Name: Application de lacide rétinoïque pour obtenir des cultures de ostéocytes de primaires ostéoblastes de souris (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-05-13T23:35:00.000+00:00
Duration: 7 min 13 s
Description: Apprenez à obtenir des ostéocytes matures ramifiés à partir d'ostéoblastes primaires de souris en utilisant l'acide rétinoïque tout-trans (ATRA). Cette méthode rapide produit une population homogène d'ostéocytes pour l'étude de la biologie osseuse.

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Le financement a été fourni par &quot;Progetto un concorso Fondazione IRCCS Ospedale Maggiore Policlinico 2009-2010» de MD, et Associazione Bambino Nefropatico ABN Onlus, Milano

Toutes les expériences animales ont été réalisées selon la réglementation en vigueur européennes concernant la protection des animaux utilisés à des fins scientifiques et ont été examinés et approuvés par le comité d&#39;éthique de l&#39;Université de Milan et national. Une. Isolement des ostéoblastes primaires Le procédé, avec des modifications mineures, suit le mode opératoire décrit par 14 Dodig et al. <ol><li> Préparer digérer milieu, par addition de 0,1% de collagénase P et 0,05% de trypsine (à partir de 2,5% de trypsine 10X, sans rouge de phénol) de milieu HBSS (solution saline équilibrée de Hanks, pas de calcium, de magnésium, ou du rouge de phénol). </li><li> Utiliser des souris âgées de 3 à 4 jours (la procédure peut être appliquée à aussi peu que 1 souris). </li><li> Sacrifiez par décapitation. Vaporiser la tête avec 70% d&#39;éthanol et de garder sur la glace. Enlever les couches de la peau et des muscles par une pince à épiler et dissection / ciseaux chirurgicaux. </li><li> Retirez délicatement les os pariétaux etséparer par la suite de la suture sagittale en deux moitiés. Assurez-vous que les os sont libres de sutures et tous les tissus adhérents et placer des morceaux d&#39;os individuels et des plaques contenant du milieu HBSS jusqu&#39;à ce que la procédure est terminée. </li><li> Jeter HBSS et ajouter dans chaque puits moyen digérer pendant 15 min à 37 ° C. </li><li> Jeter le surnageant. </li><li> Ajouter à nouveau le milieu à digérer pendant 15 minutes à 37 ° C. </li><li> Cette fois sauver le surnageant et le placer dans l&#39;alpha-MEM (milieu essentiel minimum) complété avec 10% de FBS (sérum bovin fœtal) et 1% de la streptomycine / pénicilline. </li><li> Répétez les étapes 1.7 et 1.8 2x. </li><li> Mettre en commun les trois fractions recueillies, les cellules de spin par centrifugation à 425 g pendant 5 minutes, jeter le surnageant, ajouter 3 ml d&#39;alpha-MEM supplémenté pour remettre en suspension le culot de cellules, et le transfert à un ballon de 25 2 cm. </li><li> Changer le milieu après 24 heures pour enlever les débris et les cellules mortes. </li><li> Ajouter 50 pg / ml d&#39;acide ascorbique (AA) et 3 mM glyCerol 2-phosphate de l&#39;hydrate de sel de disodium (GP) dans le milieu alpha-MEM. </li><li> Par la suite, changer le milieu (alpha-MEM ainsi que AA / GP) tous les deux jours. </li></ol> 2. Protocole ATRA <ol><li> Effectuer toutes les expériences à l&#39;ATRA (all-trans acide rétinoïque) dans une pièce sombre pour éviter l&#39;inactivation. </li><li> Préparer une solution de trypsine 1X dans un milieu HBSS et maintenir à 37 ° C jusqu&#39;à utilisation. </li><li> Retirez le support de cellules confluentes et soigneusement les laver avec du HBSS. </li><li> Ajouter 1 ml de trypsine, tourner doucement le flacon pour permettre toutes les cellules à être couverts par la trypsine, et incuber pendant 3 min à 37 ° C. </li><li> Vérifiez le détachement réel de cellules sous un microscope inversé. </li><li> Ajouter 3 ml de milieu alpha-MEM pour inactiver la trypsine. </li><li> Récupérer les cellules et centrifuger pendant 15 min à 425 g. </li><li> Remettre en suspension le culot cellulaire dans du milieu frais. </li><li> Déposer une goutte dans une chambre hématimètre de comptage, laisser reposer pendant quelques minutes et de compter le CEnombre de ll. </li><li> La place des cellules en flacons de 25 cm2 à une densité de 10 000 cellules / cm 2 avec des alpha-MEM ainsi que AA / GP. Soyez conscient que la densité cellulaire est pertinent pour le développement optimal des processus cellulaires et des contacts intercellulaires. Une densité de départ supérieur à 10 000 cellules / cm 2 compromet le bon développement de processus cellulaires, mais les nombres de cellules plus faibles entraînent la mort prématurée des cellules, en raison de l&#39;absence de contacts intercellulaires. </li><li> Ajouter 5 uM ATRA au milieu toutes les 24 heures. </li><li> Surveiller les cellules quotidien pour évaluer la morphologie: changements morphologiques sont généralement observés après 48 heures. Si, après le 24-48 premières heures, les cellules sont encore prolifèrent, Réensemencement à la densité ci-dessus. Une population homogène de ostéocytes mature est présente au bout de 4-5 jours. Selon les besoins, utiliser des cellules à tout point dans le temps, à 12-15 jours. </li><li> Lorsque les cellules sont étalées sur d&#39;autres supports (tels que des lamelles ou le bien-plaques), assurez-vous que la densité ci-dessus est maintenue etcontinuer à ajouter ATRA toutes les 24 heures jusqu&#39;à utilisation. Laisser les cellules d&#39;adhérer à la nouvelle prise en charge pendant au moins 24 heures avant l&#39;expérience. </li></ol> 3. Immunocoloration <ol><li> Pour immunologique, plaquer les cellules sur des lamelles et suivre les méthodes établies (voir par exemple Burry 15). </li><li> Par exemple, pour l&#39;immunofluorescence indirecte, fixer dans du paraformaldéhyde 4% à froid ou de l&#39;acétone, de manière séquentielle incuber avec l&#39;anticorps primaire à température ambiante pendant 1 heure dans une chambre humidifiée, puis avec l&#39;anticorps secondaire marqué par fluorescence dans l&#39;obscurité, à température ambiante pendant 30 min, dans une chambre humidifiée. </li><li> Utilisez DAPI ou analogues pour contre-coloration nucléaire, et monter dans le milieu anti-décoloration. </li></ol> 4. Alizarine Rouge coloration et Extraction <ol><li> Plaquer les cellules sur des lamelles. </li><li> Fixer les cellules par immersion de la lamelle couvre-objet dans l&#39;éthanol 70% pendant 10 min. </li><li> Couvrir les cellules avec quelques gouttes d&#39;une solution de coloration au rouge d&#39;alizarine (1 mg / ml, pH 5,5)pendant 30 min. </li><li> Lavez les lamelles avec de l&#39;eau du robinet. Monter avec une goutte de glycérine sur des lames de verre et de prendre des photos en utilisant un microscope droit à 10X et 20X grossissement. </li><li> Après la procédure ci-dessus, de récupérer les lamelles en immergeant les lames dans l&#39;eau du robinet. </li><li> Mettez chaque lamelle dans une plaque bien. </li><li> Ajouter de l&#39;acide perchlorique à 60% (la quantité doit être suffisante pour couvrir complètement les cellules) et laisser O / N à 4 ° C avec agitation douce. </li><li> Lire la densité optique du surnageant par spectrophotométrie à 450 nm de longueur d&#39;onde. </li><li> Pour normaliser les valeurs pour le nombre de cellules, ajouter Janus vert (solution à 0,2% dans du PBS) pour couvrir la préparation de cellules pendant 10 min. </li><li> Laver soigneusement avec de l&#39;eau ultrapure. </li><li> Ajouter HCl 0,5 N (la quantité doit être suffisant pour couvrir toutes les cellules) et secouez doucement la main pendant quelques secondes. </li><li> Lire l&#39;absorbance à 615 nm par spectrophotométrie. </li></ol>

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</ol>

Les auteurs n&#39;ont rien à révéler.

Dans les dernières années, le ostéocyte a émergé comme la cellule la plus centrale dans l&#39;os. progrès de la recherche sont progressivement révèlent un certain nombre de propriétés de ostéocytes insoupçonnées ou non prouvées, qui sont d&#39;une valeur inestimable pour la conception de nouveaux et de meilleurs traitements pour une variété de maladies osseuses. Toutefois, l&#39;enquête de ostéocyte biologie a souffert de la disponibilité limitée des modèles in vitro à un point tel que les ostéoblastes ont été ...

Les ostéocytes, le type de cellules osseuses les plus abondants, sont définitivement différenciés, les cellules hautement ramifiés profondément situés à l&#39;intérieur du squelette. Le corps de la cellule de ostéocytes matures sont contenues dans les lacunes de l&#39;os et avoir des formes diverses; ostéocytes avec les corps cellulaires allongées sont trouvés dans l&#39;os cortical, alors que les ostéocytes arrondis sont plus fréquents dans l&#39;os trabéculaire 1. Dendrites ramifiées s&#39;étendent à partir du corps cellulaire et résident dans les canaux minuscules appelés canalicules, formant un réseau complexe qui fait plusieurs contacts non seulement avec d&#39;autres ostéocytes, mais aussi avec d&#39;autres types de cellules de l&#39;os, la moelle osseuse, les vaisseaux sanguins et les péricytes associés. Par l&#39;intermédiaire du liquide interstitiel contenu dans les lacunes et les canalicules, ostéocytes sont aussi en fin de compte connecté au système de circulation, ils peuvent donc influencer non seulement local, mais aussi les événements systémiques, et inversement leur comportement peut être régulée par les deux changements locaux et systémiques 2. Laétude des ostéocytes a récemment pris de l&#39;ampleur, grâce à plusieurs avancées techniques, telles que la génération de tissus-et des animaux transgéniques spécifiques des cellules, l&#39;utilisation de techniques de microscopie puissants et de criblage moléculaire à haut débit 3,4. Cependant, la connaissance de ces cellules est encore incomplet, principalement en raison de la rareté relative des adéquate dans les modèles in vitro. En fait, les ostéocytes ont toujours été difficiles à obtenir et maintenir en culture en raison de l&#39;emplacement de profondeur, et le faible niveau de la prolifération qui caractérise un tel type de cellule différenciée. Au fil des années, un certain nombre de méthodes ont été développées pour isoler ostéocytes primaire 5-7, si elles produisent généralement des rendements de cellules faibles et comportent le risque que même quelques fibroblastes contaminants seront rapidement envahir le ostéocytes 8. Pour cette raison, le plus expérimental travaux in vitro ont été menées jusqu&#39;à présent sur ​​la cellule de l ostéocyte bien établieine MLO-Y4 9. Méthodologies complémentaires in vitro pourraient améliorer la possibilité d&#39;étudier ces cellules et pourraient améliorer l&#39;analyse des ostéocytes biologie et la physiopathologie. Pour être largement adoptées, ces méthodes doivent être faciles à reproduire, et ne requièrent pas d&#39;instruments spéciaux ou très longs pour atteindre la maturation des cellules. Fait important, le cas échéant à des cellules primaires, ils rendraient possible de tirer parti des animaux transgéniques. Nous avons récemment décrit que le traitement de la lignée cellulaire ostéoblastique MC3T3-E1 et des ostéoblastes primaires avec l&#39;acide rétinoïque induit un changement phénotypique rapide conduisant à l&#39;élaboration d&#39;une population homogène de cellules ramifiés portant des caractères morphologiques et moléculaires des ostéocytes 10. Tout-trans acide rétinoïque (ATRA) est un produit métabolique actif de la vitamine A, qui régule la transcription des gènes par les récepteurs nucléaires de l&#39;acide rétinoïque (RAR) de liaison. RARlier à l&#39;ADN comme hétérodimères avec les récepteurs X des rétinoïdes (RXR), conduisant finalement à la modulation de l&#39;acide rétinoïque (RA) sensible gènes cibles 11. ATRA a été montré pour moduler la différenciation et la maturation de plusieurs types cellulaires, parmi lesquels d&#39;autres cellules ramifiées telles que des cellules neuronales 12 et 13 podocytes. Le procédé décrit ici est basé sur l&#39;addition d&#39;ATRA en ostéoblastes primaires. Pour être efficace, l&#39;ATRA doit être ajoutée à un stade précis de maturation sur les cellules ensemencées à une densité définie; dans notre expérience, ces conditions sont essentielles pour obtenir le commutateur de phénotype de ostéoblastes ostéocytes.

<table><tbody><tr><td>Collagénase P</td><td>Roche Sciences Appliquées</td><td>11213857001</td><td></td></tr><tr><td>Trypsine</td><td>Gibco, Technologies de la Vie</td><td>15400054</td><td></td></tr><tr><td>HBSS</td><td>Gibco, Technologies de la Vie</td><td>14175129</td><td>Préchauffage à 37 &deg ; C avant utilisation</td></tr><tr><td>Alpha-MEM</td><td>Invitrogen, Life Technologies</td><td>22571038</td><td>Préchauffage à 37 &deg ; C avant utilisation</td></tr><tr><td>FBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>F4135</td><td></td></tr><tr><td>Streptomycine/Pénicilline</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P4333</td><td></td></tr><tr><td>Acide ascorbique</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A4403</td><td></td></tr><tr><td>Glycérol 2-phosphate disodium sel hydraté</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G9422</td><td></td></tr><tr><td>ATRA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>R2625</td><td>Protéger ATRA de la lumière</td></tr><tr><td>Paraformaldéhyde</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6148</td><td>Dissoudre dans le PBS et filtrer avant utilisation. Travaillez toujours sous un capot chimique.</td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>32670</td><td>Peut être ajouté à l’anticorps secondaire</td></tr><tr><td>Rouge d’alizarine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A5533</td><td></td></tr><tr><td>Vert Janus</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>201677</td><td></td></tr><tr><td>Acide perchlorique</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>176745</td><td>Utilisation prudente (protection de la peau et des yeux recommandée)</td></tr><tr><td>HCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>320331</td><td>À utiliser avec prudence (une protection de la peau et des yeux est recommandée)</td></tr><tr><td>Glycérol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G5516</td><td></td></tr><tr><td>Fluorsave</td><td>Calbiochem - Merck</td><td>345789</td><td></td></tr><tr><td>Pince à épiler économique #7, pointes de 0,40 x 0,5 mm World</td><td>Precision Instruments</td><td>501981</td><td></td></tr><tr><td>pince à épiler économique #4, pointes de 0,40 x 0,45 mm</td><td>World Precision Instruments</td><td>501978</td><td></td></tr><tr><td>Ciseaux de dissection, droits, courbés 10 cm</td><td>World Precision Instruments</td><td>14394</td><td></td></tr><tr><td>Ciseaux chirurgicaux, 14 cm, droits, S/S</td><td>World Precision Instruments</td><td>501218</td><td></td></tr><tr><td>Fioles de culture</td><td>Corning</td><td>430168</td><td></td></tr><tr><td>Plaques de puits</td><td>Corning</td><td>3335</td><td></td></tr><tr><td>Thermanox lamelles Thermo</td><td>Scientific Nunc</td><td>12-565-27</td><td></td></tr><tr><td>Microscope</td><td>Zeiss Apotome</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Spectromètre</td><td>Safas Xenius</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

application de l&#39;acide rétinoïque pour obtenir des cultures de ostéocytes de primaires ostéoblastes de souris

Application of Retinoic Acid to Obtain Osteocytes Cultures from Primary Mouse Osteoblasts

<html> La nécessité pour les cultures de ostéocytes est bien connu de la communauté des chercheurs d&#39;os; isolement des ostéocytes primaire est difficile et produit un faible nombre de cellules. Par conséquent, le système cellulaire le plus largement utilisé est la lignée de cellules ostéocytes MLO-Y4-like. Le procédé décrit ici se réfère à l&#39;utilisation de l&#39;acide rétinoïque pour générer une population homogène de cellules ramifiées ayant des caractéristiques morphologiques et moléculaires ostéocytes. Après isolement des ostéoblastes à partir de calvaria de souris, de l&#39;acide tout-trans rétinoïque (ATRA) est ajouté au milieu de la cellule, et la surveillance de la cellule est réalisée tous les jours sous un microscope inversé. Premiers changements morphologiques sont détectables au bout de 2 jours de traitement et la différenciation est généralement complète en 5 jours, avec le développement progressif de dendrites, la perte de la capacité de produire la matrice extracellulaire, la régulation des marqueurs des ostéoblastes et la régulation des molécules spécifiques ostéocytes. contenu &quot;&gt; le suivi des cellules quotidien est nécessaire en raison de la variabilité inhérente de cellules primaires, et le protocole peut être adapté avec une variation minime de cellules obtenues à partir de différentes souches de souris et appliquées à des modèles transgéniques. Le procédé est facile à réaliser et ne nécessite pas d&#39;instruments spéciaux, il est hautement reproductible, et génère rapidement une population d&#39;ostéocytes matures en absence totale de matrice extracellulaire, ce qui permet l&#39;utilisation de ces cellules pour des applications biologiques illimitées.

Les résultats ont été obtenus de 5 à 10 expériences indépendantes. Morphologie des cellules AA / GP traité cellules primaires ont des caractéristiques principalement pavées comme, caractéristique des ostéoblastes matures. Cellules ramifiées entrecoupées (comme indiqué par les flèches rouges dans la figure 1A) peut être trouvé, qui représentent probablement des ostéocytes. Avec un traitement ATRA, les cellules commencent rap...

Traitement des ostéoblastes primaires de souris avec de l&#39;acide rétinoïque produit une population homogène de cellules ramifiés portant des caractères morphologiques et moléculaires des ostéocytes. La méthode permet de surmonter la difficulté d&#39;obtenir et de maintenir ostéocytes primaires en culture, et peut être avantageux d&#39;étudier les cellules dérivées de modèles transgéniques.

Application de l&#39;acide rétinoïque pour obtenir des cultures de ostéocytes de primaires ostéoblastes de souris

The need for osteocyte cultures is well known to the community of bone researchers; isolation of primary osteocytes is difficult and produces low cell ...

L'objectif général de cette procédure est d'obtenir des ostéocytes ramifiés matures à partir d'ostéoblastes primaires. Cela est réalisé dans un premier temps en isolant des ostéoblastes primaires à partir des os de souriceaux nouveau-nés et en les mettant en culture pour permettre la maturation des ostéoblastes. Ensuite, les ostéoblastes confluentes sont traités à la trypsine.Après avoir été mis en suspension, les cellules sont comptées puis replaquées à une densité définie pour assurer le succès de l'expérience. Ensuite, tout-trans-rétinoïque ou ATRA est ajouté au milieu cellulaire afin de réduire la prolifération cellulaire et d'induire une différenciation complète vers une morphologie d'ostéocyte. Les résultats obtenus montrent que, en présence d'ATRA, les cellules acquièrent rapidement une morphologie ramifiée, cessent de produire une matrice extracellulaire et se différencient en un phénotype d'ostéocyte mature, comme en témoigne l'expression de marqueurs spécifiques des ostéocytes. Le principal avantage de cette technique par rapport aux méthodes existantes, telles que l'isolement d'ostéocytes primaires ou la différenciation d'ostéoblastes dans une matrice tridimensionnelle,

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Dans cette vidéo, nous décrivons un test de résorption ostéoclastique in vitro sur des plaques de culture cellulaire enrobées de phosphate de calcium cultivées avec des ostéoclastes dérivés de cellules mononucléées du sang périphérique humain. Les ostéoclastes forment un anneau d’actine caractéristique sur la matrice recouverte de phosphate de calcium de la plaque de culture cellulaire et dégradent la matrice dans la région du cycle d’actine pour libérer des ions calcium et phosphate, ce qui...

Essai de fosse de résorption : une technique in vitro pour quantifier l’activité de résorption calcique des ostéoclastes matures à l’aide de plaques de culture enrobées de phosphate de calcium

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Apprenez à obtenir des ostéocytes matures ramifiés à partir d'ostéoblastes primaires de souris en utilisant l'acide rétinoïque tout-trans (ATRA). Cette méthode rapide produit une population homogène d'ostéocytes pour l'étude de la biologie osseuse.

Application de l'acide rétinoïque pour obtenir des cultures de ostéocytes de primaires ostéoblastes de souris

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