Name: Imagerie à travers le cas de la nymphe Drosophila melanogaster (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-23T15:15:00.000+00:00
Duration: 6 min 50 s
Description: Découvrez une technique d'imagerie confocale à balayage rapide pour observer les nymphes de Drosophila melanogaster sans endommager leur intégrité structurelle. Cette méthode permet de visualiser les processus cellulaires dynamiques pendant le développement.

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Les auteurs tiennent à remercier Akira Chiba pour un soutien intellectuel, le soutien matériel et les stocks. Merci à Julia Dallman pour commentaires.

Une. Fly travail <ol><li> Maintenir les mouches sur le milieu de semoule de maïs-agar-mélasse-levure standard à température ambiante 10. </li><li> Pour croix, isoler vierges dans les 6 h de l&#39;éclosion. Après avoir traversé les mâles du génotype désiré, changement vole vers de nouveaux flacons tous les 3-4 jours. </li></ol> Remarque: Pour ces expériences, ligne Gal4 A9 a été utilisé pour diriger l&#39;expression de transgènes dans l&#39;aile. Fly stocks peuvent être obtenues auprès du centre de langue à Bloomington. Stocks utilisés dans ces expériences comprennent A9-Gal4 (Bl # 8761), His2Av-GFP (Bl # 5941), Sco / CYO HsCre (Bl # 1092), SAMU-ChRFP-Tub (Bl # 25773), lollibow 11. 2. Sélection et montage des pupes <ol><li> Stade de nymphes, soit par la collecte comme prénymphes blanc (WPP) et les maintenir à 25 ° C jusqu&#39;à ce qu&#39;ils atteignent l&#39;âge approprié ou en utilisant des critères morphologiques 12. </li><li> Pour observer des divisions cellulaires, sélectionnez nymphe qui ont récemment subi une tête de retournement.Partir de ce moment jusqu&#39;à ce que juste avant l&#39;éclosion (à&gt; 96 h), les nymphes sont immobiles permettant l&#39;observation prolongée time-lapse. </li><li> Retirer les nymphes des flacons d&#39;abord en les touchant avec un pinceau imbibé d&#39;eau, en attendant une minute pour permettre à l&#39;eau pour desserrer la colle et puis doucement les pousser sur le pinceau. </li><li> Lavez délicatement les nymphes sélectionné par les pousser avec un pinceau dans l&#39;eau pour éliminer les particules adhésives de la glande et alimentaires salivaires. </li><li> Transférer les pupes propre à une boîte de Petri de 25 mm avec un fond de la lamelle couvre-objet (numéro 1 ½ lamelles couvre-objet). </li><li> Utilisation de fines bandes de pâte à modeler soit ou cire dentaire à titre de support, de sorte que les pupes monter le tissu d&#39;intérêt est la plus proche de la lamelle. Note: Dans les études décrites ici, ailes de nymphose, les jambes, histoblastes abdominales ou dorsales notum ont été observés. En pratique, n&#39;importe quel tissu dans 20 um de la surface de la coque de nymphose est observable. </li><li> Nymphes Orient avec soin afin que le tissue d&#39;intérêt est parallèle à la surface de la lamelle de verre. </li><li> Une fois les nymphes sont montés, utilisez un pinceau pour transférer une fine couche de thiodiéthylèneglycol (TMD) à l&#39;espace entre la nymphe et la lamelle. </li></ol> Remarque: TMD réduit la diffusion de surface, correspond à l&#39;indice de réfraction de l&#39;huile, et permet à l&#39;oxygène de pénétrer le tissu 13. L&#39;utilisation des huiles n&#39;est pas recommandé, car ils ont tendance à priver les tissus de l&#39;oxygène, ce qui provoque la cessation rapide des comportements cellulaires. 3. Imagerie Remarque: Pour l&#39;imagerie, un microscope confocal est susceptible d&#39;être essentiel que le confocalité supprime la plupart des fond d&#39;obscurcissement causé par un éclairage intense de la coque de nymphose. <ol><li> Réglez les paramètres sur la confocale à minimiser l&#39;impact de l&#39;éclairage sur le développement des pupes et la viabilité. Pour ce faire, trouver un équilibre entre l&#39;intensité de l&#39;excitation et de la sensibilité de la collecte. Une configuration typique pour l&#39;imagerie wie le Leica SP5 utilisé le scanner de résonance (8000 Hz), la puissance du laser fixé à 2% (10% de transmission de puissance de 20%), ensemble sténopé à 120 um, et la ligne VITESSE réglée à 8. Paramètres peuvent varier en fonction des conditions expérimentales. </li></ol> Remarque: Pour résoudre échelle fine dispose 40X et 63X lentilles à immersion d&#39;huile (0,1 mm de distance de travail) ont également été utilisés avec succès dans cette méthode, même si elles limitent la profondeur de champ. 4. Analyse Pour analyser les trames, z-piles ou des films importer les fichiers de données à FIDJI, qui dispose d&#39;outils efficaces pour la visualisation, la mesure et la modification des fichiers de présentation 14. Par exemple le temps de compléter la mitose a été mesurée en utilisant l&#39;intervalle d&#39;échantillonnage et le navigateur d&#39;image multidimensionnelle de l&#39;étape à travers les cadres tout en regardant une cellule de la prophase à la télophase. x, y, et z dimensions peuvent être mesurées à l&#39;aide de l&#39;outil de mesure. Pour obtenir des instructions détaillées sur le logiciel et son utilisationvoir: http://fiji.sc/Fiji.

<ol><li>Raff, J. W., Jeffers, K., Huang, J. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+roles+of+Fzy%2FCdc20+and+Fzr%2FCdh1+in+regulating+the+destruction+of+cyclin+B+in+space+and+time%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The roles of Fzy/Cdc20 and Fzr/Cdh1 in regulating the destruction of cyclin B in space and time.</a> J. Cell Biol. 157, 1139-1149 (2002).</li>
<li>Stramer, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+of+wound+inflammation+in+Drosophila+embryos+reveals+key+roles+for+small+GTPases+during+in+vivo+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Live imaging of wound inflammation in Drosophila embryos reveals key roles for small GTPases during in vivo cell migration.</a> J. Cell Biol. 168, 567-573 (2005).</li>
<li>Clark, I. B., Jarman, A. P., Finnegan, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+of+Drosophila+gonad+formation+reveals+roles+for+Six4+in+regulating+germline+and+somatic+cell+migration%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Live imaging of Drosophila gonad formation reveals roles for Six4 in regulating germline and somatic cell migration.</a> BMC Dev. Biol. 7, 52 (2007).</li>
<li>Fuger, P., Behrends, L. B., Mertel, S., Sigrist, S. J., Rasse, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+of+synapse+development+and+measuring+protein+dynamics+using+two-color+fluorescence+recovery+after+photo-bleaching+at+Drosophila+synapses%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Live imaging of synapse development and measuring protein dynamics using two-color fluorescence recovery after photo-bleaching at Drosophila synapses.</a> Nat. Protoc. 2, 3285-3298 (2007).</li>
<li>Siller, K. H., Serr, M., Steward, R., Hays, T. S., Doe, C. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+of+Drosophila+brain+neuroblasts+reveals+a+role+for+Lis1%2Fdynactin+in+spindle+assembly+and+mitotic+checkpoint+control%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Live imaging of Drosophila brain neuroblasts reveals a role for Lis1/dynactin in spindle assembly and mitotic checkpoint control.</a> Mol. Biol. Cell. 16, 5127-5140 (2005).</li>
<li>Roy, S., Hsiung, F., Kornberg, T. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specificity+of+Drosophila+cytonemes+for+distinct+signaling+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Specificity of Drosophila cytonemes for distinct signaling pathways.</a> Science. 332, 354-358 (2011).</li>
<li>Gho, M., Bellaiche, Y., Schweisguth, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Revisiting+the+Drosophila+microchaete+lineage%3A+a+novel+intrinsically+asymmetric+cell+division+generates+a+glial+cell%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Revisiting the Drosophila microchaete lineage: a novel intrinsically asymmetric cell division generates a glial cell.</a> Development. 126, 3573-3584 (1999).</li>
<li>Ninov, N., Martin-Blanco, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+of+epidermal+morphogenesis+during+the+development+of+the+adult+abdominal+epidermis+of+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Live imaging of epidermal morphogenesis during the development of the adult abdominal epidermis of Drosophila.</a> Nat. Protoc. 2, 3074-3080 (2007).</li>
<li>Edgar, B. A., Lehner, C. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Developmental+control+of+cell+cycle+regulators%3A+a+fly%27s+perspective%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Developmental control of cell cycle regulators: a fly's perspective.</a> Science. 274, 1646-1652 (1996).</li>
<li>Wirtz, R. A., Semey, H. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Drosophila+kitchen%3A+equipment%2C+media+preparation%2C+and+supplies%5BTitle%5D)+AND+%22Drosophila+Information+Service%22%5BJournal%5D)">The Drosophila kitchen: equipment, media preparation, and supplies.</a> Drosophila Information Service. 58, 176-180 (1982).</li>
<li>Boulina, M., Samarajeewa, H., Baker, J. D., Kim, M. D., Chiba, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+imaging+of+multicolor-labeled+cells+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Live imaging of multicolor-labeled cells in Drosophila.</a> Development. 140, 1605-1613 (2013).</li>
<li>Bainbridge, S. P., Bownes, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Staging+the+metamorphosis+of+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Embryol.+Exp.+Morphol%22%5BJournal%5D)">Staging the metamorphosis of Drosophila melanogaster.</a> J. Embryol. Exp. Morphol. 66, 57-80 (1981).</li>
<li>Staudt, T., Lang, M. C., Medda, R., Engelhardt, J., Hell, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((2%2C2%27-thiodiethanol%3A+a+new+water+soluble+mounting+medium+for+high+resolution+optical+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Microsc.+Res.+Tech%22%5BJournal%5D)">2,2'-thiodiethanol: a new water soluble mounting medium for high resolution optical microscopy.</a> Microsc. Res. Tech. 70, 1-9 (2007).</li>
<li>Schindelin, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fiji%3A+an+open-source+platform+for+biological-image+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Methods%22%5BJournal%5D)">Fiji: an open-source platform for biological-image analysis.</a> Nat. Methods. 9, 676-682 (2012).</li>
<li>Meyer, E. J., Ikmi, A., Gibson, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interkinetic+nuclear+migration+is+a+broadly+conserved+feature+of+cell+division+in+pseudostratified+epithelia%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Interkinetic nuclear migration is a broadly conserved feature of cell division in pseudostratified epithelia.</a> Curr. Biol. 21, 485-491 (2011).</li>
<li>Sauer, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitosis+in+the+neural+tube%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Comp.+Neurol%22%5BJournal%5D)">Mitosis in the neural tube.</a> J. Comp. Neurol. 62, 377-405 (1935).</li>
<li>Livet, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+strategies+for+combinatorial+expression+of+fluorescent+proteins+in+the+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Transgenic strategies for combinatorial expression of fluorescent proteins in the nervous system.</a> Nature. 450, 56-62 (2007).</li>
</ol>

Les auteurs n&#39;ont rien à révéler.

Pour visualiser, mesurer et quantifier les caractéristiques des cellules en division, le développement nécessaire d&#39;une préparation simple pour l&#39;observation de la mitose dans l&#39;aile pupe vie de la drosophile par des moyens d&#39;analyse confocale de cellules exprimant His2AvGFP. Cette méthode a été utilisée pour documenter que le cycle cellulaire dans l&#39;aile pupe porte de fortes similitudes avec la cellule cycles dans l&#39;épithélium pseudo-stratifié en ce que les noyaux passage à la surface a...

<html> La mouche du vinaigre, Drosophila melanogaster, est un modèle bien établi pour étudier de nombreux aspects de la biologie. Recherche Drosophila a une riche histoire de l&#39;expérimentation génétique qui permet des formes plus sophistiquées de manipulation de gènes dont l&#39;expression, démontable et mutation. Avec l&#39;avènement des étiquettes de protéines fluorescentes, ce répertoire a été élargi pour inclure des études sur des cellules et des protéines chez les animaux vivants. L&#39;embryon de mouche est un excellent système pour les études qu&#39;elle est petite et optiquement clair permettant profonde, haute résolution imagerie in vivo 1-3. D&#39;autres étapes du développement de la mouche se sont avérées moins docile, nécessitant anesthésie 4, la dissection et de la culture à court terme de 5,6, ou la création de fenêtres de la cuticule pour l&#39;imagerie 7,8. Ces manipulations compromettent généralement le développement animal à long terme ou affectent l&#39;animal de manière à limiter l&#39;imagerie pour de courtes périodes. ent &quot;&gt; Pour étudier de nouvelles mutations dans les gènes qui ressemblent à des régulateurs du cycle cellulaire, il est essentiel de trouver une préparation appropriée pour étudier le calendrier et la fidélité du cycle cellulaire. Comme la plupart des cycles de cellules embryonnaires sont tronqués (SM ou S-G2-M) et les mutants étudiés ne présentent pas de défauts jusqu&#39;à ce que les étapes ultérieures, il est important d&#39;observer le cycle cellulaire dans les tissus stade de pupe. cellules épithéliales de la pupe ont un cycle cellulaire G1-S-G2-M plus typiques et les nymphes de cette étape sont pas capable de mouvements musculaires 9. Le point de départ initial pour les manipulations inclus toute pupes intact exprimer Histone2AV-GFP. Malgré l&#39;apparente opacité de la pupe, cette préparation intacte s&#39;est avérée excellente à long terme dans l&#39;imagerie in vivo. Cette technique est simple assez que les chercheurs de premier cycle utilisent régulièrement pour étudier les aspects de la biologie cellulaire et de développement chez la drosophile et pourtant la résolution est assez fine pour permettre la discrimination des fonctionnalités à l&#39;échelle du micromètre. Avec cette méthode, l&#39;observation des événements au cours des heures, minutes ou secondes sont possibles simplement en ajustant les paramètres de séries chronologiques. Vidéos en utilisant bleu, des protéines fluorescentes vertes, jaunes, oranges, rouges et, ou des combinaisons de ceux-ci, ont été réalisés. Surtout, si les soins sont prises pour minimiser l&#39;intensité du laser, même imagerie à long terme n&#39;a pas d&#39;effet sur le développement ou la viabilité des animaux.

<table><tbody><tr><td>Tampon anti-mouches</td><td>Genesee Scientific</td><td>59-114</td><td>pour l’anesthésie des mouches</td></tr><tr><td>CO2 gaz</td><td>Airgas South</td><td>CD50</td><td>Pour l’anesthésie des mouches</td></tr><tr><td>Détendeur</td><td>Airgas South</td><td></td><td>CO2 Régulateur</td></tr><tr><td>Flacons anti-mouches</td><td>Genesee Scientific</td><td>32-113RLBF</td><td>Culture de mouches</td></tr><tr><td>Drosophila lignes :A9-Gal4 (Bl#8761), His2Av-GFP (Bl#5941), Sco/CyO HsCre (Bl#1092), UAS-ChRFP-Tub (Bl#25773)</td><td>Bloomington Stock Center</td><td></td><td>&nbsp ;</td></tr><tr><td>Plats à fond en verre #1 1/2</td><td>WillCo Wells BV</td><td></td><td>Pour la microscopie</td></tr><tr><td>Thiodiéthylène Glycol</td><td>Fluka</td><td>88559</td><td>monteur</td></tr><tr><td>Argile à modeler</td><td>magasin</td><td></td> de fournitures d’art <td>Support pour positionner les pupes contre</td></tr><tr><td>les pinceaux magasin de</td><td>fournitures</td><td></td> d’art <td>Pour manipuler les mouches</td></tr><tr><td>Pinces fines, Inox #5</td><td>Outils scientifiques fins</td><td>11252-20</td><td>Dumont #5</td></tr><tr><td>ordinateur</td><td>n’importe quel</td><td></td><td>8 Go de RAM pour l’analyse d’images/films</td></tr><tr><td>Logiciel</td><td></td><td>Fidji Logiciel gratuit http://fiji.sc/Fiji</td><td>Logiciel d’analyse d’images</td></tr><tr><td>Microscope</td><td></td><td></td> confocal <td>Tout confocal à balayage rapide doit être suffisant</td></tr><tr><td>20X à sec et 40X ou 63X lentilles d’immersion dans l’huile</td><td>n’importe quel</td><td></td><td>Pour l’imagerie des caractéristiques tissulaires, cellulaires et subcellulaires</td></tr><tr><td>Huile d’immersion (non fluorescente)</td><td></td><td></td><td>&nbsp ;</td></tr><tr><td>Stéréomicroscope</td><td>n’importe quel</td><td></td><td>Pour la manipulation des mouches</td></tr></tbody></table>

imagerie à travers le cas de la nymphe<em&gt; drosophila melanogaster</em

Imaging Through the Pupal Case of Drosophila melanogaster

L&#39;utilisation de longue date de la drosophile comme modèle pour la biologie cellulaire et de développement a donné une gamme d&#39;outils. Ensemble, ces techniques ont permis l&#39;analyse de cellules et de la biologie du développement à partir d&#39;une variété d&#39;angles méthodologiques. Imagerie en temps réel est une nouvelle méthode pour l&#39;observation des processus dynamiques de cellule, telles que la division cellulaire ou de la motilité cellulaire. Après avoir isolé des mutations dans les protéines du cycle cellulaire putatifs non caractérisés, il est devenu essentiel d&#39;observer la mitose in situ en utilisant l&#39;imagerie en direct. La plupart des études d&#39;imagerie en direct chez la drosophile ont porté sur les stades embryonnaires qui sont accessibles à la manipulation et l&#39;observation en raison de leur petite taille et de clarté optique. Toutefois, dans ces phases du cycle cellulaire est inhabituel en ce qu&#39;il manque une ou deux des phases de l&#39;écart. En revanche, les cellules de l&#39;aile des pupes de la drosophile ont un cycle cellulaire typique et subissent une période de mitose rapide couvrant environ 20 h de développement des pupes. Il est facile d&#39;identify et isoler les nymphes de la scène appropriée pour attraper la mitose in situ. Montage pupes intact offrait la meilleure combinaison de traçabilité et de durabilité lors de l&#39;imagerie, permettant des expériences de courir pendant plusieurs heures avec un impact minimal sur la cellule animale et la viabilité. La méthode permet l&#39;observation de caractéristiques aussi petites ou plus petites que, voler chromosomes. Ajustement des réglages du microscope et les détails de montage, a permis l&#39;extension de la préparation de visualiser la dynamique des membranes des cellules adjacentes et les protéines marquées par fluorescence tels que la tubuline. Cette méthode fonctionne pour toutes les protéines fluorescentes testé et peut capturer submicroniques caractéristiques d&#39;échelle sur une variété d&#39;échelles de temps. Bien que limitée à l&#39;extérieur de 20 um de la nymphe avec un microscope confocal classique, cette approche à l&#39;observation de protéines et dynamique cellulaires dans les tissus des pupes in vivo peut être généralement utile dans l&#39;étude de la biologie cellulaire et de développement dans ces tissus.

Les cellules de l&#39;épithélium pseudo-stratifié, telles que le développement de l&#39;œil de Drosophila, ou de la couche du ventricule du système nerveux central des vertébrés en développement, subissent des mouvements nucléaires, appelée migration nucléaire interkinetic, dans le temps avec le cycle cellulaire. réplication de l&#39;ADN se produit lorsque les noyaux sont au niveau ou près de la surface de la base et les cellules entrent en mitose lorsque les noyaux atteignent la surface apicale 15,16.</su...

Ce document illustre l&#39;utilisation d&#39;un balayage rapide microscope confocal à un comportement cellulaire de l&#39;image directement à travers la pupe. En laissant la coque de nymphose intacte, cette méthode permet l&#39;observation et la mesure des processus dynamiques de cellule à un stade de développement de la drosophile qui est difficile à étudier directement.

Imagerie à travers le cas de la nymphe<em&gt; Drosophila melanogaster</em

The longstanding use of Drosophila as a model for cell and developmental biology has yielded an array of tools. Together, these techniques have enabled ...

Dans cette vidéo, nous allons démontrer des techniques nouvelles qui nous permettent d'observer les pupe de Drosophila melanogaster sans compromettre l'intégrité structurelle du stade pupal. En conservant l'enveloppe pupale intacte, nous minimisons l'impact de l'observation sur le développement et la viabilité de la nymphe. Nous utilisons un microscope confocal à balayage résonnant de 8 000 hertz pour l'observation.Importamment, la vitesse de balayage très élevée et la grande sensibilité de ce microscope réduisent considérablement le photoblanchiment, permettant des périodes d'observation prolongées. Grâce à cette méthode, nous avons pu visualiser divers processus de biologie cellulaire, notamment le comportement, le fop, les podia, la morphogenèse, la phagocytose et la mitose. Avec cette technique, nous pouvons observer in situ des événements pendant de longues périodes sans endommager l'organisme.Les observations obtenues grâce à ces méthodes peuvent être utilisées pour comprendre divers phénomènes biologiques à ce stade relativement inaccessible du développement de drosophile, les gens du fromage, le stade approprié, nous les examinons encore dans le flacon en recherchant des in

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Ce protocole présente une méthode efficace pour l’imagerie du neuroépithélium de l’œil nymphal vivant de la drosophile. Cette méthode compense le mouvement des tissus et la topologie inégale, améliore la visualisation des limites cellulaires grâce à l’utilisation de plusieurs protéines de jonction marquées GFP et utilise un banc d’imagerie facile à assembler.

Live-imagerie de la Drosophila Nymphe yeux

Ici, les protocoles expérimentaux sont décrits pour préparer la drosophile à différents stades de développement et effectuer une imagerie optique longitudinale des battements cardiaques de la drosophile à l’aide d’un système de microscopie à cohérence optique (OCM) personnalisé. Les changements morphologiques et dynamiques cardiaques peuvent être caractérisés quantitativement en analysant les paramètres structurels et fonctionnels du cœur à partir d’images OCM.

Drosophila Préparation et imagerie longitudinale de la fonction cardiaque in vivo en utilisant cohérence optique Microscopie (OCM)

Nous présentons ici une méthode facile à utiliser et polyvalente pour exécuter direct imaging des processus de développement en général et muscle-tendon morphogenèse en particulier la vie pupes de drosophile .

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Ce protocole est conçu pour l’imagerie et l’analyse de la dynamique de l’orientation cellulaire et de la croissance des tissus dans l’épithélie abdominale Drosophila que la mouche des fruits subit une métamorphose. La méthodologie décrite ici peut être appliquée à l’étude de différents stades de développement, tissus et structures subcellulaires dans Drosophila ou d’autres organismes modèles.

Imagerie et analyse de l’orientation tissulaire et de la dynamique de croissance dans l’épithélie de drosophile en développement pendant les stades pupal

Ici, nous discutons d’un flux de travail pour préparer, disséquer, monter et imager des cerveaux d’explants vivants de larves du troisième stade de Drosophila melanogaster afin d’observer la dynamique cellulaire et subcellulaire dans des conditions physiologiques.

Imagerie de cellules vivantes du cerveau larvaire du troisième stade de Drosophila melanogaster

Ici, un protocole est présenté pour l’imagerie en direct à long terme de la patte de la drosophile pendant le stade nymphal, impliquant l’ablation complète du puparium. Ce protocole peut également être appliqué à d’autres tissus.

Imagerie en direct à long terme du développement de la patte de la drosophile après l’ablation du puparium

La drosophile est un modèle puissant pour comprendre les mécanismes fondamentaux de la myogenèse. Ce protocole de dissection et de préparation des hémisections du thorax permet l’analyse microscopique des muscles en vol indirect à partir des stades nymphal et adulte. Ce protocole permet l’imagerie confocale de la morphologie cellulaire, de la localisation des protéines, de la structure musculaire et de multiples autres aspects de la myogenèse.

Dissection des muscles de vol indirect de Drosophila melanogaster pour les approches microscopiques

Découvrez une technique d'imagerie confocale à balayage rapide pour observer les nymphes de Drosophila melanogaster sans endommager leur intégrité structurelle. Cette méthode permet de visualiser les processus cellulaires dynamiques pendant le développement.

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