Name: La méthode la Culture Slice pour la suite du développement des germes de dents dans explantation Culture (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-11-13T20:30:00.000+00:00
Duration: 7 min 47 s
Description: Découvrez la culture de tranches de mandibules fœtales de souris pour observer le développement des germes dentaires in vitro. Cette méthode permet le traçage de lignées cellulaires et l'étude de la dynamique tissulaire dentaire.

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Sarah A. Alfaqeeh est financé par Genre Saud University College of Dentistry, Ministère de l&#39;Enseignement Supérieur, Royaume d&#39;Arabie Saoudite.

Une. Set Up <ol><li> Aiguisez les instruments de dissection (en utilisant une pierre à aiguiser lubrifié avec de l&#39;huile minérale) et stériliser avant utilisation pour la culture d&#39;organes à l&#39;aide d&#39;un spray d&#39;éthanol à 70% et la stérilisation à chaleur sèche. Affûter les aiguilles de dissection par électrolyse dans de l&#39;hydroxyde de sodium 2 M en utilisant une alimentation de 12 V. </li><li> Préparer le milieu de culture utilisé pour la dissection et la culture d&#39;organes embryonnaires, consistant en la modification F12 Eagle Medium avancée Dulbecco (DMEM F12) complété avec 1% GlutaMAX et 1% de pénicilline-streptomycine. </li></ol> 2. Embryon Dissection <ol><li> Abattre une femme enceinte accouplés chronométré en utilisant une méthode horaire un tel qu&#39;approuvé par le Home Office ou autre organe. Disséquer la peau autour de l&#39;abdomen inférieur, et couper ouvrir l&#39;abdomen avec des ciseaux. Repérez les deux cornes utérines, qui relient ensemble à la ligne médiane inférieure. </li><li> Disséquer l&#39;utérus et le placer dans un tube rempli de milieu sur la glace. EPMn sur de la glace, le tissu peut être laissée pendant plusieurs heures. </li><li> Enlever l&#39;utérus et les placer dans une boîte de Pétri en milieu sous le microscope. Où dissections d&#39;embryons possibles doivent être effectuées dans une hotte à flux laminaire pour minimiser la contamination. </li><li> Disséquer les embryons de l&#39;utérus et les libérer de leurs tissus extra-embryonnaires. </li><li> Décapiter les embryons en utilisant une aiguille de tungstène et de transférer les têtes dans une nouvelle boîte de milieu. </li><li> Isoler les mandibules de la tête en plaçant une aiguille dans la cavité buccale et couper vers l&#39;arrière de la tête (figures 1A et 1B). Mandibules isolées peuvent être stockés temporairement dans un milieu sur la glace en attendant pour hacher. </li><li> Pour les tranches mandibule ensemble des étapes E11.5 E15.5-sont idéales pour la culture des germes dent. Après E15.5 l&#39;os en développement dans la mandibule est trop dur pour hacher. tranches de dents peuvent encore être apportées, mais l&#39;os (l&#39;os alvéolaire dentaire et la formation) doivent d&#39;abord être éliminés pardissection avant de les hacher 9. Retirez soigneusement os en utilisant des aiguilles de tungstène et une pince. </li></ol> 3. Embryon tranchage <ol><li> Préparer les tranches de tissu mandibule en utilisant un broyeur de tissu de table standard (figure 1C). Utilisez une lame neuve après environ 200 mandibules, et assurez-vous qu&#39;il affleure avec le disque de montage quand il tombe. </li><li> Nettoyez le disque de montage et la lame avec 70% d&#39;éthanol avant utilisation. Il faut prendre soin lors de l&#39;utilisation de la machine, comme la lame est très pointue. </li><li> Régler le hacheur à une distance de coupe de 200 à 400 um entre fonction de l&#39;âge de l&#39;échantillon, et selon que l&#39;ensemble du germe dentaire est nécessaire. Réglez la pression de la lame au maximum. </li><li> Transférer une mandibule vers le disque de support en plastique à l&#39;aide d&#39;une pipette ou d&#39;une pince. Organiser la mandibule sur le disque en veillant à l&#39;orientation est toujours clair. La languette de développement peut être utilisé comme un point de repère utile pour déterminer l&#39;orientation. Pour molaires utilisation afRontal / orientation transversale (voir plan de découper la figure 1B), tandis que pour les incisives utiliser un coupe sagittale par la mandibule afin de refléter l&#39;orientation différente de ces dents à mesure qu&#39;ils grandissent (voir plan de découper la figure 2A). </li><li> Éliminer le milieu en excès à travers le tissu en utilisant un papier-filtre afin de sécher légèrement la mandibule sur le disque de montage. </li><li> Immédiatement après le séchage, placez le disque sur le tableau de l&#39;hélicoptère circulaire en acier inoxydable. Allumez la machine et appuyez sur start. Le tableau qui traverse automatiquement à partir de la gauche vers la droite alors que dans le même temps le bras portant la lame de hachage est élevée, et a chuté jusqu&#39;à 200 coups / min. </li><li> Eteignez la machine une fois que le tissu a été complètement tranché. Assurez-vous que le bras de la lame est en position relevée et retirez le disque. Ne pas placer les doigts sous le bras de la lame ou laisser la machine sans surveillance pour hacher. </li><li> Prenez le disque de montage et ajouter immédiatement milieu to les tranches sur le disque afin de prévenir l&#39;assèchement excessif. Dégagez délicatement le tissu en tranches de la partie inférieure du disque à l&#39;aide d&#39;une aiguille de tungstène et la pipette dans une petite boîte de Pétri de milieu (figure 2A). </li><li> Séparer les tranches à l&#39;aide d&#39;une aiguille, puis sélectionnez les tranches de tissu contenant le tissu d&#39;intérêt sous un stéréomicroscope (figures 1D, 1E, et 2B). Placer les tranches sélectionnées dans des boîtes de culture frais avec le milieu. </li></ol> 4. Tranche Culture <ol><li> Préparer des boîtes de culture organe central-bien prêts pour la culture en ajoutant environ 2 ml d&#39;eau à l&#39;autoclave pour le bien externe pour éviter la déshydratation, et par le positionnement d&#39;une grille métallique à travers le centre de l&#39;assiette (figures 3A et 3B). </li><li> Préparer des grilles métalliques par des bandes d&#39;environ 4 cm x 1,5 cm à partir de feuilles de treillis en acier inoxydable de coupe. Utilisez une perforatrice pour faire un trou au centre et plierles côtés pour créer une fin en quinconce. La grille doit être bien à plat à travers le puits central, couché parallèlement au fond de la cuvette (figures 3A et 3B). Autoclave pour stériliser les grilles avant de l&#39;utiliser. </li><li> Couper un morceau de téréphtalate de polyéthylène transparent (PET) membrane (taille des pores 0,4 um) suffisamment grand pour recouvrir le trou de la grille. Placer la membrane de coupe dans le plat avec la tranche sélectionnée. </li><li> Placez la tranche au-dessus de la membrane, puis soulevez délicatement la membrane de la moyenne, avec une tranche aplatie dans le centre. </li><li> Placer le filtre dans la grille sur le trou circulaire au centre, et à environ 1 ml de milieu de culture à la source, au niveau de la membrane. </li><li> Pour les manipulations ajouter des protéines ou des inhibiteurs de petites molécules dans le milieu (par exemple 8). </li><li> Photographier la tranche pour un enregistrement de la morphologie au jour 0 de la culture. </li><li> Placez les plats dans une atmosphère humidifiée de 5% de CO <sub&gt; 2 à 37 ° C dans un incubateur. </li><li> Photographier les cultures à intervalles réguliers pour en moyenne 7 jours. Changer le milieu de culture tous les 48-72 heures. Pour la photographie afficher les tranches avec une source de lumière de dessous (figures 2C-E). </li></ol> 5. Lineage traçage Si lignée traçage est nécessaire, des colorants lipophiles tels que Dil ou DiO peuvent être injectés dans le germe de la dent avant l&#39;étape 4, la culture de la tranche. <ol><li> Tirez aiguilles capillaires en verre à l&#39;aide d&#39;un extracteur d&#39;aiguilles. </li><li> Casser l&#39;embout de l&#39;aiguille en utilisant une pince et placer la pointe vers le bas dans la solution de colorant. Laissez agir quelques minutes tandis que le colorant remplit la pointe par capillarité. </li><li> Placez l&#39;aiguille rempli dans un support et fixer par un tuyau à un injecteur ou la bouche aspirateur. </li><li> Positionner la pointe de l&#39;aiguille dans le milieu de culture de toucher la zone de la tranche due à étiqueter. Appliquer une pression d&#39;air pour déplacer une petite quantité de colorant sur la une de l&#39;aiguilleD sur le tissu. </li><li> Retirer l&#39;aiguille et vérifier si l&#39;étiquetage en fluorescence. </li><li> Tranches marquées avec succès peuvent être transférées sur des filtres et cultivées comme décrit dans l&#39;étape 4. </li></ol>

<ol><li>Rothova, M., Peterkova, R., Tucker, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fate+map+of+the+dental+mesenchyme%3A+dynamic+development+of+the+dental+papilla+and+follicle%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+biology%22%5BJournal%5D)">Fate map of the dental mesenchyme: dynamic development of the dental papilla and follicle.</a> Developmental biology. 366, 244-254 (2012).</li>
<li>Ferguson, C. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activin+is+an+essential+early+mesenchymal+signal+in+tooth+development+that+is+required+for+patterning+of+the+murine+dentition%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+%26+development%22%5BJournal%5D)">Activin is an essential early mesenchymal signal in tooth development that is required for patterning of the murine dentition.</a> Genes & development. 12, 2636-2649 (1998).</li>
<li>Trowell, O. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+culture+of+mature+organs+in+a+synthetic+medium%5BTitle%5D)+AND+%22Experimental+cell+research%22%5BJournal%5D)">The culture of mature organs in a synthetic medium.</a> Experimental cell research. 16, 118-147 (1959).</li>
<li>Matalova, E., Antonarakis, G. S., Sharpe, P. T., Tucker, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+lineage+of+primary+and+secondary+enamel+knots%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+dynamics+%3A+an+official+publication+of+the+American+Association+of+Anatomists%22%5BJournal%5D)">Cell lineage of primary and secondary enamel knots.</a> Developmental dynamics : an official publication of the American Association of Anatomists. 233, 754-759 (2005).</li>
<li>Mitsiadis, T. A., Tucker, A. S., De Bari, C., Cobourne, M. T., Rice, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+regulatory+relationship+between+Tbx1+and+FGF+signaling+during+tooth+morphogenesis+and+ameloblast+lineage+determination%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+biology%22%5BJournal%5D)">A regulatory relationship between Tbx1 and FGF signaling during tooth morphogenesis and ameloblast lineage determination.</a> Developmental biology. 320, 39-48 (2008).</li>
<li>Diep, L., Matalova, E., Mitsiadis, T. A., Tucker, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contribution+of+the+tooth+bud+mesenchyme+to+alveolar+bone%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+experimental+zoology.+Part+B%2C+Molecular%22%5BJournal%5D)">Contribution of the tooth bud mesenchyme to alveolar bone.</a> Journal of experimental zoology. Part B, Molecular. 312B, 510-517 (2009).</li>
<li>Rothova, M., Feng, J., Sharpe, P. T., Peterkova, R., Tucker, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contribution+of+mesoderm+to+the+developing+dental+papilla%5BTitle%5D)+AND+%22The+International+journal+of+developmental+biology%22%5BJournal%5D)">Contribution of mesoderm to the developing dental papilla.</a> The International journal of developmental biology. 55, 59-64 (2011).</li>
<li>Buchtova, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Initiation+and+patterning+of+the+snake+dentition+are+dependent+on+Sonic+hedgehog+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Developmental+biology%22%5BJournal%5D)">Initiation and patterning of the snake dentition are dependent on Sonic hedgehog signaling.</a> Developmental biology. 319, 132-145 (2008).</li>
<li>Buchtova, M., Stembirek, J., Glocova, K., Matalova, E., Tucker, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+regression+of+the+dental+lamina+underlies+the+development+of+diphyodont+dentitions%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+dental+research%22%5BJournal%5D)">Early regression of the dental lamina underlies the development of diphyodont dentitions.</a> Journal of dental research. 91, 491-498 (2012).</li>
<li>Cho, S. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+primary+enamel+knot+determines+the+position+of+the+first+buccal+cusp+in+developing+mice+molars%5BTitle%5D)+AND+%22Differentiation%3B+research+in+biological+diversity%22%5BJournal%5D)">The primary enamel knot determines the position of the first buccal cusp in developing mice molars.</a> Differentiation; research in biological diversity. 75, 441-451 (2007).</li>
<li>Sakano, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+dynamics+in+cervical+loop+epithelium+during+transition+from+crown+to+root%3A+implications+for+Hertwig%27s+epithelial+root+sheath+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+periodontal+research%22%5BJournal%5D)">Cell dynamics in cervical loop epithelium during transition from crown to root: implications for Hertwig's epithelial root sheath formation.</a> Journal of periodontal research. , (2012).</li>
<li>Fisher, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Morphological+development+in+vitro+of+the+whole+and+halved+lower+molar+tooth+germ+of+the+mouse%5BTitle%5D)+AND+%22Archives+of+oral+biology%22%5BJournal%5D)">Morphological development in vitro of the whole and halved lower molar tooth germ of the mouse.</a> Archives of oral biology. 16, 1481-1496 (1971).</li>
<li>Coin, R., Schmitt, R., Lesot, H., Vonesch, J. L., Ruch, J. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regeneration+of+halved+embryonic+lower+first+mouse+molars%3A+correlation+with+the+distribution+pattern+of+non+dividing+IDE+cells%2C+the+putative+organizers+of+morphogenetic+units%2C+the+cusps%5BTitle%5D)+AND+%22The+International+journal+of+developmental+biology%22%5BJournal%5D)">Regeneration of halved embryonic lower first mouse molars: correlation with the distribution pattern of non dividing IDE cells, the putative organizers of morphogenetic units, the cusps.</a> The International journal of developmental biology. 44, 289-295 (2000).</li>
<li>Kavanagh, K. D., Evans, A. R., Jernvall, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Predicting+evolutionary+patterns+of+mammalian+teeth+from+development%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Predicting evolutionary patterns of mammalian teeth from development.</a> Nature. 449, 427-432 (2007).</li>
<li>Munne, P. M., Tummers, M., Jarvinen, E., Thesleff, I., Jernvall, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tinkering+with+the+inductive+mesenchyme%3A+Sostdc1+uncovers+the+role+of+dental+mesenchyme+in+limiting+tooth+induction%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Tinkering with the inductive mesenchyme: Sostdc1 uncovers the role of dental mesenchyme in limiting tooth induction.</a> Development. 136, 393-402 (2009).</li>
</ol>

Les auteurs déclarent qu&#39;ils n&#39;ont aucun intérêt financier concurrents.

Cette méthode de culture de la dent présente l&#39;avantage que l&#39;accès au germe de la dent est excellente, ce qui permet lignée de traçage précis et le placement des billes à l&#39;intérieur de l&#39;épithélium ou du mésenchyme. Régions définies du germe dentaire en développement peuvent donc être spécifiquement ciblées. Au cours de la culture de la morphologie évolution du germe de la dent peut être suivie, et l&#39;effet de manipulations a rapidement évalué. Le procédé, cependant, ne ...

Pour un certain nombre d&#39;expériences, il est important d&#39;être en mesure de tissu de culture ex vivo pour suivre le développement. Culture de développer le tissu permet d&#39;accéder à des périodes déterminées de développement et permet la manipulation de gènes par l&#39;addition de facteurs de milieu de culture, ou sur des billes chargées, et par l&#39;utilisation de la transfection et électroporation 1. Pour de nombreuses expériences, il est important d&#39;être capable de visualiser le tissu pendant sa croissance, par exemple, de suivre le sort des cellules de la lignée marqué que le tissu est soumis à la morphogenèse. Cela peut être particulièrement problématique pour les tissus qui se développent plus profond de l&#39;embryon, qui ne sont pas évidentes lorsque un bloc de tissu à partir de l&#39;embryon est mis en culture. Les dents sont de bons exemples de ce qui se développent au sein du processus nasal mandibule, maxillaire et frontal. Lorsque l&#39;ensemble de la mandibule est cultivé les structures superficielles de la dent peut être consulté mais des changements dans la morphologie ne peuvent être analysés après la coupe de tissu fixe <sjusqu&#39;à&gt; 2. Nous avons adapté une technique de culture de tranche en direct nous permettant de suivre le développement du germe dentaire et l&#39;accès aux différentes parties de la dent au cours du développement. Les cultures de la technique des tranches dent germinales à l&#39;interface gaz-liquide, en utilisant une méthode Trowell modifiée 3. Ces cultures tranche ont été très utiles en suivant directement la morphogenèse de la dent, et en permettant le traçage lignée de composants distincts, tels que le noeud de l&#39;émail et de la papille dentaire et follicule 1,4-7. La technique ne se limite pas à des embryons de souris et a été utilisé avec succès pour la culture tranches en direct de porc et serpent dentaire 8,9 tissulaire. En plus de l&#39;avantage d&#39;être en mesure de visualiser le développement des dents, la méthode de la tranche a aussi l&#39;avantage que les fines tranches de tissu ont un accès accru à des éléments nutritifs du milieu et de l&#39;air de l&#39;incubateur. Il en résulte une amélioration de la croissance des germes dentaires, qui correspondent le développement in vivo, et montrent invasion des cellules endothéliales dans la papille 7. En revanche, les germes dentaires dans des cultures entières mandibule se développent plus lentement que ceux in vivo et le centre de la culture est souvent nécrotique dans des cultures à long terme. Dans la culture de la tranche, la dent se développe à l&#39;intérieur d&#39;une tranche de la mâchoire, et son interaction avec le développement de l&#39;os environnant et d&#39;autres tissus peut être surveillée. Dans notre procédé, le tissu est coupé immédiatement après dissection sans qu&#39;il soit nécessaire d&#39;incorporer dans un milieu de support 10,11 et aucun besoin pour un système pour fixer le tissu sur le billot. La méthode est donc non invasive et rapide, permettant à de nombreux mandibules à sectionnés en une seule session.

<table><tbody><tr><td>Éthanol</td><td>VWR</td><td>101077Y</td><td>100 % éthanol a été dilué dans du H2O distillé à 70</td></tr> %.<tr><td>DMEM F12</td><td>Gibco</td><td>12634-010</td><td>Advanced Dulbecco’s Modified Eagle Medium F12</td></tr><tr><td>GlutaMAX</td><td>Gibco</td><td>35050-061</td><td></td></tr><tr><td>Pénicilline-streptomycine</td><td>Sigma</td><td>P0781</td><td></td></tr><tr><td>DiI (Sondes moléculaires)</td><td>Vybrant</td><td>V-22885</td><td>Solution de</td></tr><tr><td></td> marquage cellulaire <td>Invitrogen</td><td></td><td>Cell tracker CM-DiI, C-7000</td></tr><tr><td>DiO ( Sondes moléculaires)</td><td>Vybrant</td><td>V22886</td><td></td></tr><tr><td>Geminator 500</td><td>Thomas</td><td>Thomas No. 3885A20</td><td>Stérilisation à la chaleur sèche</td></tr><tr><td>McIlwain hachoir à tissus Ted</td><td>Pella, Inc.</td><td>10180</td><td>Table standard</td></tr><tr><td>Plat de culture d’organes (Center-Well Organ Culture Dish)</td><td>Falcon</td><td>353037</td><td></td></tr><tr><td>Membranes (inserts de culture cellulaire, 0.4 &mu ; m taille des pores)</td><td>BD Falcon</td><td>353090</td><td>Membrane gravée sur chenilles en PET, format 6 puits</td></tr><tr><td>Grilles métalliques (acier inoxydable - AISI 304 - Mesh)</td><td>Goodfellow</td><td>FE228710</td><td>(Fe/Cr18/Ni10)</td></tr><tr><td>AutoFlow Direct Heat CO2 Incubateur</td><td>Nuaire</td><td>NU-5500</td><td></td></tr><tr><td>Picospritzer III</td><td>Intracel Ltd</td><td>051-0500-900 0-100 psi</td><td>Picospritzer monocanal III</td></tr><tr><td>Capillaire en verre avec filament 1 mm</td><td>WPI</td><td>TW100F-4</td><td></td></tr><tr><td>Fil de tungstène 0,1 mm</td><td>Goodfellow</td><td>W005138</td><td></td></tr><tr><td>Fil de tungstène 0,38 mm</td><td>Goodfellow</td><td>W005155</td><td></td></tr><tr><td>Tubes d’aspirateur</td><td>Sigma</td><td>A5177</td><td>Utilisé pour les traceurs de lignée d’aspiration buccale</td></tr></tbody></table>

la méthode la culture slice pour la suite du développement des germes de dents dans explantation culture

The Slice Culture Method for Following Development of Tooth Germs In Explant Culture

culture de l&#39;explantation permet la manipulation de développer des organes à des moments spécifiques et est donc un moyen important pour la biologie du développement. Pour de nombreux organes, il est difficile d&#39;accéder à un tissu en développement pour permettre la surveillance au cours de la culture ex vivo. Procédé de culture de tranche permet l&#39;accès à un tissu de sorte que les mouvements morphogénétiques peuvent être suivies et des populations de cellules spécifiques peuvent être ciblés pour la manipulation ou la lignée de traçage. Dans cet article, nous décrivons une méthode de culture de la tranche qui a été très fructueuse pour la culture des germes de dents dans une gamme d&#39;espèces. La méthode offre un excellent accès aux germes dentaires, qui se développent à un rythme similaire à celui observé in vivo, entouré par les autres tissus de la mâchoire. Ceci permet des interactions entre tissus situés entre la dent et du tissu environnant à contrôler. Bien que ce document se concentre sur les germes dentaires, le même protocole peut être appliqué à suivre le développement d&#39;un certain nombred&#39;autres organes, comme les glandes salivaires, le cartilage de Meckel, les glandes nasales, de la langue, et l&#39;oreille.

Afin de suivre le mouvement du premier follicule dentaire molaire, 250 um tranches frontales ont été prises au moyen d'un maxillaire inférieur en utilisant la méthode décrite ci-dessus. Le follicule dentaire est la couche de mésenchyme qui entoure l'émail épithélium externe (OEE) de la dent de développement, et a été montré précédemment pour participer à la formation de tissus du parodonte 6. Mandibules ont été disséqués à E14.5, l'étape de bouchon de développement des dents. Dans la tranche le contour de l'é...

Ici, nous détaillons une méthode de culture des germes de dents dans la mandibule tranches en utilisant un broyeur de tissus. Cette méthode permet un accès unique à la dent au cours du développement, offrant une excellente occasion pour la manipulation et de la lignée de traçage, pas disponible en utilisant des méthodes de culture traditionnelles.

La méthode la Culture Slice pour la suite du développement des germes de dents dans explantation Culture

Explant culture allows manipulation of developing organs at specific time points&#160;and is therefore an important method for the developmental ...

L’objectif global de l’expérience suivante est de suivre le développement des dents sur plusieurs jours. La culture ex plan in vitro est réalisée en disséquant la mandibule en développement de souris fœtales en tranches vivantes pour exposer les germes dentaires en développement dans un deuxième temps. Les tranches sont sélectionnées, placées sur des filtres au-dessus d’un milieu de culture et incubées pour permettre le développement.Ensuite, les tranches sont marquées avec un traceur de lignée afin de suivre le mouvement cellulaire pendant la période de culture, des résultats sont obtenus qui montrent la nature dynamique des tissus dentaires tels qu’ils se développent au cours de la culture explan. Le principal avantage de cette technique par rapport à la culture d’explants conventionnelle est que les organes en développement interne, tels que les gemmes dentaires, peuvent être observés tout au long de leur développement dans le contexte des tissus environnants. La démonstration visuelle de cette méthode est essentielle car les étapes de hachage et de sélection peuvent être difficiles si la configuration de la machine ou l’orientation du tissu est imprécise.Tout d’abord, préparez

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Culture organotypique des cerveaux de rat E18

Les cultures d’explants de tissus primaires organotypiques, qui comprennent des tranches découpées avec précision, représentent l’architecture tissulaire tridimensionnelle (3D) ainsi que les interactions multicellulaires des tissus natifs. Cette vidéo décrit la culture de tranches de tissus murins dérivés d’une tumeur pulmonaire à l’aide d’une unité d’incubation rotative, un système qui permet une exposition intermittente des tissus à l’oxygène et aux nutriments. Le protocole décrit la...

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Un protocole pour préparer les cultures de tranches flottantes à partir du cerveau humain adulte est présenté. Le protocole est une variante de la méthode de culture de tranches largement utilisée à l'aide d'inserts membranaires. Il est simple, rentable et recommandé pour les essais à court terme visant à démêler les mécanismes de neurodégénérescence derrière les maladies du cerveau associées à l'âge.

Cultures à court terme de tranches flottantes du cerveau humain adulte

La méthode de culture d’organes de type Trowell a été utilisée pour démêler les réseaux de signalisation complexes qui régissent le développement des dents et, plus récemment, pour étudier la régulation impliquée dans les cellules souches de l’incisive de souris en croissance continue. Les modèles animaux fluorescents-rapporteurs et les méthodes d’imagerie en direct facilitent les analyses approfondies des cellules souches dentaires et de leur microenvironnement de niche spécifique.

Utilisation de la culture d’organes de type Trowell pour étudier la régulation des cellules souches dentaires

L’imagerie en direct ex vivo est une technique puissante pour étudier les processus dynamiques des mouvements et des interactions cellulaires dans les tissus vivants. Nous présentons ici un protocole qui met en œuvre la microscopie à deux photons pour suivre en direct les cellules épithéliales dentaires dans des incisives de souris adultes entières en culture.

Utilisation de l’imagerie en direct ex vivo pour étudier les divisions et les mouvements cellulaires au cours du renouvellement dentaire de la souris

Découvrez la culture de tranches de mandibules fœtales de souris pour observer le développement des germes dentaires in vitro. Cette méthode permet le traçage de lignées cellulaires et l'étude de la dynamique tissulaire dentaire.

La méthode la Culture Slice pour la suite du développement des germes de dents dans explantation Culture

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