Name: Inchworming: A Novel moteur Stéréotypie dans le BTBR T + Itpr3 Tf / J modèle de souris de lautisme (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-07-05T16:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 3 s
Description: Découvrez le comportement d'inchworming chez les souris BTBR T + Itpr3tf/J, une stéréotypie motrice liée au trouble du spectre autistique. Cette méthode d'analyse vidéo permet d'évaluer la durée, la fréquence et la latence pour développer des interventions thérapeutiques.

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Les auteurs sont reconnaissants pour l&#39;assistance technique et logistique et l&#39;expertise fournie par Rose Tobias, Younghee Ahn et David N. Ruskin. Le travail décrit ici a été financé par la Fondation Hôpital de l&#39;Alberta Children et l&#39;Institut de recherche en santé de l&#39;Alberta Children.

Toutes les procédures ont été effectuées en accord avec le Comité de protection des animaux du Canada et approuvés par l&#39;Université de Calgary Comité de protection des animaux. 1. Préparation des animaux <ol><li> Isoler les souris la nuit (12 h) avant le test. Pour ce faire, placer tous les BTBR et souris B6 (P35-P40) nécessaires à l&#39;analyse expérimentale dans des cages par eux-mêmes, le jour avant le test. </li><li> Placer la souris isolée dans la chambre d&#39;analyse comportementale 30 min avant le test de sorte que les animaux ne s&#39;habituent au nouvel environnement. </li></ol> 2. Préparation du matériel <ol><li> Placez les cm en plexiglas 30 x 30 box avec un couvercle amovible dans la salle d&#39;examen. Placer la boîte sur une table et la position de la caméra vidéo à un angle à partir du bas de 45 °; cet endroit de la caméra permettre une visualisation de la totalité du sol de l&#39;enceinte et la souris. Utilisez un éclairage infrarouge pour aider à minimiser les reflets de la paroi dela boîte. </li><li> Utilisez une caméra vidéo qui possède une fonction de zoom élevé avec des capacités infrarouges pour optimiser le tournage dans un environnement de faible lux. Mise au point sur l&#39;enceinte agrandissement de l&#39;image de sorte que les souris sont visualisées à travers la boîte entière. </li><li> Couvrir tout le plancher de la boîte avec de la literie de la sciure de bois (qui devrait être d&#39;environ 1 pouce de profondeur). </li></ol> 3 Procédure de test <ol><li> Placer une paire intra-souche de souris (BTBR - BTBR ou B6-B6) à l&#39;intérieur de l&#39;enceinte d&#39;essai. </li><li> Éteignez les lumières dans la salle d&#39;examen. </li><li> Lancer la caméra vidéo pour enregistrer et quitter la salle. Cela permettra d&#39;éviter expérimentateur influence sur le comportement des souris. Enregistrer l&#39;activité de 11 min. </li><li> Une fois l&#39;enregistrement terminé, re-entrer dans la salle d&#39;essai et revenir les souris dans leurs cages à domicile d&#39;origine. </li><li> Disposer de la litière de sciure de bois, laver la zone d&#39;essai entière avec 70% d&#39;éthanol, et placer une nouvelle literie de sciure de bois dans le fond de l&#39;essaienceinte. </li><li> Répétez toute la procédure pour le reste des paires intra-tache et retourner les souris dans leurs cages à domicile d&#39;origine. </li></ol> Remarque: Pour vérifier la fiabilité des données de inchworming, la procédure peut être répétée les jours suivants avec différents BTBR-BTBR et B6-B6 combinaisons de paires. Cela permettra d&#39;assurer que le comportement observé ne dépend pas de partenaire spécifique dans l&#39;enceinte, mais l&#39;individu inchworming. 4. Analyse des données <ol><li> Inchworming est défini comme le mouvement synchrone vers l&#39;intérieur et vers l&#39;extérieur de l&#39;avant-et pattes postérieures de l&#39;animal, avec un minimum d&#39;une co-occurrence vers l&#39;intérieur puis mouvement vers l&#39;extérieur ultérieure qui déplace efficacement la literie. Manuelle regarder et marquer chaque vidéo deux fois (une fois pour chaque souris) afin de déterminer la durée totale, la fréquence et la latence à arpenteuse dans les 10 min vidéo. Manuel de notation inchworming durée, la fréquence et la latence devrait être basé sur le suiviment définitions: Inchworming Durée: Est défini comme le temps total de chaque souris dépense engagé dans le comportement de inchworming. Pour marquer cet aspect de inchworming, utiliser une minuterie qui peut être démarré et arrêté. Commencer le chronométrage lorsque la souris commence à arpenteuse et arrêter le chronomètre lorsque la souris s&#39;arrête inchworming. Quand et si la souris commence à arpenteuse de nouveau, re-départ et ré-arrêter le chronomètre. Répéter le démarrage et l&#39;arrêt de la minuterie pour la durée de 10 min de la période d&#39;observation chaque fois que les arpenteuses de la souris. Cela va générer un score de durée de inchworming qui est 0:00-10:00 min. Fréquence Inchworming: est défini comme le nombre de fois que la souris met en prise dans le comportement inchworming dans la période d&#39;observation de 10 min. Un compte unique est attribué à chaque démarrage de la souris et les arrêts inchworming. Le score de fréquence inchworming sera un nombre entre 0 et ∞. Latence de Inchworm: Est défini comme le temps eau passe avant la première apparition de inchworming. Lancer le chronomètre lorsque la vidéo commence, ce sera le temps de 0:00, et arrêter le chronomètre lorsque les arpenteuses de la souris pour la première fois. Si la souris ne s&#39;affiche pas le comportement inchworming la latence à arpenteuse sera 10h00. Lors de l&#39;analyse de latence à arpenteuse, un score 0:01-10:00 min sera obtenu. Les souris qui ne arpenteuse pendant la durée de la période de test doivent être retirés de la population de l&#39;échantillon afin de s&#39;assurer que les résultats sont pertinents pour une population de souris qui présentent le comportement de inchworming. </li> <li> Calcul de la fréquence et de la durée totale de inchworming pour chaque souris dans la vidéo. Calculer le temps nécessaire pour la première souris dans la paire de chenille arpenteuse de la latence à arpenteuse pour cette paire spécifique de la souris. Ces paramètres sont basés sur le travail méthodologique préalable liée à des comportements de creusement répétitives chez la souris 6. </li><li> Calculer la durée moyenne, la fréquence,et la latence de creuser pour chaque groupe expérimental dans l&#39;analyse (par exemple BTBR vs B6). Utilisez une analyse de variance ou un test t de comparer les données entre les souches / groupes expérimentaux. Remarque: Lorsque la procédure est terminée sur une deuxième journée, utilisez une ANOVA à mesures répétées pour s&#39;assurer qu&#39;il n&#39;y avait pas d&#39;effets procès ultérieurs ou des effets d&#39;appariement. </li></ol>

<ol><li>McFarlane, H. G., Kusek, G. K., Yan, M., Phoenix, J. L., Bolivar, V. J., Crawley, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autism-like+behavioral+phenotypes+in+BTBR+T%2Btf%2FJ+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Genes%2C+Brain%2C+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Autism-like behavioral phenotypes in BTBR T+tf/J mice.</a> Genes, Brain, and Behavior. 7, 152-163 (2008).</li>
<li>Crawley, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Designing+mouse+behavioral+tasks+relevant+to+autistic-like+behaviors%5BTitle%5D)+AND+%22Mental+Retardation+and+Developmental+Disabilities+Research+Reviews%22%5BJournal%5D)">Designing mouse behavioral tasks relevant to autistic-like behaviors.</a> Mental Retardation and Developmental Disabilities Research Reviews. 10 (4), 248-258 (2004).</li>
<li>Deacon, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digging+and+marble+burying+in+mice%3A+simple+methods+for+in+vivo+identification+of+biological+impacts%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Digging and marble burying in mice: simple methods for in vivo identification of biological impacts.</a> Nature Protocols. 1 (1), 122-124 (2006).</li>
<li>Thomas, A., Burant, A., Bui, N., Graham, D., Yuva-Paylor, L. A., Paylor, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Marble+burying+reflects+a+repetitive+and+perseverative+behavior+more+than+novelty-induced+anxiety%5BTitle%5D)+AND+%22Psychopharmacology%22%5BJournal%5D)">Marble burying reflects a repetitive and perseverative behavior more than novelty-induced anxiety.</a> Psychopharmacology. 204, 361-373 (2009).</li>
<li>Dudek, B. C., Adams, N., Boice, R., Abbott, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+influences+on+digging+behaviours+in+mice+%28Mus+musculus%29+in+laboratory+and+seminatural+settings%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Comparative+Psychology%22%5BJournal%5D)">Genetic influences on digging behaviours in mice (Mus musculus) in laboratory and seminatural settings.</a> Journal of Comparative Psychology. 97 (3), 249-259 (1983).</li>
<li>Webster, D., Williams, M. H., Owens, R., Geiger, V., Dewsbury, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Digging+behavior+in+12+taxa+of+muriod+rodents%5BTitle%5D)+AND+%22Animal+Learning+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Digging behavior in 12 taxa of muriod rodents.</a> Animal Learning and Behavior. 9 (2), 173-177 (1981).</li>
<li>Pobbe, R. H., Pearson, B. L., Defensor, E., Bolivar, V. J., Blanchard, D. C., Blanchard, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Expression+of+social+behaviours+of+C57BL%2F6J+versus+BTBR+inbred+mouse+strains+in+the+visible+burrow+system%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+Brain+Research%22%5BJournal%5D)">Expression of social behaviours of C57BL/6J versus BTBR inbred mouse strains in the visible burrow system.</a> Behavioural Brain Research. 214, 443-449 (2010).</li>
<li>Lewis, M. H., Tanimura, Y., Lee, L., Bodfish, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Animal+models+of+restricted+repetitive+behavior+in+autism%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+Brain+Research%22%5BJournal%5D)">Animal models of restricted repetitive behavior in autism.</a> Behavioural Brain Research. 176, 66-74 (2007).</li>
<li>Silverman, J. L., Yang, M., Lord, C., Crawley, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioural+phenotyping+assays+for+mouse+models+of+autism%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews%22%5BJournal%5D)">Behavioural phenotyping assays for mouse models of autism.</a> Nature Reviews. 11, 490-502 (2010).</li>
<li>Deacon, R., Rawlins, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hippocampal+lesions%2C+species-typical+behaviours+and+anxiety+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+Brain+Research%22%5BJournal%5D)">Hippocampal lesions, species-typical behaviours and anxiety in mice.</a> Behavioural Brain Research. 156, 241-249 (2005).</li>
<li>Pearson, B. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Motor+and+cognitive+sterotypies+in+the+BTBR+T%2Btf%2FJ+mouse+model+of+autism%5BTitle%5D)+AND+%22Genes%2C+Brain%2C+and+Behavior%22%5BJournal%5D)">Motor and cognitive sterotypies in the BTBR T+tf/J mouse model of autism.</a> Genes, Brain, and Behavior. 10, 228-235 (2011).</li>
<li>Pobbe, R. H., Defensor, E., Pearson, B. L., Bolivar, V. J., Blanchard, D. C., Blanchard, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((General+and+social+anxiety+in+the+BTBR+T%2B+tf%2FJ+mouse+strain%5BTitle%5D)+AND+%22Behavioural+Brain+Research%22%5BJournal%5D)">General and social anxiety in the BTBR T+ tf/J mouse strain.</a> Behavioural Brain Research. 216 (1), 446-451 (2011).</li>
</ol>

Les auteurs n&#39;ont rien à révéler.

Inchworming est un roman mesure du comportement répétitif qui peut être utilisée pour étudier de nombreux troubles qui présentent des stéréotypies tels que les TSA. Il ya 4 étapes qui sont d&#39;une importance cruciale pour générer des données de inchworming fiables du protocole d&#39;interaction sociale des mineurs modifié: 1) la période d&#39;isolement prolongé est essentiel à l&#39;épreuve de inchworming et ne doit pas être retiré du protocole ou raccourcie. Cette exigence est spécifique aux tests de inchworming en p...

Bien que la physiopathologie des troubles du spectre autistique (TSA) reste incertaine, le diagnostic dépend de la présence de trois grandes catégories de symptômes: la réciprocité sociale anormale, troubles de la communication, et / comportements stéréotypés répétitifs 1. La plupart des modèles de rongeurs sont incapables de reproduire simultanément les trois des symptômes chez un seul animal. Ainsi, les modèles qui peuvent simuler de manière fiable certains ou tous les aspects de la maladie détiennent une grande valeur pour le développement de stratégies préventives et thérapeutiques efficaces. Un modèle qui fait afficher les trois aspects de la TSA est le 1,2 de la souris BTBR. En combinaison avec les vocalisations ultrasoniques et des tests d&#39;approche sociale, le test d&#39;interaction sociale des mineurs est couramment utilisé pour caractériser des modèles murins de TSA pédiatrique; Ces tests mesurent diminué et les comportements sociaux anormaux qui représentent les caractéristiques fondamentales de TSA. En plus du test d&#39;interaction sociale juvénile, de nombreux autrestests ont été utilisés pour mesurer des comportements stéréotypés dans des modèles animaux de TSA. Par exemple, le test d&#39;enfouissement de marbre, qui examine la tendance d&#39;un animal à déplacer litière utilisant le museau et les pattes avant dans l&#39;effort pour couvrir un objet, est pensé pour mesurer des comportements stéréotypés compulsifs qui se produisent en réponse à des stimuli aversif 3,4. Par conséquent, les tests de creusement ont été mises en œuvre pour quantifier ce comportement répétitif dans des modèles animaux de TSA et différentes espèces de rongeurs 3,5-7. Comportements de creusement sont définies comme des actions dirigées évidentes du museau ou les pattes pour déplacer des matériaux de litière et ont été émis l&#39;hypothèse d&#39;être un paramètre sensible du comportement moteur répétitif 4. Nous rapportons ici un type de creusement de roman, que nous avons appelé &quot;inchworming,&quot; dans la souche BTBR de souris. La caractérisation de ce nouveau problème peut fournir une mesure robuste d&#39;un comportement moteur répétitif qui peut être utilisé pour de plus amples vallidation des modèles de rongeurs tels que les TSA, «la maladie de Huntington ou le comportement obsessionnel-compulsif 8,9. Nous définissons le &quot;inchworming&quot; comme au moins un mouvement synchrone des parties avant et des membres postérieurs vers l&#39;intérieur, suivi par un déplacement synchrone vers l&#39;extérieur, ce qui conduit au déplacement du matériau de litière. Cela diffère de comportement typique de creusement de plusieurs façons. En premier lieu, le comportement inchworming est généralement observée comme une combinaison d&#39;épisodes plutôt qu&#39;un seul événement isolé. En revanche, le trou peut se produire seul mouvement coordonné soit la biche ou pattes antérieures 3. En outre, les mouvements inchworming tendance à se produire à l&#39;horizontale à travers le plancher de l&#39;enceinte, par opposition à des positions fixes qui sont caractéristiques de creuser des comportements. Enfin, le comportement inchworming décrit ci-dessous se produit fréquemment dans la souche pure de souris BTBR mais est rarement identifié dans la souche témoin de B6, tandis que les comportements de creusement typiques sont communs dans les souches B6 et BTBR de souris <sup&gt; 10. Les procédures d&#39;essai de inchworming décrites dans cette étude représentent des modifications d&#39;un mineur protocole d&#39;interaction sociale standard 1. Étant donné que l&#39;enfouissement de marbre, creuser, et le jeu des mineurs ont établi la valeur de mesure de comportement anormal dans des modèles murins de TSA, le comportement de inchworming complète ces mesures précédemment définies de comportements stéréotypés. En particulier, le comportement inchworming fournit une mesure utile de la baisse des stéréotypies motrices de l&#39;ordre qui sont couramment identifiés dans les TSA 8,11. En outre, cette nouvelle procédure de inchworming peut fournir aux chercheurs un outil supplémentaire précieux pour l&#39;analyse des comportements moteurs répétitifs pertinentes à des troubles du développement tels que les TSA.

<table><tbody><tr><td>Boîte en plexiglas de 30 cm x 30 cm avec couvercle</td><td></td><td></td><td>Peut être construit </td></tr><tr><td>Caméra IR </td><td>Survshop (Calgary, Alberta)</td><td>Caméra CCD Sony DP955V- 30&#8217 ; Dôme d’armure infrarouge</td><td>Trouvez une caméra avec des capacités de haute résolution et de zoom</td></tr><tr><td>Supercircuits DVR</td><td>(Austin, Texas)</td><td>NOIR DVR de sécurité H.264 4 canaux de classe entreprise avec graveur de DVD Capacité</td><td>de données élevée</td></tr><tr><td>Sciure de bois</td><td></td><td></td><td>Identique au matériau de la literie </td></tr></tbody></table>

inchworming: a novel moteur stéréotypie dans le btbr<em&gt; t<sup&gt; +</sup&gt; itpr3<sup&gt; tf</sup</em&gt; / j modèle de souris de l&#39;autisme

Inchworming: A Novel Motor Stereotypy in the BTBR T+ Itpr3tf/J Mouse Model of Autism

Les troubles du spectre autistique (TSA) est un trouble neurologique du développement comportemental défini caractérisé par l&#39;interaction sociale réciproque diminué, communication anormale, et des comportements répétitifs avec intérêt restreint. Comme le diagnostic repose sur des critères cliniques, des modèles de rongeurs potentiellement pertinentes de ce trouble hétérogène devraient idéalement récapituler ces traits comportementaux divers. Le tf BTBR T + Itpr3 / J (BTBR) souris est un modèle animal établi de TSA, affichant des comportements répétitifs tels que l&#39;augmentation de toilettage, ainsi que la rigidité cognitive. En ce qui concerne l&#39;interaction sociale et de l&#39;intérêt, le test de lecture mineur a été utilisée dans plusieurs modèles de rongeurs de TSA. Ici, nous montrons que lorsque les souris BTBR sont testés dans une enceinte de l&#39;interaction sociale des mineurs contenant de la litière de sciure de bois, ils affichent un mouvement de creusement synchrone répétitif. Ce comportement répétitif du moteur, dénommé &quot;inchworming&quot;, a été nomméen raison de la nature des mouvements stéréotypés présentées par les souris tout en déplaçant horizontalement dans le sol. Souris Inchworming doivent utiliser leurs membres antérieurs et postérieurs membres en synchronie pour déplacer la literie, l&#39;exécution d&#39;un minimum d&#39;un intérieur et un mouvement vers l&#39;extérieur. Bien que les souris (B6) BTBR C56BL/6J et présentent ce comportement, les souris BTBR démontrent une durée sensiblement plus élevée et la fréquence des inchworming et une diminution du temps de latence pour initier inchworming lorsqu&#39;il est placé dans une enceinte lits. Nous concluons que ce comportement nouvellement décrit fournit une mesure d&#39;une stéréotypie moteur répétitif qui peut être facilement mesurée dans des modèles animaux de TSA.

La version modifiée du test de lecture mineur décrit ici peut être utilisé pour observer et analyser le comportement de creusement répétitif roman appelé inchworming. Inchworming est exposée à une plus grande mesure par les souris BTBR que les contrôles B6. Dans une session typique de 10 min, les souris BTBR affichera le comportement de inchworming distincte (synchrone vers l&#39;intérieur et vers l&#39;extérieur mouvement des pattes dans un effort pour déplacer la litière de sciure de bois) pendant environ 5 minutes, s...

Inchworming est un mouvement de creusement synchrone très répétitif affichée par BTBR T + RTI 3TF / J (BTBR) souris lorsqu&#39;il est placé dans une cage de test avec une literie de sciure suffisante. La procédure est une modification du protocole d&#39;interaction sociale des mineurs et est utilisée ici pour évaluer stéréotypies motrices répétitives pertinentes pour troubles du spectre autistique.

Inchworming: A Novel moteur Stéréotypie dans le BTBR<em&gt; T<sup&gt; +</sup&gt; Itpr3<sup&gt; Tf</sup</em&gt; / J modèle de souris de l&#39;autisme

Autism Spectrum Disorder (ASD) is a behaviorally defined neurodevelopmental disorder characterized by decreased reciprocal social interaction, abnormal ...

L'objectif général de cette procédure est d'utiliser un test de jeu modifié chez les jeunes souris afin d'observer le comportement de « inch worming », une stéréotypie motrice nouvelle. Cela s'accomplit d'abord en isolant socialement chaque souris 12 heures avant le début du test, avec nourriture et eau indépendantes. La deuxième étape consiste à installer la caméra vidéo selon un angle de 45 degrés par rapport à l'enceinte de test.Ensuite, les souris isolées sont placées par paires dans l'enceinte où elles sont filmées pendant une durée de 11 minutes dans l'obscurité. La dernière étape consiste à analyser le comportement de type « ver de terre » à partir de la vidéo, afin de mesurer la durée, la fréquence et la latence du déplacement en « ver de terre ». En définitive, cette méthode permet l'analyse des neuropathies motrices et peut servir d'indicateur pour l'évaluation de nouvelles interventions thérapeutiques.Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de l'autisme, comme l'incidence et la régulation des stéréotypies motrices. La démonstration visuelle de cette procédure est essentielle pour l'apprentissage de la tâche, car le phénotype comportemental est difficile à identifier et le comportement de type « ver de terre » se produit de manière rapide et répétitive. Préparez les souris BTBR et black six pour la procédure en les isolant dans des cages séparées pendant 12 heures pendant la nuit.Avant de procéder aux tests, les souris BTBR utilisées dans cette étude présentent tous les aspects principaux des troubles du spectre autistique observés chez la souris. Des souris noires six sont utilisées comme témoins le jour de l'expérience. Placer les souris isolées dans la salle d'analyse comportementale pendant 30 minutes avant les tests afin que les animaux s'habituent au nouvel environnement. Ensuite, placer une boîte en plexiglas de 30 par 30 centimètres, munie d'un couvercle amovible, en diagonale sur la table.Dans la salle de test, rétroéclairez la boîte à l’aide d’un projecteur infrarouge afin de minimiser les reflets. Ensuite, placez une caméra vidéo dotée d’une fonction de zoom élevé et de capacités infrarouges à un angle de 45 degrés, de sorte qu’elle puisse enregistrer l’ensemble du plancher de l’enceinte ainsi que la souris. Réglez la mise au point de la caméra sur l’enceinte afin que les souris puissent être visualisées dans toute la boîte.Une fois la boîte et la caméra installées, recouvrez entièrement le sol de la boîte avec de la litière de sciure de manière à obtenir une épaisseur d'environ 2,5 cm. Placez deux souris BTBR ou noires six simultanément dans l'enceinte de test, puis éteignez les lumières dans la pièce d'expérimentation. Ensuite, démarrez la caméra vidéo pour enregistrer et quittez la pièce afin d'éviter toute interférence ou influence sur le comportement des souris.Enregistrez l'activité pendant 11 minutes. Une fois l'enregistrement terminé, réentrez dans la salle de test et ramenez les souris dans leurs cages d'origine. Éliminez la litière de sciure.Lavez entièrement la boîte de test avec de l’éthanol à 70 %, puis placez une nouvelle litière de sciure au fond de l’enceinte de test sur une profondeur d’environ un pouce. Répétez l’ensemble de la procédure pour les autres paires de souches d’intérêt et remettez les souris dans leurs cages d’origine. Une fois terminé, afin de vérifier la fiabilité des données de déplacement en chenille, répétez la procédure les jours suivants avec différentes combinaisons de paires de souches d’intérêt BTBR et black six.Cela permettra de s'assurer que le comportement observé n'est pas influencé par un partenaire spécifique dans l'enceinte. Observer et noter manuellement chaque vidéo deux fois, une fois pour chaque souris, afin de déterminer la fréquence, la durée totale et la latence du comportement de « inch worm ». Dans les vidéos.Analyser chaque vidéo pendant 10 minutes, à partir du point temporel de trois secondes jusqu’à 10 minutes. Trois secondes. Définir le mouvement de ver de terre comme le déplacement synchrone, vers l’intérieur et vers l’extérieur, des pattes avant et arrière des animaux, avec un minimum d’un mouvement vers l’intérieur simultané suivi d’un mouvement ultérieur vers l’extérieur, qui déplace effectivement la litière. Noter la durée du comportement de ver de terre comme le temps total passé par chaque souris à effectuer ce comportement.Pour évaluer cet aspect du déplacement en chenille, utilisez un chronomètre pouvant être démarré et arrêté. Commencez le chronométrage lorsque la souris commence à avancer en chenille et arrêtez le chronomètre lorsque la souris s'immobilise. Si la souris recommence à progresser en chenille, relancez le chronomètre et laissez-le tourner jusqu'à ce qu'elle s'arrête de nouveau.Cela générera un score de durée de réchauffement de l'incise compris entre zéro et 10 minutes. Définir la fréquence de réchauffement de l'incise comme le nombre de fois où la souris adopte le comportement de réchauffement de l'incise. Pendant la période d'observation de 10 minutes, un point est attribué chaque fois que la souris commence et arrête l'activité.Progression en chenille. Définir la latence de la progression en chenille comme le temps écoulé avant le premier début de ce mouvement. Démarrer le chronomètre au début de la vidéo et l'arrêter lorsque la souris progresse en chenille pour la première fois.Si la souris n'affiche pas le comportement de rampe comme un ver, la latence au ramper sera de 10 minutes. Ensuite, calculez la fréquence totale et la durée du ramper comme un ver pour chaque souris sur la vidéo. La moyenne des deux souris est utilisée comme fréquence totale et durée pour cette vidéo.Ensuite, déterminez le temps nécessaire au premier souris du couple pour effectuer le déplacement en chenille (two inch worm) ainsi que la latence du déplacement en chenille. Pour cette paire spécifique de souris, retirez les souris qui n'effectuent pas le déplacement en chenille pendant toute la durée de la période de test de la population échantillonnée, afin de garantir que les résultats soient pertinents pour une population de souris présentant le comportement de déplacement en chenille. Calculez la durée moyenne, la fréquence et la latence de creusement pour chaque groupe expérimental lors de l'analyse, puis utilisez une ANOVA ou des tests T pour comparer les données entre les souches au sein des groupes expérimentaux. Après le deuxième jour de test, utilisez une ANOVA à mesures répétées pour s'assurer qu'il n'y avait aucun effet de test ultérieur ou d'appariement dans les données présentées.Voici la fréquence moyenne, la durée et la latence de l'apparition du mouvement de chenille observées chez des paires de souris BTBR et souris black six. La souche BTBR a présenté une fréquence et une durée de mouvement de chenille significativement plus élevées, ainsi qu'une latence significativement plus courte que la souche contrôle black six. Lorsque ces tests ont été répétés avec des associations différentes, aucune différence significative n'a été observée, ce qui confirme que les effets ne dépendaient ni de combinaisons spécifiques de souris ni de la répétition des tests. Lors de la réalisation de cette procédure, il est important de ne comptabiliser que le mouvement de chenille défini comme le déplacement synchrone vers l'intérieur et vers l'extérieur des membres antérieurs et postérieurs de l'animal. Après la maîtrise de cette procédure.D'autres méthodes, comme l'administration de médicaments, peuvent être ajoutées au paradigme afin d'aborder des questions supplémentaires, telles que les cibles thérapeutiques des comportements stéréotypés.

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Les vocalisations ultrasonores de souris sont utilisées comme substituts pour modéliser les bases génétiques des déficits de communication vocale dans les modèles murins pour les troubles neuropsychiatriques. Le présent protocole décrit trois contextes expérimentaux qui déclenchent de manière fiable des vocalisations ultrasonores chez les petits (tout au long du développement) et les souris adultes (interactions entre personnes du même sexe, interactions entre mâles et femelles avec œstrus).

Enregistrement souris vocalisations ultrasoniques pour évaluer la Communication Sociale

Les comportements restreints et répétitifs (RRB) d’ordre supérieur perturbent la vie des personnes touchées.  Ces comportements sont difficiles à modéliser chez les rongeurs, ce qui rend difficile la recherche biomédicale fondamentale sur les traitements ou les interventions potentiels pour les ORR.  Ici, nous décrivons l’exploration de nouveaux objets en tant qu’essai potentiel pour les RRB d’ordre supérieur chez la souris.

Novel Exploration de l&#39;objet comme un test potentiel pour ordre supérieur Comportements répétitifs chez la souris

Nous présentons des protocoles pour générer des modèles expérimentaux aigus et chroniques d’expression tic chez les rats se comportant librement. Les modèles sont basés sur l’implantation de canules striatales et l’application ultérieure de l’antagoniste GABAA. Le modèle aigu utilise des injections transitoires tandis que le modèle chronique utilise des perfusions prolongées via une pompe mini-osmotique implantée sous-cutanée.

Génération de modèles expérimentaux aigus et chroniques d’expression tic motrice chez le rat

Ce protocole décrit deux tests sensibles pour discriminer les déficiences motrices légères, modérées et sévères dans les modèles C. elegans de sclérose latérale amyotrophique, avec une utilité générale pour les souches de C. elegans , avec une motilité altérée.

Évaluation de l’insuffisance motrice dans les modèles C. elegans de la sclérose latérale amyotrophique

Ce manuscrit présente un ensemble de tests comportementaux hautement reproductibles pour valider un modèle murin du syndrome d’Angelman.

Caractérisation comportementale d’un modèle murin du syndrome d’Angelman

Le trouble du spectre autistique (TSA) est associé à un comportement social et communicatif altéré et à l’émergence d’un comportement répétitif. Pour étudier l’interrelation entre les gènes TSA et les déficits comportementaux dans le modèle de la drosophile , cinq paradigmes comportementaux sont décrits dans cet article pour mesurer l’espacement social, l’agressivité, la parade nuptiale, le toilettage et le comportement d’habituation.

Paradigmes pour l’évaluation comportementale dans le modèle de trouble du spectre autistique de la drosophile

Les modèles de rongeurs sont des outils précieux pour étudier les comportements de base liés aux troubles du spectre autistique (TSA). Dans cet article, nous nous penchons sur deux tests comportementaux permettant de modéliser les principales caractéristiques des TSA chez la souris : l’auto-toilettage, qui évalue le comportement répétitif, et le test d’interaction sociale à trois chambres, qui documente les déficiences sociales.

Stratégies d’évaluation des comportements de type autistique chez la souris

Ce protocole décrit un test comportemental pour évaluer la dominance sociale chez les rongeurs à l’aide du test en tube. La dominance sociale reste stable au fil du temps, et plusieurs modèles de troubles développementaux et neurologiques présentent de fortes anomalies de dominance sociale. Par conséquent, le test en tube sert de mesure de résultat pratique pour les études mécanistes ou le dépistage thérapeutique préclinique.

Évaluation de la dominance sociale dans des modèles murins à l’aide du test en tube

Découvrez le comportement d'inchworming chez les souris BTBR T + Itpr3tf/J, une stéréotypie motrice liée au trouble du spectre autistique. Cette méthode d'analyse vidéo permet d'évaluer la durée, la fréquence et la latence pour développer des interventions thérapeutiques.

Inchworming: A Novel moteur Stéréotypie dans le BTBR

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