Name: Identification de nouveaux gènes associés à la production dalginate dans Pseudomonas aeruginosa Utilisation de Mini- Himar1 Mutagenèse Mariner Transposon médiation (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-03-10T21:45:00.000+00:00
Duration: 8 min 57 s
Description: Découvrez la mutagenèse par transposon mini-himar1 pour identifier de nouveaux régulateurs de l'alginate chez Pseudomonas aeruginosa. Cette méthode permet de caractériser les gènes impliqués dans la production de ce polysaccharide.

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Ce travail a été soutenu par la NASA en Virginie occidentale espace Grant Consortium NASA (National WVSGC), Cystic Fibrosis Foundation (CFF-YU11G0) et NIH P20RR016477 et P20GM103434 au réseau IDeA Virginie-Occidentale pour l&#39;excellence en recherche biomédicale. Nous remercions Vonya M. Eisinger pour l&#39;assistance technique à ces travaux.

Une. Préparation des souches bactériennes et biparentale Conjugaison <ol><li> Inoculer E. coli SM10/λpir/pFAC dans 5 ml de bouillon de Luria (LB) additionné de 15 pg / ml de gentamicine et le placer dans un incubateur à agitation pendant une nuit à 37 ° C. </li><li> Inoculer P. aeruginosa souche PAO1 dans 5 ml de LB, et placer dans un incubateur à agitation pendant une nuit à 42 ° C. </li><li> Mesurer la DO 600 de cultures de la nuit et mélanger des quantités égales de PAO1 et E. coli PFA telle que le volume final est entre 1 à 1,4 ml. </li><li> mélange Centrifuger à 6000 g pendant 5 min. </li><li> Pendant ce temps, sécher des plaques LB pour la conjugaison: laisser les plaques ouvertes dans l&#39;incubateur à 37 ° C pendant 10-15 min. </li><li> Retirez tous mais 50 pi de surnageant de mélange de cellules. </li><li> Reprendre le culot cellulaire dans les 50 pi restants de surnageant et pipette sur une plaque LB sec dans une gouttelette compact. </li><li> Placez délicatement la plaque dans une hotte à sécher (IMPORemarque rtant: Ne laissez pas les cellules réparties sur la plaque, ce diminuera de façon significative l&#39;efficacité de la conjugaison). </li><li> Une fois la goutte est sec, retourner la plaque LB et incuber à 37 ° C pendant 4-6 heures. </li><li> Bien que le mélange de cellules est en incubation, préparer de grandes (150 mm x 15 mm) des plaques de PIA avec 300 pg / ml de gentamicine. Avant toute utilisation, enlever toute humidité résiduelle en plaçant dans un incubateur à 37 ° C pendant 15-20 min. </li><li> Après l&#39;incubation du mélange de cellules est terminée, recueillir les cellules à l&#39;aide d&#39;une anse d&#39;inoculation stérile et dans un tube à centrifuger contenant 1 ml de LB et vortex, ou d&#39;une pipette, pour bien mélanger. </li><li> Répartir les cellules uniformément sur les grandes plaques PIA contiennent 300 pg / ml de gentamicine. (IMPORTANT: Pour cette étape, il est préférable d&#39;ajouter des volumes croissants de mélange de cellules pour séparer les plaques (par exemple Planche 1: 10 pi, Planche 2: 50 pi, Planche 3: 100 pi, Planche 4: 500 pi, etc) . </li><li> Incuber une nuit à 37° C. </li></ol> 2. La détection et l&#39;isolement des colonies mucoïdes <ol><li> Retirer les plaques de l&#39;incubateur et examiner les colonies mucoïdes. </li><li> Isoler une seule colonie mucoïde et par épuisement sur les petites plaques (100 mm x 10 mm) avec PIA et 300 pg / ml de gentamicine. </li><li> Incuber pendant une nuit à 37 ° C. </li><li> Répétez l&#39;étape 2.2 de la culture de la nuit précédente. </li><li> Répétez les étapes 02.02 à 02.04 deux fois de plus pour déterminer la stabilité de l&#39;isolat mucoïde. </li><li> Après l&#39;étape finale de l&#39;isolat, inoculer 4,5 ml de LB avec une seule colonie mucoïde et incuber pendant une nuit dans un agitateur à 37 ° C. </li><li> Le lendemain, l&#39;étiquette 3 microtubes pour chaque mutant mucoïde. </li><li> Préparer deux 1,25 ml aliquotes de culture d&#39;une nuit dans 2 tubes pour l&#39;extraction de l&#39;ADN génomique et l&#39;identification du site d&#39;insertion du transposon (voir protocole n ° 3). </li><li> En outre, archiver chaque mutant mucoïde par pipetage 1 ml de culture durant la nuit dans un CRÉDITScryovial ely-marqué contenant un volume égal de 10% de lait écrémé. Conserver à -86 ° C. </li></ol> 3. ADNg digestion de restriction et ligature <ol><li> Extraire à partir de l&#39;ADNg de la mucoïde mutant en utilisant n&#39;importe quel procédé préféré (par exemple. Phénol-chloroforme, colonne de centrifugation, etc.) </li><li> Déterminer la concentration de l&#39;ADNg, de digérer un total de 2 pg à 1 microlitre de l&#39;endonucléase de restriction Sal I, 0,5 ul d&#39;albumine de sérum bovin, 5 ul de Sali enzyme tampon (100 mM de NaCl, 50 mM Tris-HCl, 10 mM de MgCl2 , 1 mM de dithiothréitol (DTT), pH 7,9 à température ambiante), et le volume approprié de dH 2 O pour obtenir un volume total de 50 ul. </li><li> Digérer l&#39;ADN pendant une nuit à 37 ° C. (IMPORTANT:. Selon l&#39;efficacité de l&#39;enzyme de restriction, il peut être nécessaire d&#39;ajouter un 1 pi supplémentaires pour le résumé du jour au lendemain et incuber à 37 ° C pendant 1-2 heures C&#39;est en plus de la digestion pendant la nuit.) </li><li> Purifier le digeADN STED utilisant n&#39;importe quelle méthode préférée (par exemple agarose de purification de gel, les colonnes de spin) et élue avec 25 pi de tampon. </li><li> Ligaturer l&#39;ADN digéré par mélange de 11 ul d&#39;ADN purifié avec une concentration préférée de ~ 10 à 20 ng / pl, 1,5 pl de tampon de ligature (330 mM de Tris-acétate pH 7,5, 660 mM d&#39;acétate de potassium, l&#39;acétate de magnésium 100 mM, 5 mM DTT), 1,5 ul de 100 mM d&#39;ATP et 1 ul d&#39;ADN ligase. </li><li> Faire incuber le mélange pendant 15 min à température ambiante, et ensuite inactiver l&#39;enzyme par incubation pendant 15 min à 70 ° C. (Remarque: l&#39;incubation du mélange à température ambiante pendant plus peut augmenter le succès de la ligation). </li></ol> 4. PCR inverse (iPCR) et Analyse de séquence <ol><li> Effectuer iPCR sur le produit de ligature en utilisant le texte suivant amorces sens et antisens et conditions thermocycler: Primer-Forward (Gm3OUT): GGGCATACGGGAAGAAGTGA Primer inversée (Gm5OUT): GACTGCCCTGCTGCGTAACA Thermocycleur Conditions: Une. 94 ° C pendant 1 min. 2. 94 ° C pendant 1 min. 3. 58 ° C pendant 2 min. 4. 72 ° C pendant 2 min. 5. 72 ° C pendant 8 min. 6. 10 ° C en attente. Répétez les étapes 2-4 pour 34 cycles. (REMARQUE: Les produits amplifiés PCR inverse peuvent être stockés à 4 ° C) </li><li> Effectuer l&#39;électrophorèse sur gel d&#39;agarose pour confirmer la réussite amplification iPCR. </li><li> Effectuer le séquençage du produit iPCR utilisant les amorces Gm3OUT et Gm5OUT. Le site d&#39;insertion et l&#39;orientation de himar1 sont tracées. </li></ol>

<ol><li>Govan, J. R., Deretic, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microbial+pathogenesis+in+cystic+fibrosis%3A+mucoid+Pseudomonas+aeruginosa+and+Burkholderia+cepacia%5BTitle%5D)+AND+%22Microbiol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Microbial pathogenesis in cystic fibrosis: mucoid Pseudomonas aeruginosa and Burkholderia cepacia.</a> Microbiol. Rev. 60, 539-574 (1996).</li>
<li>Chitnis, C. E., Ohman, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Genetic+analysis+of+the+alginate+biosynthetic+gene+cluster+of+Pseudomonas+aeruginosa+shows+evidence+of+an+operonic+structure%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Genetic analysis of the alginate biosynthetic gene cluster of Pseudomonas aeruginosa shows evidence of an operonic structure.</a> Mol. Microbiol. 8, 583-593 (1993).</li>
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</ol>

L&#39;auteur Hongwei D. Yu est le conseiller scientifique en chef et co-fondateur de ProGenesis Technologies, LLC.

Il est important de noter que ce procédé peut être utilisé dans d&#39;autres espèces de Pseudomonas avec ces altérations: incuber P. fluorescens et P. putida à 30 ° C, et P. stutzeri à 42 ° C; P. stuzeri doit être mis en culture sur des plaques LB supplémenté avec 150 ug / ml de gentamycine, à l&#39;étape 1.11, P. stutzeri cellules doivent être transférés dans 500 pl de LB au lieu de 1 ml. En outre, il ya deux étapes essentielles de ce protocole. Tout d&#39;abord, la...

La capacité de la opportuniste, agent pathogène Gram négatif Pseudomonas aeruginosa à la surproduction de l&#39;alginate est un facteur majeur dans sa capacité à établir un film biologique. La surproduction d&#39;alginate est un phénotype souvent dénommé mucoidy. L&#39;isolement des colonies mucoïdes de crachats de personnes atteintes de fibrose kystique (FK) est indicative d&#39;une infection chronique, et est directement associée à une baisse générale de la santé du patient 1. Actuellement, il est entendu que la régulation de la production et de l&#39;alginate dans P. aeruginosa se ​​produit principalement à deux opérons. Le premier est l&#39;opéron de biosynthèse de l&#39;alginate, qui contient 12 gènes (ALGD - alg8 - alg44 - algK - Alge - algG - Algx - algL - ALGI - algJ - algF - algA) qui sont responsables de la synthèse et de l&#39;exportation du polymère d&#39;alginate dans le périplasme de la environme extracellulairent 2-5. La deuxième opéron est un groupe de gènes en commençant par le facteur sigma alternatif ALGU / T et en continuant avec Muca, mucB, et mucD. ALGU / T est un régulateur positif, tandis que mucAB-D sont classés en tant que régulateurs négatifs de la production d&#39;alginate 6-8. En outre, les régulateurs de la transcription, tels que ALGB, AlgQ, ALGr, et rpoN, ainsi que post-transcriptionnel et la modification post-traductionnelle par le contrôle de la répression catabolique, l&#39;activité kinase (KinB) et la protéolyse intramembranaire, se sont également avérés être impliqués dans l&#39;alginate réglementation 9-14. Le vecteur de transposon mini-himar1 appelé PFA a été créé à l&#39;origine dans le laboratoire du Dr Mekalanos à Harvard Medical School 15. Le plasmide PFA est constitué d&#39;un élément transposable flanqué de deux répétitions inversées de 27 pb et une cassette de résistance à la gentamycine dans le milieu (aacC1: 534 pb), un gène codant pour la hyperactive transposase mariner 16, et un codage de β-lactamase de gène (bla) (figure 1). L&#39;information de séquence pour les éléments transposables du PFA est disponible au numéro d&#39;accession GenBank: DQ366300 13. Dans PFA, il existe un site de clonage multiple (MCS) derrière le gène aacC1 qui est utilisé pour l&#39;identification du site d&#39;insertion chromosomique en utilisant une PCR inverse. Un avantage majeur à l&#39;utilisation du transposon mini-himar1 a pas de facteurs de l&#39;hôte spécifiques sont nécessaires pour la transposition (mutagenèse). En outre, il existe une grande abondance de sites d&#39;insertion de dinucléotides TA trouvés dans le génome de P. aeruginosa. Par exemple, AT sites d&#39;insertion dinucléotide se produit 94 404 et 100 229 fois dans le PAO1 (6264404 bps, numéro d&#39;accession GenBank NC_002516.2) et PA14 (6537648 bps; numéro d&#39;accès GenBank NC_008463) génomes, respectivement. En raison de l&#39;abondance de dinucléotide TA dans le génome, d&#39;un mini-himar1 </em&gt; Transposon peut provoquer la densité élevée et une mutagénèse aléatoire, ce qui est particulièrement appropriée pour l&#39;analyse des gènes de virulence et des gènes qui sont fortement réglementés. Théoriquement, le transposon mini-himar1 peut insérer dans tout gène non essentiel dans le génome de P. aeruginosa. Ceci permet d&#39;obtenir environ 18 sites d&#39;insertion par TA cadre ouvert de lecture dans le génome de PAO1. Ici, nous décrivons un protocole utilisant des mini-transposon himar1 médiation mutagenèse pour identifier de nouveaux régulateurs de mucoidy dans P. aeruginosa. Plus précisément, nous biparentally conjugué du vecteur PFA contenant un transposon mini-himar1 de E. coli SM10/λpir dans le non mucoïde prototrophique souche PAO1. Après que le transposon est intégré dans le génome, la souche réceptrice est mise en culture sur gélose Pseudomonas isolement (PIA) contenant du triclosan qui inhibe la croissance de E. coli. Ainsi, une banque de mutants d&#39; <em&gt; P. aeruginosa peut être sélectionnée par la croissance de la plaque PIA supplémenté avec de la gentamycine et de la présence du phénotype mucoïde. Remarque, un transposon médiation contre un mutant d&#39;intégration véritable aura un phénotype résistant et carbenicilline sensible gentamicine. Dans cette étude, environ 80 000 mutants d&#39;insertion de PAO1 ont été isolés au moyen de quatre conjugaisons séparées. Nous avons ensuite projeté pour les isolats mucoïdes, et déterminé le site d&#39;insertion par l&#39;enzyme de restriction digestion, ligature et PCR inverse. Nous avons effectué une analyse par transfert de Southern avec la cassette de résistance à la gentamycine comme une sonde pour voir le nombre d&#39;insertion par génome. Nous avons déterminé que plus de 90% des mutants obtenus par conjugaison en utilisant ce protocole n&#39;avait qu&#39;une seule copie du himar1 dans le génome et affiché le phénotype résistant et carbenicilline sensible gentamicine. Un total de 32 isolats muqueuses ont été identifiés, 22 d&#39;entre eux ont été cartographiés à différents loci du P. aeruginosa PAO1chromosome. Ce taux d&#39;insertion prévoit une couverture suffisante pour identifier plusieurs nouveaux régulateurs de surproduction alginate.

<table><tbody><tr><td>Bouillon Luria</td><td>Difco</td><td>240230</td><td>via Fisher Scientific</td></tr><tr><td>Pseudomonas gélose d’isolement</td><td>Difco</td><td>292710</td><td>via Fisher</td></tr><tr><td>Scientific Petites plaques (100 D.E. x 10 mm)</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-757-13</td><td></td></tr><tr><td>Grandes plaques (150 D.E. x 15 mm)</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-757-14</td><td></td></tr><tr><td>Glycérol</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP229-4</td><td></td></tr><tr><td>Incubateur à agitation</td><td>de paillasse New Brunswick Scientific</td><td>Innova 4080</td><td>secouer à 200 tr/min</td></tr><tr><td>Incubateur d’armoire</td><td>VWR</td><td>1540</td><td></td></tr><tr><td>Microcentrifugeuse de paillasse</td><td>Sorvall</td><td>75-003-287</td><td>via le</td></tr><tr><td>spectrophotomètre Fisher Scientific SmartSpec Plus</td><td>Bio-Rad</td><td>170-2525</td><td>ou la méthode/le fournisseur préféré</td></tr><tr><td>Boucles d’inoculation jetables</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-363-597</td><td></td></tr><tr><td>1,5 ml Tubes de microcentrifugation</td><td>Fisher Scientific</td><td>05-408-129</td><td></td></tr><tr><td>Flacons cryogéniques de 2,0 ml</td><td>Corning</td><td>430659</td><td>via Fisher Scientific</td></tr><tr><td>Tubes de 15 ml</td><td>Fisher Scientific</td><td>05-539-12</td><td></td></tr><tr><td>Lait écrémé</td><td>Difco</td><td>DF0032-17-3</td><td>via Fisher Scientific</td></tr><tr><td>DNeasy Sang et tissus (250)&nbsp ;</td><td>Qiagen</td><td>69506</td><td>ou méthode préférée/fournisseur</td></tr><tr><td>QIAquick PCR Purification Kit (250)</td><td>Qiagen</td><td>28106</td><td>ou méthode/fournisseur préféré</td></tr><tr><td>QIAprep Spin Miniprep Kit (250)&nbsp ;</td><td>Qiagen</td><td>27106</td><td>ou la méthode/le fournisseur préféré</td></tr><tr><td>FastLink II DNA Ligation Kit</td><td>Epicentre Technologies</td><td>LK6201H</td><td>via Fisher Scientific</td></tr><tr><td>Accu block Digital Dry Bath&nbsp ;</td><td>Labnet</td><td>NC0205808</td><td>via Fisher Scientific</td></tr><tr><td>Sal1, endonucléase de restriction</td><td>New England BioLabs</td><td>R0138L</td><td></td></tr><tr><td>EasyStart Micro 50</td><td>Molecular BioProducts</td><td>6020</td><td>via Fisher Scientific</td></tr><tr><td>Taq DNA polymérase</td><td>New England BioLabs</td><td>M0267L</td><td></td></tr><tr><td>iCycler, Thermocycleur</td><td>Bio-Rad</td><td>170-8740</td><td></td></tr><tr><td>LE agarose</td><td>Genemate</td><td>3120-500</td><td>via Fisher Scientific</td></tr><tr><td>Sulfate de gentamycine</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP918-1</td><td></td></tr><tr><td>2,0 ml Flacons cryogéniques</td><td>Corning</td><td>430659</td><td>via Fisher Scientific</td></tr></tbody></table>

identification de nouveaux gènes associés à la production d&#39;alginate dans<em&gt; pseudomonas aeruginosa</em&gt; utilisation de mini-<em&gt; himar1</em&gt; mutagenèse mariner transposon médiation

Identification of Novel Genes Associated with Alginate Production in Pseudomonas aeruginosa Using Mini-himar1 Mariner Transposon-mediated Mutagenesis

Pseudomonas aeruginosa est une bactérie à Gram négatif de l&#39;environnement avec des capacités métaboliques polyvalents. P. aeruginosa est une bactérie pathogène opportuniste qui établit des infections pulmonaires chroniques chez les patients atteints de fibrose kystique (FK). La surproduction d&#39;un polysaccharide capsulaire appelé alginate, également connu sous le nom mucoidy, favorise la formation de biofilms mucoïdes qui sont plus résistants que les cellules planctoniques antibiotique et à la chimiothérapie défenses de l&#39;hôte. En outre, la conversion de la non mucoïde au phénotype mucoïde est un marqueur clinique pour le début de l&#39;infection chronique à CF. Surproduction alginate par P. aeruginosa est un processus endergonic qui impose lourdement énergie cellulaire. Par conséquent, la production d&#39;alginate est très réglementé dans P. aeruginosa. Afin de mieux comprendre la régulation de l&#39;alginate, nous décrivons un protocole à l&#39;aide du mini-transposon himar1 mutagenèse pour l&#39;identification de nouveau régulateur d&#39;alginates dans une souche PAO1 prototype. La procédure se compose de deux étapes de base. Tout d&#39;abord, nous avons transféré la mini-himar1 transposon (PFA) de l&#39;hôte E. coli dans SM10/λpir destinataire P. aeruginosa PAO1 par conjugaison biparentale pour créer une bibliothèque de mutants d&#39;insertion à haute densité, qui ont été sélectionnés sur des plaques de gélose Pseudomonas d&#39;isolation additionné de gentamycine. En second lieu, nous avons criblé et isolé les colonies mucoïdes pour mapper le site d&#39;insertion par PCR inverse en utilisant des amorces d&#39;ADN pointant vers l&#39;extérieur à partir de la cassette de la gentamycine et de séquençage de l&#39;ADN. En utilisant ce protocole, nous avons identifié deux nouveaux régulateurs d&#39;alginate, MUCE (PA4033) et kinB (PA5484), à souche PAO1 avec un type sauvage Muca codant pour le facteur anti-sigma Muca pour le régulateur de l&#39;alginate de maître ALGU (ALGT, σ 22) . Ce protocole de mutagenèse à haut débit peut être modifié pour l&#39;identification d&#39;autres gènes liés à la virulence causant le changement dans la colomorphologie ny.

Comme illustré sur la figure 1, le vecteur marin transposon mini-himar1, PFA, contient deux répétitions inversées de 27 pb avec des sites d&#39;insertion TA flanquant la cassette de résistance aacC1 de gentamycine, avec son σ promoteur 70-dépendante, et un site de clonage multiple (MCS). En outre, le vecteur contient des gènes codant pour des PFA la transposase hautement actif de himar1, β-lactamase (bla), et l&#39;opéron de transfert TRA....

Ici, nous décrivons un protocole en utilisant la mini-himar1 marin mutagenèse de transposon médiation pour générer une bibliothèque de mutants d&#39;insertion à haute densité à l&#39;écran, isoler et d&#39;identifier de nouveaux régulateurs d&#39;alginate dans le prototype Pseudomonas aeruginosa souche PAO1.

Identification de nouveaux gènes associés à la production d&#39;alginate dans<em&gt; Pseudomonas aeruginosa</em&gt; Utilisation de Mini-<em&gt; Himar1</em&gt; Mutagenèse Mariner Transposon médiation

Pseudomonas aeruginosa is a Gram-negative, environmental bacterium with versatile metabolic capabilities. P. aeruginosa is an opportunistic bacterial ...

L'objectif général de cette procédure est d'identifier de nouveaux gènes associés à la production de l'alginate, un exopolysaccharide, chez Pseudomonas aeruginosa, à l'aide d'une mutagenèse médiée par le transposon mini-Himar1. Cette approche repose tout d'abord sur la culture séparée de deux souches, l'une étant la souche donneuse, E. coli Lambda pir, portant le plasmide PAC, et l'autre la souche receptrice, Pseudomonas aeruginosa PAO1, incubées toute la nuit. Ensuite, le plasmide PAC est transféré par conjugaison, réalisée par co-culture d’E. coli Lambda pir avec Pseudomonas aeruginosa.Les souches PAO1 et les conjugués trans sont sélectionnés sur gélose d'isolement de Pseudomonas, puis les colonies moïdes sont identifiées et isolées sur des boîtes de gélose PIA. Enfin, la localisation et l'orientation du transposon mini-he-mar1 au site d'insertion sont déterminées au sein du génome de Pseudomonas aeruginosa PAO1. En définitive, l'utilisation de la mutagenèse induite par le transposon mini-he-R1 permet d'identifier et de caractériser les gènes associés à la production d'alginate chez Pseudomonas aeruginosa.Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans les domaines de la microbiologie et de la génétique bactérienne, comme l'identification de loci génétiques impliqués dans la régulation de différentes fonctions cellulaires, en démontrant que la procédure sera effectuée avec Widers. Un étudiant diplômé de mon laboratoire, le mini transposon he R one Mariner sur le vecteur P fac contient des répétitions inversées de 227 paires de bases avec des sites d'insertion TA encadrant la cassette de résistance à la gentamicine ACC one, dotée de son promoteur dépendant de Sigma 70 en amont d'un site de clonage multiple. Le vecteur PFAC contient également les gènes codant pour la transposase he R one hautement active, la bêta-lactamase et l'opéron de transfert TRA.Les sites d'insertion TA permettent une intégration efficace dans le génome de souches de pseudomonas aerogen. La précision dans l'identification et la sélection des mutants OID est essentielle pour assurer le succès global de la détermination des locus géniques impliqués dans la régulation de l'alginate. Pour préparer les souches bactériennes, commencer par ensemencer E coli SM 10 Lambda peer P fac dans cinq millilitres de lb, enrichis avec 15 microgrammes par millilitre de gentamicine, puis placer à l'incubateur agité pendant la nuit à 37 degrés Celsius le même jour.Inoculer la souche posa PO dans cinq millilitres de LB et placer à l’incubateur agité pendant la nuit à 42 degrés Celsius le jour suivant. Mesurer la DO 600 des cultures de nuit et mélanger des quantités égales de PAO1 et d’E. coli P fac, de sorte que le volume final soit compris entre un millilitre et 1,4 millilitre. Centrifuger le mélange à 6 000 × g pendant cinq minutes.Entre-temps, faites sécher les plaques LB pour la conjugaison en les laissant ouvertes dans une étuve à 37 degrés Celsius pendant 10 à 15 minutes. Retirez tout sauf 50 microlitres du surnageant du mélange cellulaire. Ensuite, Resus.Suspendez le culot cellulaire dans les 50 microlitres restants de surnageant et pipetez sur une boîte de gélose LB sèche. Déposez soigneusement la boîte en une goutte compacte sous une hotte aspirante pour séchage. N' laissez pas les cellules s'étendre sur la boîte.Cela réduira considérablement l'efficacité de la conjugaison. Une fois la goutte sèche, retourner la boîte de gélose LB et incuber à 37 degrés Celsius pendant quatre à six heures, en parallèle de l'incubation du mélange cellulaire. Préparer de grandes boîtes de gélose d'isolement de pseudomonas (PIA) contenant 300 microgrammes par millilitre de gentamicine.Après l'incubation, utilisez un anneau d'ensemencement stérile pour prélever cette goutte unique de cellules dans un tube de microcentrifugeuse contenant un millilitre de bouillon LB, puis vortexez ou pipetez pour homogénéiser soigneusement avant d'étaler les cellules uniformément sur les grandes plaques PIA. Incubez les plaques toute une nuit à 37 degrés Celsius. Retirez les plaques de l'incubateur et examinez-les à la recherche de colonies OID.Isolez une colonie moid unique et étalez-la pour isolation sur des petites plaques contenant du PIA et 300 microgrammes par millilitre de gentamicine. Le jour suivant, isolez une colonie moid unique et répétez l'étalage. Répétez l'isolement de colonie unique deux fois supplémentaires afin de déterminer la stabilité de l'isolat moid après l'isolement initial.Étape : inoculer 4,5 millilitres de LB avec une colonie OID unique et incuber à 37 degrés Celsius pendant la nuit dans un agitateur. Le lendemain, étiqueter trois tubes de microcentrifugeuse pour chaque mutant OID. Préparer deux aliquotes de 1,25 millilitre de la culture de nuit pour l'extraction de l'ADN génomique et l'identification du site d'insertion du transposon.En outre, archivez chaque mutant OID en pipettant un millilitre de culture de type « overnight » dans un flacon cryogénique correctement étiqueté contenant un volume égal de lait écrémé à 10 %. Conservez à moins 86 degrés Celsius. Après avoir extrait l’ADNg du mutant MOID.À l'aide de toute méthode choisie et après détermination de sa concentration, digérer un total de deux microgrammes avec un microlitre de l'endonucléase de restriction S un dans un volume total de 50 microlitres pendant la nuit à 37 degrés Celsius. Une fois l'ADN digéré purifié par toute méthode choisie dans un volume total de 25 microlitres, préparer une réaction de ligation en utilisant environ 11 microlitres d'ADN et incuber le mélange pendant au moins 15 minutes à température ambiante. Ensuite, inactiver à 70 degrés Celsius pendant 15 minutes, puis réaliser une IPCR sur le produit de ligation en utilisant les amorces directe et inverse suivantes ainsi que les conditions de thermocyclage indiquées.Ensuite, vérifiez l'amplification sur un gel AROS avant d'utiliser finalement les amorces GM trois out et GM cinq out pour séquencer la réaction. Des exemples d'isolats MOID et non MOID sont présentés dans cette figure. Selon le protocole illustré dans cette vidéo, chaque conjugaison devrait produire une banque d'environ 20 000 mutants sur 15 à 20 grandes plaques en raison de la surproduction d'alginate.La colonie doit être de couleur claire ou blanche et présenter un aspect crémeux ou visqueux. Si la mutagenèse et l'amplification de l'ADN ont réussi, un unique amplicon de taille appropriée doit être observé, comme illustré sur cette figure. L'amplicon de PCR est absent chez PAO un.Cependant, nous détectons un unique amplicon d’environ 1 400 paires de bases et d’environ 1000 paires de bases respectivement dans PA, O un VE deux, et PA O un VE 13. La taille de ces amplicons correspond à l’insertion du transposon mariner HER un dans la région promoteur de PA 4 0 3 3 dans O un VE deux, et à l’intérieur de PA 5 4 84 dans l’ADN génomique de PA O un VE 13. L’ADN génomique de PA O un ayant subi une restriction, une digestion et une ligation peut être utilisé comme témoin négatif.Ainsi, une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée en trois ou quatre jours si elle est effectuée correctement. Lors de la réalisation de cette procédure, il est important de se souvenir d'incuber les souches bactériennes à la température appropriée avant la conjugaison bioparentale.

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Identification de nouveaux gènes associés à la production dalginate dans Pseudomonas aeruginosa Utilisation de Mini- Himar1 Mutagenèse Mariner Transposon médiation (Vidéo) | JoVE Journal

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