Name: Visualisation des Streptococcus pneumoniae Dans les microlésions cardiaques et le remodelage cardiaque ultérieur (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-04-07T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 25 s
Description: Découvrez une méthode de visualisation des microlésions cardiaques causées par Streptococcus pneumoniae chez la souris. Ce protocole permet d'étudier le remodelage cardiaque post-infection par immunofluorescence et histologie.

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Ce travail a été soutenu par la subvention 13IRG14560023 de l’American Heart Association et les subventions NIH AI078972 et HL108054 à CJO. Le soutien à AOB provenait du National Center for Advancing Translational Sciences du NIH ULTR001120 et de F31 A110417701.

NOTE: Toutes les expériences de souris ont été examinées et approuvées par l&#39;Institutional Animal Care et l&#39;utilisation des comités de l&#39;Université du Texas Health Science Center à San Antonio (protocole # 13032-34-01C). Les soins et protocoles expérimentaux adhéré à la Public Law 89-544 (Animal Welfare Act) et ses amendements, directives des services de santé publics, et le Guide pour les soins et l&#39;utilisation des animaux de laboratoire (US Department of Health and Human Services). 1. Infection <ol><li> Obtenir des souris BALB / c des deux sexes âgés de 10 à 12 semaines d&#39;âge. REMARQUE: S. pneumoniae sérotype 4 souche TIGR4 est un isolat clinique virulente qui a été séquencé 16. </li><li> TIGR4 croître dans le bouillon Todd-Hewitt à 37 ° C dans 5% de CO2 jusqu&#39;à atteindre une densité optique (DO) de 0,5 620 (correspondant à 1,0 x 10 8 unités formant des colonies [CFU / ml)]. Pellet la culture pneumococcique par centrifugation pendant 10 minutes à 3, 500 xg et retirer le surnageant en utilisant une ligne de vide. Suspension de bactéries et diluer avec une solution saline tamponnée au phosphate stérile (PBS) à une concentration finale de 1,0 x 10 4 cfu / ml. </li><li> L&#39;utilisation d&#39;une chambre d&#39;induction, anesthésier les souris avec 2,5% d&#39;isoflurane dans de l&#39;oxygène vaporisé. Confirmez état anesthésié par douce pincée d&#39;orteil avec des pincettes contondants. <ol><li> En tenant la souris anesthésiée par sa nuque et droit avec une main, injecter chaque souris par voie intrapéritonéale (ip) avec 100 pi de la S. pneumoniae suspension en utilisant une seringue avec une aiguille de calibre 27 à 30 (correspondant à une dose de 1,0 x 10 3 CFU de provocation). Placez le dos de la souris dans sa cage. Souris réveillent généralement 30-40 sec après l&#39;injection. </li></ol></li><li> Laisser l&#39;infection se dérouler pendant au moins 24 (début) ou 30 (avancé) h. <ol><li> Euthanasier les souris par asphyxie au CO2. Effectuer dislocation cervicale pour assurer la souris a décédée. L&#39;euthanasie est en outre confirmée par éliminationdu coeur à l&#39;étape 1.6. </li></ol></li><li> Désinfectez la queue avec un tampon imbibé d&#39;alcool et couper une section de 2-3 mm. Recueillir 2 ul de sang et le sang dilué en série 10 fois dans du PBS contenant de l&#39;héparine de sodium 1 U / ml à cinq reprises. Plate dilutions en série sur une plaque de gélose au sang de soja tryptique et incuber une nuit à 37 ° C dans 5% de CO 2. Le lendemain extrapoler à partir de la colonie compte le niveau de bactériémie. </li><li> Immobiliser la souris dans une position en décubitus dorsal sur une plate-forme chirurgicale. Pulvériser la poitrine avec 70% d&#39;éthanol et sécher. Avec des ciseaux et des pinces chirurgicales ouvrent la cavité thoracique, retirez la cage thoracique, et sectionner le diaphragme pour exposer le cœur et les poumons. L&#39;aide de ciseaux coupent les vaisseaux sanguins reliés au cœur et Accise doucement le coeur avec soin pour éviter des ecchymoses avec une pince. </li><li> Rincer le cœur avec du PBS et placer dans des spécimens de tissu de collecte de cassettes telles que des coupes coronales seraient obtenues pendant le sectionnement du tissu. Pour la paraffine, plaCE les cassettes dans 10% solution tamponnée-formol et le lendemain pour envoyer inclusion dans la paraffine. <ol><li> Alternativement gel flash utilisant octobre composé dans un cryomoule qui a été placé sur de la glace sèche. </li></ol></li></ol> 2. Visualisation des lésions cardiaques et les pneumocoques dans les lésions <ol><li> Couper sections cardiaques paraffine de sorte que les quatre chambres du coeur sont visibles dans chaque section de tissu. Couper diapositives à une épaisseur de 5 um. </li><li> Déparaffiner et taches diapositives avec hématoxyline &amp; éosine (H &amp; E) en utilisant des méthodes standard 17. </li><li> Voir H &amp; E colorées sections cardiaques en utilisant un microscope optique à basse (100X, 200X) et haute (immersion d&#39;huile: 400X, 1,000X) grossissements. Caractériser les coeurs de la présence de microlésions dans le myocarde. Ici, acquérir H &amp; E des images en utilisant un microscope Zeiss Axioskop 2 équipé d&#39;un objectif numérique 100X 1.3 ouverture Plan-Neofluar. NOTE: À stades précoces l cardiaqueesions sont discriminés par leur différentiel apparence colorée et dans certains cas, la présence de cellules immunitaires (monocytes et granulocytes) ce qui semble être les monocytes. Dans les lésions avancées, en particulier ceux observés à 30 h, les cellules immunitaires sont des lésions des vacuoles comme absents et grands sont observés à leur place. Il est important de noter que si l&#39;afflux des cellules immunitaires au cours des stades précoces du développement de lésion cardiaque peut se produire, il ne semble pas être une exigence. </li></ol> 3. immunofluorescence Microscopie pour les pneumocoques dans les microlésions <ol><li> Section cœur cryomoules avec microtome sur une épaisseur de 5 sections de um et placer sur des lames de verre chargées positivement. Permettre aux sections cardiaques décongeler et l&#39;air sec. Fixer les sections pendant 10 minutes dans 10% de formaline tamponnée neutre (pH 6.8 à 7.2 à 25 ° C). </li><li> Laver les lames (3x) dans du PBS pendant 5 min, perméabiliser pendant 15 min dans 0,2% de Triton X-100 dans du PBS, puis laver à nouveau dans du PBS. </li><li> secti de tissus de bloc<html> sur sur des lames avec 10% de sérum de chèvre dans du PBS pendant 1 heure. </li><li> Rincer les lames avec du PBS, couvrir et laisser incuber sections cardiaques de lapin anti-pneumocoque de sérotype 4 antisérum au 1: 1000 dans du PBS avec du sérum de chèvre 10% pendant 2 heures à 37 ° C. NOTE: Pour les contrôles négatifs enquêteurs doivent utiliser naïve antisérum de lapin </li><li> Après lavage avec du PBS, couvrir et incuber les sections avec 10% de sérum de chèvre-PBS avec de chèvre anti-anticorps de lapin conjugué à FITC à 1: 2000 pendant 30 min à 37 ° C. </li><li> Suivant les instructions du fabricant, utiliser DAPI (4 &#39;, 6 Diamidino-2-phénylindole) à 5 mg / ml pour la visualisation des noyaux eucaryotes. Laver et monter les coupes de tissus avec FluorSave. </li><li> Acquérir des images fluorescentes en utilisant un système de microscope confocal à un grossissement à la fois basse et haute. Réglez l&#39;ouverture numérique en conséquence pour obtenir des résultats optimaux. Ici, acquérir des images fluorescentes en utilisant un système confocal avec un objectif d&#39;ouverture numérique 1,42 60X. </li></ol>&quot;&gt; 4. Antibiotique sauvetage de souris septique <ol><li> Commencez avec des souris infectées par ip 1,0 x 10 3 UFC de TIGR4 comme indiqué précédemment à l&#39;étape 1. </li><li> À partir de 30 h après l&#39;infection, administrer pharmaceutique ampicilline grade ip (80 mg / kg de poids corporel) dans 100 pi de solution saline toutes les 12 heures pendant 36 heures. Recueillir les cœurs au point de temps désiré et procédé tel que décrit dans l&#39;étape 1.6 pour inclusion dans la paraffine et le tissu, la coupe. </li></ol> 5. Le dépôt de collagène de détection <ol><li> Utilisation de xylène et lavages d&#39;alcool classés avec des sections de l&#39;eau désionisée, Déparaffiner et de tissus d&#39;hydrate utilisant des méthodes standards 17. Traiter sections avec de l&#39;acide aqueuse à 0,2% phosphomolybdique pendant 5 minutes et rincer à l&#39;eau déminéralisée pendant 5 min. </li><li> sections de tache avec 0,1% Sirius Rouge dans l&#39;acide picrique pendant 2 heures à la température ambiante. </li><li> Laver les coupes dans acide chlorhydrique 0,01 N pendant 3 minutes et rincer à l&#39;aide de 70% d&#39;éthanol pendant 1 min. </li><li> DehydraTe les sections utilisant le identiques, mais afin de lavages à celle décrite au paragraphe 5.1 inverser, déshydrater sections cardiaques à augmenter et les concentrations d&#39;éthanol gradué puis xylène. </li><li> Coupes de tissus Mont avec une solution de montage pour évaluation microscopique. </li><li> Pour identifier les régions du dépôt de collagène, d&#39;examiner des coupes de tissus colorés pour les zones de coloration de lecture profonde sous grossissement basse et haute en utilisant un microscope optique. Toute zone dans les ventricules du cœur qui est rouge est une zone où le collagène a été déposé. Les zones sans cette tache rouge sont des sites de tissus sains qui ne ont pas le dépôt de collagène. Ici, acquérir Picro Sirius Red images colorées en utilisant un microscope équipé d&#39;un objectif d&#39;ouverture numérique 20X 0,5. REMARQUE: Les taches rouges atrium dans les tissus sains. </li></ol>

<ol><li>Corrales-Medina, V. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+complications+in+patients+with+community-acquired+pneumonia%3A+incidence%2C+timing%2C+risk+factors%2C+and+association+with+short-term+mortality%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Cardiac complications in patients with community-acquired pneumonia: incidence, timing, risk factors, and association with short-term mortality.</a> Circulation. 125, 773-781 (2012).</li>
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<li>Tettelin, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Complete+genome+sequence+of+a+virulent+isolate+of+Streptococcus+pneumoniae%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Complete genome sequence of a virulent isolate of Streptococcus pneumoniae.</a> Science. 293, 498-506 (2001).</li>
<li>Fischer, A. H., Jacobson, K. A., Rose, J., Zeller, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematoxylin+and+eosin+staining+of+tissue+and+cell+sections%5BTitle%5D)+AND+%22CSH+Protoc%22%5BJournal%5D)">Hematoxylin and eosin staining of tissue and cell sections.</a> CSH Protoc. 2008, (2008).</li>
</ol>

Les auteurs ne déclarent aucun conflit d’intérêts dans cette étude.

Dans ce rapport, une méthode hautement reproductible pour induire S. pneumoniae médiée microlésions cardiaques chez des souris au cours IPD et les techniques pour leur visualisation est démontrée. Les souris sont infectées avec une dose de bactéries qui dépasse le seuil du système immunitaire pour le dédouanement, conduisant à une bactériémie de haute qualité, similaire à celle qui se produit pendant le sepsis humain, et conduit à la translocation bactérienne éventuelle dans le myocarde. Pour des raisons encore...

L&#39;hospitalisation des adultes pour la pneumonie communautaire (PAC) comporte un risque documentée d&#39;événements cardiaques indésirables qui contribue à la mortalité 1-4. Dans une étude récente de Corrales-Medina et al. Complications cardiaques ont été trouvés à être associé et / ou responsables de 27% des décès par pneumonie associée à trois. Streptococcus pneumoniae (pneumocoque), la cause la plus commune de la PAC et de la septicémie 5, a été directement associé à des événements cardiaques indésirables dans autant que 19% des patients adultes admis 6. Événements cardiaques indésirables associés à la pneumonie comprennent l&#39;insuffisance nouvelle ou aggravée cardiaque congestive, arythmies, l&#39;infarctus du myocarde et par ordre de fréquence décroissante 6. Dans un article récent PLoS Pathogens par Brown et al., S. pneumoniae a été trouvé être capable de translocation à travers l&#39;endothélium vasculaire cardiaque, l&#39;entrée dans la myocardium, et la formation de lésions microscopiques non purulentes discrètes (microlésions) remplis de bactéries dans les ventricules cours de la maladie invasive à pneumocoque (IIP) 7. Preuve de la formation de microlesion cardiaque a été observée dans les échantillons cardiaques à partir des primates non humains et les personnes qui avaient succombé à l&#39;infection pneumococcique. De même, les souris infectés expérimentalement reproductible développés microlésions cardiaques. Chez les souris, la taille et le nombre de microlesion était positivement corrélée avec la durée et la gravité de la bactériémie, les niveaux de troponine cardiaque dans le sérum et l&#39;électrophysiologie cardiaque aberrante. Translocation bactérienne dans le cœur a été trouvé à se produire à travers les mêmes mécanismes responsables de la translocation du pneumocoque à travers la barrière hémato-encéphalique et le développement de la méningite à pneumocoques, ce est à dire, la protéine de liaison à la choline Une invasion médiée par des cellules endothéliales vasculaires dans un récepteur de la laminine et des plaquettes activant le récepteur du facteur manière dépendante 8. Microlesformation d&#39;ions également nécessaire la pneumolysine pneumococcique toxine porogène qui a été trouvé pour tuer les cardiomyocytes 7. Microlésions cardiaques pneumocoques sont distinctes de la purulente des tissus mous et des abcès cardiaques qui sont causées par d&#39;autres bactéries Gram-positives, y compris Staphylococcus aureus. Ceux-ci sont caractérisés par un seul des foyers de bactéries entourées par les neutrophiles et les dépôts de fibrine 9,10. Microlésions formé par S. pneumoniae sont de plus petite taille, répartis dans un cœur touché, et manquent des infiltrats de cellules immunitaires. Au cours des premiers stades de l&#39;infection, microlésions provoquées par S. pneumoniae apparaissent comme des zones de tissus endommagés ou enflammée rappelle les signes pathologiques de la cardiomyopathie. Certains monocytes peuvent être observés pendant cette période, mais leur présence est de courte durée et des lésions nécrotiques devenir rapidement en apparence et rempli de bactéries tout en continuant à grow taille jusqu&#39;à la mort de l&#39;animal ou de l&#39;intervention antimicrobienne. Il est important, dans les 3 jours d&#39;intervention antibiotique, profuse infiltration de cellules immunitaires est observée à l&#39;ancien site de la lésion et cela est accompagné par le dépôt de collagène robuste. Remodelage cardiaque similaire a été signalé à se produire suite à un infarctus le long avec des conséquences durables sur la fonction cardiaque 11-15. Ainsi, microlésions sont une explication possible pour les événements cardiaques indésirables qui se produisent pendant IPD et éventuellement l&#39;augmentation de l&#39;incidence de la mortalité cardiaque chez les personnes liées de convalescence qui ont survécu à l&#39;épisode de la maladie. Ici, l&#39;enseignement est dispensé sur le modèle expérimental chez la souris des IPD et la formation de la lésion cardiaque et la visualisation des microlésions cardiaques au début et à la fin stades de l&#39;infection. Le protocole pour la détection de dépôts de collagène chez les animaux qui ont été sauvées par la antimicrobien est démontrée. Le but de cet article est de faciliter la recherche d&#39;autres enquêteurs sur cette importante et nouvelle pathologie pneumocoque.

<table><tbody><tr><td>Bouillon Todd-Hewitt&nbsp ;</td><td>Composé Neogen</td><td>7161A</td><td></td></tr><tr><td>O.C.T.</td><td>Tissue-Tek (Sakura Finetek)&nbsp ;</td><td>4583</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100&nbsp ;</td><td>Fisher Scientific (Acros)</td><td>9002-93-1</td><td></td></tr><tr><td>Sérum de chèvre normal</td><td>Abcam</td><td>ab7481</td><td></td></tr><tr><td>antisérotype 4 antisérum contre le pneumocoque&nbsp ;</td><td>Statens Serum Institut</td><td>16747</td><td></td></tr><tr><td>chèvre anti-lapin FITC anticorps conjugué</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>111-096-144</td><td></td></tr><tr><td>DAPI</td><td>Invitrogen</td><td>D1306</td><td></td></tr><tr><td>Fluorsave</td><td>Millipore</td><td>345789</td><td></td></tr><tr><td>Permount</td><td>Fisher Scientific</td><td>S70104</td><td></td></tr><tr><td>Ampicilline</td><td>Sigma</td><td>A9393</td><td></td></tr><tr><td>Acide phosphomolybdique 0,2 %</td><td>Microscopie électronique Sciences</td><td>26357-01</td><td></td></tr><tr><td>0,1 % Rouge Sirius dans de l’acide picrique&nbsp ;</td><td>Microscopie électronique Sciences</td><td>26357-02</td><td></td></tr><tr><td>0,01 N acide chlorhydrique&nbsp ;</td><td>Microscopie électronique Sciences</td><td>26357-03</td><td></td></tr><tr><td>Lames de microscope Tissue Tack</td><td>Polysciences, Inc</td><td>24216</td><td></td></tr><tr><td>Paralube Vet Ointment</td><td>Dechra</td><td>12920060</td><td></td></tr><tr><td>Kit de coloration à l’hématoxyline et à l’éosine</td><td>non spécifié&nbsp ;</td><td></td><td>standard</td></tr></tbody></table>

visualisation des<em&gt; streptococcus pneumoniae</em&gt; dans les microlésions cardiaques et le remodelage cardiaque ultérieur

Visualization of Streptococcus pneumoniae within Cardiac Microlesions and Subsequent Cardiac Remodeling

Au cours de la bactériémie à Streptococcus pneumoniae peut déplacer à travers l&#39;endothélium vasculaire dans le myocarde et former bactéries remplis lésions microscopiques discrets (microlésions) qui sont remarquables en raison de l&#39;absence d&#39;infiltration de cellules immunitaires. En raison de leur libération de produits cardiotoxiques, S. pneumoniae dans les microlésions sont pensés pour contribuer à l&#39;insuffisance cardiaque qui est fréquemment observée au cours de la maladie invasive à pneumocoques chez les adultes fulminate. Ici, on fait preuve d&#39;un protocole pour l&#39;infection expérimentale de la souris qui conduit à la formation de reproductibles microlesion cardiaque dans les 30 heures. L&#39;enseignement est dispensé sur l&#39;identification des microlesion dans hématoxyline &amp; éosine sections cardiaques colorées et les distinctions morphologiques entre microlésions début et la fin sont mis en évidence. Instruction est prévu sur un protocole de vérification de S. pneumoniae dans les microlésions utilisant des anticorps contre le pneumocoque et le polysaccharide capsulairemicroscopie immunofluorescence. Enfin, un protocole d&#39;intervention antibiotique qui sauve souris infectées et pour la détection et l&#39;évaluation de la formation de cicatrices dans les cœurs de souris convalescence est fourni. Ensemble, ces protocoles seront faciliter les enquêtes sur les mécanismes moléculaires sous-jacents invasion cardiaque à pneumocoques, la mort des cardiomyocytes, le remodelage cardiaque à la suite d&#39;une exposition à S. pneumoniae, et la réponse immunitaire à la pneumocoques dans le cœur.

Visualisation des microlésions par H &amp; E Microlésions cardiaques ont été observés dans les ventricules de H &amp; E colorées sections cardiaques de souris avec IPD après leur défi ip avec TIGR4. La figure 1 montre l&#39;augmentation de la taille de ces lésions entre post-infection 24 et 30 h (HPI), avec une plus grande nombre de hématoxyline -stained (c.-à-bleu-violet) pneumocoques visible au sein de la lésion. Microlésions sont caractérisées par une mo...

<classe p = 'jove_content'>Streptococcus pneumoniae forme des lésions microscopiques discrètes non purulentes dans le cœur. Le protocole pour un modèle murin de formation de microlésions cardiaques est décrit. Des instructions sont fournies sur la visualisation des microlésions à l’aide de la microscopie, la discrimination entre les microlésions précoces et tardives et les méthodes de détection du remodelage cardiaque dans le cœur des animaux convalescents.

Visualisation des<em&gt; Streptococcus pneumoniae</em&gt; Dans les microlésions cardiaques et le remodelage cardiaque ultérieur

During bacteremia Streptococcus pneumoniae can translocate across the vascular endothelium into the myocardium and form discrete bacteria-filled ...

L'objectif général de l'expérience suivante est de démontrer un protocole reproductible de formation de micro-lésions cardiaques induites par ESMO au sein du cœur de souris infectées. Ceci est réalisé en infectant des souris avec ESMO et en permettant le développement d'une bactériémie, ce qui donne aux bactéries accès à la vascularisation cardiaque où elles peuvent envahir le myocarde et former des lésions microscopiques. Ensuite, les cœurs sont soit inclus dans du paraffin et colorés de manière conventionnelle, soit fixés dans un composé OCT pour une coloration en immunofluorescence.L'évaluation des coupes colorées peut révéler des micro-lésions cardiaques réparties de manière aléatoire dans le myocarde, des dépôts de collagène et des sections de myocarde en phase de convalescence, ainsi que des capsules pneumococciques au sein des micro-lésions cardiaques, illustrant ainsi la procédure. Armand Brown est-il étudiant diplômant dans mon laboratoire ? Bien que cette méthode puisse fournir des informations sur les effets cardiaques délétères de S. pneumoniae lors de maladies pneumococciques invasives chez la souris.Il peut également être appliqué à des échantillons cardiaques provenant d'autres systèmes, tels que les primates non humains ou les humains. Commencez par cultiver la souche de sérotype quatre ESMO Tiger quatre dans un bouillon Todd Hewitt jusqu'à une densité optique de 0,5 à 620 nanomètres. Lorsque la densité correcte est atteinte, centrifugez la culture à 3 500 ×g pendant 10 minutes.Ensuite, éliminer le surnageant à l’aide d’une ligne de vide et resuspendre les bactéries dans du PBS stérile à 10 000 unités formant colonies par millilitre. Anesthésier maintenant des souris valve C âgées de 10 à 12 semaines et confirmer leur état d’anesthésie à l’aide d’une légère pincée du orteil effectuée avec une pince à épiler émoussée, charger une seringue lotus avec la suspension bactérienne et fixer une aiguille de calibre 27 à 30. Saisir ensuite une souris anesthésiée par la peau du cou avec une main tout en injectant intrapéritonéalement 100 microlitres de suspension à l’aide de l’autre main, puis replacer chaque souris dans sa cage.Les souris se réveillent généralement entre 30 et 40 secondes après l'injection. Il est essentiel de bien doser S pneumoniae, sans quoi les souris peuvent récupérer de l'infection ou évoluer trop rapidement vers une maladie pneumococcique invasive, empêchant ainsi le développement de lésions. Étant donné que chaque souche bactérienne présente des niveaux différents de virulence, plusieurs essais peuvent être nécessaires pour déterminer la dose appropriée.Laisser l'infection évoluer pendant au moins 24 heures pour un stade précoce ou pendant 30 heures pour un stade avancé. Ensuite, euthanasier chaque souris infectée. Prélever d'abord un échantillon de sang, désinfecter la queue avec un coton-tige imbibé d'alcool et couper une section de deux à trois millimètres.Prélevez deux microlitres de sang sur le site de la coupure. Diluez le sang successivement d’un facteur dix dans du PBS contenant de l’héparine sodique à une unité par millilitre. Ensemencez cinq niveaux de dilution sur des boîtes de gélose au sang au soja triptyque, puis incubez-les toute la nuit.Le lendemain, effectuez le dénombrement des colonies. Procédez à la récolte du cœur comme décrit dans la section suivante. Sinon, 30 heures après l'infection.Tenter de sauver la souris en administrant de l'ampicilline par voie intrapéritonéale dans 100 microlitres de sérum physiologique. Continuer à administrer l'ampicilline toutes les 12 heures pendant 36 heures et prélever les cœurs aux moments souhaités. Premièrement, récolter le cœur.Immobilisez la souris euthanasiée en position dorsale sur une plateforme chirurgicale, puis vaporisez de l'éthanol à 70 % sur la poitrine et séchez délicatement. À l’aide de ciseaux et de forceps chirurgicaux, ouvrez la cavité thoracique. Retirez la cage thoracique et sectionnez le diaphragme afin d’exposer le cœur et les poumons.Ensuite, coupez les vaisseaux sanguins reliés au cœur et utilisez une pince pour exciser délicatement le cœur sans provoquer d'ecchymoses. Rincez le cœur avec du PBS et placez-le dans une cassette de prélèvement tissulaire pour la section coronale. Transférez ensuite les cassettes dans une solution de formol tamponné à 10 % et, le jour suivant, envoyez-les pour l'inclusion en paraffine.Au stades précoces, les lésions cardiaques peuvent être identifiées par leur changement d'apparence de couleur, et dans certains cas, par la présence de cellules immunitaires. Dans les lésions avancées, les cellules immunitaires seront absentes et de grande taille. Des lésions de type VA se trouvent à leur place.À l'aide d'une section cardiaque de cinq microns sur des lames en verre chargées positivement, congeler d'abord les sections, puis les décongeler et les laisser sécher à l'air libre. Fixer les lames dans du formol tamponné neutre à 10 % pendant 10 minutes à 25 degrés Celsius. Ensuite, éliminer le fixateur par trois lavages au PBS, cinq minutes par lavage.Perméabiliser ensuite le tissu avec du Triton X-100 à 0,2 % dans du PBS pendant 15 minutes. Éliminer le détergent par trois nouveaux lavages au PBS pur. Bloquer ensuite le tissu avec 10 % de sérum d'origine adéquate dans du PBS pendant une heure, après un rinçage au PBS, puis recouvrir la section d'antisérum pendant deux heures à 37 degrés Celsius.Traitez les témoins négatifs avec un antisérum de lapin naïf. Étant donné que le tissu cardiaque absorbe facilement la coloration immunofluorescente XI, entraînant des niveaux de fond élevés, il sera probablement nécessaire d'optimiser la concentration et le temps d'incubation selon les types d'anticorps. Deux heures plus tard, éliminez l'antisérum par lavage au PBS. Remplacez ensuite la solution par un anticorps secondaire et laissez les lames incuber à 37 degrés Celsius pendant 30 minutes. Appliquez maintenant le DPI à cinq milligrammes par millilitre et lavez les lames au PBS.Enfin, montez les lames au fluor, sauvegardez-les et imagez-les par microscopie confocale. Commencez par éliminer le paraffine et hydrater les sections tissulaires. Utilisez des bains de xylène suivis d'une série progressive de bains d'alcool.Ensuite, plonger les sections dans de l'acide phosphomolybdique à 0,2 % pendant cinq minutes, puis rincer à l'eau pendant cinq minutes. Colorer ensuite avec le rouge cérique à 0,1 % et l'acide ricinoléique pendant deux heures. Laver alors les sections dans de l'acide chlorhydrique normal à 0,01 pendant trois minutes et rincer dans de l'éthanol à 70 % pendant une minute. Procéder maintenant à la déshydratation des sections en inversant la série de bains alcooliques, suivie de rinçages à l'xylène, monter au microscope optique et évaluer les lames.Des souris ont développé une maladie pneumonococcique invasive suite à une inoculation avec le tigre. Quatre micro-lésions cardiaques de souche ont été observées dans les ventricules, et une augmentation de la taille et du nombre de lésions a été notée entre 24 et 30 heures après l'infection, afin de vérifier que S. pneumoniae se trouvait effectivement à l'intérieur des lésions. Des sections ont été colorées pour détecter le polysaccharide capsulaire de sérotype quatre produit par Tiger quatre.Cela a confirmé la présence d'agrégats étroitement compacts et denses au sein des sites de microlésions. Une coloration au rouge picro-sirius a été réalisée sur des sections cardiaques de souris ayant bénéficié d'une thérapie de sauvetage à l'ampicilline ainsi que sur des témoins non infectés. Dans les expériences de sauvetage.Il y a eu une augmentation spectaculaire de la présence et de l'intensité de la coloration, avec des bandes provenant de sites qui semblent être d'anciens foyers lésionnels dans les ventricules. Lors de la réalisation de cette procédure, il est important de se rappeler d'infecter les souris avec une dose suffisante de S. pneumoniae afin que l'infection progresse pendant au moins 28 à 30 heures, permettant ainsi suffisamment de temps pour la formation d'une bactériémie et de micro-lésions cardiaques.

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