Name: Cardiac pression-volume Analyse boucle aide de la conductance cathéters chez la souris (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-09-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 15 s
Description: Apprenez l'analyse des boucles pression-volume cardiaque chez la souris à l'aide de cathéters de conductance. Cette méthode permet d'évaluer rigoureusement la fonction ventriculaire systolique et diastolique.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ce travail est soutenu par l&#39;American Heart Association 14FTF20370058 (DMA) et le NIH T32 HL007101-35 (DMA).

1. Préparation de la conductance cathéter et étalonnage de pression <ol><li> Connecter conductance cathéter au module de cathéter hémodynamique. Calibrer électroniquement mesures de pression et de volume en enregistrant pression préréglée et le volume réglé sur le module de cathéter. Enregistrer un tracé de 0 mm Hg et 25 mm Hg (figure 1A) et attribuer des tensions aux deux tracés de pression (figure 1B et 1C). De même, enregistrer un tracé de volume de 5 RVU et 25 RVU (figure 1D) et attribuer des tensions aux deux tracés de volume (de 1e et 1f). </li><li> Confirmez l&#39;étalonnage de pression électronique avec un calibrage manuel de pression, à l&#39;aide d&#39;un sphygmomanomètre à colonne de mercure. Monter le port tensiomètre brassard avec un robinet 3 voies. Remplir un système de valve hémostatique 3-port, souvent utilisé pour l&#39;angioplastie coronarienne, avec de l&#39;eau en utilisant la RT orifice latéral. <ol><li> Placez l&#39;extrémité d&#39;un cathéter de conductance dans la valve hémostatique rempli de fluide et fixer doucement l&#39;esprithout vriller cathéter. Branchez la valve hémostatique à l&#39;tensiomètre et gonfler à 200 mmHg et verrouiller robinet à 3 voies. Examiner si la pression mesurée correspond à la pression gonflé sur le tensiomètre. </li></ol></li><li> Lieu cathéter dans une solution saline chauffée à 37 ° C qui est au niveau de la pression de champ opératoire et à mesurer. Réglez le contrôle de la pression jusqu&#39;à ce que les pressions enregistrées est à zéro. </li></ol> 2. Anesthésie / intubation <ol><li> Administrer la kétamine / xylazine (80-100 / 10 mg kg -1) comme une injection intrapéritonéale. Remarque: Les agents anesthésiques alternatifs peuvent être utilisés. Une liste complète des anesthésiques sont fournis dans les commentaires précédents de cette technique 11,12. Anesthésie adéquate peut être confirmée par douce pincement de la queue. </li><li> Une fois anesthésié, de se raser le cou et la poitrine avec les tondeuses et place sur un coussin chauffant. Maintenir la température rectale de la souris à 36,5 à 37,5 ° C. La température du corps Lowse traduira par des taux cardiaques déprimés. Appliquer une pommade pour les yeux pour prévenir la sécheresse </li><li> Faire une incision médiane dans le cou et de disséquer les muscles de la trachée pour exposer la trachée. Placer une sonde endotrachéale par la bouche, tout en visualisant la trachée pour assurer l&#39;intubation, et se connecter à l&#39;appareil respiratoire. </li><li> Maintenir la souris sur le ventilateur pendant la procédure. Les réglages du ventilateur réglée sur la base du poids de l&#39;animal comme décrit précédemment 11. Volume courant (ml) = 6,2 x (poids de l&#39;animal en kilogrammes) et la fréquence respiratoire 1.01 = 53,5 x (poids de l&#39;animal en kilogrammes) -0.26. </li></ol> 3. Mise en place de la conductance cathéter dans la chambre LV <ol><li> Approche de la carotide <ol><li> Pour assurer la stérilité, deux ensembles d&#39;instruments chirurgicaux stériles sont utilisé- un pour incision cutanée initiale et un à opérer dans la thoracotomie. Les instruments doivent être décontaminés à l&#39;aide d&#39;un stérilisateur à sec entre les animaux au cours d&#39;une session individuelle chirurgicale unee autoclave à la fin de chaque jour chirurgicale. </li><li> Après la peau a été décontaminé avec trois cycles d&#39;une chlorhexidine + alcool gommage de la peau (solution d&#39;alcool / 70% de chlorhexidine 0,5%), faire une incision sur la carotide droite de la mandibule au sternum. Disséquer les tissus environnants pour exposer la carotide droite, et couper le nerf vague qui longe la carotide. </li><li> Placez une suture de soie 6-0 stérile autour de l&#39;extrémité distale (loin de la poitrine) de l&#39;artère carotide, une cravate et sécurisé. Placer deux sutures supplémentaires sous l&#39;extrémité proximale de l&#39;artère carotide (plus près de la poitrine) pour le premier fil de suture, la suture attachant lâchement milieu. Tirez doucement sur la suture proximale et sécuriser en le serrant à la peau. Assurez-vous que l&#39;artère carotide a été serré à la fois proximale et distale avant de poursuivre. </li><li> Faire une petite incision dans l&#39;artère carotide R., proximale à la première suture, et prolonger longitudinalement vers la poitrine. </li><li> Insérer la pointe conductance de cathéter,préalablement trempées dans l&#39;eau chaude salée pendant 30 min, dans le récipient par l&#39;incision et fixer le cathéter en utilisant la suture milieu. </li><li> Avancer doucement le cathéter dans le ventricule gauche à travers la carotide, tout en regardant la boucle pression-volume traçage pour assurer le placement correct. Note: L&#39;installation optimale du cathéter devrait donner boucles pression-volume qui apparaissent rectangulaire (voir figure 2). Si aucune résistance au passage du cathéter est rencontrée, tirez doucement en arrière et avancer de nouveau avec une légère pression. Une légère rotation du cathéter peut aider avec le placement dans le ventricule gauche. Forcer le cathéter de conductance peut entraîner des complications ou des dommages au cathéter cardiovasculaires graves. </li><li> Base de registre pression-volume boucles ~ 10 min après la pose de cathéter et la réalisation d&#39;un état ​​d&#39;équilibre (Figure 2). </li></ol></li><li> Approche apicale <ol><li> Dans une souris anesthésiée et ventilé, faire une incision from le processus de xiphoïde et couper à travers la paroi thoracique latéralement jusqu&#39;à ce que la membrane est visible. </li><li> Couper si le diaphragme et visualiser l&#39;apex du cœur. </li><li> Insérer le cathéter de conductance dans l&#39;apex du ventricule gauche à travers une aiguille blessure par arme blanche (en utilisant une aiguille de 25 à 30 G), jusqu&#39;à ce que l&#39;électrode proximale est juste à l&#39;intérieur du ventricule. </li><li> Base de registre pression-volume boucles ~ 10 min après la pose de cathéter et la réalisation d&#39;un état d&#39;équilibre. </li></ol></li></ol> 4. variant Postcharge Utilisation transitoire Occlusion aortique <ol><li> Pour effectuer une occlusion aortique transitoire, faire une petite incision horizontale dans la partie supérieure du thorax et de disséquer les tissus environnants pour exposer l&#39;aorte transversale. </li><li> Placer une ligature de soie 6-0 sous l&#39;aorte transverse. Après boucles pression-volume sont retournés à la ligne de base, serrer les deux extrémités de la suture avec une pince d&#39;aiguille, doucement et lentement augmenter la suture sur 1-2 secondes, puis relâchez lentement la tension. </li&gt; <li> Répétez cette procédure jusqu&#39;à trois enregistrements distincts optimales sont fabriqués à partir du même animal. Remarque: Optimal enregistrements doivent avoir au moins 5 volumes de pression cycles de boucle et une augmentation constante des pressions systoliques finaux au cours de l&#39;application d&#39;une tension sur le fil de suture (figure 3A et 3C). </li></ol> 5. variant précharge Utilisation transitoire veine cave inférieure Occlusion (IVC) <ol><li> Pour effectuer transitoire veine cave inférieure occlusion, faire une incision horizontale en dessous de la pointe du sternum, sous le diaphragme pour exposer la VCI. </li><li> Placez une ligature 6-0 de soie sous le IVC. Après boucles pression-volume sont retournés à la ligne de base, serrer les deux extrémités de la suture avec une pince d&#39;aiguille; doucement et lentement augmenter la suture sur 1-2 secondes, puis relâchez lentement la tension. IVC occlusion peut également être effectuée par l&#39;application en douceur de la pression aide d&#39;un coton-tige pointe. </li><li> Répétez cette procédure jusqu&#39;à trois enregistrements distincts sont optimales made du même animal. Remarque: Optimal enregistrements doivent avoir au moins 5 volumes de pression cycles de boucle et une baisse constante des pressions ventriculaires gauche de fin de diastole lors de l&#39;application de la tension sur le fil de suture (figure 4A et 4B). </li></ol> 6. Saline Calibration <ol><li> A la fin de l&#39;étude, une conductance parallèle (V p) valeur peut être obtenir par injection d&#39;un bolus de 10 pl d&#39;une solution saline hypertonique (15%) dans l&#39;animal à travers la veine jugulaire (figure 5A et 5B). Remarque: Ce bolus provoque une augmentation du volume apparent, sans modification de la pression. Ce changement apparent en volume est le résultat d&#39;un changement dans le sang piscine conductance plutôt que due à une augmentation réelle du volume. Une baisse transitoire de la dP / dt max peut être observé, comme une solution saline hypertonique a un effet inotrope négatif 13. Le V p calculé peut être entré dans le volume de pression logiciel d&#39;analyse de boucle le longavec les paramètres d&#39;étalonnage de la cuvette et à convertir les UVR en microlitres. </li></ol> 7. Cuvette Calibration <ol><li> Pour effectuer un étalonnage de la cuvette, placer une cuvette avec des puits de diamètres connus fournis par le fabricant sur un coussin chauffant ou un bain d&#39;eau chauffée à 37 ºC. Remplissez les 4-5 premiers trous avec sang héparine chaud frais de souris l&#39;objet d&#39;évaluations hémodynamiques. Remarque: une cuvette de calibrage permet une évaluation précise de pool sanguin du ventricule gauche en utilisant le sang de souris et permet la conversion de données de volume de UVR à microlitres. </li><li> Insérer le cathéter de la conductance dans le premier puits, jusqu&#39;à ce que toutes les électrodes sont immergées. Déplacez doucement le cathéter dans le puits, ce qui va générer RVUs variable. </li><li> Enregistrez les modifications de conductance dans le volume du canal dans RVUs. Sélectionnez la plus haute RVU pour l&#39;étalonnage. Remarque: Le volume des puits peut être calculée soit par 1) en utilisant l&#39;équation pour le volume d&#39;un cylindre, où le rayon est celui du puits de cuve et la longueur est basée sur la longueur entre les deux électrodes de détection interne ou 2) la vérification dans les instructions du fabricant. La sortie de la conductance peut être corrélée avec les volumes connus pour développer une équation d&#39;étalonnage qui convertit les données à partir de 11 microlitres dans UVR. </li></ol> 8. euthanasie <ol><li> À la conclusion du protocole, les souris sont euthanasiées par dislocation cervicale sous anesthésie. </li><li> Afin d&#39;assurer la mort, les souris ayant subi une dislocation cervicale doivent subir une méthode secondaire de l&#39;euthanasie. Nous utilisons exsanguination sous anesthésie, avec la récolte du tissu cardiaque pour l&#39;expérimentation, ou thoracotomie bilatérale sous anesthésie. </li></ol> 9. Analyse des données en utilisant un volume de pression boucle logiciel d&#39;analyse <ol><li> Calculer V p de calibrage Saline <ol><li> Sélectionnez pression et volumoi boucles obtenu lors de l&#39;éjection de solution saline hypertonique (figure 5A et 5B) </li><li> Exporter boucles de logiciel d&#39;analyse de volume de pression. Choisissez l&#39;option pour l&#39;étalonnage de Saline (Figure 5C) </li><li> Enregistrez la valeur V de p calculée (Figure 5D). Remarque: La valeur de p de V est calculée en identifiant l&#39;intersection du volume 1) Fin-diastolique vs le volume en fin de systole de l&#39;étalonnage de la solution saline et 2) la ligne de volume volume = Fin-Fin systolique-diastolique. L&#39;intersection de ces lignes offre la V p, qui est calculée par le logiciel d&#39;analyse de boucle de volume de pression. </li></ol></li><li> Entrez la conductance au volume (ERF) relation dans les options de canal de volume (figure 1F) </li><li> Mesurer Baseline pression-volume relation de boucle <ol><li> Sélectionnez 8-10 cycles cardiaques provenant des canaux de pression et de volume une fois l&#39;état d&#39;équilibre a été atteint (figure 2A) et l&#39;exportation à l&#39;analyse douceWare. Identifier 5-6 boucles fin d&#39;expiration (figure 2B) </li><li> Utilisez la valeur de p de V pour corriger la conductance parallèle. Choisissez l&#39;option &quot;Steady State&quot; et de générer un tableau récapitulatif hémodynamique (figure 2C) </li></ol></li><li> Mesure pression-volume Relation de boucle lors de constriction aortique <ol><li> Sélectionnez 8-10 cycles cardiaques provenant des canaux de pression et de volume qui correspondent à une constriction aortique avant l&#39;augmentation des pressions de fin de diastole (figure 3A) et l&#39;exportation vers des logiciels d&#39;analyse. Identifier 5-6 boucles fin d&#39;expiration (figure 3C) </li><li> Sélectionnez l&#39;analyse &quot;contractilité&quot; (figure 3B), qui calcule le volume de pression Relation en fin de systole (ESPVR) </li></ol></li><li> Mesure pression-volume Relation de boucle pendant IVC constriction <ol><li> Sélectionnez 8-10 cycles cardiaques provenant des canaux de pression et de volume qui correspondent à IVC constriction (Figure 4A) et l&#39;exportation de logiciels d&#39;analyse. Identifier 5-6 boucles fin d&#39;expiration (figure 4B) </li><li> Sélectionnez l&#39;analyse &quot;contractilité&quot; (figure 3B), qui calculera travail systolique recrutable précharge (PRSW) (figure 4C), dp / dt maximale vs EDV (figure 4D), ainsi que la ESPVR et la relation pression-volume télédiastolique (Figure 4E) </li></ol></li></ol>

<ol><li>Clark, J. E., Marber, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advancements+in+pressure-volume+catheter+technology+-+stress+remodelling+after+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Physiol%22%5BJournal%5D)">Advancements in pressure-volume catheter technology - stress remodelling after infarction.</a> Exp Physiol. 98 (3), 614-621 (2013).</li>
<li>Sunagawa, K., Maughan, W. L., Burkhoff, D., Sagawa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Left+ventricular+interaction+with+arterial+load+studied+in+isolated+canine+ventricle%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">Left ventricular interaction with arterial load studied in isolated canine ventricle.</a> Am J Physiol. 245 (Pt 1), H773-H780 (1983).</li>
<li>Suga, H., Sagawa, K., Demer, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determinants+of+instantaneous+pressure+in+canine+left+ventricle.+Time+and+volume+specification%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Determinants of instantaneous pressure in canine left ventricle. Time and volume specification.</a> Circ Res. 46 (2), 256-263 (1980).</li>
<li>Suga, H., Sagawa, K., Shoukas, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Load+independence+of+the+instantaneous+pressure-volume+ratio+of+the+canine+left+ventricle+and+effects+of+epinephrine+and+heart+rate+on+the+ratio%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Load independence of the instantaneous pressure-volume ratio of the canine left ventricle and effects of epinephrine and heart rate on the ratio.</a> Circ Res. 32 (3), 314-322 (1973).</li>
<li>Kass, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Improved+left+ventricular+mechanics+from+acute+VDD+pacing+in+patients+with+dilated+cardiomyopathy+and+ventricular+conduction+delay%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Improved left ventricular mechanics from acute VDD pacing in patients with dilated cardiomyopathy and ventricular conduction delay.</a> Circulation. 99 (12), 1567-1573 (1999).</li>
<li>Kass, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diastolic+Compliance+of+Hypertrophied+Ventricle+Is+Not+Acutely+Altered+by+Pharmacological+Agents+Influencing+Active+Processes%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Internal+Medicine%22%5BJournal%5D)">Diastolic Compliance of Hypertrophied Ventricle Is Not Acutely Altered by Pharmacological Agents Influencing Active Processes.</a> Annals of Internal Medicine. 119 (6), 466-473 (1993).</li>
<li>Georgakopoulos, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo+murine+left+ventricular+pressure-volume+relations+by+miniaturized+conductance+micromanometry%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol%22%5BJournal%5D)">In vivo murine left ventricular pressure-volume relations by miniaturized conductance micromanometry.</a> Am J Physiol. 274 (4 pt 2), H1416-H1422 (1998).</li>
<li>Cingolani, O. H., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pressure-volume+relation+analysis+of+mouse+ventricular+function%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Pressure-volume relation analysis of mouse ventricular function.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 301 (6), H2198-H2206 (2011).</li>
<li>Baan, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Continuous+Measurement+of+Left-Ventricular+Volume+in+Animals+and+Humans+by+Conductance+Catheter%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Continuous Measurement of Left-Ventricular Volume in Animals and Humans by Conductance Catheter.</a> Circulation. 70 (5), 812-823 (1984).</li>
<li>Pearce, J. A., Porterfield, J. E., Larson, E. R., Valvano, J. W., Feldman, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Accuracy+considerations+in+catheter+based+estimation+of+left+ventricular+volume%5BTitle%5D)+AND+%22Conf+Proc+IEEE+Eng+Med+Biol+Soc%22%5BJournal%5D)">Accuracy considerations in catheter based estimation of left ventricular volume.</a> Conf Proc IEEE Eng Med Biol Soc. 2010, 3556-3558 (2010).</li>
<li>Pacher, P., Nagayama, T., Mukhopadhyay, P., Batkai, S., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+cardiac+function+using+pressure-volume+conductance+catheter+technique+in+mice+and+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Protocols%22%5BJournal%5D)">Measurement of cardiac function using pressure-volume conductance catheter technique in mice and rats.</a> Nature Protocols. 3 (9), 1422-1434 (1038).</li>
<li>Hanusch, C., Hoeger, S., Beck, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anaesthesia+of+small+rodents+during+magnetic+resonance+imaging%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Anaesthesia of small rodents during magnetic resonance imaging.</a> Methods. 43 (1), 68-78 (2007).</li>
<li>Georgakopoulos, D., Kass, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estimation+of+parallel+conductance+by+dual-frequency+conductance+catheter+in+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">Estimation of parallel conductance by dual-frequency conductance catheter in mice.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 279 (1), H443-H450 (2000).</li>
<li>Esposito, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Increased+myocardial+contractility+and+enhanced+exercise+function+in+transgenic+mice+overexpressing+either+adenylyl+cyclase+5+or+8%5BTitle%5D)+AND+%22Basic+Res+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Increased myocardial contractility and enhanced exercise function in transgenic mice overexpressing either adenylyl cyclase 5 or 8.</a> Basic Res Cardiol. 103 (1), 22-30 (2008).</li>
<li>Kohout, T. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Augmentation+of+cardiac+contractility+mediated+by+the+human+beta%283%29-adrenergic+receptor+overexpressed+in+the+hearts+of+transgenic+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Augmentation of cardiac contractility mediated by the human beta(3)-adrenergic receptor overexpressed in the hearts of transgenic mice.</a> Circulation. 104 (20), 2485-2491 (2001).</li>
<li>Kim, K. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((beta-Arrestin-biased+AT1R+stimulation+promotes+cell+survival+during+acute+cardiac+injury%5BTitle%5D)+AND+%22Am+J+Physiol+Heart+Circ+Physiol%22%5BJournal%5D)">beta-Arrestin-biased AT1R stimulation promotes cell survival during acute cardiac injury.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 303 (8), H1001-H1010 (2012).</li>
<li>Suga, H., Sagawa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mathematical+Interrelationship+between+Instantaneous+Ventricular+Pressure-Volume+Ratio+and+Myocardial+Force-Velocity+Relation%5BTitle%5D)+AND+%22Annals+of+Biomedical+Engineering%22%5BJournal%5D)">Mathematical Interrelationship between Instantaneous Ventricular Pressure-Volume Ratio and Myocardial Force-Velocity Relation.</a> Annals of Biomedical Engineering. 1 (2), 160-181 (1972).</li>
<li>Suga, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ventricular+energetics%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Rev%22%5BJournal%5D)">Ventricular energetics.</a> Physiol Rev. 70 (2), 247-277 (1990).</li>
<li>Kass, D. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+contractile+state+on+curvilinearity+of+in+situ+end-systolic+pressure-volume+relations%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Influence of contractile state on curvilinearity of in situ end-systolic pressure-volume relations.</a> Circulation. 79 (1), 167-178 (1989).</li>
<li>Little, W. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+left+ventricular+dP%2Fdtmax-end-diastolic+volume+relation+in+closed-chest+dogs%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">The left ventricular dP/dtmax-end-diastolic volume relation in closed-chest dogs.</a> Circ Res. 56 (6), 808-815 (1985).</li>
<li>Glower, D. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Linearity+of+the+Frank-Starling+relationship+in+the+intact+heart%3A+the+concept+of+preload+recruitable+stroke+work%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Linearity of the Frank-Starling relationship in the intact heart: the concept of preload recruitable stroke work.</a> Circulation. 71 (5), 994-1009 (1985).</li>
<li>Sharir, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ventricular+systolic+assessment+in+patients+with+dilated+cardiomyopathy+by+preload-adjusted+maximal+power.+Validation+and+noninvasive+application%5BTitle%5D)+AND+%22Circulation%22%5BJournal%5D)">Ventricular systolic assessment in patients with dilated cardiomyopathy by preload-adjusted maximal power. Validation and noninvasive application.</a> Circulation. 89 (5), 2045-2053 (1994).</li>
<li>Baan, J., Van der Velde, E. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sensitivity+of+left+ventricular+end-systolic+pressure-volume+relation+to+type+of+loading+intervention+in+dogs%5BTitle%5D)+AND+%22Circ+Res%22%5BJournal%5D)">Sensitivity of left ventricular end-systolic pressure-volume relation to type of loading intervention in dogs.</a> Circ Res. 62 (6), 1247-1258 (1988).</li>
<li>Wei, C. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Volume+catheter+parallel+conductance+varies+between+end-systole+and+end-diastole%5BTitle%5D)+AND+%22IEEE+Trans+Biomed+Eng%22%5BJournal%5D)">Volume catheter parallel conductance varies between end-systole and end-diastole.</a> IEEE Trans Biomed Eng. 54 (8), 1480-1489 (2007).</li>
<li>Porterfield, J. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+correction+for+parallel+conductance%2C+GP%2C+and+gain+factor%2C+alpha%2C+in+invasive+murine+left+ventricular+volume+measurements%5BTitle%5D)+AND+%22J+Appl+Physiol+%281985%29%22%5BJournal%5D)">Dynamic correction for parallel conductance, GP, and gain factor, alpha, in invasive murine left ventricular volume measurements.</a> J Appl Physiol (1985). 107 (6), 1693-1703 (2009).</li>
</ol>

Les auteurs ont rien à révéler.

Nous décrivons une méthode pour perfoming analyse de la boucle pression-volume en utilisant un cathéter de conductance chez la souris, de tirer des analyses complètes des deux contractilité cardiaque et de détente. Suga, Sagawa et collègues utilisées pression-volume boucles de définir les mesures de contractilité cardiaque, en particulier la pente de la ESPVR, ou l&#39;élastance télésystolique (E s), et E max. Élastance, défini par le rapport de la pression de volume (P / V), varie sur la durée de ...

Cardiac analyse de la boucle pression-volume fournit des informations détaillées de la fonction cardiaque et sont l&#39;étalon-or pour l&#39;évaluation fonctionnelle 1. Bien que les techniques d&#39;imagerie telles que l&#39;échographie ou l&#39;IRM cardiaque fournissent des mesures fonctionnelles, ces mesures sont très dépendants des conditions de chargement. Mesures d&#39;indépendant de la charge de la contractilité cardiaque et la relaxation exigent des mesures dynamiques de la pression ventriculaire et la relation de volume sur une plage de précharge et la postcharge. Cette compréhension de la relation pression-volume provient du travail de pionnier de Sagawa et ses collègues 2,3. Ils ont démontré ex vivo coeurs canins perfusés que les dérivés mesures de contractilité de boucle pression-volume étaient indépendants des conditions de chargement 4. En application de ces analyses in vivo n&#39;a été rendu possible par le développement de cathéters de conductance dans les années 1980. Ce progrès technique a permis Kass et collègues pour effectuer pression-volume analyse en boucle chez les humains 5,6. La miniaturisation des cathéters et des améliorations dans les techniques chirurgicales conductance à la fin des années 1990, a fait sept analyse de la fonction cardiaque de rongeur possible, ce qui permet pour les études génétiques et pharmacologiques à effectuer. Cette avance a depuis conduit à l&#39;utilisation généralisée de l&#39;analyse de la boucle pression-volume et a suscité beaucoup de perspicacité dans la physiologie cardiaque des mammifères. Un concept clé dans l&#39;utilisation de cathéters de conductance et l&#39;interprétation des données obtenues à partir de ce est la relation entre le volume et la conductance. La conductance est inversement proportionnelle à la tension, qui est mesurée en utilisant un cathéter avec des électrodes placées de manière proximale, habituellement placés au-dessous de la valve aortique, et distalement, au sommet LV 8. Changements de la tension ou de la conductivité sont mesurés par les variations du courant qui en découlent proximale à l&#39;électrode distale. Bien que la piscine de sang contribuents de manière significative à la conductance, la contribution de la paroi ventriculaire, appelée la conductance parallèle (V p), de la conductance mesurée doit être soustraite pour obtenir des mesures de volume de LV absolus. Les méthodes pour effectuer cette correction, appelé un étalonnage de solution saline, sont discutés dans le protocole ci-dessous. La relation mathématique entre la conductance et le volume, décrit par Baan et ses collègues, est que le volume = 1 / α; (ρ L 2) (GG p), où α = champ uniforme facteur de correction, ρ = résistivité du sang, L = distance entre les électrodes, G = conductance G et p = conductance non-sang neuf. Il faut noter que le champ uniforme facteur de correction en se rapproche de 1,0 souris en raison du faible volume de la chambre 10. Couplé avec des transducteurs de pression, le cathéter à conductance fournit des données de pression et de volume simultanée en temps réel. PRESSU cardiaquere volume analyse présente des avantages particuliers sur les autres mesures de la fonction cardiaque, car ils permettent la mesure de la fonction ventriculaire indépendante des conditions de charge et de la fréquence cardiaque. Indices spécifiques indépendants de la charge cardiaques de la contractilité comprennent: en fin de systole relation pression-volume (ESPVR), d P / d t max relation de volume -end-diastolique, élastance maximale (E max) et de la précharge du travail systolique recrutable (PRSW). Une mesure de la fonction diastolique indépendant de la charge est le rapport de volume de fin de diastole de pression (EDPVR) 11. Le protocole décrit le déroulement de l&#39;analyse cardiaque en boucle pression-volume, en utilisant à la fois une carotide et une approche apicale. Bien que la méthodologie pour effectuer ces études ont été décrites en détail précédemment 8,11, nous passerons en revue les principales étapes pour obtenir des mesures de pression-volume précis, y compris à la fois la correction de solution saline et l&#39;étalonnage de la cuvette, et de fournir une démonstration visuelle de Thesles procédures de e. Recherche sur des animaux effectués pour cette étude a été gérée selon des protocoles approuvés et aux règles de protection des animaux du comité soin et l&#39;utilisation des animaux institutionnel de Duke University Medical Center.

<table><tbody><tr><td>AnaSed (xylazine)&nbsp ;</td><td>Lloyd Laboratories</td><td>NADA n° 139-236</td><td>Anesthésique</td></tr><tr><td>Ketaset (kétamine)</td><td>Pfizer</td><td>440842</td><td>Anesthésique</td></tr><tr><td>VIP3000</td><td>Matrx Medical Inc.</td><td></td><td>Appareil d’anesthésie</td></tr><tr><td>Ventilateur</td><td>Appareil Harvard Modèle</td><td>683</td><td>Équipement chirurgical</td></tr><tr><td>Kit de tubes Appareil</td><td>Harvard</td><td>72-1049</td><td>Équipement chirurgical</td></tr><tr><td>Couverture homéothermique&nbsp ;</td><td>Kaz Inc.</td><td>5628</td><td>Matériel chirurgical</td></tr><tr><td>Stéréomicroscope</td><td>Carl Zeiss Optical Inc.</td><td>Stemi 2000</td><td>Equipement Chirurgical</td></tr><tr><td>Illuminator</td><td>Cole&ndash ; Parmer</td><td>41720</td><td>Matériel chirurgical</td></tr><tr><td>Dumont n° 55 Dumostar Forceps&nbsp ;</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>11295-51</td><td>Instruments chirurgicaux</td></tr><tr><td>Pince Graefe, courbées&nbsp ;</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>11052-10</td><td>Instruments chirurgicaux</td></tr><tr><td>Moria MC31 pinces&nbsp ;</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>11370-31</td><td>Instruments chirurgicaux</td></tr><tr><td>Ciseaux Mayo&nbsp ;</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>14512-15</td><td>Instruments chirurgicaux</td></tr><tr><td>Ciseaux à iris&nbsp ;</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>14041-10</td><td>Instruments chirurgicaux</td></tr><tr><td>Porte-aiguille Halsey&nbsp ;</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>12501-13</td><td>Instruments chirurgicaux</td></tr><tr><td>Olsen&ndash ; Porte-aiguille Hegar&nbsp ;</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>12002-12</td><td>Instruments chirurgicaux</td></tr><tr><td>ciseaux à ressort</td><td>Fine Science Tools Inc</td><td>15610-08</td><td>Instruments chirurgicaux</td></tr><tr><td>alèses jetables</td><td>Kendall/Tyco Healthcare</td><td>1038</td><td>Fournitures</td></tr><tr><td>chirurgicales Éponges de gaze stériles, stériles&nbsp ;</td><td>Dukal</td><td>62208</td><td>Surgical Supplies</td></tr><tr><td>Applicateurs à embout de coton, stériles&nbsp ;</td><td>Solon</td><td>368</td><td>Surgical Supplies</td></tr><tr><td>Suture chirurgicale, soie, 6-0</td><td>DemeTECH</td><td>FT-639-1</td><td>Fournitures chirurgicales</td></tr><tr><td>1 cc Seringues à insuline&nbsp ;</td><td>Becton Dickenson</td><td>329412</td><td>Fournitures chirurgicales</td></tr><tr><td>Access 9 Valve d’hémostase</td><td>Merit Medical&nbsp ;</td><td>MAP111</td><td>Équipement hémodynamique</td></tr><tr><td>Tensiomètre</td><td>Baumanomètre</td><td>320</td><td>Équipement hémodynamique</td></tr><tr><td>Système photovoltaïque Millar MPVS-300/400 ou MPVS Ultra (comprend une cuvette d’étalonnage)</td><td>ADInstruments Inc</td><td></td><td>Équipement hémodynamique</td></tr><tr><td>1.4F Cathéter à conductance&nbsp ;</td><td>ADInstruments Inc</td><td>SPR-839</td><td>Équipement hémodynamique</td></tr><tr><td>PowerLab 4/30 avec Chart Pro</td><td>ADInstruments Inc.</td><td>ML866/P</td><td>Logiciel hémodynamique</td></tr><tr><td>tondeuse pour animaux</td><td>Wahl</td><td>8787-450A</td><td>Divers</td></tr><tr><td>Tubes intradermiques PE-10</td><td>Becton Dickenson</td><td>427401</td><td>Divers</td></tr><tr><td>Tubes intradermiques PE-50</td><td>Becton Dickenson</td><td>427411</td><td></td></tr><tr><td>Divers Assortiment d’aiguilles (calibre 18, 25 et 30 ; Thomas Scientific)</td><td></td><td></td><td>Divers</td></tr><tr><td>0,9 % (poids/vol) injection de chlorure de sodium, USP)</td><td>Hospira</td><td>NDC no. 0409-4888-50</td><td></td></tr><tr><td>Divers Ruban</td><td></td><td></td> chirurgical <td>Divers</td></tr><tr><td>Alconox (Alconox Inc.) pour le nettoyage des cathéters</td><td>ADInstruments Inc.</td><td></td><td>divers</td></tr></tbody></table>

cardiac pression-volume analyse boucle aide de la conductance cathéters chez la souris

Cardiac Pressure-Volume Loop Analysis Using Conductance Catheters in Mice

L’analyse de la boucle de pression cardiaque est la « référence absolue » dans l’évaluation des mesures dépendantes de la charge et indépendantes de la charge de la fonction systolique et diastolique ventriculaire. Les mesures de la contractilité ventriculaire et de la compliance sont obtenues par l’examen de la réponse cardiaque aux changements de postcharge et de précharge. Ces techniques ont été développées à l’origine il y a près de trois décennies pour mesurer la fonction cardiaque chez les grands mammifères et les humains. L’application de ces analyses à de petits mammifères, tels que les souris, a été réalisée grâce à l’optimisation des techniques microchirurgicales et à la création de cathéters de conductance. Les cathéters à conductance permettent d’estimer le pool sanguin en exploitant la relation entre la conductance électrique et le volume. Lorsqu’elles sont correctement exécutées, ces techniques permettent de tester la fonction cardiaque dans des modèles de souris mutantes génétiques ou dans des études de traitement médicamenteux. L’exactitude et la précision de ces études dépendent d’une attention particulière portée à l’étalonnage des instruments, à la réalisation systématique de mesures hémodynamiques et à l’analyse des données. Nous passerons en revue les méthodes de réalisation d’expériences de boucle pression-volume à l’aide d’un cathéter de conductance chez la souris.

Analyse en boucle pression-volume peut être utilisée pour mesurer la fonction cardiaque chez des souris génétiquement modifiées ou des souris subissant 14,15 études sur les médicaments 16. Représentant boucles de volume de pression sont prévus à partir de travaux déjà publiés 16 étudier l&#39;effet de la ß-Arrestin biaisé ligand AT1R, TRV120023. Pour tester si TRV120023 affecte la fonction cardiaque in vivo, une analyse en boucle pression-volume a été effectuée sur des souris de...

L’analyse de la boucle pression-volume cardiaque est le moyen le plus complet de mesurer la fonction cardiaque dans le cœur intact. Nous décrivons une technique pour effectuer et analyser des boucles de volume de pression cardiaque, à l’aide de cathéters à conductance.

Cardiac pression-volume Analyse boucle aide de la conductance cathéters chez la souris

Cardiac pressure-volume loop analysis is the &#8220;gold-standard&#8221; in the assessment of load-dependent and load-independent measures of ventricular ...

L'objectif général de cette procédure est d'évaluer les mesures de la fonction ventriculaire, systolique et diastolique dépendantes et indépendantes de la charge. Cela est réalisé en premier lieu par l'insertion d'un cathéter de conductance dans le ventricule gauche du cœur d'une souris. Dans une deuxième étape, l'aorte est comprimée pour modifier la post-charge, suivie de la modification de la précharge par la compression de la veine cave inférieure.Dans la dernière étape, le cathéter de conductance est soigneusement étalonné afin d'évaluer avec précision les variations du volume de la cavité cardiaque. En définitive, l'analyse pression-volume cardiaque est utilisée pour obtenir des mesures de la fonction cardiaque dépendantes et indépendantes de la charge. Les implications de cette technique s'étendent à la thérapie des dysfonctionnements cardiaques, car elle permet à la fois une évaluation rigoureuse de la fonction cardiaque et la mise en évidence de phénotypes fonctionnels passés inaperçus lors d'examens non invasifs.Le Dr. Lan Mao, neurochirurgien de souris de notre laboratoire, démontrera cette procédure 30 minutes avant de placer un cathéter de conductance dans la chambre du ventricule gauche. Immergez la pointe du cathéter dans du sérum physiologique tiède pendant que la pointe trempe. Rasez le cou et la poitrine d'une souris adulte anesthésiée et placez l'animal sur un tapis chauffant.Après avoir appliqué de la pommade sur les yeux de l'animal, réalisez une incision médiane au niveau du cou et disséquez les muscles trachéaux pour exposer la trachée. Ensuite, insérez un tube endotrachéal par la bouche en visualisant la trachée pour en assurer un positionnement correct, puis reliez le tube au respirateur. Réglez les paramètres du ventilateur en fonction du poids de l'animal, comme indiqué.Ensuite, pour placer le cathéter par une approche carotidienne, réalisez une incision au-dessus de la carotide droite, de la mâchoire au sternum, puis disséquez les tissus environnants afin d'exposer la carotide droite. Ensuite, sectionnez le nerf vague qui longe la carotide et placez une suture en soie 6/0 autour de l'extrémité distale de l'artère carotide. Placez deux sutures supplémentaires sous l'artère carotide, proximales par rapport à la première suture, en nouant lâchement la suture médiane.Ensuite, tirez doucement sur le point proximal et utilisez une pince pour fixer le point à la peau. Lorsque l'artère carotide a été clampée, à la fois proximalement et distalement, pratiquez une petite incision dans l'artère carotide droite, située proximalement par rapport au premier point, et prolongée longitudinalement vers le thorax. Insérez maintenant la pointe du cathéter de conductance imprégnée de sérum physiologique dans le vaisseau par l'incision, en utilisant le point médian pour fixer le cathéter.Ensuite, avancer doucement le cathéter dans le ventricule gauche par la carotide. Observer le tracé du diagramme pression-volume pour s'assurer d'un positionnement correct ; un positionnement optimal du cathéter produira des boucles pression-volume ayant une apparence rectangulaire pendant cinq à dix minutes après l'insertion. Enregistrer les boucles pression-volume de base jusqu'à l'obtention d'un état stable pour positionner le cathéter selon une approche apicale. Réaliser l'incision initiale depuis l'appendice xiphoïde à travers la paroi thoracique latéralement jusqu'à ce que le diaphragme soit visible.Couper le diaphragme pour visualiser l'apex du cœur et utiliser une aiguille de calibre 25 à 30 pour pratiquer une plaie piquée sur l'apex du ventricule gauche. Ensuite, insérer le cathéter de conductance à travers la plaie jusqu'à ce que l'électrode proximale soit juste à l'intérieur du ventricule. Puis enregistrer les boucles pression-volume de base comme vient de l'être démontré, en faisant varier la post-charge par occlusion aortique transitoire.Commencez par pratiquer une petite incision horizontale dans la partie supérieure de la poitrine et disséquez les tissus environnants afin d'exposer l'aorte transverse. Placez un ligature en soie 6.0 sous l'aorte transverse. Ensuite, lorsque les boucles pression-volume sont revenues à la ligne de base, insérez les deux extrémités de la ligature dans un petit segment de tube PE 50, regroupez les deux extrémités du fil avec une pince à aiguille, puis relevez doucement et lentement le fil pendant une à deux secondes, suivie d'une libération progressive de la tension exercée sur le vaisseau.Les enregistrements optimaux doivent comporter au moins cinq cycles de boucles pression-volume et présenter une augmentation régulière des pressions en fin de systole pendant l'application de la tension sur le fil de suture. Pour faire varier la précharge par occlusion transitoire de la veine cave inférieure, pratiquez une incision verticale sous le processus xiphoïde et en dessous du diaphragme afin d'exposer la veine cave inférieure.Placer un ligature de soie de six oh sous la veine cave inférieure. Ensuite, une fois que les boucles pression-volume sont revenues à la ligne de base, saisir les deux extrémités du fil avec une pince à aiguille et soulever doucement et lentement le fil sur une durée d'une à deux secondes, suivie d'une libération progressive de la tension sur le vaisseau. Les enregistrements optimaux doivent comporter au moins cinq cycles de boucles pression-volume et présenter une diminution régulière des pressions ventriculaires gauche et diastoliques pendant l'application de la tension sur le fil afin d'effectuer une étalonnage au sérum physiologique.À la fin de l'étude, injecter une bolus de 10 microlitres de solution saline hypertonique dans l'animal par la veine jugulaire afin d'obtenir une valeur de conductance parallèle. Une augmentation apparente du volume sera observée sans changement de pression, en raison de la variation de la conductance du compartiment sanguin. Pour effectuer un étalonnage vete, réchauffer un vete comportant des puits de diamètre connu à 37 degrés Celsius et remplir les trois premiers trous avec du sang frais, réchauffé et hépariné.Le sang provenant de souris subissant des évaluations hémodynamiques est placé dans un adaptateur en plastique fourni par le fabricant pour le vete. Cet adaptateur maintiendra le cathéter de conductance immobile pendant l'étalonnage. Ensuite, insérez le cathéter de conductance dans le premier puits jusqu'à ce que toutes les électrodes soient immergées.Enfin, enregistrez la conductance dans le canal de volume afin de tester si le ligand du récepteur de l'angiotensine de type un biaisé vers l'arrestine bêta, TR RV 1 2 0 0 2 3, affecte la fonction cardiaque. Une analyse in vivo des boucles pression-volume a été réalisée sur des souris de type sauvage recevant des bloqueurs classiques ou nouveaux des récepteurs de l'angiotensine. En effet, dans cette expérience, l'infusion intraveineuse de TR RV 1 2 0 0 2 3 a augmenté significativement la contractilité cardiaque par rapport aux traitements classiques et au traitement témoin.Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment effectuer une analyse des boucles pression-volume en utilisant à la fois la constriction aortique et celle de la veine cave inférieure afin d'obtenir des mesures de la fonction cardiaque dépendantes et indépendantes de la charge.

cardiac-pressure-volume-loop-analysis-using-conductance-catheters

Research

Recherche

JoVE Journal

Biology

Biologie

Cet article décrit la mesure de la fonction ventriculaire gauche murine via l’analyse de la pression/volume à différentes fréquences cardiaques.

Cathétérisme cardiaque chez la souris pour mesurer le volume de pression Relation: Étudier les effets Bowditch

Ce manuscrit décrit un protocole détaillé pour la collecte de données de pression-volume de la souris.

Mesure de boucles de volume de pression chez la souris

Nous présentons ici un protocole permettant d’évaluer la fonction cardiaque biventriculaire chez la souris en générant des boucles pression-volume (PV) à partir du ventricule droit et du ventricule gauche chez le même animal à l’aide d’un cathétérisme thoracique fermé. L’accent est mis sur l’aspect technique de la chirurgie et l’acquisition de données.

Évaluation biventriculaire de la fonction cardiaque et des boucles pression-volume par cathétérisme thoracique fermé chez la souris

Nous décrivons ici une analyse de la boucle pression-volume cardiaque sous des doses croissantes d’isoprotérénol perfusé par voie intraveineuse pour déterminer la fonction cardiaque intrinsèque et la réserve β-adrénergique chez la souris. Nous utilisons une approche à poitrine ouverte modifiée pour les mesures de boucle pression-volume, dans laquelle nous incluons la ventilation avec une pression expiratoire positive.

Réponse cardiaque à la stimulation β-adrénergique déterminée par l’analyse de la boucle pression-volume

Nous présentons ici une approche thoracique fermée pour les enregistrements de boucle de pression-volume bi-ventriculaires basés sur l’admission chez les porcs présentant un dysfonctionnement ventriculaire droit aigu.

Enregistrements en boucle pression-volume biventriculaire thoracique fermé avec cathéters d’admission dans un modèle porcin

Le présent protocole décrit l’obtention de la relation pression-volume par la stimulation transœsophagienne, qui constitue un outil précieux pour évaluer la fonction diastolique dans des modèles murins d’insuffisance cardiaque.

Procédure contrôlée par la stimulation pour l’évaluation des fonctions diastoliques dépendantes de la fréquence cardiaque dans des modèles murins d’insuffisance cardiaque

Ce protocole décrit une méthode de mesure de la pression et du volume ventriculaires gauches à l’aide de la technique de conductance pression-volume. Cette méthode permet une surveillance continue et en temps réel des effets des médicaments sur le cœur.

Détection en temps réel des effets de l’acide férulique sur le ventricule gauche du rat à l’aide d’un cathéter de conductivité pression-volume

Courant ionique des canaux BK est enregistrée en utilisant des techniques de patch-clamp. Canaux BK sont exprimés...

Patch Clamp et des techniques de perfusion pour étudier les canaux ioniques Exprimé en Xenopus Ovocytes

Ici, nous décrivons une méthodologie pour livrer cordon humain dérivés du sang endothéliales cellules formant des colonies (CPEF) et de la moelle osseuse des cellules souches mésenchymateuses (CSM), incorporé dans un gel de collagène / fibronectine, sous-cutanée dans des souris immunodéficientes. Cette combinaison de cellules / gel génère un réseau humain vasculaire qui se connecte avec la vascularisation de la souris.

Bioingénierie de l&#39;homme Réseaux microvasculaires chez des souris immunodéficientes

Les tentatives pour exprimer le régulateur de la conductance transmembranaire de la mucoviscidose (CFTR)...

Expression et purification de la protéine transmembranaire de la fibrose kystique conductance Regulator dans Saccharomyces cerevisiae

Apprenez l'analyse des boucles pression-volume cardiaque chez la souris à l'aide de cathéters de conductance. Cette méthode permet d'évaluer rigoureusement la fonction ventriculaire systolique et diastolique.

Cardiac pression-volume Analyse boucle aide de la conductance cathéters chez la souris

Explorer plus de vidéos