Name: Slice It Hot: aiguë cerveau adulte trancher dans physiologique Température (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-10-30T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 46 s
Description: Découvrez une méthode simplifiée de préparation de tranches aiguës de cerveau à température physiologique pour l'électrophysiologie in vitro. Cette technique évite la perfusion intracardiaque et garantit une viabilité optimale des tissus.

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Nous tenons à souligner la contribution significative du Dr Shiwei Huang (Université nationale australienne) dans la validation de la méthode. De plus, nous tenons à remercier Mme Kasia Pietrajtis pour ses commentaires utiles concernant les cellules de Golgi et M. Vitaly Lerner pour les données expérimentales sur le cortex. Ce travail a été soutenu par PITN-GA-2009-238686 (CEREBNET), FP7-ICT (REALNET), ELSC et ISF.

Toutes les procédures expérimentales décrites dans ce protocole a été approuvé par le soin des animaux de l&#39;Université hébraïque et de l&#39;emploi Comité. 1. Préparation des solutions et des outils pour couper <ol><li> Préparer 1 litre de solution physiologique standard (SPS) contenant des ions décrites dans le Tableau 1. <ol><li> Préparer une solution mère contenant les sels à 10 fois la concentration finale à l&#39;avance dans une bouteille en verre de stockage rempli avec 1000 ml d&#39;eau déminéralisée (conductance de 0,055 S / cm). Ajouter sels (NaCl, KCl, KH 2 PO 4, et MgSO 4), et mélanger jusqu&#39;à dissolution complète. Conserver la solution d&#39;achat d&#39;actions à 4 ° C. </li><li> Ajouter la solution finale SPS, le jour de l&#39;expérience. Ajouter 100 ml de la solution mère à 700 ml d&#39;eau purifiée, dissoudre le glucose (3,6 g) et NaHCO 3 (2,18 g) en utilisant une barre d&#39;agitation magnétique, puis ajouter de l&#39;eau purifiée jusqu&#39;à 1 L. </li><li> Equilibrer les solutipar gazage avec 95% O 2/5% CO 2 pendant environ 20 min. Après cela, ajouter 2 ml de solution M CaCl 2 1. </li></ol></li><li> Assembler les outils suivants (figure 1). <ol><li> Préparez grands ciseaux ou un autre outil de décapitation, de petits ciseaux chirurgicaux pour l&#39;ouverture du crâne, une pince à pointe fine pour soulever le crâne d&#39;exposer le cerveau, un scalpel avec lame pour disséquer la partie souhaitée du cerveau à être tranchés et une petite spatule pour manipuler la parties du cerveau disséqués. </li><li> En outre, la préparation de petits morceaux de papier filtre pour éliminer l&#39;excès de liquide dans le cerveau, deux petites boîtes de Pétri pour le cerveau pour être disséqués dans deux verre de 500 ml béchers pour contenant de l&#39;eau chauffée purifié et SPS, et de la colle cyanoacrylate pour le collage du cerveau à la étape de tranchage. </li><li> Préparer une petite brosse pour la manipulation des tranches pendant le découpage et une pipette Pasteur en verre à large ouverture pour déplacer les tranches du bain de tranchage de la cha de récupérationmbre. Désinfecter les outils nécessaires pour empêcher la croissance des bactéries dans des bains chauds de tranche. En outre, utiliser des gants de laboratoire propres. </li></ol></li><li> Préparer une chambre de récupération de tranche submergé tel que décrit par Gibb et Edwards 15. De gaz sans interruption du SPS dans avec 95% O 2/5% de CO 2 et de garder à 36 ° C. Assurez-vous que le dégagement gazeux ne conduit pas à des petites bulles emprisonnées dans le bain qui pourrait endommager les tranches. </li><li> Chaud ~ 300 ml de la SPS à 36 ° C sur une plaque chauffante avec agitateur magnétique ou dans un bain d&#39;eau. Si une plaque de chauffage est utilisé, prendre soin d&#39;éviter la solution de surchauffe, ce qui peut entraîner des précipitations d&#39;ions. Dans le cas où il se produit, SPS frais chaudes au lieu du refroidissement de l&#39;ancien. </li><li> Apportez ~ 500 ml d&#39;eau purifiée à ébullition à l&#39;aide d&#39;une bouilloire électrique et, dans un bécher, mélanger 300 ml d&#39;eau froide avec à obtenir de l&#39;eau légèrement plus chaude que la température de tranchage. Utilisez cette réchauffé l&#39;eau purifiée au cours de la décapitation et utiliser le Remaition de l&#39;eau bouillante par la suite pour maintenir la température physiologique du bain de tranchage. </li><li> Anesthésier les souris par injection de 0,1 ml de pentobarbital (60 mg / ml) par voie intrapéritonéale. Après quelques minutes, vérifier que l&#39;animal ne répond pas aux pieds ou de la queue pincées fortes pour vérifier l&#39;absence de sensation. </li></ol> 2. Dissection du cerveau <ol><li> Décapiter la souris rapidement en coupant le cou avec les grands ciseaux près de l&#39;arrière du crâne, et laissez la tête tomber dans le bécher avec réchauffé l&#39;eau purifiée pour se rincer l&#39;excès de sang. </li><li> Exposer le foramen magnum dans le crâne dans les muscles du cou et de la peau, peut-être la suppression de plus de la nuque avec les petits ciseaux. </li><li> Tirez la peau sur le dessus du crâne pour être en mesure de voir clairement les sutures du crâne afin de guider ouverture du crâne. </li><li> Couper le crâne ouvert en insérant l&#39;extrémité inférieure des petits ciseaux à travers le foramen magnum et immédiatement les tournant versle côté latéral. Couper délicatement le long du bord latéral de l&#39;os pariétal jusqu&#39;à un emplacement derrière les yeux et la suture fronto-pariétal; puis, se tourner vers le centre du crâne et couper à travers la ligne médiane de l&#39;autre côté du crâne (voir la ligne verte en pointillés sur la figure 2A). </li><li> Utiliser pince fine pointe de, soulevez le crâne de l&#39;angle fronto-pariétal et tirez en diagonale et latéralement pour exposer le cerveau (voir flèche jaune en pointillés dans la figure 2A). Assurez-vous que le crâne est pas attachée à un os ou de la peau de la tête, de sorte que le cerveau va rester en place lorsque le crâne est levée. Dans le cas où le cerveau se déplace avec le crâne, utiliser les petits ciseaux pour enlever tout le tissu conjonctif entre le crâne et le cerveau. </li><li> Quand le cerveau est exposé, ne permettent pas le cerveau pour être sec. Ainsi, effectuez les étapes suivantes tout en gardant le crâne et le cerveau dans une boîte de Pétri remplie de réchauffé, gazés SPS. </li><li> Détachez la partie du cerveau utilisée pour eXperiment du reste du cerveau à l&#39;aide d&#39;un scalpel et d&#39;une spatule. En cas d&#39;utilisation du cervelet, se détacher du cerveau antérieur par une seule coupe à travers le mésencéphale et la protubérance (le long des lignes rouges dans les figures 2B-D) et le déplacer vers une petite boîte de Petri contenant fraîche, gazés SPS. </li><li> Retirez le tronc cérébral pour former une base droite et large pour le collage du cerveau à l&#39;étape de coupe lors du tranchage du cervelet dans le plan horizontal. Placer brièvement le cervelet sur une pièce humide de papier-filtre de sorte que le côté qui a été coupé à partir du cerveau antérieur est orientée vers le bas. <ol><li> Couper le tronc cérébral avec un scalpel pour former la base (comme indiqué par la ligne bleue dans la figure 2B), et retourner le cervelet à la SPS. Lorsque d&#39;autres plans de coupe sont nécessaires, couper le bloc de cervelet en conséquence (lignes bleu dans les figures 2C et D). </li></ol></li></ol> 3. Le découpage du cerveau <ol><li> Préparer la phase de coupe en vérifiant qu&#39;il est Dry, avant d&#39;appliquer une petite goutte de colle au milieu de la scène. </li><li> Soulevez le bloc de cerveau de la SPS aide d&#39;une spatule avec du bon côté, et enlever l&#39;excès de liquide dans le cerveau à l&#39;aide de petits morceaux de papier filtre. Puis, d&#39;un seul mouvement, faites glisser le cerveau de la spatule sur la goutte de colle sur la scène. </li><li> Pour éviter que le cerveau et le séchage de la colle à partir de l&#39;exécution sur les côtés du tissu, appliquer quelques gouttes de SPS avec une pipette Pasteur et placer l&#39;étape de découpe dans la chambre de coupe. Aligner le bloc de cerveau de sorte que les régions d&#39;intérêt (par exemple, le cortex cérébelleux) sont confrontés à la lame et donc seront soumis à moins de pression mécanique avant d&#39;être tranché. </li><li> Couper chaque tranche selon les instructions du fabricant tout gazage constamment le SPS dans la chambre de coupe ainsi que le maintien de la température à 34-37 ° C. Maintenir la température de la chambre de coupe à cette gamme en remplissant le externechambre al de la trancheuse avec de l&#39;eau purifiée chauffée et remplaçant l&#39;eau dès que la température descend trop bas. REMARQUE: Les paramètres de coupe doivent être expérimentalement trouvé pour chaque type de tissu et les neurones qui sont en cours d&#39;examen. Dans le cas de la Campden SMZ 700 trancheuse à lame en céramique et des cellules de Golgi cérébelleux, utiliser 0,75 mm amplitude de vibration de 65 Hz et une vitesse de 0,05 mm / s avançant; amplitude de neurones cérébelleux supérieur nucléaires et la fréquence (1 mm et 90 Hz, respectivement) et la vitesse plus lente d&#39;avance (0,01 à 0,02 mm / sec) est recommandé. Pour les deux Golgi et les neurones cérébelleux nucléaires, épaisseur de coupe doit être de 300 um. </li><li> Pendant le découpage, ne laissez pas les tranches de plier sur eux-mêmes. Pour éviter ceci, en les soutenant délicatement avec une brosse douce, de préférence de toucher la tranche que dans les régions qui ne sont pas d&#39;intérêt pour l&#39;expérience. Prenez soin d&#39;éviter la brosse de toucher la lame de vibratome; en particulier dans le cas des lames en céramique, même un contact légerpeut endommager la lame. </li><li> Déplacez chaque tranche de la chambre de coupe à une reprise / chambre de retenue en utilisant une large ouverture, pipette Pasteur en verre poli-le-feu. </li><li> Laissez les tranches de repos dans la chambre pendant au moins 1 heure avant de commencer l&#39;expérience. Cela permet à la dégradation des tissus et cellules endommagées ou mourir et se traduit par une surface de tranche propre ainsi. Au cours de la première heure, maintenir la température de la SPS dans la chambre dans la plage de 34 à 36 ° C; veiller à ce que les tranches ne sont pas touchés par les bulles d&#39;air qui peuvent endommager les tranches ou les faire flotter. </li></ol> 4. Expérience <ol><li> Après 1 heure, laissez la température de la chambre de récupération refroidir à température ambiante (17-25 ° C). Remarque: Il peut prolonger la période de temps pendant laquelle les tranches peuvent être utilisés en ralentissant la croissance des bactéries ainsi que le métabolisme cellulaire. Cette durée dépend de la région du cerveau et du type de cellule. Par exemple, certains types de cellules de Golgi se trouvent être en bonne santé dans des tranches8 heures après la coupe alors que d&#39;autres types durer seulement 6 heures. </li><li> Après 1 heure, est passé de la découpe, utilisez les tranches de diverses expériences électrophysiologiques. </li></ol>

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<li>Kirov, S. A., Sorra, K. E., Harris, K. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Slices+have+more+synapses+than+perfusion-fixed+hippocampus+from+both+young+and+mature+rats%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Slices have more synapses than perfusion-fixed hippocampus from both young and mature rats.</a> J. Neurosci. 19, 2876-2886 (1999).</li>
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<li>Tanaka, Y., Tanaka, Y., Furuta, T., Yanagawa, Y., Kaneko, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effects+of+cutting+solutions+on+the+viability+of+GABAergic+interneurons+in+cerebral+cortical+slices+of+adult+mice%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Methods%22%5BJournal%5D)">The effects of cutting solutions on the viability of GABAergic interneurons in cerebral cortical slices of adult mice.</a> J. Neurosci. Methods. 171, 181-125 (2008).</li>
</ol>

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Nous démontrons un procédé de préparation de coupes de cerveau de souris en aigus physiologique au lieu de la température de la glace. Il a été démontré 11 que la qualité des tranches obtenues dans des conditions de chaleur est supérieure par rapport à ceux qui sont préparés avec des conditions de froid, à condition que la lame à trancher a un minimum de vibrations verticales. Tranchage de la température physiologique peut éviter des artefacts physiologiques causés par la basse te...

Le but de la méthode présentée est d&#39;obtenir des tranches de cerveau aigus de haute qualité pour des expériences électrophysiologiques in vitro, en particulier lors de l&#39;utilisation adulte ou même des animaux anciens. La méthode de découpage cerveau aiguë, comme décrit par Skrede et Westgaard 1 en deux phrases élégantes, est devenu l&#39;un des fondements de la recherche en neurosciences modernes et est utilisé dans d&#39;innombrables variations dans le monde entier. La qualité des tranches est reflété dans le nombre de neurones par tranche de vie, la période de temps pendant laquelle les cellules gardent leurs propriétés électrophysiologiques et morphologiques ainsi que l&#39;intégrité du tissu. De plus, la durée maximale des enregistrements stables dépend de la qualité des tranches. Ainsi, le long des décennies, la méthode de découpage original a été développé par des groupes de recherche individuels pour améliorer la récupération de la tranche après la coupe 2-10, souvent par des modifications complexes de la composition de la coupe osolutions de récupération de r (telles que l&#39;ajout d&#39;ascorbate, de la thiourée ou même H 2 O 2) et de pré-perfusion intra-cardiaque de l&#39;animal avec des solutions physiologiques refroidi. Comme il a été récemment montré 11, température physiologique pendant le découpage semble être plus bénéfique que le refroidissement de la santé neuronale; l&#39;amélioration est la plus frappante lorsque l&#39;on travaille avec des adultes (2-8 mois) les rongeurs. Eviter les variations de température considérables empêche artefacts dus à des processus dépendant de la température dans les cellules, telles que la plasticité 13 et la cinétique des canaux ioniques 13,14. De tels changements pourraient influencer la tension de la membrane et de la signalisation intracellulaire de calcium, le seuil de pic, pic et forme. La méthode &quot;chaude&quot; de la tranche aiguë de préparation présenté ici est une procédure générale pour obtenir des tranches de cerveau aigus de haute qualité à partir de toutes les régions du cerveau, y compris le cervelet, le cortex et l&#39;hippocampe, le tronc cérébral noyaux 16 &lt;/ Sup&gt;, ainsi que le bulbe olfactif, à la fois chez les rats et les souris. En particulier, la procédure de découpe de la température physiologique nécessite que la lame de coupe vibre à peu près à l&#39;horizontale, et est sans défaut de structure. Cette précision pourrait ne pas être réalisable avec des modèles de trancheuses âgées; dans de tels cas, nous vous recommandons d&#39;effectuer la préparation de tranches dans des conditions de gel-froid comme la basse température semble rendre le tissu plus résistant aux dommages mécaniques, même si au prix d&#39;aberrations métaboliques.

<table><tbody><tr><td>Pentobarbital</td><td>CTS</td><td>170066</td><td>Concentration : 60 mg/ml dans une solution saline physiologique.</td></tr><tr><td>Gros ciseaux&nbsp ;</td><td>FST</td><td>14001-16</td><td>N’importe quel gros ciseau ou une guillotine avec des bords suffisamment tranchants peut être utilisé pour la décapitation.</td></tr><tr><td>Ciseaux à iris&nbsp ;</td><td>Prestige medical</td><td>48,148</td><td>N’importe quelles ciseaux à pointe fine peuvent être utilisées, à condition que les lames des ciseaux ne dépassent pas 1,5&#8211 ; 2 cm</td></tr><tr><td>Pince à pointe fine&nbsp ;</td><td>FST</td><td>11254-20</td><td></td></tr><tr><td>Scalpel&nbsp ;</td><td>FST</td><td>91003-12</td><td></td></tr><tr><td>Lame de scalpel #11</td><td>FST</td><td>10011-00</td><td></td></tr><tr><td>Petite spatule&nbsp ;</td><td>Fisher&nbsp ;</td><td>2350</td><td></td></tr><tr><td>Papier</td><td></td><td></td> filtre <td>N’importe quelle marque de laboratoire peut être utilisée.</td></tr><tr><td>Boîtes de Pétri</td><td>Duroplan</td><td>Z231509-1</td><td></td></tr><tr><td>Béchers en verre&nbsp ;</td><td>SCHOT</td><td>10022846</td><td></td></tr><tr><td>Pipette Pasteur</td><td>Marque Maple Leaf</td><td>14672-029</td><td></td></tr><tr><td>Super glue&nbsp ;</td><td>LOCTITE</td><td>4091361/1</td><td></td></tr><tr><td>Trancheuse</td><td>Campden</td><td>7000-smz</td><td></td></tr><tr><td>Lame à trancher en céramique</td><td>Campden</td><td>7550-1-C</td><td></td></tr><tr><td>Chauffage/agitateur</td><td></td><td></td> magnétique <td>Pour chauffer le SPS pour la procédure</td></tr><tr><td>Bouilloire</td><td></td><td></td> électrique <td>Pour chauffer l’eau pour le contrôle de la température</td></tr><tr><td>Chambre de récupération des tranches + unité de chauffage</td><td>Warner instruments</td><td>&nbsp ; BSC-HT +&nbsp ; BSC-BUW</td><td>Des modèles de construction artisanale peuvent également être utilisés.</td></tr><tr><td>Thermomètre</td><td></td><td></td><td>Pour la surveillance de la température SPS pendant la dissection et le tranchage</td></tr></tbody></table>

slice it hot: aiguë cerveau adulte trancher dans physiologique température

Slice It Hot: Acute Adult Brain Slicing in Physiological Temperature

Nous présentons ici un protocole de préparation des tranches de cerveau de courte durée. Cette procédure est un élément essentiel pour électrophysiologiques expériences de patch-clamp qui détermine en grande partie la qualité des résultats. Il a été démontré que l&#39;omission de l&#39;étape de refroidissement durant la procédure de coupe est bénéfique pour obtenir des tranches et des cellules saines, en particulier lorsque des structures cérébrales fortement myélinisées provenant d&#39;animaux adultes. Même si le mécanisme précis par lequel la température élevée favorise la santé de neurones ne peut être spéculé sur, il va de soi que, chaque fois que possible, la température à laquelle le découpage est effectué devrait être proche des conditions physiologiques pour éviter les artefacts liés à la température. Un autre avantage important de cette méthode est la simplicité de la procédure et donc le temps de préparation court. Dans la méthode illustrée souris adultes sont utilisés mais la même procédure peut être appliquée à des souris jeunes, ainsi que les rats. En outre, les cl de patch suivantsexpérience ampères est effectuée sur des tranches horizontales du cervelet, mais la même procédure peut également être utilisée dans d&#39;autres plans, ainsi que d&#39;autres zones postérieures du cerveau.

Tranches préparées de la manière décrite peut être utilisée pour diverses expériences électrophysiologiques et optogénétiques. Dans la figure 3A et 3C, nous montrons un exemple représentatif d'une tranche horizontale du cervelet et du cortex cérébral une tranche coronale, respectivement, vu sous interférence différentiel (DIC) optique. Dans la tranche cérébelleuse, plusieurs types de neurones cérébelleux peuvent être facilement reconnus par leur forme et emplacement cellulaire corps, ce...

Dans cet article, nous montrons une méthode de préparation de tranches cérébrales aiguës à température physiologique, en utilisant une solution physiologique conventionnelle sans modifications spéciales pour la coupe (comme l’ajout de saccharose) et sans perfusion intracardique de l’animal avant la préparation de la tranche.

Slice It Hot: aiguë cerveau adulte trancher dans physiologique Température

Here we present a protocol for preparation of acute brain slices. This procedure is a critical element for electrophysiological patch-clamp experiments ...

L’objectif global de cette procédure est de produire des coupes cérébrales aiguës de haute qualité. Ceci est accompli en extrayant d’abord le cerveau de l’animal. La deuxième étape consiste à disséquer la région cérébrale d’intérêt et à l’attacher à l’étape de tranchage tout en la gardant humide avec une solution de tranchage.Ensuite, le cerveau est immergé dans une solution de tranchage de température physiologique. La dernière étape est le tranchage viome du cerveau. En fin de compte, les tranches peuvent être utilisées dans diverses expériences électrophysiologiques in vitro.Le principal avantage de cette technique par rapport aux méthodes existantes comme le tranchage à froid glacé, est qu’elle est plus simple et produit des résultats supérieurs. En général, quiconque est nouveau dans cette méthode aura du mal car elle exige que toutes les étapes soient menées en douceur et rapidement sans retards inutiles. Nous avons eu l’idée de cette méthode pour la première fois lorsque nous avons eu besoin d’obtenir des tranches nucléaires cérébelleuses de haute qualité à partir d’animaux adultes.La méthode sera démontrée par Le Anri, étudiant dans notre laboratoire avant de commencer cett

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Nous décrivons ici une adaptation des protocoles utilisés pour induire la plasticité homéostatique dans les neurones de l'étude de la plasticité des G récepteurs couplés à la protéine astrocytaires. Récemment utilisé pour examiner les changements dans le groupe I mGluR astrocytes chez les souris jeunes, la méthode peut être appliquée pour mesurer l'échelle des différents RCPG astrocytaires, dans les tissus de souris adultes in situ et in vivo, et d'avoir une meilleure appréciation de la...

Induire la plasticité de Astrocytic récepteurs neuronaux par manipulation des taux de combustion

Ce protocole illustre l’implémentation d’un optimisé N-méthyl-D-glucamine (NMDG) méthode de recouvrement protecteur de préparation de tranches de cerveau. Une formulation unique de médias est utilisée pour obtenir fiable des tranches de cerveau sain provenant d’animaux de tout âge et pour diverses applications expérimentales.

Préparation de tranches de cerveau aiguë en utilisant un optimisé N-méthyl-D-glucamine méthode de recouvrement protecteur

Ce protocole décrit les étapes de procédure de base pour effectuer des cellules entières enregistrements de patch-clamp. Cette technique permet l'étude du comportement électrique des neurones, et lorsqu'elle est effectuée dans des tranches de cerveau, permet d'évaluer les différentes fonctions de neurones à partir de neurones qui sont encore intégrés dans des circuits du cerveau relativement bien conservées.

Recordings cellules entières Patch-clamp en tranches cérébrales

Les enregistrements de patch-clamp subcellulaires offrent la possibilité d’étudier les propriétés fonctionnelles des dendrites. Cependant, ces structures fines ne sont pas facilement accessibles en raison de leur petit diamètre. Le protocole décrit ici vise à faciliter la collecte d’enregistrements stables et fiables à partir des dendrites des neurones dopaminergiques en tranches in vitro.

Subcellulaires Recordings Patch-clamp du Domaine somato de nigrales Dopamine Neurones

La microglie, les résidents cellules immunitaires du cerveau, répondre rapidement avec des changements morphologiques aux modifications de leur environnement. Ce protocole décrit comment utiliser la microscopie biphotonique à étudier l’attraction des microglies processus vers la sérotonine ou l’ATP en tranches cérébrale aiguë des souris.

Two-photon Imaging d’Attraction des microglies processus vers l’ATP ou la sérotonine cérébrale aiguë tranches

Nous introduisons une méthode d'enregistrement optique reproductible et stable pour les tranches de cerveau à l'aide de colorant sensible à la tension. L'article décrit la coloration de colorant tension-sensible et l'enregistrement des signaux optiques utilisant les préparations conventionnelles de tranche hippocampal.

Enregistrement optique à grand champ à un seul photon dans des tranches de cerveau à l'aide de teinture sensible à la tension

Un protocole pour préparer les cultures de tranches flottantes à partir du cerveau humain adulte est présenté. Le protocole est une variante de la méthode de culture de tranches largement utilisée à l'aide d'inserts membranaires. Il est simple, rentable et recommandé pour les essais à court terme visant à démêler les mécanismes de neurodégénérescence derrière les maladies du cerveau associées à l'âge.

Cultures à court terme de tranches flottantes du cerveau humain adulte

Il s’agit d’un protocole pour la préparation des tranches aiguës de l’adulte et le vieillissement hippocampi souris qui tire parti de la perfusion transcardique et la coupe de tranches avec la glace-froid NMDG-aCSF pour réduire les dommages hypoxiques au tissu. Les tranches qui en résultent restent en bonne santé pendant de nombreuses heures et conviennent aux corrections à long terme et aux enregistrements sur le terrain.

Minimiser l’hypoxie dans les tranches hippocampales des souris adultes et vieillissantes

Ce protocole décrit la préparation des tranches horizontales de cortex hippocampal-entorhinal (HEC) des souris présentant l’activité spontanée d’ondulation d’onde forte. Les tranches sont incubées dans une chambre de rétention d’interface simplifiée et les enregistrements sont effectués dans des conditions submergées avec un fluide céphalo-rachidien artificiel à écoulement rapide pour favoriser l’oxygénation des tissus et l’émergence spontanée de l’activité au niveau du réseau.

Le cerveau aigu de souris tranche pour étudier l’activité spontanée de réseau hippocampal

Nous présentons un protocole pour préparer des tranches aiguës de l’hippocampe dorsale-intermédiaire des souris. Nous comparons cette préparation transversale avec le tranchage coronal en termes de qualité des enregistrements et de préservation des caractéristiques morphologiques des neurones enregistrés.

Préparation de tranches aiguës de l’hippocampe dorsal pour l’enregistrement des cellules entières et la reconstruction neuronale dans le gyrus bosselé de souris adultes

Découvrez une méthode simplifiée de préparation de tranches aiguës de cerveau à température physiologique pour l'électrophysiologie in vitro. Cette technique évite la perfusion intracardiaque et garantit une viabilité optimale des tissus.

Slice It Hot: aiguë cerveau adulte trancher dans physiologique Température

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