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Un dosage d'immunoadsorption par enzyme lié ELISA (de enzyme-linked immunosorbent assay) est typiquement réalisé pour détecter la présence et/ou la quantité d'une protéine d'intérêt cible dans un échantillon expérimental. La détection de la protéine cible est rendue possible par les anticorps, qui font de l'ELISA un dosage immunologique. A travers une série d'étapes d'incubation et de lavages, ces anticorps, qui sont généralement liés, ou conjugués, à un enzyme, détecteront une protéine adsorbée au fond d'un puit de la microplaque. Lorsqu'il est exposé à un substrat, l'enzyme lié à l'anticorps provoque un changement de couleur, indiquant ainsi la présence de la protéiné d'intérêt dans l'échantillon.
Dans cette vidéo, la théorie derrière comment les ELISAs fonctionnent est expliquée, incluant une discussion sur les liaisons de l'anticorps primaire et secondaire et l'importance des étapes de blocage. La théorie est suivie par la pratique, comme la vidéo passe à l'explication de la procédure pas-à-pas. Finalement, des variations de l'ELISA standard telles que l'ELISA en sandwich et l'ELISA par compétition sont introduites, et les utilisations de cette méthode dans la vie de tous les jours , tel que le test de grossesse en vente libre, sont expliqués.
L'ELISA, ou dosage d'immunoadsorption par enzyme lié (de enzyme-linked immunosorbent assay), est une méthode largement utilisée pour la détermination de la présence ou absence d'une protéine cible spécifique.
Via une série d'étapes de lavages et d'attaches, un anticorps conjugué ou lié à un enzyme va reconnaitre une protéine cible au fond d'une plaque à 96 puits. Lorsque du substrat est ajouté à l'échantillon, une réaction enzymatique va avoir lieu, causant un changement de couleur qui permet l'identification et la quantification de la protéine cible.
Avant que nous discutions de comment réaliser une ELISA, familiarisons-nous avec l'équipement et les réactifs dont nous aurons besoin.
Le matériel pour une réaction ELISA est typiquement une plaque à 96 puits à fond plat. Les fonds plats des puits vont faciliter une distribution égale de votre échantillon expérimental, ainsi que l’accrochage et la détection des anticorps.
ELISA détecte la présence de protéines cibles spécifiques dans des solutions aqueuses expérimentales. L'urine, le milieu de culture cellulaire, et le sérum sont des échantillons expérimentaux communs.
Dans une ELISA, l'anticorps qui se lie directement à la protéine cible est l'anticorps primaire. Il a une haute affinité, ce qui veut dire, une haute capacité à se lier fermement, à un épitope – une zone spécifique – de la protéine cible. L'anticorps primaire est habituellement non-labellisé, ou non-conjugué.
Comme mentionné, les anticorps se lient généralement à leurs protéines cible par une liaison de haute affinité à un épitope spécifique. Cependant, l'échantillon expérimental peut contenir des morceaux de cellules qui expriment des sites de liaison non-spécifiques, sites qui peuvent se lier au non-épitope spécifique, qui est une zone des anticorps détecteurs.
Donc, l'ajout d'un tampon de blocage est essentiel dans la procédure ELISA pour recouvrir tout site de liaison non-spécifique dans votre échantillon expérimental. Sinon vous pourrez avoir des réactions enzymatiques apparaissant dans les puits qui ne contiennent pas de protéine cible, vous donnant une donnée faussement positive!
L'anticorps secondaire dans une ELISA est l'anticorps utilisé pour reconnaitre l'anticorps primaire. Cet anticorps est habituellement conjugué à un enzyme. Parfois l'anticorps secondaire a un nom cool. Par exemple, si l'anticorps secondaire est fait, ou élevé, dans un âne pour reconnaitre un anticorps primaire élevé dans une chèvre, l'anticorps secondaire serait appelé un anticorps âne anti-chèvre. Lorsqu'il s'agit de nommer les anticorps secondaires, le premier nom indique l'organisme qui a produit l'anticorps secondaire, et le second nom représente l'organisme qui produit l'anticorps primaire.
Un substrat, qui se lie au site actif de l'enzyme lié à l'anticorps secondaire, sera aussi nécessaire. La réaction chimique qui apparait pendant cette réaction provoque un changement de couleur dans le substrat qui sans cela est incolore. Ce bien nommé test colorimétrique permet l'identification et la quantification de la présence de la protéine cible.
La réaction enzymatique va continuer tant qu'il y a du substrat. Donc, après une brève période d'incubation, une solution d'arrêt, qui provoque encore un autre changement de couleur pour indiquer que la réaction a en effet bien été arrêtée, est ajouté aux puits.
Un lecteur de microplaque sera utilisé pour quantifier la concentration de la protéine d'intérêt dans chaque puit par la lecture de l'absorbance, qui est la quantité de produit coloré, dans chaque puit. L'absorbance est proportionnelle à la quantité de protéine cible présente.
Maintenant que vous avez tout votre équipement prêt, réalisons une ELISA!
Pour réaliser une ELISA standard, ou directe, enduisez d'abord les puits de la plaque à 96 puits avec votre protéine d'intérêt cible diluée dans un tampon d'enrobage. Mettez également dans la paque vos contrôles positif et négatif maintenant.
Après l'incubation de la plaque enduite pendant un temps assez long pour que la protéine puisse adsorber complétement, ou attacher, au fond de la plaque, jetez l'excès de solution d'enrobage avec un mouvement brusque du poignet.
Ensuite bloquez toute liaison non-spécifique possible ou signal de fond en incubant chaque puit dans un tampon de blocage.
Maintenant jetez le tampon de blocage et lavez les puits avec une incubation rapide à température ambiante dans un tampon phosphate salin, ou PBS, et 1% de BSA.
Pendant que les puits sont rincés avec du PBS, préparez les dilutions à concentration connue de la protéine cible pour créer une courbe standard. L'absorbance des puits de la courbe standard, qui contient des concentrations connues de la protéine cible, sera utilisée pour calculer la concentration de la protéine cible dans vos puits d'échantillons expérimentaux sur base de la comparaison de l'absorbance des puits d'échantillon à l'absorbance des puits de la courbe standard.
Maintenant il est temps d'ajouter l'anticorps de détection ou anticorps primaire!
La plaque est ensuite incubée, généralement à température ambiante, pour permettre à un nombre suffisant d'anticorps de se lier à la protéine cible pour la détection et quantification en aval de la protéine.
Après l'incubation, l'anticorps en excès est retiré et les puits sont brièvement lavés avec du PBS.
L'anticorps secondaire est alors ajouté à la plaque, et la plaque est incubée encore une fois – typiquement sur une plateforme rotative – pour permettre à l'anticorps secondaire de se lier. Les étapes de lavage sont répétées comme précédemment.
Ensuite, ajoutez le substrat à la plaque pour voir quels puits contiennent la protéine cible. Couvrez la plaque pour protéger la réaction de la lumière, et après une incubation rapide, arrêtez la réaction avec une solution d'arrêt.
Finalement, placez la plaque dans le lecteur de microplaque pour mesurer l'absorbance ou la quantité de solution colorée, dans chaque puit. Vous devrez sélectionner quels puits vous voulez que le lecteur analyse. Lorsque l'instrument a fini de lire la plaque, une mesure de l'absorbance pour chaque puit s'affichera.
Il est important de noter que chaque kit d'ELISA a une limite de détection. C'est-à-dire que seulement les concentrations en protéine au-dessus et en-dessous des limites spécifiques peuvent être déterminées précisément. Des concentrations très faible en protéine sont généralement trop proche du niveau de coloration non spécifique de fond, tandis que des concentrations très élevées peuvent indiquer que l'excès de protéines ou d'anticorps n'a pas été lavé correctement dans cet échantillon de puits.
Alors, pourquoi devriez-vous réaliser une ELISA? Regardons quelques utilisations communes.
Le type d'ELISA probablement le plus commun est l'ELISA en sandwich.
Dans une ELISA en sandwich, une plaque à 96 puits est d'abord enduite avec un anticorps primaire qui reconnait la protéine d'intérêt cible.
Après le lavage des échantillons en excès par PBS, un anticorps secondaire lié à un enzyme est ajouté, suivi par un substrat colorimétrique.
L'absorbance est alors mesurée de la même manière que pour une ELISA typique. Par exemple, dans cette expérimentation, les données de l'ELISA seront utilisées pour déterminer quelles lignées de cellules produisent l'anticorps humain avec la plus haute affinité pour - qui a la plus grande capacité à se lier précisément à – son antigène cible.
Le test de grossesse en vente libre est un type d'ELISA en sandwich.
Lorsque l'urine de la femme potentiellement enceinte est ajoutée au test, les anticorps primaires à enzyme lié attachés au test vont se lier à l'hormone de grossesse hCG si elle est en présence. Si la femme est enceinte, une réaction enzyme-substrat aura lieu lorsque les anticorps primaires seront reconnus au site de test par les anticorps secondaires liés au substrat, et une ligne colorée va apparaitre.
Un autre type d'ELISA est l'ELISA par compétition, qui peut être utilisé pour détecter la présence d'anticorps.
Si les anticorps d'intérêt sont présents dans l'échantillon, ils vont se lier à la protéine cible attachée au fond de la plaque. Après, lorsque les anticorps détecteurs à enzyme liés sont ajoutés à la plaque, ils vont trouver peu à aucunes protéines pour se lier; ils sont mis “hors compétition” par les anticorps d'intérêt dans l'échantillon expérimental.
Dans une ELISA par compétition, de ce fait, les puits colorés indiquent les échantillons qui ne contiennent pas l'anticorps d'intérêt. Les échantillons de plasma de patients sont typiquement analysés par ELISA par compétition en vue de déterminer si les anticorps pour certains pathogènes, comme le virus VIH, sont présents dans l'échantillon.
Vous venez de visionner l'introduction de JoVE à la réalisation d'une ELISA. Dans cette vidéo nous avons vu: ce qu'est une ELISA et comment elle fonctionne; quels équipement et réactifs vous avez besoin pour réaliser une ELISA; et quelques utilisations différentes de cette analyse. Merci de nous avoir regardé, et souvenez-vous de ne pas laisser votre substrat se surdévelopper!
L’ELISA, ou test immuno-enzymatique, est une méthode largement utilisée pour déterminer la présence ou l’absence d’une protéine cible spécifique.
Via une série d’étapes de lavage et de liaison, un anticorps conjugué, ou lié, à une enzyme reconnaîtra une protéine cible au fond d’une plaque à 96 puits. Lorsque le substrat est ajouté à l’échantillon, une réaction enzymatique se produit, provoquant un changement de couleur qui permet l’identification et la quantification de la protéine cible.
Avant de discuter de la réalisation d’un ELISA, familiarisons-nous avec l’équipement et les réactifs dont vous aurez besoin.
Le réglage d’une réaction ELISA est généralement une plaque à fond plat de 96 puits. Le fond plat des puits facilitera une distribution uniforme de votre échantillon expérimental, ainsi que de vos anticorps de capture et de détection.
Les tests ELISA détectent la présence de protéines cibles spécifiques dans des solutions aqueuses expérimentales. L’urine, les milieux de culture cellulaire et le sérum sont des échantillons expérimentaux courants.
Dans un ELISA, l’anticorps qui se lie directement à la protéine cible est l’anticorps primaire. Il a une affinité élevée, c’est-à-dire une grande capacité à se lier étroitement, pour un épitope - une région spécifique - de la protéine cible. L’anticorps primaire est généralement non marqué ou non conjugué.
Comme nous l’avons mentionné, les anticorps se lient principalement à leurs protéines cibles par le biais d’une liaison à haute affinité à un épitope spécifique. Cependant, l’échantillon expérimental peut contenir des morceaux de cellules qui expriment des sites de liaison non spécifiques, des sites qui peuvent se lier à la région constante ou non spécifique à l’épitope de vos anticorps de détection.
Par conséquent, l’ajout d’un tampon de blocage est essentiel dans un ELISA pour couvrir tous les sites de liaison non spécifiques dans vos échantillons expérimentaux. Sinon, vous risquez d’avoir des réactions enzymatiques se produisant dans des puits qui ne contiennent pas de protéine cible, ce qui vous donne des données faussement positives !
L’anticorps secondaire d’un ELISA est l’anticorps utilisé pour reconnaître l’anticorps primaire. Cet anticorps est généralement conjugué à une enzyme. Parfois, l’anticorps secondaire a un nom funky. Par exemple, si l’anticorps secondaire produit ou est élevé chez un âne pour reconnaître un anticorps primaire élevé chez une chèvre, l’anticorps secondaire serait appelé anticorps anti-chèvre d’âne. Lorsqu’il s’agit de nommer des anticorps secondaires, le premier nom indique l’organisme qui a produit l’anticorps secondaire, et le deuxième nom représente l’organisme qui produit l’anticorps primaire.
Un substrat, qui se lie au site actif de l’enzyme liée à l’anticorps secondaire, sera également nécessaire. La réaction chimique qui se produit au cours de cette réaction provoque un changement de couleur dans le substrat autrement incolore. Ce dosage dit colorimétrique permet d’identifier et de quantifier la présence de la protéine cible.
La réaction enzymatique se poursuivra tant qu’il y aura du substrat disponible. Par conséquent, après une brève période d’incubation, une solution d’arrêt, qui provoque encore un autre changement de couleur pour indiquer que la réaction a en fait été arrêtée, est ajoutée aux puits.
Un lecteur de microplaques sera utilisé pour quantifier la concentration de la protéine d’intérêt dans chaque puits en lisant l’absorbance, c’est-à-dire la quantité de produit coloré, dans chaque puits. L’absorbance est proportionnelle à la quantité de protéine cible présente.
Maintenant que tout votre équipement est prêt, lançons un ELISA !
Pour effectuer un ELISA standard ou direct, enduisez d’abord les puits de la plaque de 96 puits avec la protéine d’intérêt cible diluée dans un tampon d’enrobage. Placez également vos contrôles positifs et négatifs à ce moment-là.
Après avoir incubé la plaque revêtue suffisamment longtemps pour donner à la protéine le temps de s’adsorber complètement, ou de se fixer au bas de la plaque, videz l’excès de solution de revêtement d’un simple mouvement du poignet.
Bloquez ensuite tout signal de liaison ou d’arrière-plan non spécifique en incubant chaque puits dans un tampon de blocage.
Maintenant, videz le tampon de blocage et lavez les puits avec une brève incubation à température ambiante dans une solution saline tamponnée au phosphate, ou PBS, et 1 % de BSA.
Pendant que les puits sont rincés avec du PBS, préparez des dilutions d’une concentration connue de la protéine cible pour créer une courbe standard. L’absorbance des puits de courbe standard, qui contiennent des concentrations connues de la protéine cible, sera utilisée pour calculer la concentration de protéine cible dans vos puits d’échantillon expérimentaux en fonction d’une comparaison de l’absorbance des puits d’échantillon à l’absorbance des puits de courbe standard.
Il est maintenant temps d’ajouter la détection ou l’anticorps primaire !
La plaque est ensuite incubée, généralement à température ambiante, pour permettre à une quantité suffisante d’anticorps de se lier à la protéine cible pour une détection et une quantification ultérieures de la protéine.
Après cette incubation, l’excès d’anticorps est éliminé et les puits sont brièvement lavés avec du PBS.
L’anticorps secondaire est ensuite ajouté à la plaque, et la plaque est à nouveau incubée ? Typiquement sur une plate-forme tournante ? pour permettre à l’anticorps secondaire de se lier. Les étapes de lavage sont répétées comme auparavant.
Ensuite, ajoutez le substrat à la plaque pour voir quels puits contiennent votre protéine cible. Couvrez la plaque pour protéger la réaction de la lumière, puis après une brève incubation, arrêtez la réaction avec une solution d’arrêt.
Enfin, placez votre plaque dans le lecteur de microplaques pour mesurer l’absorbance ou la quantité de solution colorée, dans chaque puits. Vous devrez sélectionner les puits que vous souhaitez que le lecteur analyse. Lorsque l’instrument a terminé de lire la plaque, une lecture de l’absorbance de chaque puits s’affiche.
Il est important de noter que chaque kit ELISA a une limite de détection. C’est-à-dire que seules les concentrations de protéines supérieures et inférieures à des limites spécifiques peuvent être déterminées avec précision. De très faibles concentrations de protéines sont généralement trop proches des niveaux de fond de coloration non spécifique, tandis que des concentrations très élevées peuvent indiquer que l’excès de protéines ou d’anticorps n’a pas été correctement éliminé dans cet échantillon.
Alors, pourquoi pourriez-vous effectuer un ELISA ? Jetons un coup d’œil à quelques applications courantes.
Le type d’ELISA le plus courant est probablement l’ELISA sandwich.
Dans un ELISA sandwich, une plaque de 96 puits est d’abord recouverte d’un anticorps primaire qui reconnaît la protéine cible d’intérêt.
Dans cette expérience, des milieux de culture cellulaire récoltés à partir de lignées cellulaires productrices d’anticorps humains ont été plaqués par un système automatisé sur des plaques de 96 puits pré-recouvertes d’un anticorps primaire qui reconnaît les anticorps humains.
Après avoir lavé l’échantillon en excès avec du PBS, un anticorps secondaire lié à une enzyme est ajouté, suivi d’un substrat colorimétrique.
L’absorbance est alors mesurée de la même manière que pour un ELISA typique. Par exemple, dans cette expérience, ces données ELISA seront utilisées pour déterminer quelles lignées cellulaires produisent l’anticorps humain ayant la plus grande affinité pour ? qui est la meilleure capacité à se lier avec précision à ? son antigène cible.
Le test de grossesse en vente libre est un type de sandwich ELISA.
Lorsque l’urine de la femme potentiellement enceinte est ajoutée au test, des anticorps primaires liés à des enzymes attachés au test se lient à l’hormone de grossesse hCG si elle est présente. Si la femme est enceinte, une réaction substrat-enyzme se produira lorsque les anticorps primaires seront reconnus par des anticorps secondaires liés au substrat sur le site d’essai, et une ligne colorée apparaîtra.
Un autre type d’ELISA est l’ELISA compétitif, qui peut être utilisé pour détecter la présence d’anticorps.
Si les anticorps d’intérêt sont présents dans l’échantillon, ils vont se lier à la protéine cible fixée au fond de la plaque. Plus tard, lorsque des anticorps de détection liés à des enzymes sont ajoutés à la plaque, les anticorps liés à des enzymes trouveront peu ou pas de protéines à lier ; Ils auront été « surpassés » par les anticorps d’intérêt dans l’échantillon expérimental.
Dans un ELISA compétitif, les puits colorés indiquent donc les échantillons qui ne contiennent en réalité pas l’anticorps d’intérêt ! Les échantillons de plasma de patients sont généralement analysés dans le cadre d’un test ELISA compétitif afin de déterminer si des anticorps contre certains agents pathogènes, comme le virus VIH, sont présents dans l’échantillon.
Vous venez de regarder l’introduction de JoVE à la réalisation d’un ELISA. Dans cette vidéo, nous avons examiné : ce qu’est un ELISA et comment il fonctionne ; l’équipement et les réactifs dont vous aurez besoin pour effectuer l’ELISA ; et certaines applications différentes du test. Merci d’avoir regardé, et n’oubliez pas de ne pas laisser votre substrat se surdévelopper !
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