Name: Isolement de cellules murines ganglions lymphatiques stromales (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-08-19T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 47 s
Description: Découvrez l'isolement de cellules stromales ganglionnaires murines par digestion enzymatique et désagrégation mécanique. Cette méthode préserve la viabilité cellulaire et l'expression des marqueurs de surface pour l'analyse par cytométrie en flux.

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Les auteurs remercient Sanjiv Luther et ses collègues pour les discussions utiles qui ont permis d’établir le protocole actuel de digestion des ganglions lymphatiques. Ce travail a été soutenu par les subventions SNF PPOOA-_119204 et PPOOP3_144918 à S.W.R.

Dans cette publication vidéo et de protocole, toutes les procédures d&#39;animaux ont été réalisées conformément au protocole approuvé pour les animaux par cantonal Autorité de Bâle-Ville, Suisse. 1. ganglions lymphatiques Préparation et digestion <ol><li> L&#39;eau de pré-chauffage dans un bêcher à 37 ° C sur un agitateur magnétique à plaque chauffante. </li><li> Préparer de base moyen de la manière suivante: milieu DMEM (sans pyruvate) supplémenté avec 2% de FCS, 1,2 mM de CaCl2 et Pen / Strep (100 unités de pénicilline, 100 ug de streptomycine). </li><li> Stériliser tous les instruments de dissection avant utilisation. </li><li> Euthanasier souris ganglionnaire donateurs par CO 2 asphyxie et disséquer de façon aseptique les ganglions lymphatiques. Ne pas disséquer la graisse entourant. NOTE: Ce protocole est optimisé pour le noeud périphérique drainage lymphatique peau (inguinale, brachiale, axillaire). </li><li> Placez les ganglions lymphatiques dans une boîte de Pétri stérile contenant 2 ml de glace milieu basique froid. </li><li> Perturber le ganglion lymphatique capsule l&#39;aide de deux aiguilles de 25 G fixés sur seringue de 1 ml. </li><li> Transférer le tissu des ganglions lymphatiques perturbé dans un tube à fond rond de 5 ml contenant 750 polypropylène milieu de base supplémenté avec ul de 1 mg / ml de collagénase IV et 40 ug / ml de DNAse I. </li><li> Ajouter un agitateur magnétique stérile dans chaque tube. </li><li> Placer le tube dans le bécher avec 37 ° C préchauffé eau et remuer les tubes à une vitesse lente (1 tour / s) pendant 30 min. </li><li> Retirer le tube de l&#39;agitateur magnétique avec plaque chauffante et laisser des fragments de ganglions lymphatiques s&#39;installent. </li><li> Retirez délicatement le surnageant enrichi en &quot;cellule non-stromal&quot;. REMARQUE: Si l&#39;analyse de T, B, les cellules dendritiques et CD45 - CD31 - gp38 - est prévu, sauf la &quot;cellules stromales non&quot; fraction. </li><li> Laver le tissu des ganglions lymphatiques restant une fois avec 750 pi de milieu basique. REMARQUE: Cette étape est nécessaire uniquement si vous travaillez avec des souris immuno-compétentes. </li><li> Laissez fragments de ganglions lymphatiques s&#39;installent. </li><li> Retirez lefraction flottante des cellules non-stroma. </li><li> Ajouter aux fragments de ganglion lymphatique 750 pi de milieu de base supplémenté avec 3,5 mg / ml de collagénase D et 40 pg / ml de DNase I. </li><li> Placer le tube de retour dans le bécher contenant 37 ° C préchauffé eau. </li><li> Digérer le tissu des ganglions lymphatiques de 5 min, tout en agitant lentement. </li><li> Lymphatiques fragments de tissus de noeud désagrégées par pipetage et mélange 700 ul de 10 cycles à la vitesse maximale à l&#39;aide d&#39;une pipette multicanaux automatisé. NOTE: Ce qui perturbe le tissu des ganglions lymphatiques pour améliorer la digestion. </li><li> Placer le tube de retour dans le bécher avec 37 ° C de l&#39;eau préchauffée. </li><li> Des fragments de tissu de ganglion lymphatique digérer pendant encore 10 minutes tout en remuant lentement. </li><li> Ventiler fragments de tissus de ganglions lymphatiques par pipetage et mélange pendant 99 cycles à vitesse maximale à l&#39;aide d&#39;une pipette multicanaux automatisé. </li><li> Ajouter 7,5 pl d&#39;EDTA 0,5 M pour assurer le maintien de la suspension de cellules isolées. </li><li> Des fragments de tissu de ganglion lymphatique Ventiler par tuyauPrép et en mélangeant pendant 99 cycles à vitesse maximale à l&#39;aide d&#39;une pipette multicanaux automatisé. </li><li> Ajouter 750 pi de milieu de base et passer les cellules à travers une maille de nylon de 70 um. </li><li> Centrifugeuse suspension cellulaire 5 min à 1500 xg, 4 ° C. </li><li> Les cellules stromales peuvent maintenant être utilisés pour une analyse ultérieure. </li></ol> 2. coloration des cellules des ganglions lymphatiques stromales <ol><li> Utilisez une combinaison de l&#39;anti-CD45, anti-podoplanin (gp38), anticorps anti-CD31 de reconnaître avec succès des cellules TRC, ESL, BEC et DN. </li><li> Incuber le tissu des ganglions lymphatiques digéré avec Live traqueur / Dead, anti-CD45-FITC (1: 200), anti-gp38-PE (1: 200), anti-CD31-APC (1: 200) dans 100 ul de HBSS contenant 2 % de FCS pendant au moins 20 min, 4 ° C, dans l&#39;obscurité. </li><li> Laver les cellules en ajoutant 500 l de HBSS contenant 2% de SVF </li><li> Centrifugeuse suspension cellulaire 3 min à 1500 xg, 4 ° C. </li><li> Re-suspendre dans 100 ul de HBSS contenant 2% de FCS. </li><li> Exécutez les cellules colorées dans un cytomètre de flux EQUIPPed avec les optiques suivantes: source d&#39;excitation avec un maximum de trois lasers: bleu (488 nm, refroidi par air, 20 mW à l&#39;état solide), rouge (633 nm, 17 mW HeNe) et le violet (405 nm, 30 mW à l&#39;état solide) . </li><li> Porte CD45 - cellules à exclure les cellules hématopoïétiques. </li><li> maillots Gate (FSC-W) et des cellules vivantes (ELS / trackers DEAD) à exclure doublets et les cellules mortes. </li><li> Terrain gp38 contre CD31 pour visualiser TRC (gp38 + CD31 -), ESL (gp38 + CD31 +), BEC (gp38 - CD31 +) des cellules (voir la figure 1) et DN (gp38 - - CD31). </li></ol>

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</ol>

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

L&#39;étude des cellules stromales de ganglions lymphatiques est récemment devenu un axe de recherche en raison du développement de deux protocoles de digestion publiés 6,13. Les deux protocoles sont suffisants pour obtenir des cellules stromales noeud unique lymphatiques, mais diffèrent dans l&#39;utilisation d&#39;enzymes de digestion et le temps de digestion. Etant donné que les cellules stromales et les marqueurs de surface sont sensibles à la digestion enzymatique et une contrainte mécanique, un protocol...

Les ganglions lymphatiques sont des compartiments spécialisés où les réponses immunitaires adaptatives contre des antigènes étrangers autonomes et sont initiés et coordonnés. La procédure présentée ici décrit une digestion enzymatique courte combinée avec pipetage mécanique automatisé pour obtenir des ganglions lymphatiques suspension cellulaire unique et accéder aux cellules stromales ganglionnaires viables qui maintiennent l&#39;expression de surface de plusieurs molécules. former cellules stromales ganglionnaire l&#39;échafaud du ganglion lymphatique et remplit trois grandes fonctions: ils filtrent première fluides corporels pour déguster des antigènes, des agents pathogènes et leur pathogène motif moléculaire associé (PAMP), ainsi que des cytokines et danger motif moléculaire associé (atténue) présente dans le corps. Deuxièmement, ils attirent et instruisent les cellules présentatrices d&#39;antigènes (APC) et des lymphocytes d&#39;interagir et d&#39;initier des réponses immunitaires adaptatives; et la troisième, ils fournissent un environnement structurel pour l&#39;homéostasie et la différenciation des lymphocytes 1-3. Pendant les cellules ganglionnaires du stroma de l&#39;inflammation produisent des facteurs de croissance, des cytokines et des chimiokines, à adapter l&#39;organisation de gonflement ainsi l&#39;interaction entre les cellules dendritiques (DCs), T et les cellules B. L&#39;orchestration de réponses immunitaires est seulement possible en raison de l&#39;architecture structurale complexe formé par les différentes populations de cellules stromales. Les cellules stromales de ganglions lymphatiques sont des cellules CD45 négatives et peuvent être distinguées par l&#39;expression de CD31 ou de gp38 dans les cellules endothéliales et fibroblastiques 1 -6. Gp38 + CD31 - définit les cellules de la zone T réticulaire (TRC, également connu sous le FRC: les cellules réticulaires fibroblastiques), gp38 + CD31 + définit cellules lymphatiques endothéliales (LEC), gp38 - CD31 + définit les cellules endothéliales de sang (BEC). En outre, la caractérisation des sous-populations a révélé l&#39;existence d&#39;autres cellules stromales de ganglions lymphatiques. En effet, une petite population de cellules pericyte comme a été caractérisée dans legp38 - CD31 - population 7. Par conséquent, l&#39;adaptation de la procédure d&#39;isolement est avantageux pour l&#39;identification et la caractérisation des propriétés fonctionnelles différentes cellules stromales de ganglions lymphatiques. Avant le développement des ganglions lymphatiques cellules stromales digestion protocoles de l&#39;étude des cellules stromales de ganglion lymphatique a été limitée à des observations in situ en utilisant la section de tissu et la microscopie. Néanmoins, des études structurales et fonctionnelles ont montré des caractéristiques importantes des cellules stromales de ganglions lymphatiques. Les cellules stromales de ganglions lymphatiques sont associés à podoplanin, du collagène et de la matrice extracellulaire des protéines (ECM) pour former un complexe d&#39;une structure en 3 dimensions appelé système de conduites qui transporte les protéines lymphatiques et de masse moléculaire associé-bas à partir du sinus sous-capsulaire du ganglion de la haute endothéliale veinules dans la zone des cellules T 8. DCs sont en contact étroit avec les cellules du stroma et peut être observé dans la saillie tubulaire constructure duit à l&#39;échantillon liquide et de détecter les antigènes 8. L&#39;interaction des cellules stromales de ganglions lymphatiques (TRC et ESL) avec les PED est médiée par la presse et la présentation des chimiokines CCL21 et CCL19 9,10. CCL19 et CCL21 sont reconnus par le récepteur CCR7 faciliter les DC et les cellules T à migrer vers la zone des cellules T des ganglions lymphatiques 4,11. Malgré l&#39;utilisation de chimiokines similaires, les cellules T ont PED et les routes de migration différentes dans les ganglions lymphatiques 12. Par la suite, en utilisant une digestion enzymatique de ganglion lymphatique et de l&#39;isolement des cellules stromales de ganglions lymphatiques pures, des études fonctionnelles ont été effectuées sur le rôle des différentes cellules des ganglions lymphatiques de stroma et de leur capacité à interagir avec des DC et des lymphocytes T / B 6,13. Tout d&#39;abord, la diaphonie entre les cellules T productrices d&#39;IFN-effectrices de γ et de cellules stromales de ganglions lymphatiques induit la production d&#39;oxyde nitrique du métabolite montré à atténuer les réponses des lymphocytes T et la prolifération dans des organes lymphoïdes secondaires 14 à 16. Deuxièmement, la lymphe node cellules stromales ont été rapportés pour soutenir la différenciation de sous-ensembles de régulation à courant continu par l&#39;intermédiaire de la production d&#39;IL-10 17, et à moduler naïf homéostasie des cellules T par l&#39;intermédiaire de la production d&#39;IL-7 6,18. En troisième lieu, l&#39;expression des TLR dans les cellules stromales de ganglions lymphatiques suggère que les cellules stromales sont sensibles à un signal dérivé de l&#39;infection ou des auto-molécules libéré au cours de la lésion tissulaire. En effet, le traitement de cellules stromales de ganglions lymphatiques avec le ligand de TLR3 poly (I: C) induit une régulation à la hausse modeste de grande expression d&#39;histocompatibilité de classe complexe I et la régulation positive de co-inhibiteur molécule PD-L1, mais pas de molécules de costimulation, ce qui des changements dramatiques dans les tissus périphériques antigènes expression 19. Plusieurs groupes ont montré des cellules stromales de ganglions lymphatiques expriment des antigènes de tissus périphériques et induire une tolérance des cellules T autoréactives 19,21-27. Par conséquent, la compréhension des interactions entre les cellules stromales de ganglions lymphatiques et l&#39;autre re migratoire etcellules ganglionnaires sident aideront à trouver de nouvelles molécules cibles pour permettre l&#39;activation ou la suppression de la réponse immunitaire lors de l&#39;inflammation. Par conséquent, la mise en œuvre de la séparation enzymatique de la publication du ganglion lymphatique est nécessaire. Protocoles publiés précédemment utilisent différentes combinaisons de base de la collagénase-digestion enzymatique avec une faible contrainte mécanique 6,19,20. Cependant, de longues incubations avec des enzymes de digestion ou de la combinaison différente de digestion enzymatique peuvent dégrader diverses molécules de surface nécessaires pour analyser l&#39;état d&#39;activation et d&#39;identifier de nouvelles cellules stromales ganglionnaires. Selon le type de l&#39;analyse de cellules du stroma, le Protocole de liaison Protocole Fletcher ou peut-être plus approprié. Dans la procédure décrite, une digestion enzymatique légèrement plus courte est associée à la ventilation mécanique automatisé pour minimiser la dégradation de surface marqueur des cellules stromales nœud lymphatiques viable. Cette procédure permet d&#39;isoler hautement reproductible etdistinction des populations de cellules stromales de ganglions lymphatiques avec une faible variabilité et plus de 95% de viabilité. Les cellules stromales de ganglions lymphatiques fraîchement isolées peuvent être directement utilisés pour l&#39;expression de marqueurs de surface, l&#39;analyse des protéines, et des études de la transcription, ainsi que la création de lignées de cellules stromales pour effectuer des tests fonctionnels in vitro.

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>LifeTechnologies-Gibco</td><td>41965-039</td><td></td></tr><tr><td>FCS</td><td></td><td></td><td>Concentration finale 2 %</td></tr><tr><td>CaCl2</td><td>Sigma</td><td>499609</td><td>Concentration finale 1,2 mM</td></tr><tr><td>Collagénase IV</td><td>Worthington Biochemical Corporation</td><td></td><td>>160 unités par mg de poids sec, utilisation à la concentration finale de 1 mg/ml</td></tr><tr><td>Collagenase D</td><td>Roche</td><td>11088882001</td><td>utilisation à 3,5 mg/ml</td></tr><tr><td>DNAse I</td><td>Roche&nbsp ;</td><td>11284932001</td><td>utilisation à 40 & micro ; g/ml</td></tr><tr><td>Aimants à aiguillage</td><td>FAUST</td><td></td><td>5 mm de long-2 mm & oslash ;</td></tr><tr><td>Tubes en polystyrène à fond rond 5 ml</td><td>Falcon-BD Bioscience</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Agitateur magnétique avec fonction de chauffage</td> Boîte <td>de Pétri 9720250</td><td></td><td>standard IKA-RCT</td></tr><tr><td>100 mm, stérile</td><td>TPP</td><td>6223201</td><td></td></tr><tr><td>aiguilles 25 G</td><td>Terumo</td><td></td><td></td></tr><tr><td>anti souris CD45 Ab</td><td>Biolegend</td><td></td><td>Clone 30-F11</td></tr><tr><td>anti souris CD11c Ab</td><td>Biolegend</td><td></td><td>Clone N418</td></tr><tr><td>anti souris Podoplanin Ab</td><td>Biolegend</td><td></td><td>Clone 8.1.1</td></tr><tr><td>anti souris CD31 Ab</td><td>Biolegend</td><td></td><td>Clone MEC13.3</td></tr><tr><td> Eppendorf Xplorer plus, Multichannel</td><td>Eppendorf</td><td>4861 000.821/830</td><td>1.250 &micro ; l volume max.</td></tr><tr><td>anti souris CD140a</td><td>Biolegend</td><td></td><td>Clone APA5</td></tr><tr><td>anti souris CD80</td><td>Biolegend</td><td></td><td>Clone 16-10A1</td></tr><tr><td>anti souris CD40</td><td>Biolegend</td><td></td><td>Clone 1C10</td></tr><tr><td>anti souris I-Ab</td><td>Biolegend</td><td></td><td>Clone AF6-120.1</td></tr><tr><td>anti souris CD274 (-L1)</td><td>Biolegend</td><td></td><td>Clone 10F.9G2</td></tr><tr><td>LIVE/DEAD Fixable Kit de coloration Dead Cell dans le proche infrarouge</td><td>Invitrogen</td><td>L10119</td><td></td></tr></tbody></table>

isolement de cellules murines ganglions lymphatiques stromales

Isolation of Murine Lymph Node Stromal Cells

Les organes lymphoïdes secondaires, y compris les ganglions lymphatiques, sont composés de cellules stromales qui fournissent un environnement structurel pour l’homéostasie, l’activation et la différenciation des lymphocytes. Divers sous-ensembles de cellules stromales ont été identifiés par l’expression de la molécule d’adhésion CD31 et de la glycoprotéine podoplanine (gp38), des cellules réticulaires de la zone T ou des cellules réticulaires fibroblastiques, des cellules endothéliales lymphatiques, des cellules endothéliales sanguines et des péricytes de type FRC au sein de la population cellulaire double négative. Pour toutes les populations, différentes fonctions sont décrites, notamment la séparation et le revêtement des différents compartiments, l’attraction et l’interaction avec différents types de cellules, la filtration de la fluidique drainante et la contraction des vaisseaux lymphatiques. Au cours des dernières années, différents groupes ont décrit un rôle supplémentaire des cellules stromales dans l’orchestration et la régulation des réponses des lymphocytes T cytotoxiques potentiellement dangereux pour l’hôte. 
Les ganglions lymphatiques sont des structures complexes avec de nombreux types de cellules différents et nécessitent donc une procédure appropriée pour isoler les populations cellulaires souhaitées. Actuellement, les protocoles d’isolement des cellules stromales des ganglions lymphatiques reposent sur la digestion enzymatique avec des temps d’incubation variables ; Cependant, les cellules stromales et leurs molécules de surface sont sensibles à ces enzymes, ce qui entraîne une perte d’expression des marqueurs de surface et la mort cellulaire. Ici, un protocole de digestion enzymatique court combiné à une perturbation mécanique automatisée pour obtenir une suspension viable de cellules stromales de ganglions lymphatiques en maintenant leur expression moléculaire de surface est proposé.

Le présent protocole est un protocole de modification de digestion publié par Link et al. 2007 6 avec un temps de digestion plus courte (45 minutes au maximum), en raison de la désagrégation mécanique avec une pipette à canaux multiples automatisé. En outre, la procédure est plus uniforme, minimise la dégradation de marqueurs de surface sur les différentes cellules du stroma de ganglion lymphatique et permet la manipulation de plus d'un échantillon à la fois. Collagénase ...

L’isolement des cellules stromales des ganglions lymphatiques est une procédure en plusieurs étapes comprenant la digestion enzymatique et la désagrégation mécanique pour obtenir des cellules réticulaires fibroblastiques, des cellules endothéliales lymphatiques et sanguines. Dans la procédure décrite, une digestion courte est combinée à une désagrégation mécanique automatisée pour minimiser la dégradation des marqueurs de surface des cellules stromales viables des ganglions lymphatiques.

Isolement de cellules murines ganglions lymphatiques stromales

Secondary lymphoid organs including lymph nodes are composed of stromal cells that provide a structural environment for homeostasis, activation and ...

L’objectif global de cette procédure est d’isoler les cellules stromales des ganglions lymphatiques. Ceci est accompli en perturbant d’abord la capsule des ganglions lymphatiques. Dans la deuxième étape, les fragments de ganglions lymphatiques sont digérés avec la collagénase quatre et la D nase un.Les enzymes sont ensuite remplacées par la collagénase D et la D nase one, et les fragments sont désagrégés mécaniquement à l’aide d’une pipette multicanaux automatisée. En fin de compte, l’expression des molécules de surface cellulaire des cellules isolées des ganglions lymphatiques peut être caractérisée par cytométrie en flux. Le principal avantage de cette technique par rapport à la méthode existante est qu’avec cette méthode, les cellules SHR des ganglions lymphatiques sont digérées à l’aide d’une procédure enzymatique standardisée complétée par une désagrégation mécanique qui préserve la viabilité et l’expression des molécules de surface des cellules.Commencez par placer les ganglions lymphatiques disséqués dans une boîte de Pétri stérile contenant deux millilitres de milieu glacé. Ensuite, utilisez deux seringues d’un millilitre équipées d’aiguilles de calibre 25 pour perturber les capsules des ganglions lymphatiques. Ensuite, transférez le tissu perturbé dans un tube conique de cinq millilitres contenant 750 microlitres de milieu, complété par de la collagénase quatre et de l’ADN un et un agitateur magnétique.Placez ensuite le tube dans un bécher contenant de l’eau préchauffée à 37 degrés Celsius sur un agitateur magnétique et remuez les boues cellulaires à raison d’un tour par seconde pendant 30 minutes. Après avoir remué, laissez le fragment de ganglion lymphatique se déposer, puis retirez soigneusement le surnageant. Maintenant enrichi pour les cellules non stromales, transférez aux fragments de ganglions lymphatiques 750 microlitres de milieu frais, complété par la collagénase D et la collagénase D, puis remuez le tissu pendant cinq minutes supplémentaires à 37 degrés Celsius.Ensuite, à l’aide d’une pipette multicanaux automatisée, désagréger les fragments de tissu des ganglions lymphatiques dans un volume de 700 microlitres pendant 10 cycles à vitesse maximale, puis remuez à nouveau les fragments de tissu après 10 minutes. De plus, désagrégez les amas de tissus à l’aide de la pipette multicanaux automatisée pendant 99 cycles à vitesse maximale. Ajoutez ensuite 7,5 microlitres d’EDTA 0,5 molaire dans le tube et mélangez la suspension tissulaire pendant 99 cycles supplémentaires avec la pipette automatisée.Après le dernier cycle de désagrégation, ajoutez 750 microlitres de milieu à la solution cellulaire et filtrez les cellules à travers un treillis en nylon de 70 micromètres. Ensuite, granulez les cellules pendant cinq minutes à 1500 G et quatre degrés Celsius. Pour visualiser les populations de cellules stromales des ganglions lymphatiques par cytométrie en flux, colorez les échantillons de cellules appropriés avec un traqueur de morts vivants et les anticorps d’intérêt dans 100 microlitres de HBSS contenant 2 % de FCS pendant au moins 20 minutes à quatre degrés Celsius dans l’obscurité.Ensuite, lavez les cellules dans 500 microlitres de HBSS avec FCS et remettez-les en suspension. Les pastilles dans 100 microlitres de HBSS et de FCS font fonctionner les cellules sur un cytomètre en flux en excluant les cellules positives pour CD 45 afin d’exclure les cellules hématopoïétiques, puis la marche sur la population singulet vivante. Enfin, tracez GP 38 en fonction de CD 31 pour visualiser les cellules réticulaires de la zone T, les cellules endothéliales lymphatiques, les cellules endothéliales sanguines et les cellules doubles négatives.Populations cellulaires. Le nombre total de cellules récupérées après la digestion des sous-ensembles de cellules stromales des ganglions lymphatiques était légèrement plus élevé dans le protocole qui vient d’être démontré par rapport aux protocoles Link et Fletcher, démontrant que la viabilité des cellules stromales des ganglions lymphatiques après isolement par ce protocole est similaire à celle récupérée à l’aide des protocoles publiés. Les cellules réticulaires de la zone T et les cellules endothéliales lymphatiques isolées via ce protocole et les protocoles de liaison et de Fletcher ont été comparées pour l’expression de l’IAB CD un 40, d’un CD 80, d’un L un et d’un CD 40.L’expression des cinq molécules de surface était plus élevée lors de la digestion avec le protocole qui vient d’être démontré et le protocole de liaison pour les deux sous-ensembles de cellules stromales, ce qui suggère que la dégradation de certaines molécules de surface par la collagénase quatre et D est moins robuste qu’avec la collagénase p et l’espace DYS. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon d’isoler avec succès les quatre principales sous-populations de cellules du stroma des ganglions lymphatiques tout en préservant l’expression de plusieurs molécules de surface utiles pour leur caractérisation et leur analyse ultérieures.

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