7 mars 2014
Dans cette étude, l'utilisation d'un dispositif de chargement in situ couplée à la tomographie micro-ordinateur à rayons X pour la biomécanique articulaire fibreux en sera discuté. Lectures expérimentales identifiables avec un changement global de la biomécanique articulaire seront les suivants: 1) les forces réactionnaires en fonction du déplacement, c'est-dent déplacement dans l'alvéole et sa réponse réactionnaire à charge, 2) en trois dimensions (3D) configuration spatiale e
L'objectif général de cette procédure est de mesurer la réponse biomécanique du complexe alvéolaire dentaire. Cela est réalisé en premier lieu en disséquant l'animal afin de prélever une hémimandibule ou une maxillaire intacte. La deuxième étape de la procédure consiste à monter l'échantillon et à préparer la surface dentaire à l'aide d'une reconstruction composite en vue d'essais mécaniques.
Les étapes finales comprennent la mesure de l'état biomécanique de l'échantillon à l'aide d'une cellule de charge biaxiale, suivie d'un balayage de l'échantillon au moyen d'un microscope à rayons X. En définitive, les résultats peuvent montrer des modifications de la réponse biomécanique d'une articulation fibreuse, par exemple dues à une maladie ou à une hypofonction, en corrélation avec des tomodensitométries à haute résolution à différents états de charge. Les principaux avantages de cette technique par rapport aux méthodes existantes sont que l'organe reste intact et que les méthodes de balayage sont non invasives.
Ainsi, le champ de déformation naturel du ligament est préservé et les propriétés biomécaniques peuvent être mesurées avec précision. Commencez par obtenir une maxillaire ou une mandibulaire disséquée, comme décrit dans le protocole. Procédez ensuite à l'immobilisation de l'échantillon sur le support en acier à l'aide d'acrylique.
Retirez tout matériau excédentaire des bords de l'échantillon. Ensuite, à l'aide d'une règle droite, alignez les surfaces occlusales d'intérêt parallèlement au disque métallique de spécimen A FM dans le plan mésio-distal, puis dans le plan vestibulo-lingual. À l'aide d'un outil contondant, créez une rainure entourant les molaires.
Cela fonctionne comme un réservoir pour l'hydratation du tissu. Pendant le chargement en C deux pour préparer la surface dentaire, utilisez de l'acide phosphorique à 35 % pour mordancer la surface occlusale d'intérêt pendant 15 secondes. Après 15 secondes écoulées, rincez soigneusement la zone mordancée avec de l'eau déionisée et séchez la surface à l'aide d'air comprimé afin d'éviter une polymérisation involontaire des composites.
Effectuez les prochaines étapes avec un éclairage ambiant minimal. Étalez une goutte d'agent de collage dans les cuspides ouvertes. Polymérisez l'agent de collage pendant 20 secondes.
À l’aide d’une lumière de polymérisation dentaire, grattez avec une lame tout agent de collage excédentaire. Il est important de s’assurer que le matériau composite en excès ne déborde pas sur les dents adjacentes. Cela empêche une représentation inexacte de la dent lorsqu’elle est comprimée dans l’alvéole osseuse.
Placez maintenant une fine couche de composite dentaire fluide sur la surface et répartissez-la dans les sillons entre les molaires. Une fois appliquée, exposez ce matériau à une lumière de polymérisation pendant 30 secondes. Ensuite, appliquez une épaisseur de trois à quatre millimètres de composite dentaire sur le plan occlusal concerné et polymérisez-le par une exposition lumineuse de 30 secondes.
Après avoir rétabli l'éclairage, utilisez une règle droite et une fraise à grande vitesse équipée d'une meule en diamant pour éliminer l'excès de composite et aplanir la surface supérieure de la reconstruction composite afin d'obtenir une surface plane. Cela garantit une répartition uniforme de la charge une fois l'opération terminée. Conservez l'échantillon dans du TBS contenant des antibiotiques jusqu'au moment du test.
Pour tester mécaniquement l'échantillon en premier lieu, fixez-le entre les mâchoires de l'appareil de chargement. Ensuite, placez un papier articulé sur la surface du composite. Puis appliquez une petite charge pour vérifier l'uniformité du chargement.
Le chargement concentrique est indiqué par une répartition uniforme de marques. Pour maintenir l'hydratation de l'échantillon pendant le test, imbibez un tissu de TBS et placez-le autour de l'échantillon. Remplissez également le réservoir creusé dans l'échantillon avec du TBS. À l'aide du logiciel, appliquez une charge maximale et un taux de déplacement pour comprimer la molaire immobilisée.
Sur la racine AFM, les tissus mous peuvent être colorés avec du PTA. Pour améliorer les images aux rayons X, remplir un carpule de 1,8 millilitre avec du PTA à 5 %. À l’aide d’une seringue, injecter lentement le PTA dans l’espace du ligament parodontal adjacent à la région d’intérêt pendant cinq minutes.
Répétez l'injection quatre fois supplémentaires pour un volume total injecté de neuf millilitres. Après avoir terminé les injections, l'échantillon peut être mis à tremper toute la nuit. Dans le PTA avant l'analyse par rayons X durant le cycle de chargement, une période de jeu est prévue lorsque les engrenages inversent leur mouvement, passant de la fermeture à l'ouverture des mâchoires.
Cela dure environ trois secondes et est observé indépendamment des conditions de chargement. La réponse à ce jeu est la plus marquée lors d'un chargement en corps rigide. Par comparaison, l'amplitude de la réponse au jeu est moindre.
Avec les échantillons de dent de ligament parodontal osseux, la rigidité est également plus faible que pour les corps rigides, tout comme avec les échantillons de polyméthylalane, mais pas tout à fait aussi faible qu'avec les échantillons de dent de ligament parodontal osseux. Les échantillons complexes en polydiméthylsobuxane sont également nettement moins rigides. Des scans XCT d'un échantillon typique non coloré au ST ont clairement révélé la relation de la dent au sein de l'alvéole osseuse. Toutefois, les tissus non minéralisés comme le LDP ne peuvent être distingués sans l'utilisation d'une coloration de contraste.
En utilisant un agent de contraste tel que le PTA, les tissus mous deviennent visibles dans le scan XCT à un grossissement plus élevé. Des fibres deviennent même visibles au sein de l'espace du ligament parodontal. Les échantillons pourraient être chargés de manière axiale, comme dans cette relation dent-os à 15 newtons, ou bien les échantillons pourraient être chargés.
Provoque de manière excentrique un déplacement accru de la dent et une configuration différente de l’alvéole dentaire par rapport à une sollicitation concentrique. Des thermogrammes ont été utilisés pour comparer l’effet des deux modes de sollicitation. Les deux modes ont provoqué un déplacement vertical de la dent, mais la sollicitation excentrique a ajouté une trajectoire rotationnelle supplémentaire au mouvement de la dent.
Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment préparer et tester mécaniquement un complexe ovulaire dentaire à l’aide d’un dispositif de chargement initial couplé à un microscope micro XT.
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Cette étude examine la réponse biomécanique du complexe alvéolaire dentaire à l'aide d'un dispositif de chargement in situ et d'une micro-tomographie aux rayons X. La recherche se concentre sur la mesure des forces réactionnelles, des configurations spatiales et des modifications morphométriques en réponse à des conditions de chargement variables.
Ce protocole d'essai biomécanique permet une évaluation quantitative des réponses des articulations fibreuses dans des conditions de chargement physiologiques, soutenant ainsi la validation de cibles en recherche musculosquelettique et sur les tissus conjonctifs. En corrélant la charge mécanique aux changements structuraux tridimensionnels, il offre une prédiction fiable pour évaluer des interventions modifiant l'évolution des pathologies parodontales et dentaires. Cette approche comble un manque critique en matière d'évaluation biomécanique non invasive au niveau organique, pertinente pour le développement de modèles précliniques.
La méthode s'intègre dans le continuum de découverte, depuis le test d'hypothèses jusqu'à l'identification de candidats, en fournissant un phénotypage biomécanique de joints fibreux sous chargement contrôlé, éclairant ainsi les décisions de type aller/stop dans la validation de cibles.