générer une carte T1 à partir de ces images brutes pour un intervalle prédéfini après inversion, par exemple entre 100 et 300 millisecondes. Un ensemble d'images préparées par inversion avec des pas prédéfinis de temps d'inversion, tels que 25 millisecondes, est alors reconstruit à partir de toutes les données d'images disponibles dans cet intervalle. Comme illustré ici, des images ciné pour un nombre prédéfini de phases cardiaques sont reconstruites à partir de toutes les données d'images disponibles au-delà du moment où toute l'aimantation longitudinale dans le champ de vision a récupéré d'au moins 90 %. Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée en environ deux heures, incluant la préparation de l'animal, l'acquisition et la reconstruction des images, à condition d'être exécutée correctement.

assessment-cardiac-function-myocardial-morphology-using-small-animal

Research

Recherche

JoVE Journal

Medicine

Médecine

Ce travail décrit les procédures de base de non-invasive du petit animal par IRM et...

Non invasive In Vivo Petits animaux IRM et SRM: base des procédures expérimentales

Nous décrivons comment effectuer une imagerie IRM et TEP du cœur de souris. Le protocole est conçu pour évaluer l’efficacité du traitement dans des modèles d’infarctus du myocarde et d’insuffisance cardiaque.

IRM et la TEP dans les modèles de souris de l&#39;infarctus du myocarde

Cette étude démontre l’établissement réussi de l’imagerie par microscopie par résonance magnétique en tant qu’outil non invasif pour évaluer les anomalies cardiaques chez les souris atteintes de myocardite auto-immune.  Les données indiquent que la technique peut être utilisée pour surveiller la progression de la maladie chez les animaux vivants.

Évaluation non invasive de la Cardiac Malformations en auto-immune expérimentale myocardite par résonance magnétique microscopie imagerie chez la souris

Cette méthode décrit l’utilisation de la microtomodensitométrie quantique (MicroCT) pour évaluer la morphologie, la fonction, la perfusion, le métabolisme et la viabilité cardiaques avec un agent de contraste iodé chez des souris atteintes d’ischémie myocardique induite expérimentalement. La technique peut être appliquée pour l’imagerie longitudinale in vivo non destructive à haut débit de divers modèles animaux de maladies cardiaques humaines.

In Vivo évaluation quantitative de la structure du myocarde, Fonction, perfusion et la viabilité utilisant la tomographie cardiaque Micro-calculées

L’évaluation post-mortem de l’infarctus du myocarde (IM) chez les rongeurs est basée sur la quantification de l’infarctus sur des coupes cardiaques colorées. Nous décrivons une méthode précise pour quantifier la taille de l’infarctus en utilisant un échantillonnage systématique de cœurs de rats récoltés de la base à l’apex et des analyses d’images de coupes histologiques colorées en trichrome.

Quantification histologique chronique Infarctus du myocarde chez le rat

Un protocole non-invasif pour l'évaluation transthoracique d'échocardiographie de l'anatomie cardiaque et de la fonction pour des rats adultes est présenté dans l'étude courante. Les valves cardiaques, les quatre chambres cardiaques et l'aorte ascendante, l'arc aortique et l'aorte descendante sont étudiées en détail.

Évaluation échocardiographique de l'anatomie cardiaque et de la fonction chez les rats adultes

Cet article présente une méthode efficace pour effectuer l’ischémie myocardique et la reperfusion chronique suivante chez les rats utilisant une approche mini-invasive. En outre, la fonction hémodynamique ventriculaire gauche des rats est évaluée par échocardiographie et méthodes cardiaques de travail isolées.

Méthode invasive semi-minimale pour induire l’infarctus du myocarde chez les rats et l’évaluation de la fonction cardiaque par un système cardiaque de travail isolé

Cette étude décrit un protocole complet d’imagerie par résonance magnétique cardiovasculaire (CMR) pour quantifier les paramètres fonctionnels ventriculaires gauches du cœur de la souris. Le protocole décrit l’acquisition, le post-traitement et l’analyse des images CMR ainsi que l’évaluation de différents paramètres fonctionnels cardiaques.

Quantification de la fonction ventriculaire gauche du cœur de souris, de la tension myocardique et des forces hémodynamiques par imagerie par résonance magnétique cardiovasculaire

Nous présentons ici un protocole d’imagerie expérimentale pour la quantification de la fonction cardiaque et de la morphologie à l’aide de la tomographie par émission de positons à haute résolution / tomodensitométrie pour les petits animaux. Les souris et les rats sont pris en compte, discutant des différentes exigences des agents de contraste par tomodensitométrie pour les deux espèces.

Tomographie cardiaque à émission de positons à haute résolution/tomodensitométrie pour petits animaux

Langendorff mode de perfusion cardiaque isolée, en collaboration...

L&#39;évaluation de la fonction cardiaque et Energétique dans les coeurs isolés de souris à l&#39;aide<sup&gt; 31</sup&gt; P NMR Spectroscopy

Découvrez l'IRM cardiaque SALLI pour évaluer la fonction et la morphologie myocardique chez le rat. Cette technique multimodale permet d'étudier les maladies cardiovasculaires avec précision.

Lévaluation de la fonction cardiaque et la morphologie du myocarde en utilisant de petits Inversion Recovery Look-casier animale (SALLI) IRM chez les rats (Vidéo) | JoVE Journal

L'évaluation de la fonction cardiaque et la morphologie du myocarde en utilisant de petits Inversion Recovery Look-casier animale (SALLI) IRM chez les rats

Explorer plus de vidéos