Name: Identification rapide des interactions chimiques génétiques dans Saccharomyces cerevisiae (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-04-05T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 13 s
Description: Découvrez une méthode économique pour identifier les interactions chimiques génétiques dans Saccharomyces cerevisiae. Cette approche permet de révéler les processus biologiques ciblés par des molécules spécifiques.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Recherche dans le laboratoire CJN est soutenu par des subventions de fonctionnement du CRSNG, l&#39;Institut de recherche Société canadienne du cancer (IRSCC), et la Fondation du cancer (Direction BC-Yukon) Canadian Breast.

NOTE: Le flux de travail général de cette procédure est décrite dans la figure 2. 1. Détermination de la croissance inhibitrice Dose <ol><li> Préparation de levure culture d&#39;une nuit NOTE: Les médias de croissance extrait de levure-peptone-dextrose (YEPD) utilisé dans ce protocole est une recette standard 13. <ol><li> Streak sur BY4741 (Δ1 leu2Δ0 met15Δ0 ura3Δ0 de Mata) cellules sur une plaque de gélose YEPD et incuber pendant 48 heures à 30 ° C ou jusqu&#39;à ce que des colonies visibles forment. </li><li> Préparer cultures d&#39;une nuit en inoculant 5 ml de YEPD milieux liquides dans un récipient de culture stérile avec une seule colonie. Incuber une nuit à 30 ° C avec rotation continue ou en secouant. La culture sera typiquement atteindre la saturation par le matin (~ 2 × 10 8 cellules / ml). </li></ol></li><li> Solide préparation des milieux agar contenant diverses doses chimiques <ol><li> Préparer plusieurs stocks dele produit chimique à tester à 100x la concentration finale souhaitée dans un solvant approprié. REMARQUE: Les concentrations efficaces dépendront de la chimie, et doivent être déterminées empiriquement. Il est donc conseillé de tester d&#39;abord une gamme de concentration finale de large; ce est à dire, d&#39;une faible uM à haute mM. </li><li> Pour chaque concentration de produit chimique à tester, aliquote de 3 ml de gélose YEPD fondu dans un tube de plusieurs culture stérile. Place à 55 ° C bain d&#39;eau pour garder de se solidifier. </li><li> Pour chaque concentration de produit chimique à tester ajouter 30 ul du composé à 100x milieu en fusion, vortex pour mélanger 2-3 secondes, et la pipette 1 ml dans chaque paire de puits en double dans une plaque à 12 puits. Veillez à inclure un véhicule seul contrôle. Permettre aux plaques de fixer pendant une nuit à température ambiante. Jeter ne importe quel média supplémentaire. </li></ol></li><li> cellules Spread placage <ol><li> Inoculer 10 ml de milieu liquide YEPD avec 2 ul d&#39;une culture de levure saturée, cultivées pendant une nuit comme dans l&#39;étape 1.1.2. </li><li> Plate 25 ul de la culture de levure diluée par puits, répartis uniformément en utilisant des billes de verre stériles ou tige, et permettent la plaque sécher sous une flamme. Incuber la plaque à 30 ° C pendant 48 heures. </li><li> Évaluer la croissance des levures (à la fois le nombre total et la taille des colonies) sur les plaques. Sélectionner une concentration sublétale d&#39;un composé qui ne inhibe pas la croissance de plus de 10% à 15% pour effectuer la totalité. </li></ol></li></ol> 2. Systematic crible génétique chimique <ol><li> Maintien de suppression-mutant-array (DMA) et la préparation de plaque source <ol><li> Pour une description détaillée sur la construction de réseaux de mutants suppression des stocks de glycérol se il vous plaît se référer à Baryshnikova et al. 14. Une fois que les mutants de deletion ont été revêtu à une densité de 384 colonies par plaque, la DMA peut être stocké pendant plusieurs mois à 4 ° C. Répliquer sur gélose YEPD contenant 200 ug / ml de G418 que nécessaire pour empêcher les colonies de se développer dans chaqueautre. Note: plusieurs répétitions de série devraient être évités pour prévenir la perte de souches à croissance lente et de minimiser l&#39;apparition de mutants suppresseurs. Ceci est particulièrement pertinent si le maintien des collections que haploïdes. </li><li> Effectuez toutes les étapes réplique placage utilisant un microbienne rangeant système robotique. Alternativement, manipuler colonies en utilisant des outils manuels d &#39;ancrage vêtu. NOTE: La collection de levure de suppression est disponible en haploïdes et diploïdes provenant de plusieurs sources commerciales et est généralement expédié en stocks de glycérol dans des plaques à 96 puits. </li></ol></li><li> Condenser le tableau suppression de mutant <ol><li> Préparer 250 ml de milieu de gélose YEPD contenant 200 ug / ml de G418. La concentration efficace de G418 peut varier et chaque lot doit être testé empiriquement. </li><li> Préparer cinq plaques de gélose YEPD en versant 50 ml d&#39;agar YEPD contenant 200 ug / ml de G418 par plaque. Pour ce faire, un jour avant la condensation du tableau et laisser les plaques refroidir à la température ambianterature nuit sur une surface plane. NOTE: Quatre plaques seront requis pour la collecte à une densité 1536-souche, la cinquième plaque est versé comme un supplément. </li><li> Retirer les 16 boîtes de Pétri contenant le mutant de deletion de collecte à une densité de 384 colonies par plaque et laisser revenir à la température ambiante (environ 1 heure). </li><li> Essuyez toute condensation qui se est formée sur le couvercle de chaque plaque en utilisant une tâche délicate essuyer. Ne pas le faire peut entraîner des gouttelettes d&#39;eau se dépose sur le tableau et la contamination croisée de mutants disposés. </li><li> L&#39;utilisation d&#39;un tableau épinglant robots microbienne, condenser la DMA d&#39;une densité de 384 colonies par plaque (16 boîtes de Pétri) à 1536 colonies par plaque (4 boîtes de Pétri). Effectuez cette sorte que le 1 er colonie de la plaque 1 pins à la ligne 1 colonne 1 du tableau condensé, le 1 er colonie de la plaque 2 à la ligne 1 colonne 2, le 1 er colonie de la plaque 3 à la ligne 2 et la colonne 1, et la colonie 1 er de la plaque 4 à la ligne 2colonne 2. </li><li> Incuber le tableau consolidé à 30 ° C pendant la nuit. </li><li> Examinez le tableau pour assurer un transfert uniforme de colonies à partir de plaques de source. Il y aura plusieurs positions vierges, à dessein incorporés dans la matrice, qui servent de guide pour assurer le DMA a été condensé correctement (figure 4A). NOTE: Il se agira des plaques de base pour des répliques sur des milieux contenant le composé d&#39;essai. Une plaque de source unique peut être utilisé pour plusieurs pinnings. Aussi de nombreux robots auront une fonction de compensation, ce qui assurera un nombre similaire de la levure sont transférés à chaque fois. </li></ol></li><li> plaque de gamme Replica suppression de mutant <ol><li> Préparez 700 ml de contrôle (véhicule seulement) et 700 ml de milieu expérimental (contenant de produits chimiques). Ce est suffisant pour la réalisation du test en trois exemplaires (12 plaques par condition, plus deux extras). </li><li> Verser 50 ml de gélose YEPD contenant lutte chimique ou par plaque test. Autoriser les plaques to refroidir à la température ambiante pendant une nuit sur une surface plane. </li><li> En utilisant le robot à la plaque de réplique, inoculer le DMA sur trois jeux de plaques contenant des produits chimiques à la concentration déterminée expérimentalement, ainsi que trois jeux de plaques contenant le contrôle du véhicule. Incuber les plaques à température ambiante pendant 24-48 h. </li></ol></li></ol> 3. Les plaques d&#39;imagerie et d&#39;analyse de données <ol><li> Retirer les plaques de l&#39;incubateur et leur permettre de revenir à température ambiante (~ 1 h) avant l&#39;imagerie. Cela permettra d&#39;éviter la formation de condensation en imagerie les plaques. </li><li> plaques d&#39;image au 24 et 48 h en enlevant le couvercle et placer face vers le bas sur un scanner à plat. Capturez des images à une résolution d&#39;au moins 300 dpi. Sinon, utilisez un appareil photo numérique pour capturer des images. Si faisant, place des plaques face vers le haut sur un fond sombre et retirez les couvercles à l&#39;image. NOTE: Le format de fichier et le positionnement des plaques dépendront sur le programme de quantification utilisée. </li&gt; <li> Effectuer la quantification et la comparaison de la taille des colonies de tableau en utilisant l&#39;un des nombreux programmes open source, y compris Balony 15, SGAtools 16 et 17 ScreenMill. </li></ol> 4. Validation de l&#39;écran NOTE: A ce stade, plusieurs mutants de suppressions de levure seront marquer une hypersensibilité à la substance chimique d&#39;intérêt. Ces interactions chimiques-génétiques doivent être validés prochaine de deux façons. D&#39;abord l&#39;identité des souches sensibles devrait être confirmée par PCR. En second lieu, la sensibilité chimique doit être reçu de façon indépendante. Décrit ci-dessous est un bref protocole pour effectuer des dosages de repérage pour valider hypersensibilité de la souche, une technique courante dans la levure biologie. <ol><li> Tués sur le souhaite (hypersensible) de la collection de mutants de deletion de la levure sur de la gélose YEPD contenant 200 ug / ml de G418. Incuber à 30 ° C jusqu&#39;à ce que des colonies se forment. Vérifier le génotype de la souche de diagnostic par PCR avec des amorces selon lale protocole du fabricant. </li><li> Inoculer 5 ml du liquide YEPD pour chaque souche et incuber une nuit à 30 ° C avec agitation ou rotation. </li><li> Mesurer 600 OD et diluer chaque souche à DO 600 = 1 en DH stérile 2 O. Ce sont maintenant les cultures de levure normalisées. </li><li> Distribuer 100 ul de normalisée levure de type sauvage (BY4741) la culture de bien A1 d&#39;une plaque de 96 puits. Distribuer 100 ul de jusqu&#39;à sept souches supplémentaires aux puits B1-H1. </li><li> Utilisez une pipette multicanaux pour distribuer 90 ul de dH 2 O stérile aux puits A2-H2 à A6-H6. Enfin, préparer une série de dilutions de 1:10 cultures de levures normalisées. Commencez par pipetage en série 10 ul de la colonne 1 à la colonne 2 avec une pipette multicanaux, et continuer à travers la plaque 96 puits jusqu&#39;à six dilutions sont faites (ce est à dire, 10 0 à 10 -5). </li><li> 5.2 Transfert ul de cultures de levure dilués dans une grille à l&#39;aide d&#39;un multicanalpipette sur YEPD milieux solides contenant chimique et la maîtrise du véhicule. Incuber les plaques à la température appropriée pour 24 à 48 h. </li><li> Inspectez plaques et de comparer la sensibilité de certains mutants aux produits chimiques (par rapport à BY4741 commande). plaques d&#39;image à 24 et 48 heures comme dans l&#39;étape 3.2. REMARQUE: Bien que l&#39;identification de plusieurs souches hypersensibles ontologies de gène apparenté ou fonctions prête confiance à la validité de l&#39;écran, la transformation d&#39;une souche de suppression hypersensible avec un plasmide contenant une copie de type sauvage du gène est nécessaire pour établir formellement qu&#39;un gène suppression d&#39;intérêt (et seconde mutations site pas cachés) provoque la sensibilité aux médicaments. </li></ol>

<ol><li>Giaever, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+profiling+of+the+Saccharomyces+cerevisiae+genome%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Functional profiling of the Saccharomyces cerevisiae genome.</a> Nature. 418, 387-391 (2002).</li>
<li>Winzeler, E. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+characterization+of+the+S.+cerevisiae+genome+by+gene+deletion+and+parallel+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Functional characterization of the S. cerevisiae genome by gene deletion and parallel analysis.</a> Science. 285, 901-906 (1999).</li>
<li>Breslow, D. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comprehensive+strategy+enabling+high-resolution+functional+analysis+of+the+yeast+genome%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Methods%22%5BJournal%5D)">A comprehensive strategy enabling high-resolution functional analysis of the yeast genome.</a> Nat Methods. 5, 711-718 (2008).</li>
<li>Li, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+exploration+of+essential+yeast+gene+function+with+temperature-sensitive+mutants%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Systematic exploration of essential yeast gene function with temperature-sensitive mutants.</a> Nat Biotechnol. 29, 361-367 (2011).</li>
<li>Costanzo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+genetic+landscape+of+a+cell%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The genetic landscape of a cell.</a> Science. 327, 425-431 (2010).</li>
<li>Parsons, A. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integration+of+chemical-genetic+and+genetic+interaction+data+links+bioactive+compounds+to+cellular+target+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Integration of chemical-genetic and genetic interaction data links bioactive compounds to cellular target pathways.</a> Nat Biotechnol. 22, 62-69 (2004).</li>
<li>Parsons, A. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Exploring+the+mode-of-action+of+bioactive+compounds+by+chemical-genetic+profiling+in+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Exploring the mode-of-action of bioactive compounds by chemical-genetic profiling in yeast.</a> Cell. 126, 611-625 (2006).</li>
<li>Hillenmeyer, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+chemical+genomic+portrait+of+yeast%3A+uncovering+a+phenotype+for+all+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">The chemical genomic portrait of yeast: uncovering a phenotype for all genes.</a> Science. 320, 362-365 (2008).</li>
<li>Hillenmeyer, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+analysis+of+genome-wide+fitness+data+in+yeast+reveals+novel+gene+function+and+drug+action%5BTitle%5D)+AND+%22Genome+Biol%22%5BJournal%5D)">Systematic analysis of genome-wide fitness data in yeast reveals novel gene function and drug action.</a> Genome Biol. 11, R30(2010).</li>
<li>Smith, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Competitive+genomic+screens+of+barcoded+yeast+libraries%5BTitle%5D)+AND+%22J+Vis+Exp%22%5BJournal%5D)">Competitive genomic screens of barcoded yeast libraries.</a> J Vis Exp. (54), (2011).</li>
<li>Bowie, D., Parvizi, P., Duncan, D., Nelson, C. J., Fyles, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical-genetic+identification+of+the+biochemical+targets+of+polyalkyl+guanidinium+biocides%5BTitle%5D)+AND+%22Organic+%26+Biomolecular+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Chemical-genetic identification of the biochemical targets of polyalkyl guanidinium biocides.</a> Organic & Biomolecular Chemistry. 11, 4359-4366 (2013).</li>
<li>Alamgir, M., Erukova, V., Jessulat, M., Azizi, A., Golshani, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical-genetic+profile+analysis+of+five+inhibitory+compounds+in+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Chem+Biol%22%5BJournal%5D)">Chemical-genetic profile analysis of five inhibitory compounds in yeast.</a> BMC Chem Biol. 10 (6), (2010).</li>
<li>Amberg, D. C., Burke, D., Strathern, J. N. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aAmberg%2C+DC+%22Cold+Spring+Harbor+Laboratory.+Methods+In+Yeast+Genetics%3A+A+Cold+Spring+Harbor+Laboratory+Course+Manual%22">Cold Spring Harbor Laboratory. Methods In Yeast Genetics: A Cold Spring Harbor Laboratory Course Manual</a>. , Cold Spring Harbor Laboratory Press. Cold Spring, NY. (2005).</li>
<li>Baryshnikova, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synthetic+genetic+array+%28SGA%29+analysis+in+Saccharomyces+cerevisiae+and+Schizosaccharomyces+pombe%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Synthetic genetic array (SGA) analysis in Saccharomyces cerevisiae and Schizosaccharomyces pombe.</a> Methods Enzymol. 470, 145-179 (2010).</li>
<li>Young, B. P., Loewen, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Balony%3A+a+software+package+for+analysis+of+data+generated+by+synthetic+genetic+array+experiments%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">Balony: a software package for analysis of data generated by synthetic genetic array experiments.</a> BMC Bioinformatics. 14, 354(2013).</li>
<li>Wagih, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((SGAtools%3A+one-stop+analysis+and+visualization+of+array-based+genetic+interaction+screens%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">SGAtools: one-stop analysis and visualization of array-based genetic interaction screens.</a> Nucleic Acids Res. 41, W591-W596 (2013).</li>
<li>Dittmar, J. C., Reid, R. J., Rothstein, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((ScreenMill%3A+a+freely+available+software+suite+for+growth+measurement%2C+analysis+and+visualization+of+high-throughput+screen+data%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">ScreenMill: a freely available software suite for growth measurement, analysis and visualization of high-throughput screen data.</a> BMC Bioinformatics. 11, 353(2010).</li>
<li>Longley, D. B., Harkin, D. P., Johnston, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((5-fluorouracil%3A+mechanisms+of+action+and+clinical+strategies%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Cancer%22%5BJournal%5D)">5-fluorouracil: mechanisms of action and clinical strategies.</a> Nat Rev Cancer. 3, 330-338 (2003).</li>
<li>Lum, P. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Discovering+modes+of+action+for+therapeutic+compounds+using+a+genome-wide+screen+of+yeast+heterozygotes%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Discovering modes of action for therapeutic compounds using a genome-wide screen of yeast heterozygotes.</a> Cell. 116, 121-137 (2004).</li>
<li>Toussaint, M., Conconi, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High-throughput+and+sensitive+assay+to+measure+yeast+cell+growth%3A+a+bench+protocol+for+testing+genotoxic+agents%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">High-throughput and sensitive assay to measure yeast cell growth: a bench protocol for testing genotoxic agents.</a> Nat Protoc. 1, 1922-1928 (2006).</li>
<li>Robinson, M. D., Grigull, J., Mohammad, N., Hughes, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FunSpec%3A+a+web-based+cluster+interpreter+for+yeast%5BTitle%5D)+AND+%22BMC+Bioinformatics%22%5BJournal%5D)">FunSpec: a web-based cluster interpreter for yeast.</a> BMC Bioinformatics. 3, 35(2002).</li>
<li>Huang da, W., Sherman, B. T., Lempicki, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Systematic+and+integrative+analysis+of+large+gene+lists+using+DAVID+bioinformatics+resources%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Systematic and integrative analysis of large gene lists using DAVID bioinformatics resources.</a> Nat Protoc. 4, 44-57 (2009).</li>
<li>Huang da, W., Sherman, B. T., Lempicki, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioinformatics+enrichment+tools%3A+paths+toward+the+comprehensive+functional+analysis+of+large+gene+lists%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Bioinformatics enrichment tools: paths toward the comprehensive functional analysis of large gene lists.</a> Nucleic Acids Res. 37, 1-13 (2009).</li>
<li>Hong, E. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+Ontology+annotations+at+SGD%3A+new+data+sources+and+annotation+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Res%22%5BJournal%5D)">Gene Ontology annotations at SGD: new data sources and annotation methods.</a> Nucleic Acids Res. 36, D577-D581 (2008).</li>
<li>Fang, F., Hoskins, J., Butler, J. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((5-fluorouracil+enhances+exosome-dependent+accumulation+of+polyadenylated+rRNAs%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">5-fluorouracil enhances exosome-dependent accumulation of polyadenylated rRNAs.</a> Mol Cell Biol. 24, 10766-10776 (2004).</li>
<li>Baba, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Construction+of+Escherichia+coli+K-12+in-frame%2C+single-gene+knockout+mutants%3A+the+Keio+collection%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Syst+Biol%22%5BJournal%5D)">Construction of Escherichia coli K-12 in-frame, single-gene knockout mutants: the Keio collection.</a> Mol Syst Biol. 2, 0008(2006).</li>
<li>Nichols, R. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Phenotypic+landscape+of+a+bacterial+cell%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Phenotypic landscape of a bacterial cell.</a> Cell. 144, 143-156 (2011).</li>
<li>Dai, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Probing+nucleosome+function%3A+a+highly+versatile+library+of+synthetic+histone+H3+and+H4+mutants%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Probing nucleosome function: a highly versatile library of synthetic histone H3 and H4 mutants.</a> Cell. 134, 1066-1078 (2008).</li>
</ol>

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Décrit ici est une approche pour générer des profils d&#39;interaction chimiques génétique. La méthode est simple: en comparant les tailles des colonies de chacune des souches dans des collections complètes de deletion de gène en présence et en absence d&#39;un produit chimique, tous les gènes nécessaires pour tolérer une insulte chimique sont identifiés. analyse de l&#39;enrichissement d&#39;annotation de la liste résultant de souches sensibles peut alors être utilisé pour fournir un aperçu d&#39;un mode d&#39;action d...

Les outils et les ressources disponibles dans l&#39;organisme modèle Saccharomyces cerevisiae génétiques ont permis à grande échelle de génomique fonctionnelle études qui fournissent collectivement un nouvel éclairage sur la façon dont les gènes fonctionnent comme des réseaux pour répondre aux exigences des systèmes biologiques. La pierre angulaire de ces outils a été la création en collaboration d&#39;un ensemble complet de délétions de gènes non-essentiels de tous les cadres de lecture ouverts dans la levure 1,2. Une observation frappante était que seulement environ 20% des gènes de levure sont nécessaires pour la viabilité lorsqu&#39;il est cultivé comme haploïdes dans des conditions de laboratoire standard. Cela met en évidence la capacité d&#39;une cellule à tampon contre les perturbations génomiques grâce à l&#39;utilisation des voies biologiques alternatives. Mutants génétiques qui sont viables individuellement, mais en combinaison mortelle, signalent les voies biologiques parallèles ou convergentes connectés et forment des réseaux d&#39;interactions génétiques qui décrivent la fonction biologique. Avec le développement de te conditionnelleallèles mpérature-sensibles et hypomorphic de gènes essentiels de la technologie n&#39;a pas été limité à l&#39;étude des gènes non essentiels 3,4. Ce concept a été appliqué à l&#39;échelle génomique produire une carte d&#39;interaction génétique impartiale illustrant comment les gènes impliqués dans les processus cellulaires similaires se regroupent 5. Perturbations chimiques des réseaux génétiques suppressions de gènes imiter (Figure 1) 6. Interrogation composés inhibiteurs de croissance contre une matrice haute densité de souches de suppression de l&#39;hypersensibilité identifie un profil d&#39;interaction chimique génétique, ce est à dire une liste de gènes qui est nécessaire pour tolérer le stress chimique. Comme les interactions génétiques, grands écrans de bibliothèques chimiques ont montré que les composés avec un mode similaire de se regroupent sept d&#39;action. Par conséquent, en établissant le profil d&#39;interaction chimique génétique d&#39;un composé du mode d&#39;action peut être déduite par comparaison avec large échelle interaction génétique génétique et chimique de synthèse datasets 8,9. Écrans chimiques génétique à grande échelle, où des dizaines de composés sont interrogés, ont été réalisées par des analyses de la concurrence de codes à barres. Dans cette approche, la collecte groupée des souches de suppression est cultivé en masse depuis plusieurs générations dans un petit volume de milieu contenant un produit chimique. Depuis chaque mutant de suppression recèle un code-barres génétique unique, la viabilité / croissance des mutants individuels au sein du pool de souches de suppression est suivi par microarray ou séquençage à haut débit 10. Inférer remise en forme en surveillant la taille des colonies de mutants physiquement disposés en réseau cultivés sur gélose solide contenant un composé bioactif est aussi une méthode efficace pour identifier les interactions chimiques-génétiques 11,12. Cette approche offre une alternative rentable au dépistage fondé sur la concurrence et est bien adapté pour le dosage de petites bibliothèques de produits chimiques.Décrite ici est une méthodologie simple pour produire une liste des interactions chimiques-génétiques dans S. cerevisiae qui ne repose pas sur les manipulations moléculaire ou d&#39;infrastructure biologie. Elle exige seulement une collection de levure de suppression, un appareil de brochage robotisé ou manuel, et librement disponibles des logiciels d&#39;analyse d&#39;images.

<table><tbody><tr><td>Extrait de levure</td><td>BioBasic</td><td>G0961</td><td>Pour les milieux liquides/solides YEPD, ajouter à 1 % de concentration finale (p/v)</td></tr><tr><td>Tyrptone Powder</td><td>BD Biosciences</td><td>211820</td><td>Pour les milieux liquides/solides YEPD, ajouter à 2 % de concentration finale (w/v)</td></tr><tr><td>Dextrose</td><td>Anachemia</td><td>31096-380</td><td>Pour les milieux liquides/solides YEPD, ajouter à 2 % de concentration finale (p/v) &#8212 ; Ne pas autoclave. Préparez une solution mère à 20 %, filtrez, stérilisez et ajoutez-la au média après l’autoclavage.</td></tr><tr><td>Agar A</td><td>Bio Basic</td><td>FB0010</td><td>Pour les milieux solides YEPD, ajouter à 2 % de concentration finale (p/v)</td></tr><tr><td>G418</td><td>A.G. Scientific Inc.</td><td>G-1033</td><td>Préparez 1 000x le stock à 200&nbsp ; mg/ml dans dH2O et filtrer la stérilisation.</td></tr><tr><td>Plaque 12 puits</td><td>Greiner Bio One</td><td>655180</td><td></td></tr><tr><td>5 ml Tubes de culture</td><td>Evergreen Scientific</td><td>222-2376-080</td><td></td></tr><tr><td>10 cm Boîte de Pétri</td><td>VWR</td><td>25384-302</td><td></td></tr><tr><td>ROTOR HDA</td><td>Singer Instruments&nbsp ;</td><td>ROT-001</td><td>robot d’épinglage à réseau microbien à haut débit</td></tr><tr><td>PLUSPLATE&copy ; Boîte de Pétri</td><td>Singer Instruments&nbsp ;</td><td>PLU-001</td><td>Boite de 200 plats</td></tr><tr><td>384 Short-Pin RePad</td><td>Singer Instruments&nbsp ;</td><td>RP-MP-384</td><td>Boite de 1 000 pads</td></tr><tr><td>1536 Short-Pin RePad</td><td>Singer Instruments&nbsp ;</td><td>RP-MP-1536</td><td>Boîte de 1 000 tampons</td></tr><tr><td colspan="4">Outils de goupillage alternatifs :</td></tr><tr><td>Entièrement automatisé Robtic Systems</td><td>S& P robotics</td><td>http://www.sprobotics.com</td><td>Plusieurs systèmes automatisés de manipulation de colonies, robotiques et d’imagination disponibles.</td></tr><tr><td>Outils d’épinglage manuels</td><td>V& P Scientific</td><td>http://www.vp-scientific.com</td><td>Outils et accessoires de réplication portables.</td></tr></tbody></table>

identification rapide des interactions chimiques génétiques dans<em&gt; saccharomyces cerevisiae</em

Rapid Identification of Chemical Genetic Interactions in Saccharomyces cerevisiae

Déterminer le mode d&#39;action des produits chimiques bioactifs est d&#39;intérêt pour un large éventail d&#39;universitaires, pharmaceutiques, et les scientifiques industriels. Saccharomyces cerevisiae, ou levure bourgeonnante, est un eucaryote modèle pour lequel une collection complète de ~ 6000 mutants de délétion du gène et gène essentiel hypomorphic mutants sont disponibles dans le commerce. Ces collections de mutants peuvent être utilisés pour détecter systématiquement des interactions chimiques de gènes, à savoir les gènes nécessaires pour tolérer un produit chimique. Cette information, à son tour, des rapports sur le mode d&#39;action probable du composé. Ici, nous décrivons un protocole pour l&#39;identification rapide des interactions chimiques-génétiques dans la levure bourgeonnante. Nous démontrons le procédé utilisant l&#39;agent chimiothérapeutique 5-fluorouracile (5-FU), qui possède un mécanisme bien défini de l&#39;action. Nos résultats montrent que l&#39;ARN nucléaire TRAMP exosomes réparation de l&#39;ADN et les enzymes sont nécessaires pour la prolifération en présence de 5-FU, qui est compatible avec m précédenteicroarray approches génétiques basés codes barres chimiques et la connaissance que le 5-FU néfaste à la fois l&#39;ARN et l&#39;ADN métabolisme. Les protocoles de validation requis de ces écrans à haut débit sont également décrits.

En tant que validation de cette approche nous avons effectué un écran d&#39;interaction chimique génétique représentant de l&#39;agent chimiothérapeutique 5-fluorouracile (5-FU) en suivant le protocole décrit ci-dessus. 5-FU est connu de perturber la thymidylate synthase, ainsi que le métabolisme de l&#39;ADN et de l&#39;ARN 18. Les interactions génétiques chimiques de 5-FU sont bien étudiés et ont été étudiés par des techniques de levure code à barres de puces à ADN en utilisant les deux collections de suppr...

Nous présentons ici une méthode rentable pour définir les interactions chimico-génétiques chez les levures bourgeonnantes. L’approche s’appuie sur des techniques fondamentales de biologie moléculaire de la levure et est bien adaptée à l’interrogation mécaniste de petites et moyennes collections de produits chimiques et d’autres environnements de milieux.

Identification rapide des interactions chimiques génétiques dans<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em

Determining the mode of action of bioactive chemicals is of interest to a broad range of academic, pharmaceutical, and industrial scientists. ...

L’objectif global de cette procédure est d’utiliser des cellules de levure pour trouver les processus biologiques ciblés par un produit chimique d’intérêt. Pour ce faire, il faut d’abord déterminer le profil dose-réponse d’un produit chimique pour la levure. La deuxième étape consiste à cultiver une collection complète de souches de gènes de levure sur une dose sublétale de produit chimique et sur une plaque de contrôle.Ensuite, les mutants de levure qui sont hypersensibles au produit chimique sont identifiés. Cette liste est analysée bio-informatiquement pour révéler tous les gènes nécessaires pour tolérer le produit chimique. La dernière étape consiste à effectuer une réplication biologique de l’expérience à faible débit.Cela valide toutes les interactions chimiques entre les gènes trouvées. En fin de compte, cette méthode de criblage génétique chimique à haut débit est utilisée pour montrer quels produits géniques et quelles voies biologiques sont utilisés pour tolérer le produit chimique d’intérêt. Le principal avantage de cette technique par rapport aux méthodes existantes telles que la croissance compétitive des mutants à code-barres en culture liquide est qu’aucune technique de biologie moléculaire n’est requise.Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la biologie chimique, telles que la façon dont une nouvelle petite molécule peut inhiber la croissance des cellules eucaryotes. Pour commencer, préparez une culture de levure pendant la nuit en striant BY 4 7 4 1 cellules sur une plaque A-Y-E-P-D et incubez pendant 48 heures à 30 degrés Celsius ou jusqu’à ce que des colonies visibles se forment. Lorsque les colonies sont prêtes.Préparez des cultures liquides pendant la nuit en prélevant une seule colonie et en inoculant cinq millilitres de milieu liquide YEPD dans un récipient stérile. Ensuite, incubez pendant la nuit à 30 degrés Celsius avec une rotation ou une agitation continue. Ensuite, préparez un milieu gélosé solide contenant diverses doses du produit chimique à tester.Pour ce faire. Tout d’abord, préparez plusieurs solutions mères du produit chimique d’intérêt à 100 fois la concentration finale dans un solvant approprié. Ensuite, pour chaque concentration à tester, aliquote trois millilitres de gélose YEPD fondue dans plusieurs tubes de culture stériles.Fondez les tubes contenant la gélose dans un bain-marie à 55 degrés Celsius pour éviter la solidification de la gélose. Maintenant, pour chaque concentration de produit chimique à tester à 13, la libération blanche du composé 100 x dans une aliquote de gélose tex fondue, le tube pendant deux à trois secondes pour mélanger puis pipeter un millilitre de chaque tube dans des puits en double dans une plaque de 12 mondes, laisser la plaque prendre toute la nuit à température ambiante. Le lendemain, inoculez 10 millilitres de milieu liquide YEPD avec deux microlitres de levure de levure saturée pendant la nuit.Ensuite, pipetez 25 microlitres de cette culture sur le produit chimique contenant de la gélose dans les puits de la plaque de 12 baleines et étalez-les uniformément à l’aide de billes de verre stériles ou d’une tige stérile. Laissez la plaque sécher à la flamme, puis incubez la plaque à 30 degrés Celsius pendant 48 heures. Une fois le temps d’incubation écoulé, évaluez le nombre total et la taille des colonies dans les puits.Identifiez une concentration sublétale de composé qui n’inhibe pas la croissance de plus de 10 à 15 % à utiliser dans l’écran. Maintenir le taux de mutant de délétion à une densité de 384 colonies par plaque en répliquant sur 16 plaques de gélose YEPD, contenant 200 microlitres par millilitre de G quatre 18. À l’aide d’un système robotique de mise en réseau microbienne ou d’outils d’épinglage manuel tous les trois mois.Conservez les plaques à quatre degrés Celsius jusqu’à ce que vous en ayez besoin. Préparez ensuite 250 millilitres de milieu gélosé YEPD avec la même concentration de G, quatre, 18 ou cinq plaques de gélose, et laissez-les refroidir toute la nuit à température ambiante sur une surface plane et uniforme. Retirez les plaques contenant la collection de mutants de délétion de l’entreposage à quatre degrés Celsius et laissez-les revenir à température ambiante.Utilisez une lingette délicate pour éliminer toute condensation qui s’est formée sur le couvercle de chaque plaque afin d’éviter que des gouttelettes d’eau ne se déposent sur le réseau et que la contamination croisée des mutants du réseau ne se produise. Demandez au robot d’épinglage de réseau microbien de condenser le réseau de mutants de délétion d’une densité de 384 colonies par plaque sur 16 boîtes de Pétri à 1 536 colonies par plaque sur quatre boîtes de Pétri. Après avoir incubé le réseau à 30 degrés Celsius pendant la nuit, examinez le réseau pour assurer un transfert uniforme des colonies à partir des plaques sources.Il y aura plusieurs positions vides incorporées dans le réseau, qui servent de guide pour que le réseau de mutants de délétion ait été correctement condensé. Il s’agira des plaques sources utilisées pour la réplication sur des supports contenant le composé qui vous intéresse. Une seule plaque source peut être utilisée pour plusieurs épinglages.De plus, de nombreux robots ont des caractéristiques de décalage qui permettront, ce qui garantira un nombre similaire de levures transférées à chaque fois. Pour mettre en place la réparation de la réplique du réseau de mutants par suppression de plaque, 700 millilitres de véhicule de contrôle uniquement et une gélose expérimentale YEPD contenant le produit chimique d’intérêt. C’est suffisant pour effectuer le dosage en trois exemplaires.Versez les assiettes à l’aide de l’agar de contrôle et expérimental. Ajouter 50 millilitres dans chaque assiette. Laissez les plaques refroidir à température ambiante pendant la nuit sur une surface plane et uniforme, en utilisant le robot pour reproduire une plaque.Inoculez le réseau de deux mutants sur trois ensembles de plaques contenant des produits chimiques à la concentration déterminée expérimentalement, ainsi que sur des réinitialisations de plaques contenant le contrôle du véhicule. Incuber les plaques sur la paillasse à température ambiante pour un total de 24 à 48 heures d’image. Les plaques ont une incubation de 24 et 48 heures en retirant le couvercle et en les plaçant face vers le bas sur un scanner à plat.Capturez des images à une résolution d’au moins 300 DPI. Vous pouvez également utiliser un appareil photo numérique pour capturer des images. Si vous le faites, placez les assiettes face vers le haut sur un fond sombre et retirez les couvercles pour imager.Ensuite, effectuez la quantification et la comparaison de la taille des colonies de réseaux à l’aide de l’un des nombreux programmes open source, y compris les outils SGA à billes et le broyeur à tamis. À ce stade, plusieurs mutants de délétion de levure seront considérés comme hypersensibles au produit chimique d’intérêt et sortiront les mutants hypersensibles souhaités de la collection de délétion de levure sur YEPD. Ager contenant 200 microgrammes par microlitre de G quatre 18 incuber à 30 degrés Celsius jusqu’à ce que des colonies se forment.Après avoir vérifié le génotype de la souche par PCR diagnostique et électrophorèse Agel, inoculez cinq millilitres de liquide YPD avec chaque souche et incubez pendant la nuit à 30 degrés Celsius avec rotation ou agitation. Mesurer la DO 600 de chaque culture et diluer chaque souche à une DO 600 d’une dans de l’eau distillée stérile. Ce sont maintenant les cultures de levure normalisées.Ensuite, distribuez 100 microlitres de type sauvage normalisé par 4 7 4 1 culture de levure dans le puits A d’une plaque de 96 puits distribuez 100 microlitres de jusqu’à sept souches supplémentaires dans les puits, B un à H un. Ensuite, distribuez 90 microlitres d’eau stérile dans les puits, de A deux à H deux à six à H six. Enfin, préparez une série de une à 10 dilutions de sculptures G normalisées.Commencez par pipeter en série 10 microlitres de la première à la deuxième colonne à l’aide d’une pipette multicanaux et continuez sur la plaque à 96 puits jusqu’à ce que six dilutions soient effectuées. Ensuite, utilisez la pipette multicanaux pour atteindre deux à cinq microlitres de cultures de levure diluées dans une grille sur des YEP D, des milieux solides contenant des produits chimiques et un contrôle de véhicule. Incuber les plaques à la température appropriée pendant 24 à 48 heures après l’incubation.Inspectez les plaques et comparez la sensibilité de certains mutants aux produits chimiques par rapport aux plaques d’image de contrôle BY 47 41 à 24 et 48 heures. Comme précédemment, les images suivantes montrent les résultats de la procédure de détermination de la concentration sous-inhibitrice du produit chimique. La première image montre la croissance d’une culture saturée de BY 4 7 4 1 diluée de un à 5 000 et plaquée sur des concentrations croissantes de cinq fluorouraciles.La concentration de 10 micromolaires est choisie comme dose inhibitrice sous-in. Cette image montre la courbe de croissance de cellules BY 4 7 41 dans des milieux liquides contenant cinq fluro uracile. Environ quatre fois 10 à quatre cellules ont été déposées en trois exemplaires et des concentrations croissantes de cinq densités fluoro-uraciles et optiques ont été mesurées toutes les 10 minutes pendant 22 heures.Encore une fois, on peut voir que la dose de 10 micromolaires est la dose inhibitrice de la sous-ine. Les images suivantes montrent les résultats d’une génétique chimique verte de cinq fluoro-uraciles. Ici, un réseau de mutants de délétion de S sachar visier répliqué sur une gélose YPD contenant 10 micromolaires cinq uraciles fluorés à droite et un contrôle DMSO à gauche est montré.Ce graphique montre les résultats de la génétique chimique verte, la croissance relative des mutants sur 10 micromolaires. Cinq uraciles fluorés par rapport au contrôle DMSO sont ordonnés par une position de rayon ici. La croissance relative des mutants sur 10 micromolaires, cinq flores uraciles par rapport au contrôle DMSO est ordonnée par rapport à la taille de la colonie.Un seuil de rapport inférieur à 0,8 est indiqué sur les deux graphiques. Cette image finale montre les résultats de trois tests de validation. Des dilutions en série de plusieurs souches mutantes isolées ont été cultivées sur le contrôle DMSO à gauche, 10 micromolaires, cinq fluoro UIL au centre et 0,015 % de méthylméthane sulfonate à droite.Lors de la tentative de cette procédure, il est important de s’assurer que vous travaillez avec une copie fiable de la matrice de mutants de délétion et de valider les résultats à l’aide d’une méthodologie indépendante telle que des tests de repérage de levure ou une dissection de tétrade de levure. Cette technique offre aux scientifiques dans le domaine de la recherche sur les petites molécules un moyen efficace d’explorer le mode d’action d’un composé à l’aide d’approches systémiques chez la levure bourgeonnante.

rapid-identification-chemical-genetic-interactions-saccharomyces

Research

Recherche

JoVE Journal

Biology

Biologie

Nous avons développé complètes, impartiales échelle du génome écrans à comprendre gène-médicament et les interactions gènes-environnement. Méthodes de dépistage de ces collections de mutants sont présentées.

Écrans concurrentiel des bibliothèques génomiques de levure Barcoded

Systématiques et à grande échelle de synthèse génétiques écrans d'interaction gène-gène (ou épistasie) peut être utilisé pour explorer la redondance génétique et la voie de la diaphonie. Ici, nous décrivons un haut débit quantitatif synthétique de la technologie génétique de dépistage tableau, appelé ESGA que nous avons développé pour élucider les relations épistatiques et l'exploration des réseaux d'interactions...

La cartographie des réseaux fonctionnels bactériens et voies de<em&gt; Escherichia Coli</em&gt; En utilisant des tableaux synthétiques génétiques

Dans cette vidéo, nous démontrons le test modifié à un hybride de levure, qui détecte plusieurs protéines interagissant avec l’ADN cible. Les cellules de levure transformées contiennent la séquence d’ADN cible en amont du gène rapporteur. De plus, ils expriment des protéines de facteur de transcription. Lorsque les protéines forment des complexes et se lient à l’ADN cible, le gène rapporteur est exprimé et peut être détecté par voie enzymatique.

Essai modifié levure-un hybride pour détecter les interactions entre le complexe protéique hétéromérique et l’ADN

Nous décrivons le clivage endogène de la chromatine couplé au séquençage à haut débit (ChEC-seq), une méthode orthogonale à l'immunoprécipitation à la chromatine (ChIP) pour cartographier les sites de liaison des protéines à l'échelle du génome avec des protéines de fusion à la nucléase micrococcie (MNase).

Cartographie génomique des interactions protéine-ADN avec ChEC-seq in<em&gt; Saccharomyces cerevisiae</em

Nous présentons un protocole simple suppresseur écran fission levure. Cette méthode est efficace, sans mutagène et sélective pour les mutations qui se produisent souvent à un seul locus génomique.  Le protocole est adapté pour isoler les suppresseurs qu’atténuer les défauts de croissance dans un milieu liquide qui sont causées par une mutation ou d’une drogue.

Un écran de suppresseur de Deep-séquençage-assisted, spontanée chez la levure Scissipare Schizosaccharomyces pombe

L'hémizygosité réciproque par le séquençage (RH-seq) est une nouvelle méthode puissante pour cartographier la base génétique d'une différence de trait entre les espèces. Les piscines d'hémizygotes sont générées par la mutagénèse transposon et leur condition physique est suivie par la croissance concurrentielle utilisant le séquençage de haut-tout. L'analyse des données obtenues identifie les gènes sous-jacents au trait.

Cartographie génétique des différences de thermotolérance entre les espèces de levure saccharomyces via Genome-Wide Reciprocal Hemizygosity Analysis

Les agents pathogènes bactériens sécrètent des protéines dans l'hôte qui ciblent des processus biologiques cruciaux. L'identification des voies d'accueil ciblées par les protéines effecteurs bactériens est essentielle pour lutter contre la pathogénie moléculaire. Ici, une méthode utilisant un suppresseur modifié de levure et un écran de toxicité pour élucider des voies d'hôte visées par les protéines bactériennes toxiques d'effecteur est décrite.

Identification des voies d'accueil ciblées par les protéines d'effetbactérieur à l'aide d'écrans de toxicité et de suppression de levures

Pour étudier les interactions chaperon-chaperon et chaperone-substrat, nous effectuons des écrans d’interaction synthétique chez Caenorhabditis elegans en utilisant l’interférence ARN en combinaison avec des mutations légères ou une sur-expression des chaperons et surveillons le dysfonctionnement protéique spécifique des tissus au niveau de l’organisme.

Utilisation de Caenorhabditis elegans pour dépister les interactions tissulaires spécifiques des chaperons

Ici, nous décrivons l’utilisation de Grafix (Gradient Fixation), une centrifugation de gradient de glycérol en présence d’un réticulateur, pour identifier les interactions entre les facteurs d’épissage qui se lient transitoirement au complexe d’épissage.

Utilisation de Grafix pour la détection des interacteurs transitoires des sous-complexes de Spliceosomes de Saccharomyces cerevisiae

Ce travail décrit un protocole pour un dépistage génétique suppresseur multicopie chez Schizosaccharomyces pombe. Ce criblage utilise une bibliothèque plasmidique pangénomique pour identifier le(s) clone(s) suppresseur(s) d’un phénotype de perte de fonction associé à une souche mutante de requête. De nouveaux suppresseurs génétiques du mutant nul ell1 ont été identifiés à l’aide de ce criblage.

Dépistage génétique pour l’identification des suppresseurs multicopies chez Schizosaccharomyces pombe

Les tests de capture de la boucle D (DLC) et d’extension de la boucle D (DLE) utilisent le principe de la ligature de proximité ainsi que la PCR quantitative pour quantifier la formation de la boucle D, l’extension de la boucle D et la formation de produits sur le site d’une rupture double brin inductible chez Saccharomyces cerevisiae.

Détection d’intermédiaires de recombinaison homologues par ligature de proximité et PCR quantitative chez Saccharomyces cerevisiae

Découvrez une méthode économique pour identifier les interactions chimiques génétiques dans Saccharomyces cerevisiae. Cette approche permet de révéler les processus biologiques ciblés par des molécules spécifiques.

Identification rapide des interactions chimiques génétiques dans

Explorer plus de vidéos