Name: Ingénierie à base de fibrine constructions de tissu de myofibroblastes et application des contraintes et de déformation à Provoquer Organisation cellulaire et collagène (Re) (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-10-28T21:45:00.000+00:00
Duration: 12 min 13 s
Description: Découvrez une méthode d'ingénierie tissulaire basée sur la fibrine pour étudier la réorganisation du collagène par les myofibroblastes humains en temps réel grâce à la microscopie confocale.

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Cette étude a été réalisée dans le programme de recherche des matériaux biomédicaux (BMM) Institut. BMM est cofinancé par le ministère néerlandais des Affaires économiques, de l&#39;Agriculture et de l&#39;Innovation. La contribution financière de la Hartstichting Nederlandse est grandement appréciée.

1. Culture des droits de veine saphène Cells <ol><li> Isoler des cellules de la veine saphène, acquises à partir d&#39;un donneur conformément à des directives pour l&#39;utilisation de matière secondaire, selon le protocole par Schnell et al. 9 et stocker ceux-ci dans de l&#39;azote liquide. Dans le cadre de la veine saphène à une des pièces découpées de donneur de 2 x 2 mm à la culture dans une plaque à six puits. Utilisez 2 éléments par puits. Assez généralement cellules peuvent être obtenues à remplir environ 3 flacons à 0,25 x 10 6 cellules dans l&#39;azote liquide. HVSCs sont caractérisés comme myofibroblastes, en montrant l&#39;expression de la vimentine, aucune expression de la desmine et une sous-population exprimant α actine musculaire lisse 10. Suivant démarrer le protocole de décongeler les cellules de l&#39;azote liquide pour augmenter le nombre de cellules. </li><li> Placez les cellules provenant d&#39;une fiole dans un flacon de culture de tissu T75 et ajouter du milieu de croissance (GM), composé d&#39;avancée DMEM, 50 ml de sérum de veau fœtal (FBS), 5 ml de pénicilline /streptomycine et 5 ml de L-glutamax. Changer le milieu tous les 2-3 jours. </li><li> Les cellules croissent confluent environ après 14 jours. Magasin 0,5 x 10 6 cellules dans un flacon dans de l&#39;azote liquide, dénommé passage 1. </li></ol> Note: La congélation des cellules n&#39;est pas nécessaire lors de la récolte HVSCs, mais il est uniquement utilisé pour le stockage. <ol start="4"><li> Placez les HVSCs d&#39;une fiole dans un flacon de culture tissulaire et T175 ajouter GM. Changer le milieu tous les 2-3 jours. Les cellules croissent confluent après environ 7 jours. Magasin 3 x 10 6 cellules dans un flacon dans de l&#39;azote liquide, appelé passage 2. </li><li> Placez les cellules provenant d&#39;un flacon dans un rollerbottle et ajouter GM. Changer le milieu tous les 2-3 jours. Les cellules croissent confluent environ après 8 jours. Un rollerbottle contient environ 20-30 x 10 6 cellules. cellules en culture jusqu&#39;à passage 6. Ne pas utiliser des cellules d&#39;un passage supérieur à 9 passage, depuis le phénotype cellulaire peut changer. </li></ol&gt; 2. Ingénierie des constructions de tissu à base de fibrine <ol><li> Préparation de la colle silicone par le mélange de l&#39;élastomère avec l&#39;agent de durcissement (10:01). Couper 7 x 3 segments rectangulaires mm de Velcro. Coller le Velcro dans une plaque de culture 6 puits, avec des membranes flexibles pour former une croix, et à laisser un espace carré de 3 mm entre les bandes de Velcro. </li></ol> Notes: utiliser uniquement le côté doux du velcro et faire face à ce côté vers le haut. En collant le Velcro, ne couvrent que le Velcro avec colle silicone, ne se propage pas à travers la colle bien. Comme les plaques de culture ont un fond de la membrane en silicone, utiliser quelque chose en dessous de la plaque de puits pour le renforcement des membranes flexibles, afin d&#39;assurer le collage facile dans la plaque. <ol start="2"><li> Sécher la colle de silicone pendant une nuit dans une étuve à 60 ° C pour assurer le durcissement de la colle. Stériliser en ajoutant 70% de EtOH dans les puits et incuber pendant 30 min. Rincer 3x avec PBS et retirez tous PBS à partir du wells et le Velcro. Mettez sous UV pendant 30 min et garder stérile jusqu&#39;à l&#39;utilisation. </li><li> Préparer moyen Tissue Engineering (TM), composé de GM et de 130 mg d&#39;acide L-ascorbique 2-phosphate. </li><li> Ajouter 1 mg / ml caproïque ε-amino (ACA) à la TM. ACA est utilisée pendant les 7 premiers jours de culture pour empêcher la fibrine à partir dégradants 11. Alternativement, l&#39;aprotinine peut être utilisé. </li><li> Pour éviter la formation de touffe, laissez fibrinogène à atteindre la température ambiante avant ouverture. Sans touffes fibrinogène va se dissoudre plus facilement. Dissoudre le fibrinogène à une concentration de 10 mg réelle protéine / ml de TM 7 supplémenté avec ACA. Filtre stérile la solution de fibrinogène, de multiples filtres pourrait être nécessaire. Stocker sur la glace jusqu&#39;à utilisation. </li></ol> Note: Pour dissoudre mélange de fibrinogène doucement pour éviter la formation de mousse trop. <ol start="6"><li> Dissoudre la thrombine à une concentration de 10 UI / ml de TM 7 supplémenté avec ACA. Stocker sur la glace jusqu&#39;à utilisation. </li> &lt;/ Ol&gt; Note: Stockage sur la glace est nécessaire pour éviter la gélification début de la thrombine et fibrinogène. <ol start="7"><li> Trypsiniser les cellules, remettre en suspension dans GM et le nombre. </li><li> Utilisez 15 x 10 6 cellules / ml pour ensemencer les constructions de tissu à base de fibrine (concentration basée sur les méthodes de valves cardiaques de l&#39;ingénierie tissulaire 7). Un seul gel est constitué de 100 pi GOF el, et ainsi de 1,5 x 10 6 cellules. Mettez 1,5 x 10 6 cellules dans un tube de centrifugeuse, résultant en autant de tubes de centrifugeuses que le nombre de gels qui seront faites. </li><li> Centrifuger les cellules à 350 g pendant 7 min et jeter le surnageant. Reprendre les cellules dans 50 ul de thrombine. Ajouter 4 pi de microsphères de polystyrène bleu fluorescent à cette suspension. Mettez 50 pl de fibrinogène dans un flacon. Utiliser une pipette pour prendre la thrombine 50 pi avec des cellules. Augmenter le volume de la pipette à 100 pi. Introduire à la pipette la solution de 50 pi avec de la thrombinecellules dans le flacon de fibrinogène pour mélanger les thrombine et le fibrinogène, et prennent le mélange de 100 pi. </li></ol> Remarque: Les microsphères de polystyrène fluorescentes sont utilisés en tant que marqueurs de référence interne pour l&#39;analyse de l&#39;image. Lorsque la thrombine et le fibrinogène mélange, éviter la formation de bulles d&#39;air par aspiration soigneusement le mélange. Les bulles d&#39;air se traduira par des trous dans le gel de fibrine. <ol start="10"><li> Pipeter le mélange de gel dans et entre les bandes de Velcro. Le temps de gélification typique des gels de fibrine, une fois que les composants sont mélangés, est de l&#39;ordre de 20 s. </li></ol> Notes: Pour ce faire, le plus rapidement possible pour éviter la gélification avant que le mélange est introduit à la pipette dans la plaque bien. Pratique avant d&#39;utiliser des cellules et des perles. <ol start="11"><li> Incuber suspensions pendant 30 min à 37 ° C dans une atmosphère humidifiée à 95% d&#39;air / 5% de CO 2 incubateur pour permettre la gélification avant d&#39;ajouter la culture TM avec l&#39;ACA. </li><li> Remplacer TM avec l&#39;ACA tous les 2-3 jours pendant les 7 premiers jours. Les gels sont assez stable après une semaine à être cultivé sans ACA. Après la première semaine TM remplacer tous les 2-3 jours. Ajouter 6 ml de TM par puits. Le jour 12 cellules ont produit suffisamment de collagène pour la visualisation. </li></ol> 3. Application de souche et induisant des changements dans la souche et contraintes <ol><li> Allongement statique est appliquée directement par les cellules, dues à l&#39;accélération de la cellule et de compactage 12. Pour induire une réorganisation du collagène, couper le tissu construire lâche de deux bandes Velcro dans un seul sens. Il en résulte des contraintes unidirectionnelles (figure 1A). Effectuez cette 12e jour, puisque le concept est alors assez stable et le collagène a été déposé. </li><li> Appliquer déformation cyclique en appliquant un vide à la partie inférieure des plaques de culture avec des membranes flexibles, avec l&#39;utilisation du système FX4000T flexcell. Placez les plaques sur une plaque de base, en plus de postes de chargement (qui sont une partie de ee dispositif de chargement cyclique). La pompe applique un vide sur la membrane et tire ainsi la membrane sur le poteau rectangulaire se trouvant en dessous. En raison des fixations en forme de croix du tissu construit sur ​​la membrane (via le Velcro) et le poste rectangulaire la souche cyclique appliqué est uniaxe (figure 1B). </li><li> Initialement, utilisez culture statique pendant 5 jours pour atteindre l&#39;intégrité mécanique initial, avant l&#39;application de la contrainte cyclique à partir du jour 6. Programme un protocole tache cyclique dans l&#39;unité de commande pour la pompe à vide. Par exemple en utilisant un protocole de déformation cyclique intermittente établi précédemment, à l&#39;orientation uniaxiale 13. Il est composé d&#39;une souche intermittent d&#39;une onde sinusoïdale à 1 Hz, l&#39;effort de 0 à 5% de déformation, pour des périodes de 3 heures, alternant avec des périodes de repos de 3 heures. Effectuez ce protocole de déformation cyclique pendant 7 jours, induisant une organisation de collagène alignés. </li><li> Typiquement, après 12 jours HVSCs ont produit une organizatio de collagène alignésn. Après une organisation de collagène alignée est atteinte, changer la direction de déformation cyclique uniaxiale, à être perpendiculaire à la direction de la souche originale. Pour ce faire, en tournant les messages rectangulaires de 90 °. </li></ol> 4. Cellules visualisation et de collagène <ol><li> Pour visualiser, le remodelage du collagène active en temps réel, des échantillons d&#39;étiquettes avec des sondes qui ne gênent pas la viabilité cellulaire ou de la formation de collagène. Utiliser des sondes pour colorer fluorescence du cytoplasme des cellules et de collagène. </li><li> Alternativement génération de second harmonique en utilisant la microscopie confocale à balayage laser peut être utilisé pour visualiser les structures de collagène à l&#39;aide autofluorescence 14, avec une excitation à 780 nm et la détection entre 500-550 nm. </li><li> Retirez les plaques de culture à partir de la configuration et de l&#39;incubateur, pour les échantillons de manière cyclique tendues au cours de la période de repos de 3 heures, et de les transporter à un microscope confocal à balayage laser pour visualiser les cellules et de collagène. </li></ol>

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<li>Sander, E. A., Barocas, V. H., Tranquillo, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Initial+fiber+alignment+pattern+alters+extracellular+matrix+synthesis+in+fibroblast-populated+fibrin+gel+cruciforms+and+correlates+with+predicted+tension%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Biomed.+Eng%22%5BJournal%5D)">Initial fiber alignment pattern alters extracellular matrix synthesis in fibroblast-populated fibrin gel cruciforms and correlates with predicted tension.</a> Ann. Biomed. Eng. 39, 714-729 (2010).</li>
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</ol>

Les auteurs déclarent qu&#39;ils n&#39;ont aucun intérêt financier concurrents.

Le système modèle décrit des constructions de fibrine cellule de population a un grand potentiel pour l&#39;étude des cellules et de collagène (ré) organisation (de Jonge et al. 15), par exemple, être utilisé à des fins d&#39;ingénierie tissulaire. En utilisant la fibrine en tant que support de cellule initiale, après la dégradation de la fibrine, d&#39;un tissu est créé avec des cellules et de la matrice endogène seulement. De cette façon, les cellules sont stimulées à réagir à la souche, s...

Les tissus cardiovasculaires ont une fonction de charge importante. En particulier, le contenu et l&#39;organisation des fibres de collagène dans la matrice extracellulaire contribuer aux propriétés porteuses et dominer la force globale de tissus 1. Dans l&#39;ingénierie tissulaire conditionnement mécanique de la construction est utilisée - généralement composé d&#39;(cyclique) des régimes rude épreuve - afin d&#39;améliorer l&#39;organisation des tissus et des propriétés mécaniques 2,3. Une bonne compréhension de l&#39;organisation du collagène induite par contrainte dans des géométries complexes de tissus pour créer des tissus à l&#39;architecture de collagène prédéfinie n&#39;a pas encore été atteint. Ceci est principalement dû à notre connaissance limitée de remodelage du collagène dans les tissus en voie de développement. Les modèles existants donnent surtout des informations sur le résultat net final de remodelage du collagène avec l&#39;utilisation des contraintes statiques 4-6. Ici nous fournissons un système modèle très configurable qui permet l&#39;étude de collagène (ré) organisation d&#39;une manière en temps réel, en 3D, sous l&#39;influencede contrainte statique ou cyclique. Les constructions de tissus sont à base de fibrine, s&#39;assurer que tous collagène dans la construction est endogène. organisation de cellules et de collagène dans les constructions est visualisée, et un système de référence interne nous permet de relocaliser les cellules et les structures de collagène pour l&#39;analyse time-lapse. Dans ce protocole, nous allons décrire l&#39;utilisation du système de modèle pour les cellules Saphena Vena humaines (HVSCs), puisque ces cellules sont connus pour leur meilleure production supplémentaire cellulaire de la matrice et la capacité de remodeler la matrice et notre usage établi dans les tissus cardiovasculaires ingénierie 7, sur la base sur les travaux de de Jonge et al. 8

<table><tbody><tr><td>Culture plastique</td><td>Greiner</td><td></td><td>Comprend flacons de culture et pipettes</td></tr><tr><td>Advanced DMEM</td><td>Gibco</td><td>12491</td><td></td></tr><tr><td>Sérum fœtal bovin</td><td>Greiner</td><td>758075</td><td></td></tr><tr><td>Pénicilline/streptomycine</td><td>Gibco</td><td>10378016</td><td></td></tr><tr><td>GlutaMax</td><td>Gibco</td><td>35050-079</td><td></td></tr><tr><td>Élastomère et agent de durcissement</td><td>Dow Corning Corporation</td><td>3097358-1004</td><td>Silastic MDX 4-4210#</td></tr><tr><td>Velcro</td><td>Magasin</td><td></td> régulier <td>Vous pouvez l’acheter dans un magasin régulier, utilisez uniquement les</td></tr><tr><td>plaques de culture Bioflex</td> du côté souple <td>Flexcell Int</td><td>BF-3001U</td><td></td></tr><tr><td>Acide L-ascorbique non traité 2-phosphatase</td><td>Sigma</td><td>A8960</td><td></td></tr><tr><td>&epsilon ;-Acide amino-caproïque</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D7754</td><td></td></tr><tr><td>Thrombine bovine</td><td>Sigma</td><td>T4648</td><td></td></tr><tr><td>Fibrinogène bovin</td><td>Sigma</td><td>F8630</td><td></td></tr><tr><td>0,45 filtre à seringue</td><td>Whatmann (Schleicher et Scheul)</td><td>10462100</td><td></td></tr><tr><td>Microsphères de polystyrène</td><td>Invitrogen</td><td>F-8829</td><td>Bleu fluorescent, 10 &mu ; m de diamètre</td></tr><tr><td>Flexcell FX-4000T</td><td>Flexcell Int</td><td></td><td>Comprend des poteaux de chargement rectangulaires</td></tr><tr><td>Cell Tracker Orange</td><td>Invitrogen Sondes moléculaires</td><td>C2927</td><td></td></tr><tr><td>CNA35-OG488</td><td></td><td></td><td>Fourni cordialement par le Laboratoire de chimie macromoléculaire et organique, Département de génie biomédical, Université de technologie d’Eindhoven</td></tr><tr><td>Microscope confocal à balayage laser</td><td>Carl Zeiss</td><td></td><td>LSM 510 Microscope à balayage laser Meta et mode Two-Photon-LSM</td></tr><tr><td>Amphotéricine</td><td>Gibco</td><td>15290-018</td><td>Nécessaire pour l’isolement cellulaire</td></tr></tbody></table>

ingénierie à base de fibrine constructions de tissu de myofibroblastes et application des contraintes et de déformation à provoquer organisation cellulaire et collagène (re)

Engineering Fibrin-based Tissue Constructs from Myofibroblasts and Application of Constraints and Strain to Induce Cell and Collagen Reorganization

teneur en collagène et de l&#39;organisation dans le développement de tissus collagènes peuvent être influencés par des souches de tissus locaux et des contraintes de tissu. ingénieurs de tissus visent à utiliser ces principes pour créer des tissus avec des architectures de collagène prédéfinis. Une pleine compréhension des processus sous-jacents exactes de remodelage du collagène de contrôler l&#39;architecture finale de tissu, cependant, est manquant. En particulier, on sait peu au sujet de l&#39;orientation (re) des fibres de collagène en réponse aux changements des conditions de chargement mécaniques des tissus. Nous avons développé un système modèle in vitro, composé de bi-contraints myofibroblastes tête de série fibrine constructions, à élucider collagène orientation (re) en réponse à i) revenant biaxial à des conditions de chargement statique uniaxiaux et ii) chargement cyclique uniaxial de la bi-contraint constructions avant et après un changement de direction de chargement, avec l&#39;utilisation du dispositif de chargement FX4000T flexcell. Imagerie confocale time-lapse est utilisé pour visualize collagène orientation (re) d&#39;une manière non-destructive. organisation de cellules et de collagène dans les constructions peuvent être visualisées en temps réel et un système de référence interne nous permet de délocaliser les cellules et les structures de collagène pour l&#39;analyse time-lapse. Divers aspects du système de modèle peuvent être ajustés, comme source ou l&#39;utilisation de cellules saines et malades cellule. Des additifs peuvent être utilisés pour élucider les mécanismes remodelage du collagène sous-jacent, par exemple en ajoutant MMP ou le blocage des intégrines. Forme et la taille de la construction peuvent être facilement adaptés à des besoins spécifiques, résultant en un système modèle très configurable pour étudier la cellule et du collagène (ré) organisation.

Ce système modèle permet pour la culture des myofibroblastes ensemencées gels de fibrine. Figure 1A montre un tissu cultivé d&#39;abord sous contraintes biaxiales statiques. contraintes de tissus sont libérés en coupant le gel de fibrine à partir de deux contraintes, à créer des contraintes statiques uniaxiaux et compacte de tissus et remodèle la suite (figure 1A). Par déformation cyclique, le tissu est cultivé dans des contraintes statiques biaxiales ainsi. Après 5 jours souche uniaxia...

Ce système de modèle commence à partir d&#39;un gel de fibrine myofibroblastes peuplée qui peut être utilisé pour étudier collagène endogène (ré) organisation en temps réel de façon non destructive. Le système de modèle est très accordable, comme il peut être utilisé avec des sources différentes de cellules, des additifs moyen, et peut être adapté facilement à des besoins spécifiques.

Ingénierie à base de fibrine constructions de tissu de myofibroblastes et application des contraintes et de déformation à Provoquer Organisation cellulaire et collagène (Re)

Collagen content and organization in developing collagenous tissues can be influenced by local tissue strains and tissue constraint. Tissue engineers aim ...

L'objectif général de cette procédure est de créer des constructions à base de fibrine pouvant être utilisées pour étudier la réorganisation des cellules et du collagène. Cela est réalisé en isolant d'abord des cellules saphènes veineuses humaines à partir de tissu donneur et en les amplifiant en culture. La deuxième étape consiste à coller des bandes de velcro sur des membranes flexibles.Au fond de plaques à six puits, créez un espace carré au centre, qui maintiendra le dispositif. Ensuite, un mélange de fibrinogène, de thrombine, de cellules et de billes marquées par fluorescence est ajouté dans l'espace situé entre les bandes de Velcro et laissé à polymériser pour former un gel. La dernière étape consiste à conditionner les cellules et à induire la formation d'une matrice orientée en appliquant soit une contrainte cyclique uniaxiale au dispositif, soit en relâchant une contrainte statique.En coupant le gel de fibrine à partir des poteaux en velcro dans une seule direction. En fin de compte, des résultats peuvent être obtenus pour décrire les changements dans la réorganisation cellulaire et du collagène en surveillant les constructions au fil du temps à l'aide de la microscopie c

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Ici, nous démontrons la fabrication de base de collagène, le tissu des constructions contenant myoblastes squelettiques. Ces constructions en 3-D modifiés peuvent être utilisés pour remplacer ou réparer des...

Fabrication de constructions myogéniques de l&#39;ingénierie tissulaire

Nous décrivons l'isolement des cardiomyocytes néonataux et la préparation des cellules pour l'encapsulation dans les constructions d'hydrogel de fibrine pour l'ingénierie tissulaire. Nous décrivons des méthodes d'analyse de l'ingénierie tissulaire du myocarde après la période de culture, y compris force active générée lors de la stimulation électrique et la viabilité des cellules et la coloration immunohistochimique.

L&#39;encapsulation des cardiomyocytes dans un hydrogel de fibrine pour l&#39;ingénierie du tissu cardiaque

Ce protocole met l'accent sur l'utilisation de la capacité inhérente de cellules souches de prendre exemple sur leur matrice extracellulaire environnante et être amené à se différencier en de multiples phénotypes. Ce manuscrit méthodes étend notre description et la caractérisation d'un modèle utilisant un hydrogel bicouche, composé de PEG-fibrine et le collagène, à la fois co-différencier les cellules souches...

Le façonnage d&#39;une bicouche Hydrogel de contrôler la différenciation ASC

Des techniques de microscopie et de traitement d’image de time-lapse ont été employées pour observer et analyser le compactage fibroblaste-négocié de gel et le réalignement de fibre de fibrine dans un bioréacteur commandé par l’environnement sur une période de 48 heures.

Observation et quantification du compactage du gel de fibrine médié par les fibroblastes

Dans ce travail, nous présentons une technique de fabrication rapide de tissus vasculaires vivants par culture directe de collagène, de cellules musculaires lisses et de cellules endothéliales. De plus, un nouveau protocole pour la caractérisation mécanique des tissus vasculaires modifiés est décrit.

Ingénierie 3D cellularisé collagène Gels pour la régénération tissulaire vasculaire

Nous présentons un modèle de tissu ligamentaire dans lequel les constructions tridimensionnelles sont traitées avec le sérum conditionné par l'exercice humain et analysées pour la teneur en collagène, la fonction et la biochimie cellulaire.

Traitement des constructions de ligament avec un sérum conditionné par l&#39;exercice: un modèle d&#39;ingénierie des tissus de traduction

L’objectif de ce protocole est d’exécuter une co-culture dynamique de macrophages humains et de myofibroblastes dans des échafaudages tubulaires électrospunés pour étudier la régénération tissulaire entraînée par les matériaux, à l’aide d’un bioréacteur qui permet le découplage de la contrainte de cisaillement et de l’étirement cyclique.

Un bioréacteur multi-cue pour évaluer la capacité inflammatoire et régénératrice des biomatériaux sous écoulement et étirement

Cet article présente une stratégie pour construire des modèles par éléments finis de matériaux conducteurs fibreux exposés à un champ électrique (FE). Les modèles peuvent être utilisés pour estimer l’apport électrique que reçoivent les cellules ensemencées dans ces matériaux et évaluer l’impact de la modification des propriétés, de la structure ou de l’orientation des matériaux constitutifs de l’échafaudage.

Modélisation par éléments finis d’un microenvironnement électrique cellulaire

Présenté ici est un protocole pour générer des tissus conjonctifs modifiés pour une culture parallèle de 48 tissus dans une plaque multi-puits avec des doubles pôles, adapté aux études mécanistes, à la modélisation des maladies et aux applications de dépistage. Le protocole est compatible avec les fibroblastes de différents organes et espèces et est illustré ici avec les fibroblastes cardiaques primaires humains.

Tissu conjonctif humain dérivé de fibroblastes pour les applications de dépistage

Le protocole suivant présente une méthode d’extrusion basée sur le cisaillement pour la fabrication d’hydrogels de collagène avec des fibrilles à motifs nanométriques, qui peut être appliquée à un large éventail d’applications d’ingénierie tissulaire.

Production de collagène à motifs nanofibrillaires pour l’ingénierie tissulaire

Une méthode reproductible est présentée pour générer des tissus myocardiques 3D combinant l’écriture par électrofilage fondu (MEW), des échafaudages de polycaprolactone (PCL) et des hydrogels de fibrine avec des cardiomyocytes et des fibroblastes dérivés de hiPSC. Cette technique offre un contrôle précis de l’architecture de l’échafaudage et peut être appliquée dans les tests précliniques de médicaments et la modélisation des maladies cardiaques.

Génération 3D de tissu myocardique humain à l’aide de l’écriture électrofilée à l’état fondu d’échafaudages de polycaprolactone et de cellules cardiaques dérivées de hiPSC

Découvrez une méthode d'ingénierie tissulaire basée sur la fibrine pour étudier la réorganisation du collagène par les myofibroblastes humains en temps réel grâce à la microscopie confocale.

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Ingénierie à base de fibrine constructions de tissu de myofibroblastes et application des contraintes et de déformation à Provoquer Organisation cellulaire et collagène (Re)

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