Name: Stretching cellules Micropatterned sur une membrane PDMS (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-22T13:45:00.000+00:00
Duration: 9 min 41 s
Description: Découvrez une technique d'étirement unidirectionnel de cellules adhérentes sur membrane PDMS micropatternée. Cette méthode permet d'étudier les réponses mécaniques des cellules en mitose par microscopie vidéo.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Ce travail a été fondée par l&#39;Institut Curie, Paris, France. La civière mécanique a été conçu par Damien Cuvelier (Institut Curie) et est fabriqué par GREM (mecanique-grem.com). La structuration de PDMS a été développé par Ammar Azioune (Université Bordeaux II).

Une. Passivation de l&#39;PDMS <ol><li> Coupez un morceau de PDMS environ 35 mm x 20 mm à partir d&#39;une feuille pré fait (par exemple, GelPak, comme répertoriés dans le tableau des matériaux). </li><li> Retirer le dessus et les couches de protection du bas du plastique (si nécessaire) et utiliser des pinces pour placer les PDMS dans un plastique (pas de culture cellulaire traité) boîte de Pétri. </li><li> Laver les PDMS à l&#39;éthanol 70% pendant 5 min sur un rotateur à 30 oscillations / min. </li><li> Sécher la surface par un courant d&#39;air sur elle. </li><li> Illuminez UV profond (λ = 180 nm) pendant 5 min à une distance des ampoules UV d&#39;environ 5 cm (voir fiche Matériaux pour la référence de la lampe, les paramètres varient pour différentes lampes). </li><li> Préparer 200 pi de solution EDC / NHS pour chaque PDMS pièce (ce doit être préparé juste avant utilisation, car la réactivité de la solution se décompose en quelques heures). Pour 1 ml de 0,05 M MES + tampons NaCl 0,5 M à pH 6,0, ajouter 11,5 mg de sulfo-NHS et 19,2 mg d&#39;EDC. </li><li> Transférer lePDMS feuilles à partir de la boîte de Petri vers le couvercle de la boîte de Pétri, qui n&#39;a pas été allumé. Cela permet de s&#39;assurer que l&#39;environnement des PDMS sont très hydrophobes et de faciliter l&#39;étape suivante. </li><li> Ajouter la solution EDC / NHS et incuber pendant 15 min à température ambiante. </li><li> Rincer EDC / NHS avec de l&#39;eau. </li><li> Ajouter la solution de PLL-g-PEG (0,5 mg / ml dans de l&#39;HEPES 10 mM pH 8,6) et incubation de 3 heures à une nuit à température ambiante. </li><li> Rincer le PLL-g-PEG avec de l&#39;eau. PDMS passives (fonctionnalisés par PLL-g-PEG) peuvent être stockés pendant plusieurs jours à 4 ° C. </li></ol> 2. Structuration de la PDMS <ol><li> Prenez une feuille de PDMS et le placer sur un photomasque de quartz synthétique portant les microcaractéristiques pour motif (voir la figure 1). Placez le côté PDMS portant le PLL-g-PEG face au côté chrome du photomasque. </li><li> Illuminer pendant 7 min à travers le photomasque à une certaine distance des ampoules UV d&#39;environ 5 cm.</li><li> Ajouter de l&#39;eau sur le masque + PDMS et éplucher les PDMS lentement le masque. </li><li> Incuber avec une solution de fibronectine à 50 mg / ml dans du tampon HEPES à pH 8,6 pendant 1 h à température ambiante. Il est possible d&#39;utiliser d&#39;autres protéines de la MEC, mais ceux-ci n&#39;ont pas été testés avec ce protocole. </li><li> Rincer avec du PBS. </li></ol> 3. Montage du périphérique <ol><li> Montez les PDMS auparavant passives sur le dispositif d&#39;étirement (voir Discussion pour le dépannage). <ol><li> Fixer un côté des PDMS à la partie fixe de la civière. </li><li> Fixer l&#39;autre côté à la partie mobile de la civière sans trop serrer la feuille de PDMS. </li></ol></li><li> Découpez un rectangle de PDMS (22 mm x 19 mm) dans un coup de PDMS d&#39;épaisseur et couper un autre rectangle à l&#39;intérieur afin d&#39;avoir une piscine (ou cadre) qui va retenir les cellules et les médias (voir la figure 2). </li><li> Ajouter de la graisse de silicone sous ce PDMS piscine et placer sur le dessus de la feuille de PDMS pour créer un medium conservant piscine. La graisse permettra le glissement de la piscine sur la feuille PDMS pendant l&#39;étirement. </li></ol> 4. Modeler les cellules <ol><li> Détacher les cellules à partir d&#39;un flacon de culture de confluence de 50% avec Versene. </li><li> Compter les cellules et remettre en suspension à une concentration de 200 000 cellules / ml. </li><li> Ajouter 1 ml de suspension de cellules dans la piscine (voir la discussion pour plus de détails). </li><li> Laisser les cellules se lient aux modes de 10 à 30 min (selon le type cellulaire, les cellules RPE-1 auront 10 minutes et les cellules HeLa 20 min). </li><li> Rincez délicatement les cellules flottantes avec un milieu équilibré (s&#39;équilibrer moyen dans l&#39;incubateur). </li><li> Laissez les cellules réparties pour quelques heures sur les modèles (RPE-1 aura besoin d&#39;au moins 2 heures, les cellules HeLa devront 3 h). </li><li> Ajouter une lamelle sur le dessus de la piscine pour éviter les fuites d&#39;évaporation et moyennes dans le cas où les PDMS pauses. </li><li> Mettre l&#39;appareil sur un microscope inversé et commencer imagerie. Éviter l&#39;utilisation de l&#39;huile à immersion obtifs comme il ne fonctionnera pas en raison de problèmes de focalisation. </li></ol> 5. Étirage <ol><li> Tourner la vis micrométrique tout en corrigeant la position de phase dans les directions x, y et l&#39;axe z (x principalement). La position de phase doit être corrigé pour compenser l&#39;élargissement des PDMS et la perte de concentration. (Voir «Pendant l&#39;étirement&quot; paragraphe de la discussion). </li></ol>

<ol><li>Vogel, V., Sheetz, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Local+force+and+geometry+sensing+regulate+cell+functions%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Local force and geometry sensing regulate cell functions.</a> Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 7, 265-275 (2006).</li>
<li>Terenna, C. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Physical+mechanisms+redirecting+cell+polarity+and+cell+shape+in+fission+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Physical mechanisms redirecting cell polarity and cell shape in fission yeast.</a> Curr. Biol. 18 (22), 1748-1753 (2008).</li>
<li>Guillot, C., Lecuit, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanics+of+epithelial+tissue+homeostasis+and+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Mechanics of epithelial tissue homeostasis and morphogenesis.</a> Science. 340 (6137), 1185-1189 (2013).</li>
<li>Bosveld, F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanical+control+of+morphogenesis+by+Fat%2FDachsous%2FFour-jointed+planar+cell+polarity+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Mechanical control of morphogenesis by Fat/Dachsous/Four-jointed planar cell polarity pathway.</a> Science. 336 (6082), 724-727 (2012).</li>
<li>Farhadifar, R., Roper, J. C., Aigouy, B., Eaton, S., Julicher, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+influence+of+cell+mechanics%2C+cell-cell+interactions%2C+and+proliferation+on+epithelial+packing%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">The influence of cell mechanics, cell-cell interactions, and proliferation on epithelial packing.</a> Curr. Biol. 17, 2095-2104 (2007).</li>
<li>Rauzi, M., Verant, P., Lecuit, T., Lenne, P. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nature+and+anisotropy+of+cortical+forces+orienting+Drosophila+tissue+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Nature and anisotropy of cortical forces orienting Drosophila tissue morphogenesis.</a> Nat. Cell Biol. 10, 1401-1410 (2008).</li>
<li>Mitrossilis, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+single-cell+response+to+stiffness%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Real-time single-cell response to stiffness.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107 (38), 16518-16523 (2010).</li>
<li>Irimia, D., Charras, G., Agrawal, N., Mitchison, T., Toner, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polar+stimulation+and+constrained+cell+migration+in+microfluidic+channels%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Polar stimulation and constrained cell migration in microfluidic channels.</a> Lab Chip. 12, 1783-1790 (2007).</li>
<li>Fink, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((External+forces+control+mitotic+spindle+positioning%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">External forces control mitotic spindle positioning.</a> Nat. Cell. Biol. 13 (7), 771-778 (2011).</li>
<li>Azioune, A., Storch, M., Bornens, M., Théry, M., Piel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+and+rapid+process+for+single+cell+micro-patterning%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Chip%22%5BJournal%5D)">Simple and rapid process for single cell micro-patterning.</a> Lab Chip. 9 (11), 1640-1642 (2009).</li>
<li>Azioune, A., Carpi, N., Tseng, Q., Théry, M., Piel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protein+micropatterns%3A+A+direct+printing+protocol+using+deep+Uvs%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Protein micropatterns: A direct printing protocol using deep Uvs.</a> Methods Cell Biol. 97, 133-146 (2010).</li>
<li>Azioune, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Robust+method+for+high-throughput+surface+patterning+of+deformable+substrates%5BTitle%5D)+AND+%22Langmuir%22%5BJournal%5D)">Robust method for high-throughput surface patterning of deformable substrates.</a> Langmuir. 27 (12), 7349-7352 (2011).</li>
<li>Carpi, N., Piel, M., Azioun, A., Cuvelier, D., Fink, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micropatterning+on+silicon+elastomer+%28PDMS%29+with+deep+UVs%5BTitle%5D)+AND+%22Protoc.+Exch%22%5BJournal%5D)">Micropatterning on silicon elastomer (PDMS) with deep UVs.</a> Protoc. Exch. , (2011).</li>
<li>Sinha, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cells+respond+to+mechanical+stress+by+rapid+disassembly+of+caveolae%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Cells respond to mechanical stress by rapid disassembly of caveolae.</a> Cell. 144 (3), 402-413 (2011).</li>
</ol>

Les auteurs déclarent aucun intérêt financier concurrents.

Bien que cette technique a été utilisée à de nombreuses reprises et est testé en profondeur, il ya plusieurs étapes critiques qui peuvent conduire à une expérience ratée. A propos des PDMS: Pour ce travail, GelPak, une feuille de PDMS mince disponible dans le commerce, a été utilisé. Sinon feuilles PDMS peuvent être lancés directement à partir de PDMS mélange. Nous vous recommandons d&#39;utiliser GelPak parce qu&#39;il est plus reproductible, et est moins susceptib...

Les cellules composant un tissu chez les organismes supérieurs sont soumis à des tensions mécaniques et les forces d&#39;étirage provenant soit du milieu extérieur ou à partir de cellules environnantes 1,2. Les cellules doivent s&#39;adapter et à résister à ces forces afin de maintenir l&#39;intégrité des tissus. Ces forces sont également importantes pour la morphogenèse des tissus au cours du développement de 3,4. L&#39;application de forces mécaniques sur des cellules en culture est une façon d&#39;imiter ce qui pourrait arriver dans un tissu, mais avec un contrôle quantitatif et indépendante de la forme des cellules et la déformation de la cellule 5,6. Pour cela, plusieurs techniques peuvent être utilisées. On peut appuyer sur les cellules (la cellule entière ou une partie de celui-ci), par exemple en utilisant l&#39;AFM ou dérivés 7,8 ou étirer le substrat, les cellules sont de plus en plus sur. La méthode décrite dans cet article montre comment étirer un substrat plan avec des cellules plaquées. Cette technique a d&#39;abord été mis au point pour évaluer le rôle des forces exercées sur mles cellules de mammifères itotic 9. Les cellules mitotiques rester connecté au substrat par des fibres de rétraction et d&#39;étirement de la membrane une force exercée sur ces fibres, ce qui a provoqué la rotation du fuseau mitotique. L&#39;intérêt de combiner micropatterns adhésives et d&#39;étirement est de parvenir à un contrôle indépendant des forces et de la forme des cellules individuelles. Il est par exemple possible d&#39;étirer une cellule ovoïde dans une forme ronde parfaitement isotrope, tandis que l&#39;allongement uniaxial est appliquée. Si les cellules ne sont pas tressé sur micropatterns, étirage uniaxial résultats de l&#39;allongement cellulaire, avec la plupart des cellules ayant un axe longitudinal aligné avec l&#39;axe d&#39;étirage. Il est alors difficile de séparer l&#39;effet de l&#39;alignement de l&#39;axe long et l&#39;effet de l&#39;étirage appliqué aux cellules. L&#39;appareil est conçu pour toute l&#39;imagerie des cellules vivantes, y compris longtemps microscopie laps de fluorescent, et les médicaments peut être ajouté lors de l&#39;expérience. La méthode profonde UV micromodelage 10qui a été décrit en détail dans Azioune et al. Patterning 11 sur PDMS a été décrit dans Azioune et al. étirage 12 La présente protocole est une version vidéo de Carpi et al. 13

<table><tbody><tr><td>GelPak</td><td>GelPak</td><td>PF-60-X4</td><td>Différentes épaisseurs/adhérences sont disponibles. Une alternative pourrait être de caster votre PDMS&nbsp ; toi-même.</td></tr><tr><td>Graisse silicone</td><td>GE Bayer Silicones</td><td>Baysilone-Paste Celle-ci</td><td>est biocompatible</td></tr><tr><td>Dispositif d’étirement</td><td>GREM m&eacute ; </td><td>Canique Brancard 2011</td><td>&nbsp ;</td></tr><tr><td>EDC (chlorhydrate de N-(3-diméthylaminopropyl)-N&prime ;-éthylcarbodiimide)</td><td>Sigma</td><td>3450</td><td>Stable 6 mois à -20 &deg ; C</td></tr><tr><td>NHS (N-Hydroxysulfosuccinimide sodium salt)</td><td>Sigma</td><td>56485</td><td>Protéger de l’humidité</td></tr><tr><td>Pll-g-peg (PLL(20)-g[3.5]-PEG(2) 20 mg)</td><td>SurfaceSolutions (Zurich)</td><td></td><td>&nbsp ;</td></tr><tr><td>Photomasque en quartz synthétique</td><td>Toppan</td><td></td><td>Prenez un photomasque binaire standard en</td></tr><tr><td>fibronectine de quartz à partir du plasma bovin</td><td>Sigma</td><td>F1141</td><td>.</td></tr></tbody></table>

stretching cellules micropatterned sur une membrane pdms

Stretching Micropatterned Cells on a PDMS Membrane

Les forces mécaniques qui s&#39;exercent sur les cellules et / ou tissus jouent un rôle important dans de nombreux processus. Nous avons mis au point un dispositif pour étirer les cellules étalées sur un polydiméthylsiloxane (PDMS) membrane, compatible avec l&#39;imagerie. Cette technique est reproductible et versatile. La membrane PDMS peut être microélectrodes pour confiner des cellules ou des tissus à une géométrie spécifique. La première étape consiste à imprimer micropatterns sur la membrane PDMS avec une technique de rayonnement UV lointain. La membrane PDMS est ensuite montée sur un châssis mécanique. Une chambre est tenue au-dessus de la membrane avec de la graisse biocompatible pour permettre glisse pendant l&#39;étirement. Les cellules sont ensemencées et autorisés à se répandre pendant plusieurs heures sur les micropatterns. L&#39;échantillon peut être étirée et non étirée à plusieurs reprises à l&#39;aide d&#39;une vis micrométrique. Il faut moins d&#39;une minute pour appliquer le tronçon à sa pleine mesure (environ 30%). La technique présentée ici ne comprend pas un dispositif motorisé, qui est nécessaire pour unpplying cycles répétés d&#39;étirement rapidement et / ou traction contrôlée ordinateur, mais cela peut être mis en œuvre. Stretching de cellules ou de tissus peut être d&#39;intérêt pour les questions liées aux forces de cellules, la réponse cellulaire au stress mécanique ou la morphogenèse des tissus. Cette présentation vidéo vous montrera comment éviter les problèmes typiques qui peuvent survenir lorsque vous faites ce type d&#39;expérience apparemment simple.

<html> La technique présentée dans ce protocole vidéo a permis l&#39;application de forces sur les fibres de rétraction de la mitose des cellules de mammifères. En effet, au cours de la division cellulaire, dans la phase mitotique des cellules de mammifères se rétractent pour prendre la forme d&#39;une sphère et laisser derrière les câbles d&#39;actine minces entourées de membrane qui sont fixés au substrat. Ces câbles (fibres de rétraction), sont la mémoire de la géométrie de la cellule avant d&#39;entrer dans la divisi...

Ce manuscrit présente une technique d&#39;appliquer ou libérer des forces sur les cellules ou les tissus adhérents utilisant étirement unidirectionnel.

Stretching cellules Micropatterned sur une membrane PDMS

Mechanical forces exerted on cells and/or tissues  play a major role in numerous processes. We have developed a device to stretch  cells plated on a ...

L'objectif général de cette procédure est d'étirer des cellules disposées selon un motif sur une membrane élastique en polydiméthylsiloxane ou PDMS. Cela est réalisé en tendant une feuille de PDMS, puis en appliquant un motif microscopique sur le PDMS. La feuille de PDMS munie du motif microscopique est ensuite fixée sur le dispositif d'étirement et une cuve de rétention de milieu est placée par-dessus.Ensuite, les cellules sont ensemencées à la surface de la feuille de PDMS microstructurée et laissées s'attacher au motif avant un lavage destiné à éliminer les cellules non attachées. L'étape finale consiste à appliquer une élongation sur le PDMS contenant les cellules afin de les étirer. En fin de compte, la microscopie vidéo est utilisée pour montrer que l'application de forces sur les fibres de rétraction des cellules mitotiques de mammifères lors de l'étirement cellulaire entraîne une déformation de la cellule.Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la biomécanique, telles que quels sont les effets des forces externes sur des processus cellulaires comme la division ? Nous avons eu l'idée de cette méthode lorsque nous avons voulu appliquer des

stretching-micropatterned-cells-on-a-pdms-membrane

Research

Recherche

JoVE Journal

Bioengineering

Bioingénierie

Nous présentons dans cet article une nouvelle plate-forme d'étirage qui peut être utilisé pour étudier les réponses des cellules individuelles à une déformation mécanique biaxial anisotrope complexe et quantifier les propriétés mécaniques des tissus biologiques.

Une nouvelle plate-forme d&#39;étirement pour Applications dans cellulaire et tissulaire mécanobiologie

Nous décrivons la fabrication de feuilles d’hydrogel à micromotifs à l’aide d’un processus simple, qui peut être assemblé et manipulé sous une forme autonome. À l’aide de ces feuilles d’hydrogel modulaires, un système de culture cellulaire 3D simple à l’échelle macroscopique peut être généré avec un microenvironnement cellulaire contrôlé.

Construction de feuilles d&#39;hydrogel modulaire pour micropatterned macro-échelle 3D Cellular architecture

Les cellules souches pluripotentes humaines (hPSCs) ont la capacité intrinsèque de différencier et d'auto-organisation dans des modèles de tissus distincts; bien que cela nécessite la présentation des gradients environnementaux spatiales. Nous présentons stencil micromodelage comme une méthode simple et robuste pour générer des gradients biochimiques et mécaniques pour le contrôle des motifs de différenciation HPSC.

Stencil micromodelage des pluripotentes humaines Cellules souches pour Probing Organisation spatiale des Différenciation Fates

Un protocole pour produire une grande surface de substrat nanopatterned à partir de petits moules nanopatterned pour l’étude de la modulation nanotopographique du comportement cellulaire est présenté.

Extension nanostructurées Substrats utilisant la technique de point pour Nanotopographical Modulation of Cell Comportement

Ce rapport décrit une technique simple et facile à réaliser, utilisant le vide à basse pression, pour remplir des canaux microfluidiques avec des cellules et des substrats pour la recherche biologique.

Une méthode polyvalente de patterning Les protéines et les cellules

Nous présentons ici un protocole pour les cellules micromotérinaires à résolution unicellulaire en utilisant l’adhésion programmée par l’ADN. Ce protocole utilise une plate-forme de photolithographie de paillasse pour créer des motifs d’oligonucléotides d’ADN sur une lame de verre, puis marque les membranes cellulaires avec des oligonucléotides complémentaires disponibles dans le commerce. L’hybridation des oligos entraîne une adhésion cellulaireprogrammée.

Modélisation simple, abordable et modulaire des cellules à l’aide de l’ADN

Nous décrivons les améliorations apportées à une méthode standard de mesure des forces de traction cellulaire, basée sur l’impression par microcontact avec une seule étape de motif soustractif de réseaux de points de protéines de matrice extracellulaire sur des hydrogels mous. Cette méthode permet une fabrication plus simple et plus cohérente de motifs d’îlots, essentiels pour contrôler la forme des amas de cellules.

Génération de motifs pour la microscopie de traction à micromotifs

Traditionnellement, la culture cellulaire est réalisée sur des substrats planaires qui imitent mal l’environnement naturel des cellules in vivo. Nous décrivons ici une méthode pour produire des substrats de culture cellulaire avec des géométries courbes physiologiquement pertinentes et des protéines extracellulaires micromotifs, permettant des recherches systématiques sur la détection cellulaire de ces signaux extracellulaires.

Génération de microenvironnements cellulaires multicue par photomodèlement UV de substrats de culture cellulaire tridimensionnels

Ce protocole décrit une méthode de structuration cellulaire à haut débit sans encre, sans marquage, indépendante du substrat, basée sur l’effet Archimède magnétique.

Structuration cellulaire à l’aide de la stratégie d’Archimède magnétique

Nous présentons ici un appareil d’étirement équibiaxial polyvalent, à commande pneumatique et compatible avec la microscopie à haute résolution.

Dispositif d’étirement équibiaxique pour microscopie confocale à fluorescence à cellules vivantes à fort grossissement

Nous présentons une plateforme de test de rigidité dynamique et réversible fabriquée à l’aide d’un élastomère de silicone ultra-doux (polydiméthylsiloxane, PDMS) avec des particules de fer intégrées. Ce nouveau test convient à l’étude des changements physiques émergents dépendants du temps dans les phénotypes cellulaires, y compris le guidage par contact. Ici, nous mesurons l’alignement des cardiomyocytes du rat néonatal sur le raidissement de la matrice à l’aide de magnétiques.

Élastomères magnéto-rhéologiques microstructurés pour entraîner des changements dans l’alignement des cardiomyocytes

Découvrez une technique d'étirement unidirectionnel de cellules adhérentes sur membrane PDMS micropatternée. Cette méthode permet d'étudier les réponses mécaniques des cellules en mitose par microscopie vidéo.

Stretching cellules Micropatterned sur une membrane PDMS

Explorer plus de vidéos