Name: Réalisé neurone dopaminergique différenciation de cellules pluripotentes humaines souches (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-09-15T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 40 s
Description: Découvrez une méthode optimisée pour différencier des neurones dopaminergiques A9 à partir de cellules souches pluripotentes humaines. Ce protocole permet de modéliser la maladie de Parkinson et d'explorer les thérapies de remplacement cellulaire.

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Les auteurs remercient les membres du laboratoire Renee Reijo Pera pour leur aide lors du développement de ce protocole et lors de la préparation de ce manuscrit. Ce travail est soutenu par le laboratoire partagé du California Institute for Regenerative Medicine (CIRM) (CL-00518).

1 Préparation de milieux de culture <ol><li> Préparer la souris fibroblastes embryonnaires (MEF) moyen en combinant la suivante: 445 ml de DMEM, 50 ml de sérum de veau fœtal (FBS), et 5 ml 100x pénicilline / ampicilline solution stock. Maintenir le filtre milieu stérilisé à 4 ° C pendant au plus 14 jours. </li><li> Préparer le milieu de culture HPSC en combinant les éléments suivants contenant du sérum: 385 ml de DMEM / F12, 100 ml de remplacement de sérum de finale (KSR), 5 ml 100x non essentiels solution solution acide aminé d&#39;achat d&#39;actions, 5 ml 100x pénicilline / ampicilline actions, 5 ml 100x mercaptoéthanol solution mère, et 10 ng / ml de bFGF. Maintenir le filtre milieu stérilisé à 4 ° C pendant au plus 10 jours. </li><li> Préparer un milieu sans sérum mTeSR1 en combinant les éléments suivants: 400 ml mTeSR1 milieu de base, 100 ml 5x supplément, et 5 ml 100x pénicilline / ampicilline solution stock. Gardez milieu à 4 ° C pendant pas plus de 10 jours. </li><li> Préparer IV solution mère 10x collagénase: peser 0,5 g puissance collagénase IV, etdissoudre avec 50 ml de DMEM / F12 et stériliser par filtration. Faire aliquotes et les stocker à -20 ° C pendant plusieurs mois. </li><li> Préparer une solution de gélatine à 0,1%: peser 0,5 g de gélatine (peau de bovin, type B) de puissance et dissoudre avec de l&#39;eau désionisée. Gardez solution stérilisée en autoclave à la température ambiante pendant des semaines. </li><li> Préparer milieu de différenciation KSR en combinant la suivante: 410 ml de DMEM, 75 ml KSR, 5 ml 100x solution non acide aminé essentiel actions, 5 ml 100x pénicilline / ampicilline solution stock, 5 ml 100X mercaptoéthanol solution de stock. Maintenir le filtre milieu stérilisé à 4 ° C pendant au plus 10 jours. REMARQUE: KSR varie d&#39;un lot à l&#39;, ce qui peut affecter l&#39;efficacité de la différenciation. Il est donc préférable de tester plusieurs lots de KSR pour trouver la meilleure solution pour la différenciation. </li><li> Préparer milieu de différenciation N2 en combinant les éléments suivants: 98 ml de DMEM, 1 ml 100x supplément N2 et 1 ml 100x pénicilline / ampicilline solution stock. Maintenir le filtre milieu stérilisé à 4° C pendant au plus 10 jours. </li><li> Préparer milieu de différenciation de B27 en combinant la suivante: 480 ml de milieu neurobasal, 10 ml 50x B27 supplément, 5 ml 100X Glutamax solution mère, et 5 ml 100x pénicilline / ampicilline solution stock. Maintenir le filtre milieu stérilisé à 4 ° C pendant au plus 10 jours. </li></ol> 2. culture des CSEh et hiPSCs sur des cellules nourricières MEF Les CSEh H9 proviennent de l&#39;Institut de recherche et WiCell hiPSCs ont été établis dans le laboratoire Reijo Pera par transduction rétrovirale médiation de Yamanaka facteurs OCT3 / 4, SOX2, KLF4 et c-MYC 18. <ol><li> Au moins un jour avant le passage des cellules, la préparation des plaques de gélatine par addition de 1 ml de gélatine à 0,1% à 1 puits de plaques à 6 puits et incuber les plaques à 37 ° C pendant au moins 30 min. </li><li> Après incubation, les plaques de gélatine aspiration, et l&#39;irradiation des semences cellules MEF inactivées sur les plaques à la densité de 1,6 x 10 5 cellules/ Puits dans le milieu MEF utilisant un hémocytomètre pour compter les cellules. REMARQUE: préparer option mangeoires MEF dès 3 jours avant le passage de la cellule. </li><li> cellules Passage d&#39;un jour après l&#39;étalement mangeoires MEF: Aspirer le milieu de hPSCs, ajouter 1 mg / ml de collagénase IV de cellules à 1 ml / puits et incuber les cellules à 37 ° C pendant 1 heure. </li><li> Pendant cette incubation, laver les mangeoires MEF fois avec du PBS, puis ajoutez chaud (37 ° C) HPSC milieu de culture contenant du sérum à 1,5 ml / puits. </li><li> Après 1 heure, appuyez sur la plaque de culture une couple de fois de sorte que la plupart des colonies indifférenciées se détacher des plaques, tandis que les colonies différenciées restent attachés. Recueillir soigneusement les colonies flottantes, et de les transférer en tube de 15 ml. </li><li> Lavez délicatement la plaque une fois avec chaud (37 ° C) DMEM / F12 et transférer DMEM / F12 dans le même tube de 15 ml. </li><li> Centrifuger les tubes à 179 g pendant 3 min. </li><li> Aspirer le milieu des tubes, en faisant attention de ne pas perturber le culot. Ajouter guerremilieu de culture m HPSC, la pipette les cellules de haut en bas plusieurs fois pour les briser en petits groupes et mélangez-les bien. </li><li> Transférer les cellules sur de nouveaux départs MEF à 1: 3-1: 6 rapport. </li><li> Changer le support chaque jour et le passage des cellules tous les 5-6 jours. </li></ol> 3 Préparation des cellules pour la différenciation <ol><li> Au moins un jour avant la préparation de cellules, préparer des plaques de Matrigel (typiquement 3 puits d&#39;une plaque à 6 puits). Diluer avec du Matrigel froid (4 ° C) du milieu DMEM / F12 à 01:40 et ajouter 1 ml de Matrigel par puits de plaques à 6 puits. Incuber les plaques de Matrigel à 4 ° C pendant une nuit. NOTE: On peut sceller les plaques de Matrigel avec du Parafilm et les stocker à 4 ° C pendant aussi longtemps qu&#39;une semaine. </li><li> Utiliser des cellules (voir étape 2) 4 jours après le passage. Retirez toutes les colonies différenciées des plaques. Aspirer le milieu de la plaque de culture, ajouter 1 ml Accutase par puits, et incuber les cellules à 37 ° C pendant 5 min. </li><li> Pendant l&#39;incubation, préparer quelques gelatin plaques par addition de 1 ml de gélatine à 1 puits de plaques à 6 puits. Placez ces plaques et les Matrigel plaques préparées la veille dans l&#39;incubateur. </li><li> Après la 5 minutes d&#39;incubation ou lorsque les cellules sont devenues semi-flottant, les cellules de pipette de haut en bas plusieurs fois pour en faire des cellules individuelles. </li><li> Recueillir des cellules individuelles dans tubes de 15 ml et centrifuger à 258 g pendant 3 min. </li><li> Resuspendre les cellules avec suffisamment de sérum contenant du milieu de culture, et HPSC Thiazovivin ajouter à la concentration finale de 2 uM. </li><li> Transfert des cellules sur des plaques recouvertes de gélatine à 1: 1, et les cellules incuber à 37 ° C pendant 30 min pour éliminer les mangeoires MEF. </li><li> Transférer les cellules dans un tube conique de 15 ml, ajouter un milieu contenant du sérum approprié HPSC et compter les cellules avec un hémocytomètre. </li><li> Centrifuger les cellules à 258 g pendant 3 min. </li><li> Au cours de centrifugeuse, ajouter Thiazovivin de s&#39;approprier moyen mTeSR1 pour obtenir une concentration de 2 uM. </li><li> Après centrifugation, unespirate le milieu et ajouter mTeSR1 milieu approprié avec Thiazovivin sorte qu&#39;il n&#39;y a 1,8 x 10 5 cellules / ml de milieu. </li><li> Sortez les plaques Matrigel de l&#39;incubateur, aspirer le Matrigel et ajouter 2 ml de cellules mixtes sur 1 puits des plaques de 6 puits. REMARQUE: La densité cellulaire doit être de 3,6 x 10 4 cellules / cm 2 de surface. </li><li> Remettre les plaques de retour à l&#39;incubateur, et que les cellules se fixent pendant 24 heures. </li><li> 24 heures après l&#39;étalement des cellules, aspirer ancien milieu et ajouter 2 ml nouveau média mTeSR1 par puits et laisser les cellules se développent pour un autre 24 heures avant le début de la différenciation. </li></ol> La différenciation des cellules <ol><li> Lancer la différenciation 48 heures après les plaquant les cellules sur des plaques de Matrigel. </li><li> Aspirer le milieu de culture de la plaque, se laver les cellules une fois avec du PBS, et ajouter 2 ml de milieu de différenciation suivante par puits: milieu de différenciation KSR complété avec 10 uM SB431542 et 100 nM LDN-193189. Marquer ce jour D0 de différenciation. </li><li> Changer le milieu tous les jours de D0 à D20. NOTE: On peut préparer le milieu pour une utilisation pas plus de 2 jours à la fois. </li><li> Utilisez le milieu suivant pour D1 et D2: milieu de différenciation KSR complété avec 10 uM SB431542, 100 nM LDN-193189, 0,25 uM SAG, 2 uM purmorphamine, et 50 ng / ml FGF8b. </li><li> Utilisez le milieu suivant pour D3 et D4: milieu de différenciation KSR complété avec 10 uM SB431542, 100 nM LDN-193189, 0,25 uM SAG, 2 uM purmorphamine, 50 ng / ml FGF8b, et 3uM CHIR99021. </li><li> Utilisation du support suivant pour D5 et D6: 75% de milieu de différenciation KSR plus 25% milieu de différenciation N2 complété avec 100 nM LDN-193189, 0,25 uM SAG, 2 uM purmorphamine, 50 ng / ml FGF8b, et 3 uM CHIR99021. </li><li> Utilisez le milieu suivant pour D7 et D8: 50% de milieu de différenciation KSR plus 50% de milieu de différenciation N2 complété avec 100 nM LDN-193189 et 3 uM CHIR99021.</li><li> Utilisez le milieu suivant pour D9 et D10: 25% KSR milieu de différenciation plus 75% de milieu de différenciation N2 complété avec 100 nM LDN-193189 et 3 uM CHIR99021. </li><li> Utilisation du support suivant pour D11 et D12: milieu de différenciation B27 additionné de 3 uM CHIR99021, 10 ng / ml de BDNF, 10 ng / ml GDNF 1 ng / ml TGF3, 0,2 mM d&#39;acide ascorbique et 0,1 mM d&#39;AMPc. </li><li> Utilisation du support suivant pour le reste de la différenciation: milieu de différenciation B27 supplémenté avec 10 ng / ml de BDNF, 10 ng / ml GDNF 1 ng / ml TGF3, l&#39;acide ascorbique 0,2 mM et 0,1 mM d&#39;AMPc. </li><li> A peu près à D16 de la différenciation, de préparer des poly-L-ornithine laminine / plaques / fibronectine. Diluer poly-L-ornithine solution stock de froid (4 ° C) PBS à 15 pg / ml, ajouter 1 ml à 1 puits de plaques 6 puits et incuber les plaques à 37 ° C pendant la nuit. </li><li> Aspirer la solution poly-L-ornithine, laver les plaques 3 fois avec de l&#39;eau stérile, puis sécher à l&#39;air les plaques. </li><li> Diluer la laminine stocks solution de froid (4 ° C) PBS à 1 pg / ml, ajouter 1 ml d&#39;un puits de plaques 6 puits et incuber les plaques à 37 ° C pendant la nuit. </li><li> Aspirer la solution de laminine, laver les plaques 3 fois avec de l&#39;eau stérile, puis sécher à l&#39;air les plaques. </li><li> Diluer la solution de fibronectine du stock de froid (4 ° C) PBS à 2 pg / ml, ajouter 1 ml à 1 puits de plaques 6 puits et incuber les plaques à 37 ° C pendant la nuit. </li><li> plaques d&#39;étanchéité avec du parafilm et placer à 4 ° C pendant jusqu&#39;à deux semaines. </li><li> Après 20 jours de différenciation, Réensemencement cellules aux plaques / laminine / fibronectine Poly-L-ornithine. milieu de différenciation Aspirer, ajouter 1 ml chaude (37 ° C) Accutase à 1 puits de plaques 6 puits et incuber les cellules à 37 ° C pendant 5 min. </li><li> Au cours de l&#39;incubation, placer les poly-L-ornithine laminine / plaques / fibronectine dans l&#39;incubateur. </li><li> Après la 5 minutes d&#39;incubation ou lorsque les cellules sont devenues semi-flottant, en douceur les cellules de pipette de haut en bas plusieurs fois àrendre dans des cellules individuelles. </li><li> Recueillir les cellules individuelles dans 15 ml tubes coniques, et ajouter la quantité appropriée de milieu neurobasal pour le comptage des cellules, qui varie en fonction de l&#39;expansion (après 11 jours de différenciation, les cellules peuvent augmenter 15-20 fois). Compter les cellules en utilisant un hématimètre. </li><li> Centrifuger les cellules à 258 g pendant 3 min. Aspirer le surnageant et remettre en suspension les cellules avec du milieu de différenciation B27 de sorte que la concentration cellulaire est de 1 x 10 6 cellules / ml de milieu. </li><li> Aspirer la fibronectine à partir des plaques, laver deux fois avec du PBS, et ajouter 2 ml de cellules à une puits de plaques à 6 puits. REMARQUE: La densité cellulaire pour réensemencement doit être de 2 x 10 5 cellules / cm 2 de surface. </li><li> Changer le milieu de 24 heures plus tard pour enlever les cellules mortes seules. </li><li> Changer le milieu tous les deux jours jusqu&#39;à ce que les points de temps souhaités pour une expérience donnée. </li></ol>

<ol><li>Freed, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Will+embryonic+stem+cells+be+a+useful+source+of+dopamine+neurons+for+transplant+into+patients+with+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Will embryonic stem cells be a useful source of dopamine neurons for transplant into patients with Parkinson's disease.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99, 1755-1757 (2002).</li>
<li>Perrier, A. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Derivation+of+midbrain+dopamine+neurons+from+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Derivation of midbrain dopamine neurons from human embryonic stem cells.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 101, 12543-12548 (2004).</li>
<li>Park, C. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+and+in+vivo+analyses+of+human+embryonic+stem+cell-derived+dopamine+neurons%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neurochemistry%22%5BJournal%5D)">In vitro and in vivo analyses of human embryonic stem cell-derived dopamine neurons.</a> Journal of Neurochemistry. 92, 1265-1276 (2005).</li>
<li>Buytaert-Hoefen, K. A., Alvarez, E., Freed, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+tyrosine+hydroxylase+positive+neurons+from+human+embryonic+stem+cells+after+coculture+with+cellular+substrates+and+exposure+to+GDNF%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Generation of tyrosine hydroxylase positive neurons from human embryonic stem cells after coculture with cellular substrates and exposure to GDNF.</a> Stem Cells. 22, Dayton, Ohio 669-674 (2004).</li>
<li>Zeng, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopaminergic+differentiation+of+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Dopaminergic differentiation of human embryonic stem cells.</a> Stem Cells. 22, Dayton, Ohio 925-940 (2004).</li>
<li>Yan, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Directed+differentiation+of+dopaminergic+neuronal+subtypes+from+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Directed differentiation of dopaminergic neuronal subtypes from human embryonic stem cells.</a> Stem Cells. 23, 781-790 (2005).</li>
<li>Schulz, T. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiation+of+human+embryonic+stem+cells+to+dopaminergic+neurons+in+serum-free+suspension+culture%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Differentiation of human embryonic stem cells to dopaminergic neurons in serum-free suspension culture.</a> Stem Cells. 22, 1218-1238 (2004).</li>
<li>Park, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+dopaminergic+neurons+in+vitro+from+human+embryonic+stem+cells+treated+with+neurotrophic+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience+Letters%22%5BJournal%5D)">Generation of dopaminergic neurons in vitro from human embryonic stem cells treated with neurotrophic factors.</a> Neuroscience Letters. 359, 99-103 (2004).</li>
<li>Cho, M. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+efficient+and+large-scale+generation+of+functional+dopamine+neurons+from+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Highly efficient and large-scale generation of functional dopamine neurons from human embryonic stem cells.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105, 3392-3397 (2008).</li>
<li>Cooper, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differentiation+of+human+ES+and+Parkinson%27s+disease+iPS+cells+into+ventral+midbrain+dopaminergic+neurons+requires+a+high+activity+form+of+SHH%2C+FGF8a+and+specific+regionalization+by+retinoic+acid%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+and+Cellular+Neurosciences%22%5BJournal%5D)">Differentiation of human ES and Parkinson's disease iPS cells into ventral midbrain dopaminergic neurons requires a high activity form of SHH, FGF8a and specific regionalization by retinoic acid.</a> Molecular and Cellular Neurosciences. 45, 258-266 (2010).</li>
<li>Chambers, S. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+efficient+neural+conversion+of+human+ES+and+iPS+cells+by+dual+inhibition+of+SMAD+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Highly efficient neural conversion of human ES and iPS cells by dual inhibition of SMAD signaling.</a> Nature Biotechnology. 27, 275-280 (2009).</li>
<li>Sanchez-Danes, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+generation+of+A9+midbrain+dopaminergic+neurons+by+lentiviral+delivery+of+LMX1A+in+human+embryonic+stem+cells+and+induced+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Gene+Therapy%22%5BJournal%5D)">Efficient generation of A9 midbrain dopaminergic neurons by lentiviral delivery of LMX1A in human embryonic stem cells and induced pluripotent stem cells.</a> Human Gene Therapy. 23, 56-69 (2012).</li>
<li>Fasano, C. A., Chambers, S. M., Lee, G., Tomishima, M. J., Studer, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+derivation+of+functional+floor+plate+tissue+from+human+embryonic+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Stem+Cell%22%5BJournal%5D)">Efficient derivation of functional floor plate tissue from human embryonic stem cells.</a> Cell Stem Cell. 6, 336-347 (2010).</li>
<li>Kriks, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dopamine+neurons+derived+from+human+ES+cells+efficiently+engraft+in+animal+models+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Dopamine neurons derived from human ES cells efficiently engraft in animal models of Parkinson's disease.</a> Nature. 480, 547-551 (2011).</li>
<li>Xi, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Specification+of+midbrain+dopamine+neurons+from+primate+pluripotent+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Specification of midbrain dopamine neurons from primate pluripotent stem cells.</a> Stem Cells. 30, 1655-1663 (2012).</li>
<li>Kirkeby, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+regionally+specified+neural+progenitors+and+functional+neurons+from+human+embryonic+stem+cells+under+defined+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Reports%22%5BJournal%5D)">Generation of regionally specified neural progenitors and functional neurons from human embryonic stem cells under defined conditions.</a> Cell Reports. 1, 703-714 (2012).</li>
<li>Mendez, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+type+analysis+of+functional+fetal+dopamine+cell+suspension+transplants+in+the+striatum+and+substantia+nigra+of+patients+with+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%3A+a+Journal+of+Neurology%22%5BJournal%5D)">Cell type analysis of functional fetal dopamine cell suspension transplants in the striatum and substantia nigra of patients with Parkinson's disease.</a> Brain: a Journal of Neurology. 128, 1498-1510 (2005).</li>
<li>Takahashi, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+of+pluripotent+stem+cells+from+adult+human+fibroblasts+by+defined+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblasts by defined factors.</a> Cell. 131, 861-872 (2007).</li>
<li>Nishimura, K., Takahashi, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Therapeutic+application+of+stem+cell+technology+toward+the+treatment+of+Parkinson%27s+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Biological+%26+Pharmaceutical+Bulletin%22%5BJournal%5D)">Therapeutic application of stem cell technology toward the treatment of Parkinson's disease.</a> Biological & Pharmaceutical Bulletin. 36, 171-175 (2013).</li>
<li>Smidt, M. P., Burbach, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((How+to+make+a+mesodiencephalic+dopaminergic+neuron%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Reviews.+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">How to make a mesodiencephalic dopaminergic neuron.</a> Nature Reviews. Neuroscience. 8, 21-32 (2007).</li>
<li>Wang, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Noggin+and+bFGF+cooperate+to+maintain+the+pluripotency+of+human+embryonic+stem+cells+in+the+absence+of+feeder+layers%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemical+and+Biophysical+Research+Communications%22%5BJournal%5D)">Noggin and bFGF cooperate to maintain the pluripotency of human embryonic stem cells in the absence of feeder layers.</a> Biochemical and Biophysical Research Communications. 330, 934-942 (2005).</li>
<li>Chen, J. K., Taipale, J., Young, K. E., Maiti, T., Beachy, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+molecule+modulation+of+Smoothened+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Proceedings+of+the+National+Academy+of+Sciences+of+the+United+States+of+America%22%5BJournal%5D)">Small molecule modulation of Smoothened activity.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 99, 14071-14076 (2002).</li>
</ol>

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Les cellules souches pluripotentes humaines (y compris les cellules hES hiPSCs) et peuvent être différenciées in vitro afin de générer la plupart, sinon tous, les types de notre corps, y compris les neurones dopaminergiques, qui a été démontré dans des études précédentes 19 cellules. Ici, basée sur la connaissance de dopaminergique développement embryonnaire des neurones 20 et protocoles publiés par les autres laboratoires 14,15, nous avons optimisé les conditions de culture pou...

Dopaminergique (DA) des neurones peuvent être trouvés dans plusieurs régions du cerveau, y compris le mésencéphale, hypothalamus, la rétine et bulbes olfactifs. Les neurones DA A9 dans la substantia nigra pars compacta (SNpc) et un comportement de commande de mouvement en projetant dans le striatum du cerveau antérieur et formant le système moteur extrapyramidal. La dégénérescence des neurones DA A9 conduit à la maladie de Parkinson (PD), qui est la deuxième maladie neurodégénérative humaine la plus courante et actuellement incurable. la thérapie de remplacement cellulaire est l&#39;une des stratégies les plus prometteuses pour le traitement de PD 1, par conséquent, il ya eu un grand intérêt pour dériver neurones A9 DA à partir de cellules souches pluripotentes humaines (hPSCs), y compris les cellules souches embryonnaires humaines (CSEh) et la cellules dernières anthropiques souches pluripotentes (hiPSCs). Beaucoup de recherches ont tenté de tirer les neurones A9 DA de hPSCs en utilisant diverses méthodes. Les premiers rapports tous les neurones DA générés par un neuronalstade rosette progénitrices. En co-culture avec MS5 2 ou PA6 3-5 cellules stromales avec ou sans facteurs de croissance externe pour 2-4 semaines, L. Studer et collègues et trois autres groupes induits succès CSEh pour produire des rosettes de neurones. Ils ont ensuite enrichi ces rosettes par dissection mécanique ou digestion enzymatique pour une différenciation plus poussée. Dans d&#39;autres rapports, les chercheurs ont généré des rosettes de neurones par corps embryoïdes (EB) la différenciation de culture 6-9 flottants. Par la suite, les chercheurs ont établi un procédé de différenciation de la monocouche à base de 10,11, où ils étalées cellules hES et hiPSCs sur la matrice extra-cellulaire, ajouter différents facteurs de croissance dans la culture pour induire la différenciation de hPSCs de neurones dopaminergiques, qui imite l&#39;vivo DA embryonnaire du développement dans des neurones . Bien que toutes ces études obtenus tyrosine hydroxylase (TH) cellules exprimant certaines caractéristiques des neurones dopaminergiques, le processus de différenciation ensemble est temps et de travail consommant,généralement inefficaces, et plus important encore, l&#39;identité A9 de ces neurones n&#39;ont pas été démontrée dans la plupart des études, sauf celle avec Lmx1a expression ectopique 12. Récemment, une nouvelle plaque de plancher (FP) du protocole à base a été développé 13-16, dans lequel les précurseurs de PF avec DA potentiel de neurone ont d&#39;abord été générés par l&#39;activation de la sonic hedgehog et canoniques voies de signalisation Wnt au cours de la phase précoce de la différenciation, puis ces cellules PF ont été précisées pour les neurones dopaminergiques. Bien que ce protocole est plus efficace, il ya encore quelques problèmes; par exemple, l&#39;ensemble du processus de différenciation prend beaucoup de temps (au moins 35 jours) et de cellules nourricières est dépendante 15, ou EB est dépendante de l&#39;identité ou de 16 A9 14 n&#39;a pas été démontrée. Ici, sur la base de la connaissance de in vivo développement embryonnaire DA neurone et les résultats publiés d&#39;autres chercheurs de, nous avons optimisé les conditions de culture pour l&#39;effgénération isant des neurones dopaminergiques de deux CSEh et hiPSCs. Nous avons généré des cellules précurseurs première FP par l&#39;activation de la signalisation Wnt canonique avec une petite molécule et CHIR99021 signalisation Sonic Hedgehog avec de petites molécules et purmorphamine SAG. Ces cellules expriment PF FOXA2, Lmx1a, CORIN, OTX2 et nestine. Nous avons ensuite précisé ces cellules PF à neurones dopaminergiques avec des facteurs de croissance, y compris BDNF, GDNF, etc. Les neurones dopaminergiques sont générés de A9 type de cellule car ils sont positifs pour GIRK2 tout négatif pour Calbindin 17. Ce protocole est une cellule d&#39;alimentation ou EB indépendante, hautement efficace et reproductible. En utilisant ce protocole, on peut dériver neurones DA en moins de 4 semaines à partir de CSEh ou hiPSCs des personnes normales pour l&#39;étude de la transplantation de cellules, ou de hiPSCs de patients parkinsoniens pour la modélisation in vitro de PD ou de tester des agents thérapeutiques potentiels pour PD.

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>Life Technologies</td><td>10569-010</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Life Technologies</td><td>26140</td><td></td></tr><tr><td>pénicilline/ampicilline</td><td>Life Technologies</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>DMEM/F12</td><td>Life Technologies</td><td>10565-018</td><td></td></tr><tr><td>KSR</td><td>Life Technologies</td><td>10828-028</td><td></td></tr><tr><td>Acide aminé non essentiel</td><td>Life Technologies</td><td>11140-050</td><td></td></tr><tr><td>b-mercaptoéthanol</td><td>Millipore</td><td>ES-007-E</td><td></td></tr><tr><td>bFGF</td><td>R& D Systems</td><td>233-FB-025</td><td></td></tr><tr><td>mTesR1</td><td>STEMCELL Technologies</td><td>5850</td><td></td></tr><tr><td>Collagénase IV</td><td>Life Technologies</td><td>17104-019</td><td></td></tr><tr><td>Gélatine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G9391</td><td></td></tr><tr><td>N2 supplément</td><td>Life Technologies</td><td>17502-048</td><td></td></tr><tr><td>B27 supplément</td><td>Life Technologies</td><td>17504-044</td><td></td></tr><tr><td>Neurobasal</td><td>Life Technologies</td><td>21103-049</td><td></td></tr><tr><td>Glutamax</td><td>Life Technologies</td><td>35050-061</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Life Technologies</td><td>10010-023</td><td></td></tr><tr><td>Matrigel à facteur de croissance réduit</td><td>BD Biosciences</td><td>354230</td><td></td></tr><tr><td>Accutase</td><td>MP Biomedicals</td><td>1000449</td><td></td></tr><tr><td>Thiazovivin</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc-361380</td><td></td></tr><tr><td>SB431542</td><td>Tocris Bioscience</td><td>1614</td><td></td></tr><tr><td>LDN-193189</td><td>Stemgent</td><td>04-0074</td><td></td></tr><tr><td>SAG</td><td>EMD Millipore</td><td>566660-1MG</td><td></td></tr><tr><td>Purmorphamine</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc-202785</td><td></td></tr><tr><td>FGF8b</td><td>R& D Systems</td><td>423-F8-025</td><td></td></tr><tr><td>CHIR99021</td><td>Cellagen Technology</td><td>C2447-2s</td><td></td></tr><tr><td>BDNF</td><td>R& D Systems</td><td>248-BD-025</td><td></td></tr><tr><td>GDNF</td><td>R& D Systems</td><td>212-GD-010</td><td></td></tr><tr><td>TGF-beta3</td><td>R& D Systems</td><td>243-B3-002</td><td></td></tr><tr><td>Acide ascorbique</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>A4034</td><td></td></tr><tr><td>cAMP</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D0627</td><td></td></tr><tr><td>Souris anti humain NESTIN</td> anticorps <td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc-23927</td><td>1/1 000 dilution</td></tr><tr><td>Lapin anti humain OTX2</td><td>anticorps Millipore</td><td>AB9566</td><td>1/2 000 dilution</td></tr><tr><td>Chèvre anti humain FOXA2</td> anticorps<td>R& D Systems</td><td>AF2400</td><td>Dilution 1/200</td></tr><tr><td>Anticorps anti LMX1a de lapin</td><td>Millipore</td><td>AB10533</td><td>dilution 1/1 000</td></tr><tr><td>Anticorps anti TH humain de lapin</td><td>Pel Freez</td><td>P40101</td><td>Dilution 1/500</td></tr><tr><td>Anticorps TH de poulet anti humain</td><td>Millipore</td><td>AB9702</td><td>Dilution 1/500</td></tr><tr><td>Anticorps anti TUJ1 de souris</td><td>Covance</td><td>MMS-435P</td><td>dilution 1/,2000</td></tr><tr><td>Anticorps anti GIRK2 de lapin</td><td>Abcam</td><td>ab30738</td><td>dilution 1/300</td></tr><tr><td>Anticorps anti calbindin humain de lapin</td><td>Abcam</td><td>ab25085</td><td>dilution 1/400</td></tr><tr><td>Centrifugeuse</td><td>Eppendorf</td><td>5804</td><td></td></tr></tbody></table>

réalisé neurone dopaminergique différenciation de cellules pluripotentes humaines souches

Directed Dopaminergic Neuron Differentiation from Human Pluripotent Stem Cells

Les neurones dopaminergiques (DA) de la substantia nigra pars compacta (également connus sous le nom de neurones A9 DA) sont le type de cellule spécifique qui est perdu dans la maladie de Parkinson (MP). Il y a un grand intérêt à dériver des neurones A9 DA à partir de cellules souches pluripotentes humaines (hPSC) pour la thérapie de remplacement cellulaire régénératif de la MP. Au cours du développement neuronal, les neurones A9 DA proviennent des précurseurs de la plaque de plancher (FP) situés sur la ligne médiane ventrale du système nerveux central. Ici, nous avons optimisé les conditions de culture pour la différenciation progressive des hPSC en neurones A9 DA, qui imite le développement embryonnaire des neurones DA. Dans notre protocole, nous décrivons d’abord la génération efficace de cellules précurseurs de la PF à partir de hPSC à l’aide d’une méthode à petites molécules, puis nous convertissons les cellules de la PF en neurones A9 DA, qui pourraient être maintenus in vitro pendant plusieurs mois. Ce protocole efficace, reproductible et contrôlable fonctionne bien dans les cellules souches embryonnaires humaines (CSEh) et les cellules souches pluripotentes induites humaines (hiPSC) de personnes normales et de patients atteints de la MP, dans lesquelles on pourrait dériver des neurones A9 DA pour effectuer une modélisation in vitro de la maladie et un criblage de médicaments et une thérapie de transplantation cellulaire in vivo pour la MP.

Un aperçu du protocole de différenciation est représenté sur la Figure 1. L&#39;efficacité du protocole de différenciation présentée ici se fonde sur l&#39;état des cellules de départ. Par conséquent, il est essentiel de faire en sorte que, tout d&#39;abord une supprime toutes les colonies différenciées avant dissociation hPSCs dans des cellules individuelles de la différenciation, et d&#39;autre part, une épuise la plupart, si pas toutes, les cellules nourricières MEF par l&#39;incubation des cellules ...

Nous, sur la base des connaissances de la biologie du développement et des recherches publiées, avons développé un protocole optimisé pour générer efficacement des neurones dopaminergiques A9 du mésencéphale à partir de cellules souches embryonnaires humaines et de cellules souches pluripotentes induites humaines, ce qui serait utile pour la modélisation de la maladie et la thérapie de remplacement cellulaire pour la maladie de Parkinson.

Réalisé neurone dopaminergique différenciation de cellules pluripotentes humaines souches

Dopaminergic (DA) neurons in the substantia nigra pars compacta  (also known as A9 DA neurons) are the specific cell type that is lost in ...

L'objectif général de cette procédure est d'induire une différenciation très efficace de neurones dopaminergiques in vitro. Cela est réalisé en préparant d'abord une culture d'adhérence en cellules uniques de cellules souches pluripotentes humaines.À la deuxième étape, le milieu de culture cellulaire est remplacé par un milieu d'induction neuronale afin d'induire les progéniteurs de la plaque du plancher. Ensuite, les neurones dopaminergiques sont cultivés dans un milieu de maturation. Puis, finalement, les progéniteurs de neurones dopaminergiques unicellulaires sont cultivés sur des plaques recouvertes de poly-L-ornithine et de laminine, dans le milieu de maturation pendant 30 jours.En fin de compte, la microscopie en immunofluorescence peut être utilisée pour évaluer l'expression de marqueurs importants des neurones dopaminergiques. Cette technique présente un avantage supérieur par rapport au protocole existant de neurosphères à l'acide neuro. Elle permet de générer une population double neuronale plus homogène avec une efficacité accrue.Quatre jours après le passage, aspirez le milieu des cultures cellulaires. Détachez les cellules avec un millilitre d'Accutase par puits et inc

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Nous avons établi un protocole pour l'induction de neuroblastes direct pluripotentes cellules souches embryonnaires humaines maintenues dans des conditions définies avec de petites molécules, qui permet la dérivation d'une offre importante de progéniteurs neuronaux humains et neuronale types de cellules dans le développement du SNC pour les neurones de réparation.

Dérivation efficace des ressources humaines progéniteurs neuronaux et des neurones à partir pluripotentes cellules souches embryonnaires humaines à l&#39;induction de petites molécules

Les protocoles de différenciation neuronale des cellules souches humaines pluripotentes (hPSCs) sont souvent beaucoup de temps et nécessitera d'importantes compétences de culture cellulaire. Ici, nous avons adapté une procédure de différenciation petite molécule à base d'un format de plaque multititre, permettant la génération simple, rapide et efficace des neurones humains d'une manière contrôlée.

Génération rapide et efficace des neurones à partir de cellules souches pluripotentes humaines dans un format plaque Multititre

Cette vidéo montre la génération de cellules progénitrices neurales à partir de cellules souches pluripotentes humaines (hPSC) non transgéniques et transgéniques. Les hPSC sont différenciées en cellules progénitrices neurales à l’aide d’un milieu de différenciation neuronale. Alors que la différenciation est induite dans les cellules non transgéniques à l’aide de petites molécules, les hPSC transgéniques sont différenciées par l’ajout d’un antibiotique qui induit le promoteur d’un facteur de...

Différenciation de cellules souches pluripotentes humaines non transgéniques et transgéniques en cellules progénitrices neurales

Cette vidéo démontre le processus d’induction de cellules souches pluripotentes humaines à se différencier en neurones en les transfectant avec des lentivirus modifiés portant un gène de facteur de transcription neurogène sous le contrôle d’un élément sensible à la tétracycline, suivi d’un traitement avec un dérivé de la tétracycline et un milieu de maturation.

Différenciation de cellules souches pluripotentes humaines dans les neurones à l’aide de lentivirus modifiés

Cette vidéo démontre la différenciation des cellules souches embryonnaires humaines (CSEh) en neurones dopaminergiques, afin de fournir un modèle pour l'étude de la maladie de Parkinson. Les CSEh sont cultivées dans un milieu d’induction neuronale dans une plaque de micropuits pour former des neurosphères 3D. Ceux-ci sont ensuite cultivés dans un milieu d’induction neuronale pour favoriser la différenciation en neurones progéniteurs dopaminergiques. La maturation finale des neurones se produit...

Génération d’organoïdes neuronaux dopaminergiques à partir de cellules souches embryonnaires humaines

Cette procédure donne des neurones télencéphaliques en passant par les points de contrôle qui sont similaires à ceux observés au cours du développement humain. Les cellules peuvent se différencier spontanément, sont exposés à des facteurs qui les poussent vers la lignée neuronale, sont isolés et sont étalées sur des lamelles couvre-objet pour permettre une différenciation terminale et de maturation.

La spécification des neurones glutamatergiques télencéphaliques de cellules souches pluripotentes humaines

Nous modifions et mettre en œuvre un protocole précédemment publié décrivant la différenciation rapide, reproductible et efficace des humains induite par cellules souches pluripotentes (de hiPSCs) dans les neurones corticaux excitateurs 12. Plus précisément, notre modification permet un contrôle de la densité des cellules neuronales et l'utilisation sur des réseaux de micro-électrodes pour mesurer les propriétés électrophysiologiques au niveau du réseau.

Rapid Neuronal Différenciation des Induced cellules souches pluripotentes pour mesurer l&#39;activité réseau sur Arrays Micro-électrode

Le protocole présente la reprogrammation des cellules mononucléaires périphériques de sang pour induire des cellules souches neurales par l'infection de virus de Sendai, différenciation des iNSCs dans les neurones dopaminergiques, transplantation des précurseurs de DA dans le unilatéralement-lesioned Modèles de souris de la maladie de Parkinson, et évaluation de l'innocuité et de l'efficacité des précurseurs d'AD dérivés de l'iNSC pour le traitement de la MALADIE.

Génération de cellules souches neurales induites à partir de cellules mononucléaires périphériques et différenciation vers les précurseurs du neurone dopaminergique pour les études de transplantation

Dans ce protocole, nous décrivons une stratégie de différenciation stable et très efficace pour la génération de neurones sympathiques postganglioniques à partir de cellules souches pluripotentes humaines. Ce modèle rendra les neurones disponibles pour l’utilisation d’études sur de multiples troubles autonomes.

Différenciation efficace des neurones sympathiques postganglioniques utilisant des cellules souches pluripotentes humaines dans des conditions de culture sans alimentation et définies chimiquement

Nous montrons l’automatisation des cultures de cellules souches pluripotentes induites par l’homme (HIPSC) et des différenciations neuronales compatibles avec l’imagerie et l’analyse automatisées.

Production automatisée de neurones corticals et dopaminergiques pluripotents induits par l’homme avec surveillance intégrée des cellules vivantes

Présenté ici est un protocole simple pour la différenciation dirigée des cellules endothéliales hémogènes à partir de cellules souches pluripotentes humaines en environ 1 semaine.

Différenciation dirigée de cellules endothéliales hémogéniques à partir de cellules souches pluripotentes humaines

Découvrez une méthode optimisée pour différencier des neurones dopaminergiques A9 à partir de cellules souches pluripotentes humaines. Ce protocole permet de modéliser la maladie de Parkinson et d'explorer les thérapies de remplacement cellulaire.

Réalisé neurone dopaminergique différenciation de cellules pluripotentes humaines souches

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