Name: In Situ détection des bactéries dans les tissus inclus en paraffine Utiliser une sonde ADN de digoxine marqué ciblage ARNr 16S (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-05-21T13:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 15 s
Description: Découvrez une méthode d'hybridation in situ pour détecter les bactéries dans les tissus inclus en paraffine à l'aide de sondes ADN marquées DIG ciblant l'ARNr 16S. Cette technique permet d'étudier le rôle des bactéries dans la periodontite, les cancers et les maladies inflammatoires.

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Cette étude a été soutenue par une subvention (2013R1A1A3005669) de la National Research Foundation de Corée et une subvention (HI13C0016) de la Corée technologies de la santé Projet R &amp; D, Ministère de la Santé et Bien-être.

1. Préparation de la sonde <ol><li> L&#39;amplification par PCR de la sonde <ol><li> Pour la P. La sonde de gingivalis, amplifier un fragment d&#39;ADN de 343 pb de P. gingivalis ARNr 16S par PCR en utilisant l&#39;ADN génomique de P. gingivalis et les amorces suivantes: 5&#39;-TGC AAC TTG CCT TAC AGA GG-3 &#39;et 5&#39; AGIR CGT ATC GCC CGT TAT TC-3 &#39;10. Effectuer des amplifications avec les conditions de cycle suivantes: 35 cycles à 95 ° C pendant 30 sec, 60 ° C pendant 30 sec, et 72 ° C pendant 1 min 20 sec, suivie par une extension de 5 minutes à 72 ° C 10,11. </li><li> Amplifier le eubactérienne utilisant un 70 pb fragment d&#39;ADN (5&#39;-CAGGTGCTGCATGGCTGTCGTCAGCTCGTGTTGTGAAATGTTGGGTTAAG TCCCGCAACGAGCGCAACCC-3 &#39;) synthétisé comme un oligonucleotide et les amorces suivantes: 5&#39;-CAG CTG GTR GGY CMT-3&#39; et 5&#39;-AGG GTT GTT GCG CTC-3 &#39;11. Effectuer des amplifications avec les conditions de cycle suivantes: 40 cycles9 à 4 ° C pendant 30 sec, 60 ° C pendant 30 s et 72 ° C pendant 1 min 20 s, suivie d&#39;une prolongation de 5 minutes à 72 ° C 11,12. </li><li> Précipiter les produits de PCR (≥500 pi) par addition d&#39;acétate de sodium 3 M (pH 5,2) et 100% d&#39;éthanol (à 10: 1: 2) et en incubant à -20 ° C pendant 2 heures. </li><li> Centrifuger le mélange à 14 000 xg pendant 15 min, remettre en suspension le culot dans 100 pl de tampon TE, et de mesurer la concentration d&#39;ADN par densité optique à 260 nm. </li></ol></li><li> DIG-étiquetage en utilisant un marquage et de détection kit DIG DNA <ol><li> Mélanger 3 pg de la sonde avec de l&#39;eau jusqu&#39;à un volume final de 15 ul. </li><li> Dénaturer l&#39;ADN à 95 ° C pendant 10 minutes et refroidir rapidement sur de la glace. </li><li> Ajouter 2 ul de mélange 10x hexanucléotide, 2 ul de dNTP mix-étiquetage, et 1 ul de l&#39;enzyme de Klenow pour 15 ul de l&#39;ADN dénaturé. </li><li> Mélanger et incuber à 37 ° C pendant 24 h à 48 h et arrêter la réaction par chauffage à 65 ° C. </li></ol></li><li> Vérifiez la sensibilité de la sonde DIG marqué à l&#39;aide d&#39;un marquage et de détection kit DIG DNA <ol><li> Charger manuellement 1 pl de dilutions en série de la sonde de contrôle positif fournis dans le kit et 1 ng de la sonde marquée à la DIG sur la membrane en nylon et sec pendant 5 min à température ambiante. </li><li> Brièvement tremper la membrane dans du tampon 2 x SSC (NaCl 0,3 M, citrate de sodium 30 mM, pH 7,0) et on incube la membrane à 80 ° C pendant 1 heure pour immobiliser l&#39;ADN. </li><li> Brièvement tremper la membrane dans du tampon de l&#39;acide maléique (MAB, 0,1 M d&#39;acide maléique, 0,15 M de NaCl, pH 7,5) et on incube avec des anticorps anti-DIG la phosphatase alcaline (AP) conjugué à l&#39;anticorps dilué (1: 5000) dans 6 ml de solution de blocage prévu dans le kit à température ambiante pendant 30 min. </li><li> Laver la membrane avec MABT (MAB contenant 1% de Tween 20) et applique 40 pi de la solution de NBT / BCIP mélangé avec 2 ml de tampon de détection (0,1 M de Tris-HCl, 0,1 M de NaCl, 0,05 M de MgCl2, pH 9,5) sur le membrane pendant 1 min. Si la sensibilité de la sonde marquée estpas satisfaisante, répétez les étapes 1.1.3 à 1.3.4. </li><li> Mesurer la concentration de l&#39;ADN de la sonde marquée (DO260) et ajuster la concentration de 100 ng -1 ul. </li></ol></li><li> Vérifier la spécificité de la sonde marquée à la DIG <ol><li> Dénaturer les échantillons d&#39;ADN génomique (25 ng 3 ul de chaque échantillon par -1) à partir de différentes espèces bactériennes, y compris la bactérie cible de la sonde spécifique, à 95 ° C pendant 10 minutes et refroidir rapidement sur ​​de la glace. </li><li> Charger manuellement l&#39;ADN dénaturé sur la membrane de nylon et sèche pendant 20 min à TA. </li><li> Tremper brièvement la membrane dans un tampon SSC 2x et incuber la membrane à 80 ° C pendant 2 heures pour immobiliser l&#39;ADN. </li><li> Bloquer la membrane avec une solution de blocage à température ambiante pendant 1 heure. </li><li> Diluer la sonde à 1 ng ul -1 dans un tampon d&#39;hybridation, dénaturer les sondes dilué, et appliquer sur la membrane. </li><li> Incuber la membrane à 45 ° C pendant 1 heure. </li><li> Laver la membrane troisfois avec du tampon SSC 2x. </li><li> Tremper brièvement la membrane dans MAB. </li><li> Incuber avec l&#39;anticorps anti-DIG conjugué AP-dilué (1: 2000) dans 6 ml de solution de blocage à température ambiante pendant 1 heure. </li><li> Laver la membrane avec MABT et appliquer 40 ul de la solution de NBT / BCIP mélangé avec 2 ml de tampon de détection. </li><li> Lorsque la sonde ne permet pas d&#39;obtenir la spécificité attendue, d&#39;augmenter la température d&#39;hybridation jusqu&#39;à ce que la spécificité est observée. </li></ol></li></ol> 2. Hybridation in situ Remarque: Pour éviter le séchage des échantillons et les réactifs, effectuer toutes les incubations dans une chambre humidifiée avec des serviettes en papier humide. <ol><li> De-paraffinization et réhydratation des coupes de tissus <ol><li> Préparer 4 um d&#39;épaisseur des sections de tissu à partir de blocs inclus dans la paraffine. Formaline, le paraformaldéhyde, et fixateur à base de zinc sont compatibles avec ce protocole. </li><li> Préparer tous les réactifs à l&#39;aide d&#39;eau traitée au DEPC. </li><li> Chauffer les lames dans un four sec à 60 ° C pendant 30 min et incuber diapositives à température ambiante pendant 30 min. </li><li> Immerger les lames dans 100% de xylène pendant 5 min à trois reprises; utiliser xylène frais à chaque fois. Remarque: Effectuez cette procédure de de-cire dans une hotte chimique. </li><li> Immerger les lames dans de l&#39;éthanol à 100% pendant 5 min à deux reprises, en utilisant de l&#39;éthanol frais à chaque fois, et de se réhydrater spécimens en série 90%, 80% et des solutions d&#39;éthanol de 70% pendant 5 minutes chacun. </li><li> Immerger les lames dans de l&#39;eau traitée au DEPC pendant 1 min et laver les lames dans du PBS traitée au DEPC (pH 7,4) pendant 6 min. </li></ol></li><li> Prétraitements de coupes de tissus <ol><li> Immerger les lames dans de l&#39;acide chlorhydrique 0,1 N pendant 20 minutes et laver les lames dans de l&#39;eau traitée au DEPC pendant 30 sec. </li><li> Tracez une barrière hydrophobe spécimens en utilisant un stylo de cire environnante. Remarque: La taille de la barrière hydrophobe dépend de la taille des échantillons. Par conséquent, les volumes de réactifs utilisés dans les étapes suivantes varient en fonction de la taille des échantillons, mais doivent remplir le hybarrière drophobic (50 pi pour les petits spécimens et 400 pi pour les gros spécimens). </li><li> Traiter les échantillons avec 50 à 400 ul de proteinase K (1 à 10 pg ml -1 dans du PBS traitée au DEPC) dans un four sec à 37 ° C pendant 30 min et à laver les lames traitée au DEPC 1x PBS pendant 1 min. </li><li> Faire tremper les lames dans 4% de paraformaldehyde dans PBS traitée au DEPC pendant 10 min, puis laver les lames dans du PBS traitée au DEPC pendant 1 min. </li><li> Faire tremper les lames dans 0,1 M triéthanolamine-HCl (pH 8,0) contenant de l&#39;anhydride acétique à 0,5% pendant 20 min et laver les lames dans de l&#39;eau traitée au DEPC pendant 30 sec. </li></ol></li><li> L&#39;hybridation avec la sonde et de lavage <ol><li> Immerger les lames dans un tampon SSC 2x pendant 20 min. </li><li> Diluer la sonde à 1 ng ul -1 dans du tampon d&#39;hybridation (4x SSC, 50% [vol / vol] formamide, solution de Denhardt 1X, 10% [vol poids /] du sulfate de dextrane, 0,1% [vol poids /] du sulfate de sodium dodécyle, 0,4 mg ml -1 d&#39;ADN de sperme de saumon). Pour les contrôles négatifs, mélanger la sonde marquée avecun excédent de 10 fois de la sonde non marquée. </li><li> Dénaturer les sondes diluées et appliquer de 50 à 400 pi sur des coupes de tissus. Placez une lamelle sur la lame et sceller avec du vernis à ongles. </li><li> Chauffer les lames dans la machine PCR à 90 ° C pendant 10 min et incuber les lames dans une chambre humidifiée O / N à 45 ° C ou la température optimale déterminés à l&#39;étape 1.4.11. </li><li> Refroidir les lames à 4 ° C pendant 30 min, retirez lamelles, et plongez les lames dans un tampon SSC série comme suite: 4x SSC pendant 10 min, préchauffé (45 ° C) 2x SSC pendant 20 min, 2x SSC pour 10 min, et 0,2 x SSC pendant 10 minutes. </li></ol></li><li> Détection avec un anticorps anti-DIG conjugué AP- <ol><li> Laver les lames dans MABT pendant 5 min. </li><li> Bloquer avec 50 à 400 ul de solution à 1% de Tween 20 blocage pendant 20 min. </li><li> Ajouter 50 à 400 ul d&#39;anticorps anti-DIG-AP dilué dans une solution de blocage (1: 1000) anld incuber à 37 ° C pendant 90 min. </li><li> Laver les lames dans MABT pendant 10 min. </li> &lt;li&gt; Immerger les lames dans un tampon de détection contenant 1% de Tween 20 pendant 5 min. </li><li> Traiter avec 50 à 400 μ de 1 mM de levamisole (dans un tampon de détection contenant 1% de Tween 20) pendant 5 minutes pour inactiver la phosphatase alcaline endogène. </li><li> Distribuer 50 à 400 ul de la solution prémélangée NBT / BCIP (dilué dans un tampon de détection à 1: 100) sur chaque échantillon et incuber les lames dans une chambre humidifiée à température ambiante pendant 2 à 3 heures jusqu&#39;à ce que le signal développé est satisfaisante. </li><li> Rincer les lames avec de l&#39;eau déminéralisée pour arrêter la visualisation et d&#39;appliquer 50 à 400 pi de 0,05% [poids / volume] vert de méthyle comme contre-colorant à 37 ° C pendant 10 min. </li><li> Rincer les lames avec de l&#39;eau déminéralisée, déshydrater éthanol à 100%, et plongez dans le xylène. </li><li> Appliquer 80 pi de solution de montage sur chaque diapositive et couvrir avec des lamelles. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Les auteurs ont rien à révéler.

Voici un protocole de localiser les bactéries dans les tissus inclus dans la paraffine en utilisant une sonde d&#39;ADN marquée au DIG a été décrit. La sonde cible les molécules d&#39;ADN ou d&#39;ARN du gène de l&#39;ARNr 16S bactérien, et les sondes d&#39;ARNr 16S-ciblage peut être conçue soit comme spécifique de l&#39;espèce ou universel. L&#39;hybridation spécifique de la P. La sonde gingivalis de P. gingivalis mais pas à d&#39;autres bactéries orales a été 10 précédemment montr...

Les bactéries jouent un rôle dans l&#39;étiologie de diverses maladies orales telles que la parodontite, pulpite, péricoronarite, la cellulite et l&#39;ostéomyélite. Afin de comprendre le rôle des bactéries dans la pathogenèse de la maladie et de suivre l&#39;effet des traitements, la localisation des bactéries dans le tissu est importante. La présence de bactéries dans le tissu gingival de patients atteints de parodontite a été démontré en utilisant divers procédés, notamment la microscopie électronique 1,2, immunohistochimie et immunofluorescence en utilisant des anticorps spécifiques aux bactéries 3-7, et hybridation fluorescente in situ (FISH) 8 par fluorescence en utilisant un sonde oligonucléotidique marquée ciblage ARN ribosomique 16S. Néanmoins, ces méthodes ne sont pas largement utilisés en raison de limitations techniques ou difficultés. Comparé avec des anticorps, des sondes ciblant les ARN ribosomique 16S sont faciles à produire et réaliser spécificité d&#39;espèce. FISH est avéré être un excellent outil pour la visualisation de bacteria dans leurs milieux naturels tels que le biofilm. Cependant, l&#39;application de poissons à des échantillons de tissus est limitée en raison de l&#39;autofluorescence des différentes composantes du tissu. Par exemple, la forte autofluorescence des cellules rouges du sang entrave souvent l&#39;application de la technologie de fluorescence de tissus enflammés lorsqu&#39;ils impliquent le saignement 9. Afin de localiser les bactéries dans les tissus gingivaux enflammés, par conséquent, un procédé d&#39;hybridation in situ en utilisant une digoxigénine (DIG) sonde d&#39;ADN marqué au a été développée et appliquée avec succès 10,11. Voici un protocole détaillé pour la localisation des bactéries dans les tissus inclus dans la paraffine en utilisant P. gingivalis sondes eubactériennes spécifique de et universels a été décrite. Il se concentre particulièrement sur la normalisation de la méthode de sorte que des résultats similaires peuvent être reproduits dans d&#39;autres laboratoires. Ce protocole permet la localisation des bactéries dans leur contexte histologique et le résuLTS sont hautement reproductibles. Le protocole décrit peut être utilisé pour localiser les bactéries, soit d&#39;une manière spécifique à l&#39;espèce ou universel dans divers tissus. La sonde universelle est particulièrement utile pour détecter les bactéries dans les maladies polymicrobiennes et d&#39;étudier le rôle potentiel des bactéries dans des maladies où le rôle des bactéries spécifiques est pas connue.

<table><tbody><tr><td>Anhydride acétique</td><td>Sigma</td><td>6404</td><td></td></tr><tr><td>50 % solution de sulfate de dextran</td><td>Millipore</td><td>S4030</td><td></td></tr><tr><td>50X Denhardt' s solution</td><td>Sigma</td><td>D2532</td><td></td></tr><tr><td>DEPC</td><td>Sigma</td><td>P159220</td><td></td></tr><tr><td>DIG Kit de marquage et de détection d’ADN</td><td>Roche</td><td>11 093 657 910</td><td></td></tr><tr><td>Formamide</td><td>Sigma</td><td>F9037</td><td></td></tr><tr><td>ImmEdge&trade ; Stylo</td><td>Dako</td><td>H-400</td><td></td></tr><tr><td>Lévamisole</td><td>Vecteur</td><td>SP-5000</td><td></td></tr><tr><td>Chlorure de magnésium</td><td>Sigma</td><td>246964</td><td></td></tr><tr><td>Acide maléique</td><td>Sigma</td><td>M0375</td><td></td></tr><tr><td>Vert de méthyle</td><td>Sigma</td><td>M6776</td><td></td></tr><tr><td>Paraformaldéhyde</td><td>Sigma</td><td>P1648</td><td></td></tr><tr><td>Permount</td><td>Fisher</td><td>SP15-500</td><td></td></tr><tr><td>Solution d’ADN de spermatozoïdes de saumon</td><td>Invitrogen</td><td>#15632-011</td><td></td></tr><tr><td>Chlorure de sodium</td><td>Sigma</td><td>S9625</td><td></td></tr><tr><td>Citrate de sodium</td><td>Duksan</td><td>D1420</td><td></td></tr><tr><td>Dodécylsulfate de sodium</td><td>Amresco</td><td>227</td><td></td></tr><tr><td>Triéthanolamine-HCl</td><td>Sigma</td><td>90279</td><td></td></tr><tr><td>Tris-HCl</td><td>Recherche organique</td><td>3098T</td><td></td></tr></tbody></table>

in situ détection des bactéries dans les tissus inclus en paraffine utiliser une sonde adn de digoxine marqué ciblage arnr 16s

In Situ Detection of Bacteria within Paraffin-embedded Tissues Using a Digoxin-labeled DNA Probe Targeting 16S rRNA

La présence de bactéries dans l’épithélium de poche et le tissu conjonctif sous-jacent dans les biopsies gingivales de patients atteints de parodontite a été signalée à l’aide de diverses méthodes, notamment la microscopie électronique, l’immunohistochimie ou l’immunofluorescence à l’aide d’anticorps spécifiques aux bactéries, et l’hybridation in situ fluorescente (FISH) à l’aide d’une sonde oligonucléotidique marquée par fluorescence. Néanmoins, ces méthodes ne sont pas largement utilisées en raison de limitations ou de difficultés techniques. Ici, une méthode pour localiser les bactéries dans des tissus inclus dans la paraffine à l’aide de sondes d’ADN marquées DIG a été introduite. Les tissus inclus dans la paraffine sont la forme la plus courante de tissus de biopsie disponibles dans les banques de pathologie. Les bactéries peuvent être détectées de manière spécifique à l’espèce ou universelle. Les signaux bactériens sont détectés sous forme discrète de bactéries (coccus, bâtonnet, fusiforme et poilu) ou de formes dispersées. La technique permet d’obtenir d’autres informations histologiques : les épithéliums, le tissu conjonctif, les infiltrats inflammatoires et les vaisseaux sanguins sont bien distingués. Cette méthode peut être utilisée pour étudier le rôle des bactéries dans diverses maladies, telles que la parodontite, les cancers et les maladies immunitaires inflammatoires.

La figure 1 montre dot blot de sondes DIG-étiquetés par rapport à la sonde de contrôle positif fourni dans le kit pour déterminer leur sensibilité. Le 343 pb P. La sonde de gingivalis est 25 fois plus sensible que le eubactérienne 70 pb. La figure 2 montre l&#39;hybridation in situ des tissus gingivaux obtenus à partir de patients atteints de parodontite chronique pour la détection de P. dans gingivalis et eubactéries. Les signaux représentés sur bact...

Ici, une méthode de localisation des bactéries dans des tissus inclus dans la paraffine à l’aide de sondes d’ADN ciblant l’ARNr 16S marquées DIG a été décrite. Ce protocole peut être appliqué pour étudier le rôle des bactéries dans diverses maladies telles que la parodontite, les cancers et les maladies immunitaires inflammatoires.

In Situ détection des bactéries dans les tissus inclus en paraffine Utiliser une sonde ADN de digoxine marqué ciblage ARNr 16S

The presence of bacteria within the pocket epithelium and underlying connective tissue in gingival biopsies from patients with periodontitis has been ...

L'objectif général de cette procédure est de localiser les bactéries au sein de tissus inclus en paraffine en utilisant des sondes d'ADN ciblant l'ARN ribosomique 16 s marquées au DIG. Cela est réalisé en premier lieu en préparant la sonde par amplification en PCR et marquage au DIG. La deuxième étape consiste à préparer les coupes de tissus afin de rendre les sites cibles plus accessibles et de réduire la liaison non spécifique.Ensuite, les coupes tissulaires préparées sont hybridées avec la sonde marquée à la dig. Enfin, la sonde hybridée est détectée à l'aide d'anticorps anti-dig marqués par une phosphatase alcaline. En définitive, cette méthode d'hybridation in situ peut révéler la présence de bactéries dans des tissus inclus en paraffine.L'avantage de cette méthode par rapport aux techniques existantes comme l'ING est qu'elle permet de détecter les bactéries SHS dans le contexte de certaines structures histologiques. Cette méthode peut fournir des informations sur la pathogénie, notamment dans diverses affections inflammatoires telles que la parodontite et la planète R. La démonstration visuelle de cette méthode est essentielle, car les étapes de préparation des tissus et de digestion par hybridation sont difficiles à réaliser, les coupes de tissus étant facilement endommagées.Pour préparer la sonde bactérienne U, utilisez un fragment d'ADN de 70 paires de bases comme matrice et deux amorces de 15 paires de bases pour amplifier la sonde par PCR. Récupérez l'amplicon dans un tampon à une concentration connue. Ensuite, marquez la sonde à l'aide d'un kit de marquage et de détection d'ADN dig.Mélangez d'abord trois microgrammes de la sonde dans 15 microlitres d'eau. Dénaturez la sonde dans le bloc chauffant pendant 10 minutes à 95 degrés Celsius. Ensuite, placez la sonde dénaturée sur de la glace.Ensuite, ajoutez deux microlitres de nucléotides 10 XH, deux microlitres de DN NTPs et un microlitre d'enzyme canal. Après homogénéisation, laissez le sonde incuber à 37 degrés Celsius pendant 24 à 48 heures. Arrêtez la réaction en chauffant une fois le mélange à 65 degrés Celsius.Ensuite, mesurez la concentration d'ADN de la sonde marquée à 260 nanomètres et ajustez la concentration à 100 nanogrammes par microlitre. À l'aide du kit, vérifiez d'abord la sensibilité de la sonde sur une membrane en nylon en chargeant un microlitre de contrôle positif dilué en série. Sonde et sonde marquée dig.Laissez sécher la membrane pendant cinq minutes. Une fois sèche, plongez brièvement la membrane dans du 2 XSSC, puis transférez-la dans une étuve à 80 degrés Celsius pendant une heure. Pour immobiliser l'ADN après l'incubation, imbibez brièvement la membrane de tampon acide maléique, puis transférez-la dans du tampon de blocage contenant des anticorps conjugués à la phosphatase alcaline dilués au 1/5 000 après une demi-heure.Lavez la membrane dans du MABT. Ensuite, mélangez 40 microlitres de N-B-T-B-C-I-P dans deux millilitres de tampon de détection. Après le rinçage, ajoutez ce mélange sur la membrane pendant une minute.Après avoir retiré le paraffine et réhydraté les coupes de tissu comme décrit dans le protocole écrit, préparez-les pour l'hybridation in situ en immergeant d'abord les lames dans de l'acide chlorhydrique 0,1 N pendant 20 minutes. Après le bain acide, rincez les lames avec de l'eau traitée au DEPC pendant 30 secondes. Ensuite, à l'aide d'un stylo à cire, délimitez les spécimens sur chaque lame.Ensuite, ajoutez de 50 à 400 microlitres de solution de protéinase K aux échantillons, selon leur taille. Laissez l'enzyme agir pendant 30 minutes à 37 degrés Celsius, puis rincez les lames dans du PBS 1x traité au DEPC pendant une minute. Transférez maintenant les lames dans du paraformaldéhyde 4 % dans du PBS traité au DEPC pendant 10 minutes.Rincez le fixateur avec du PBS comme précédemment. Ensuite, immergez les lames dans du chlorhydrate de triéthanolamine 0,1 molaire à pH 8 contenant 0,5 % d'acide acétique et d'hydride ; après 20 minutes, rincez les lames à l'eau propre comme précédemment. Commencez maintenant l'étape en C deux en immergeant d'abord les lames dans du 2 XSSC pendant 20 minutes.Entre-temps, diluez la sonde marquée à une concentration d'un nanogramme par microlitre dans du tampon d'hybridation pour une contrôle négatif. Utilisez une concentration dix fois supérieure de sonde non marquée. Puis dénaturez les sondes en les chauffant à 90 degrés Celsius pendant 10 minutes, suivie d'un refroidissement rapide sur de la glace.Ensuite, appliquer le même volume de dilution de la sonde sur chaque lame que celui de la protéinase K précédemment appliqué. Puis, couvrir soigneusement les sections avec une lame à couvre-objet et les sceller à l’aide de vernis à ongles. Chauffer maintenant les lames sur le bloc d’un appareil PCR à 90 degrés Celsius pendant 10 minutes, puis les transférer dans une enceinte humide à 45 degrés Celsius pour une incubation nocturne le jour suivant.Refroidir les lames à quatre degrés Celsius pendant une demi-heure, puis retirer soigneusement les lamelles. Les tissus sont fragiles. Enfin, faire passer les lames à travers une série de tampon SSC à température ambiante.Tout d'abord, lavez les deux lames hybridées NC pendant cinq minutes dans du MABT. Ensuite, appliquez de 50 à 400 microlitres de solution de blocage contenant du Tween 20 à 1 % pendant 20 minutes. Après l'incubation de blocage, appliquez de 50 à 400 microlitres d'anticorps anti-Dig phosphatase alcaline à une dilution de un à 1000 dans la solution de blocage.Laisser fixer pendant 90 minutes à 37 degrés Celsius après l'application du primaire. Laver les lames dans du MABT pendant 10 minutes. Ensuite, placer les lames dans du tampon de détection contenant 1 % de Tween 20 pendant cinq minutes.Appliquez maintenant 50 à 400 microlitres d'une solution d'ole de un millimolaire dans le tampon de détection sur chaque lame, puis incubez-les pendant cinq minutes afin d'inactiver la phosphatase alcaline endogène. Ensuite, ajoutez 50 à 400 microlitres de N-B-T-B-C-I-P dilué dans le tampon de détection, à un ratio de un à 100, sur chaque lame, et laissez les lames incuber de deux à trois heures dans une chambre humide, selon l'expérience acquise.Rincez les lames avec de l’eau DI, puis appliquez du vert de méthyle à 0,05 % en poids par volume et laissez la contre-coloration agir sur le tissu pendant 10 minutes, à 37 degrés Celsius. Rincez à nouveau les lames avec de l’eau DI, puis déshydratez-les avec de l’éthanol à 100 %, suivi d’un trempage dans le xylène.Enfin, appliquez 80 microlitres de milieu de montage et posez une lamelle. Les lames ont été marquées après hybridation avec les sondes. Leur sensibilité a été comparée à celle d'une dilution de la sonde témoin positive.La sonde spécifique de 343 paires de bases pour P. gingivalis était 25 fois plus sensible que la sonde bactérienne conçue de 70 paires de bases. Les deux sondes ont ensuite été appliquées à des tissus gingivaux provenant de patients atteints de parodontite chronique, en forte augmentation. Les différentes formes de bactéries étaient discernables à l’aide de la sonde bactérienne.Alors que la sonde spécifique à P. gingivalis n'a détecté que des bactéries en forme de bâtonnets, un agent chimique perturbant les jonctions serrées, le DSS, a été appliqué sur la muqueuse gingivale de souris. Des échantillons de tissus provenant de ces souris ont été utilisés pour comparer les sondes dans un contexte différent. Ici, la sonde bactérienne U a permis de détecter des bactéries que l'autre sonde ne pouvait pas identifier.La sonde bactérienne U a ensuite été testée pour sa capacité à détecter d'autres bactéries dans des coupes de tissu pulmonaire contenant des tumeurs. Des bactéries ont été détectées à l'extérieur de la tumeur ainsi qu'à l'intérieur de celle-ci. Lors de l'examen de tissus provenant de patients atteints de lichen plan buccal, une maladie d'étiologie inconnue, la sonde bactérienne a révélé des signaux bactériens au sein des cellules de l'épithélium et de la lame propria, là où une infiltration inflammatoire était observée.Depuis son développement, cette technique a aidé les chercheurs dans le domaine des maladies infectieuses à explorer l'envahissement bactérien des tissus chez l'humain comme chez l'animal en suivant cette procédure. D'autres méthodes, telles que la détection immunochimique de la croissance vers un marqueur cellulaire, peuvent être utilisées afin de répondre à des questions supplémentaires, comme le type de cellules qui abritent les bactéries au sein des tissus.

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