Name: Simple et test olfactif pour souris assistée par ordinateur (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-06-15T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 40 s
Description: Découvrez un test olfactif simple pour souris permettant d'évaluer la discrimination, la préférence et l'évitement des odeurs. Cette méthode assistée par ordinateur utilise une analyse vidéo avec ImageJ pour étudier les comportements olfactifs innés chez différents génotypes.

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Ce travail est financé par le Fonds National Suisse (31_138429) et la Fondation Synapsis pour le soutien à la recherche sur la maladie d’Alzheimer.

Toutes les procédures sur les animaux sont conformes à la directive européenne 2010/63 / UE sur la protection des animaux utilisés à des fins scientifiques et sont approuvés par le comité local de protection des animaux (Canton de Fribourg, Suisse). 1. Préparation d&#39;un animal <ol><li> Les animaux de laboratoire <ol><li> Réaliser des expériences sur des hommes adultes de type sauvage et des souris transgéniques (C57BL / 6 de fond) de 3-5 mois d&#39;âge. Les trois groupes de souris sauvages correspondent à des contrôles de type même portée (groupe A, Jagged1 flox / flox 19) et deux lignes conditionnelles de souris KO (groupe B, et C Jagged1ncKO, Jagged1gcKO). </li><li> Les souris domestiques dans des conditions standard de laboratoire dans une pièce bien aérée, avec un cycle d&#39;obscurité / de lumière contrôlée 12 h et fournissent de la nourriture et de l&#39;eau ad libitum. </li></ol></li></ol> 2. Installation expérimentale <ol><li> Arène expérimentale <ol><li> Pour l&#39;arène expérimentale, utiliser une cage de la souris stérilisée (36 cm longueur x 20,5 cm largeur x 13,5 cm de hauteur) (figure 1A). </li><li> Attribuez à chaque souris dans une cage numérotée avec une literie fraîche, 3 cm de haut. Si des cages sont réutilisés, comme dans le test de sensibilité aux odeurs, prendre les mesures suivantes afin d&#39;éviter la contamination croisée entre les odeurs et les souris. <ol><li> Marquez le côté de l&#39;eau. </li><li> Nettoyez les parois étroites des cages avec deux papiers tissus pulvérisés avec 70% d&#39;éthanol, un pour chaque côté. </li><li> Accumuler des cages en fonction du génotype des souris et stocker temporairement sous une hotte laminaire. </li></ol></li></ol></li><li> Caméra <ol><li> Monter un appareil photo sur un trépied personnalisé avec l&#39;objectif à 58 cm du fond de la cage (figure 1A). Fixer la position du trépied et la cage et délimiter avec des marques pour permettre à la caméra à être centrée sur la partie supérieure de la cage. </li><li> Enregistrer des vidéos à 320 pixels x 240 pixels, 15.08 images par seconde que les fichiers MOV. </li></ol></li><li> Odeurs <ol><li> Reprendre le scents, lorsque cela est indiqué, dans le solvant dans lequel ils sont solubles. </li><li> Pour le test de préférence de beurre d&#39;arachide utilisation. Remettre en suspension le beurre d&#39;arachide dans l&#39;huile d&#39;arachide (10% p / v). </li><li> Pour éviter l&#39;utilisation de test pur 2-méthylbutyrique (2 Mo) d&#39;acide (98%). </li><li> Pour le test de sensibilité, utiliser l&#39;urine des femmes de la même colonie de souris et le fond (C57BL / 6). <ol><li> Pour plus de commodité recueillir l&#39;urine 1-2 jours avant le test olfactif. Retenir et maintenez la souris sous le capot avec son ventre dessus de la grille de la cage. Sous la grille de la cage placer un plat de Pétri en plastique pour recueillir les gouttes d&#39;urine. </li><li> Recueillir l&#39;urine de chaque femelle dans un tube de 1,5 ml et mélanger tous les échantillons d&#39;urine pour normaliser la variabilité entre les animaux. Stocker à -20 ° C jusqu&#39;à utilisation. </li><li> Le jour de l&#39;expérience, dégeler l&#39;urine et d&#39;effectuer 4 dilutions dans l&#39;eau distillée deux fois à un facteur de dilution de 10 (1:10, 1: 100, 1: 1000; 1: 10 000). </li></ol></li></ol></li></ol>3. Test olfactive Note: Dans le présent Protocole odeurs ont été délibérément choisies qui sont perçus comme attractifs forts (beurre d&#39;arachide et d&#39;urine féminine) ou répulsif forte (acide 2-MB) 15. Il est important de procéder à la préférence et des tests de sensibilité aux odeurs agréables avant le test d&#39;évitement pour éliminer la possibilité d&#39;une interférence avec le comportement olfactif. Néanmoins, pour des raisons de simplicité, dans ce domaine, test de préférence et l&#39;évitement papier seront tous deux décrits dans le cadre du test de perception. Chaque session de comportement commence par une phase d&#39;accoutumance. <ol><li> L&#39;accoutumance Phase <ol><li> Placez l&#39;animal dans la cage attribué propre et laissez-le explorer pendant 5 min (figure 1B). Etant donné que l&#39;environnement de la cage expérimentale est familier à la cage d&#39;accueil, ce court laps de temps est suffisant pour permettre une accoutumance. </li><li> Si le test de sensibilité est achevé en un jour, effectuer accoutumance qu&#39;une seule fois avant l&#39;application de l&#39;odeur dilué plus élevé. Si le test de sensibilité est effectuée à des jours différents, chaque jour sur une période d&#39;habituation d&#39;une nouvelle cage propre est nécessaire. </li></ol></li><li> Perception test <ol><li> Après l&#39;accoutumance, activer l&#39;appareil photo et la pipette juste 60 pi de l&#39;odeur agréable (beurre d&#39;arachide) et 60 pi de l&#39;odeur neutre (eau du robinet) sur les parois opposées de la cage à environ 10 cm du bas (figure 1C). </li><li> Laissez la souris explorer les odeurs pendant 2 min (figure 1D). Ensuite, éteignez l&#39;appareil photo. </li><li> À ce stade, procéder à la prochaine souris à partir de la phase d&#39;habituation. Effectuer le test d&#39;évitement exactement de la même manière en appliquant 60 ul de l&#39;odeur répulsive (acide 2-MB) et 60 pi d&#39;eau. </li></ol></li><li> Test de sensibilité <ol><li> Évaluer le seuil d&#39;attraction de souris mâles à des concentrations croissantes de l&#39;urine des femmes dans l&#39;ordre suivant: 1: 10.000; 1: 1000; 1: 100; 1:10 et l&#39;urine pure. </li><li> Après l&#39;accoutumance, exposer chaque souris à la dilution la plus élevée à la pipette par l&#39;expérimentateur, comme décrit précédemment en 3.2.1. </li><li> Notez le comportement exploratoire d&#39;urine rapport à l&#39;eau, dans un laps de temps de 2 min sur une caméra vidéo. Après que toutes les cohortes de souris sont testés pour la dilution la plus élevée (1: 10.000), à exposer une plus grande concentration de l&#39;urine, comme indiqué ci-dessus. </li></ol></li></ol> Analyse des données 4. post-hoc Note: Tous les tests comportementaux décrits sont traitées post hoc en suivant les instructions d&#39;analyse de données. <ol><li> Ouvrir des fichiers MOV dans ImageJ pour les systèmes Windows <ol><li> Installer Quick Time pour Java en utilisant les paramètres personnalisés à partir http://www.apple.com/quicktime/download. </li><li> Installez le plugin Quick Time à partir du site ImageJ (http://rsb.info.nih.gov/ij/plugins/qt-capture.html). </li><li> Importez le QTJava.zip (C: Program Files QuickTime QTSystem) dans les extensomètres de la bibliothèqueion de ImageJ (.ImageJ jre lib ext). </li><li> Copiez aussi le QTJava.zip dans le dossier plugins et renommez-le comme QTJava.jar. </li><li> Installez les six scripts attachés dans le dossier Macros (ImageJ plugins Macros). </li><li> Ouvrir ImageJ et compiler et exécuter le plugin Quick Time, par la suite, à proximité ImageJ. </li><li> Rouvrez ImageJ et ouvrez le fichier MOV en utilisant Fichier&gt; Importation&gt; utilisant Quick Time. </li></ol></li><li> Ajustement de la vidéo <ol><li> Une fois que le fichier vidéo est ouvert dans ImageJ, couper la vidéo pour obtenir une exploration de 2 min constante à partir du moment de l&#39;expérimentateur a pipette les substances odorantes dans la cage (T0). Identifier la trame correspondant à T0 et retirer les images précédentes en utilisant des incréments de 1 (ImageJ image Stacks ToolsSlice décapant). Utilisez la même commande pour supprimer tous les cadres supérieurs à l&#39;exploration de 2 min. </li><li> Assurez-vous que la cage est centré et si nécessaire utiliser l&#39;Image&gt; Transformation&gt; commande Rotation pour l&#39;aligner. </li></ol></li><li> Voiro Traitement Remarque: Le traitement vidéo est entièrement assistée par ordinateur et utilise des commandes macros accompagnant ce papier. <ol><li> Afin de limiter la région sur la cage d&#39;un x 218 pixels taille 127 pixels exécuter l&#39;étape 1 de la macro Plugin&gt; Macros&gt; Exécuter la commande. Déplacez le rectangle fixe sur la cage (Figure 2, Etape 1). </li><li> Recadrer la zone de la cage sur la région d&#39;intérêt (ROI) en utilisant la macro Étape 2 (Figure 2, Etape 2). </li><li> Utilisez l&#39;Étape 3 macro pour extraire l&#39;image de la souris à partir de l&#39;arrière-plan par l&#39;attribution d&#39;un signal de seuil, supprimant les impuretés et en filtrant la variance du signal. Les valeurs de sortie dans le complot de l&#39;axe Z indiquent les valeurs de gris moyen, correspondant à l&#39;intensité de l&#39;ombre de la souris se déplaçant dans le ROI de la «chambre de l&#39;eau&quot; lors de l&#39;exploration de 2 min. Copiez les résultats dans une feuille de calcul nommée selon le ROI dans un fichier tableur (Figure 2, Étape 3). </li><li> Utilisez l&#39;Étape 4 macroextraire les valeurs de gris moyen de la souris dans la &quot;chambre de l&#39;odeur&quot; de retour sur investissement. Copiez les résultats dans une feuille de calcul nommée selon le ROI dans le même fichier de tableur comme dans 4.3.3 (Figure 2, Étape 4). </li><li> Afin de restreindre davantage l&#39;analyse du mouvement de la souris dans le ROI &quot;périmètre de l&#39;eau&quot; utiliser l&#39;Étape 5 macro. Copiez le résultat sur ​​la feuille de calcul nommée selon le ROI dans le même fichier de tableur comme dans 4.3.3 (Figure 2, étape 5). </li><li> Pour limiter l&#39;analyse du mouvement de la souris dans le ROI &quot;périmètre de l&#39;odeur&quot; utiliser l&#39;Étape 6 macro. Copiez le résultat sur ​​la feuille de calcul nommé d&#39;après le fichier de feuille de calcul ROI comme dans 4.3.3 (Figure 2, Étape 6). </li><li> Traiter toutes les vidéos et vérifier la cohérence dans le nombre d&#39;images par les animaux. Ici, enregistrer tous les animaux pour 1810 trames correspondant à une session d&#39;exploration de 2 min. </li><li> Pour chaque animal, et pour chaque ROI sorte cadres avec VA gris moyenLues supérieur à 0. Diviser le nombre d&#39;images par les valeurs correspondant à 1 seconde et obtenir les secondes passées dans chaque ROI. </li></ol></li></ol> 5. Analyse statistique <ol><li> Pour chaque test de vérifier l&#39;homogénéité de la variance dans les groupes / génotypes par le test de Bartlett en utilisant la formule disponible sur http://www.real-statistics.com/one-way-analysis-of-variance-anova/homogeneity-variances/. </li><li> Dans le test de l&#39;attraction et l&#39;évitement, réaliser des comparaisons entre les moments passés avec de l&#39;eau par rapport à l&#39;odeur dans un groupe utilisant le test t de Student non-directionnelle en supposant que les écarts égaux ou inégaux en fonction des résultats du test de Bartlett. Comparer les moments passés avec les odeurs soustraites par le temps passé avec de l&#39;eau entre les génotypes par une analyse de la variance avec le test post-hoc de Bonferroni. </li><li> Dans le test de sensibilité analyser les comparaisons du temps passé avec l&#39;odeur soustrait du temps passé avec Water chez les groupes à un dilutions spécifiques d&#39;urine par une analyse de variance avec le test post-hoc de Bonferroni. Comparer la sensibilité parmi les groupes à des concentrations d&#39;odeurs en croissance de 2-Way ANOVA avec des répétitions avec le test post-hoc de Bonferroni. </li><li> Interaction entre les génotypes et les traitements dans le test de l&#39;attraction et l&#39;évitement sont étudiées par 2 ANOVA avec le test post-hoc de Bonferroni. </li></ol>

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<li>Kobayakawa, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Innate+versus+learned+odour+processing+in+the+mouse+olfactory+bulb%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Innate versus learned odour processing in the mouse olfactory bulb.</a> Nature. 450 (7169), 503-508 (2007).</li>
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<li>Corthell, J., Stathopoulos, A., Watson, C., Bertram, R., Trombley, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Olfactory+Bulb+Monoamine+Concentrations+Vary+with+Time+of+Day%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Olfactory Bulb Monoamine Concentrations Vary with Time of Day.</a> Neuroscience. 247, 234-241 (2013).</li>
<li>Lehmkuhl, A. M., Dirr, E. R., Fleming, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Olfactory+assays+for+mouse+models+of+neurodegenerative+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%3A+JoVE%22%5BJournal%5D)">Olfactory assays for mouse models of neurodegenerative disease.</a> Journal of Visualized Experiments: JoVE. (90), e51804(2014).</li>
</ol>

Il n’y a pas de conflit d’intérêts.

Les critères proposés dans ce protocole permettent d&#39;évaluer différents aspects du comportement olfactive innée chez la souris: la perception des odeurs, de la discrimination entre les odeurs par rapport à l&#39;eau et la sensibilité aux odeurs. Ce protocole peut être appliqué à toute odeur selon la préférence et de l&#39;échelle d&#39;évitement 15 précédemment montré. Depuis le protocole est basé sur l&#39;activité exploratoire, il est important que les souris ne présentent pas de déficience motrice ou d...

L&#39;olfaction est l&#39;une des fonctions sensorielles les plus développés et les plus importants chez les mammifères. Toute dépréciation de l&#39;activité olfactive peut affecter l&#39;apport alimentaire, le comportement social et, dans le pire des cas, même la survie. Chez les humains, la dégradation olfactive dépend 1 ans et est considéré comme un puissant prédicteur de troubles neurologiques 2 - 6. Le test d&#39;identification olfactif développé par l&#39;Université de Pennsylvanie représente actuellement l&#39;un des tests diagnostiques les plus utilisés, non invasives et quantifiables qui permettent d&#39;évaluer les déficits neurologiques précoces 7 et de prédire avec une forte probabilité de la progression de la démence 8,9. L&#39;accessibilité du système olfactif et l&#39;importance de l&#39;olfaction chez les rongeurs, a suscité une ligne intense de recherche portant sur ​​les mécanismes sous-jacents des fonctions olfactives 10. Nous avons précédemment montré que la perte de fonction de la signalisation de réceptou Notch1 affecte éviter olfactive 11. Dans ce protocole, nous utilisons des souris dépourvues du ligand de signalisation, Jagged1, dans les neurones ou cellules gliales pour étudier la performance olfactive. Innate olfaction est définie par trois paramètres que la perception, de la discrimination entre les odeurs et la sensibilité olfactive 4. Les tests olfactifs chez les rongeurs peut être fait dans une variété de façons et certaines études comportementales faire usage de olfactomètres, qui fournissent l&#39;odeur de l&#39;animal à une concentration spécifique de la vapeur et dans un laps de temps précis 12-14. Néanmoins, cette instrumentation est coûteux et pourraient être disponibles uniquement dans des installations spécialisées. Dans notre travail, nous fournissons un protocole de test olfactif simple, rapide et reproductible, qui est effectuée à l&#39;aide des parfums volatils. Les tests décrits mesure la perception à un appât ou une odeur répulsive et évaluer la discrimination entre le parfum et 11,15,16 de l&#39;eau. En utilisant la même configuration, we peut également mesurer la sensibilité d&#39;une odeur à différentes concentrations 16,17. Le traitement vidéo assistée par ordinateur post-hoc, inspiré par le travail de la page et ses collègues 18, fournit des résultats impartiaux, sans la nécessité d&#39;aveuglement expérimentale et permettant pour une personne seule à réaliser toute l&#39;expérience. Ce protocole est destiné à fournir un point de départ pour étudier le comportement olfactive chez la souris.

<table><tbody><tr><td>Cage à souris</td><td>Italplast (Italie)</td><td>1144B</td><td>36 cm de longueur x 20,5 cm de largeur x 13,5 cm de hauteur</td></tr><tr><td>Litière en bois déchiqueté</td><td>Abedd (Autriche)</td><td>LTE E-001</td><td>3 cm de haut</td></tr><tr><td>Beurre de cacahuète</td><td>Migros (Suisse)</td><td>NA</td><td>1:10</td></tr><tr><td>2-Methylbutyric</td><td>Sigma Aldrich (Suisse)</td><td>W269514</td><td></td></tr><tr><td>Pure Urine femelle provenant de femelles fertiles de la même souche de souris</td><td>NA</td><td>NA</td><td>Série de dilution</td></tr><tr><td>Appareil photo</td><td>Olympus (US)</td><td>Fichiers MOV</td> <td>Camedia C-8080</td></tr><tr><td>Quicktime pour Java (Windows)</td><td>Apple (USA)Plugin</td> vidéo <td>NA</td><td>pour la visualisation des fichiers MOV</td></tr><tr><td>ImageJ pour Windows</td><td>NIH (USA)</td><td></td><td>NA Traitement/Analyse</td></tr></tbody></table> vidéo

simple et test olfactif pour souris assistée par ordinateur

Simple and Computer-assisted Olfactory Testing for Mice

L&#39;olfaction est hautement conservée entre les espèces et est nécessaire pour la reproduction et la survie. Chez les humains, l&#39;olfaction est également l&#39;un des sens qui est affectée au vieillissement et est un fort prédicteur de maladies neurodégénératives. Ainsi, le test de l&#39;olfaction est utilisé comme une méthode de diagnostic non invasif pour détecter des déficits neurologiques dès le début. Afin de comprendre les mécanismes sous-jacents olfactive susceptibilité du réseau, la recherche olfactive chez les rongeurs a pris de l&#39;ampleur dans la dernière décennie. Ici, nous présentons un temps méthode de test olfactif très simple, efficace et reproductible de la perception des odeurs innée et la sensibilité chez la souris, sans la nécessité de toute restriction de la nourriture ou de l&#39;eau avant. Les tests sont effectués dans un environnement familier pour les souris, exiger que les senteurs et une session de 2 min d&#39;exposition odorant. L&#39;analyse est effectuée, post-hoc, en utilisant les commandes assistées par ordinateur sur ImageJ et peut être, par conséquent,, Réalisée à partir de début à la fin par un chercheur. Ce protocole ne nécessite aucune configuration matérielle ou spéciale et est indiqué pour tout laboratoire intéressé à tester la perception olfactive et de la sensibilité.

Le test de perception mesure l&#39;attraction au beurre d&#39;arachide et d&#39;éviter à l&#39;acide 2-MB. Trois groupes de souris ont été testés et le temps passé dans le &quot;périmètre d&#39;odeur&quot; sont quantifiées par rapport à l&#39;eau. Dans le test de préférence, le groupe témoin présente une préférence significative de l&#39;odeur par rapport à l&#39;eau (8 t = 2,52, p &lt;0,05). D&#39;autre part, le groupe B ne montre aucune activité significative au beurre d&#39;arachide et passe plus de temps ...

Nous présentons un test olfactif simple et non biaisé chez la souris. Avec ce protocole, la discrimination olfactive, la préférence, l’évitement et la sensibilité à une nouvelle odeur par rapport à l’eau peuvent être évalués en une seule séance comportementale. Cette méthode est indiquée pour un seul expérimentateur et l’analyse est basée sur un traitement vidéo assisté par ordinateur.

Simple et test olfactif pour souris assistée par ordinateur

Olfaction is highly conserved among species and is required for reproduction and survival.
In humans, olfaction is also one of the senses that is affected ...

L'objectif général de l'expérience suivante est de tester la discrimination olfactive innée, la préférence ou l'évitement olfactif et la sensibilité olfactive chez les souris. Cela est réalisé en exposant la souris à un attractant ou à un agent appétent nouveau, ainsi qu'à une odeur neutre, qui est l'eau. Pendant ce temps, une caméra vidéo enregistre la session comportementale.Ensuite, la vidéo est analysée dans Image J à l’aide des macros fournis afin d’obtenir le temps passé dans les paramètres odorat et eau. Les résultats montrent un comportement de préférence ou d’évitement vis-à-vis des odeurs par rapport à l’eau chez différents génotypes, selon une analyse informatique post hoc. Le principal avantage du test olfactif par rapport à l’utilisation d’une arène et d’un dispositif olfactométrique dédiés réside dans le fait qu’il utilise une arène familière, ce qui permet une réalisation rapide et un montage simple.En outre, cette procédure utilise un matériel peu coûteux et sera démontrée par Emmanuel Abry, étudiant dans mon laboratoire. Pour cette expérience, utilisez des souris mâles âgées de trois à cinq mois, de souche C57BL/6, de type sauvage et transgéniques. Cette démonstration utilise deux lignées de souris invalidées ainsi que des témoins provenant de la même portée.Pour les arènes expérimentales, utilisez des cages à souris propres et stérilisées avec trois centimètres de litière. Ensuite, préparez le dispositif de caméra. Placez-la à 58 centimètres au-dessus du fond de la cage sur un support de trépied personnalisé.Faites quelques marques sur le plan de travail pour indiquer l'emplacement que doit occuper la cage. Pour une image centrée, réglez la caméra pour enregistrer une vidéo de 320 par 240 pixels à environ 15 images par seconde. Pour préparer l'expérimentateur, conservez des concentrés de chaque odeur dans un solvant, chaque fois que possible.Pour le test de préférence, préparez une solution de 10 % poids par volume de beurre d'arachide dans de l'huile d'arachide. Pour le test d'évitement, préparez une solution contenant 98 % d'acide méthylbutyrique. Pour le test de sensibilité, recueillez l'urine de souris femelle d'une même souche un à deux jours avant le test.Immobilisez une femelle avec son ventre au-dessus de la grille de la cage et recueillez des gouttes de son urine dans une coupelle en plastique. Prélevez des échantillons provenant de plusieurs femelles afin de normaliser. En raison de la variabilité individuelle, rassemblez tous les échantillons dans un tube de 1,5 millilitre et conservez-les à moins 20 degrés Celsius.Pour commencer, habituez l'animal en le plaçant dans une cage propre et en lui permettant d'explorer. Pendant cinq minutes, l'environnement de la cage de test doit être identique à celui de la cage d'origine. Répétez la phase d'habituation une fois par jour de test ; lorsque la période d'habituation est terminée, démarrez l'enregistrement et pipetez 60 microlitres d'une odeur agréable.Dans ce cas, appliquez du beurre d'arachide sur un mur et, sur le mur opposé, pipetez la même quantité d'eau. Appliquez les gouttes d'une odeur neutre à environ 10 centimètres du haut de chaque mur. Laissez maintenant l'animal explorer pendant deux minutes, puis arrêtez l'enregistrement et remettez la souris dans sa cage d'origine.Répétez le processus pour chaque souris à tester. Utilisez toujours de nouvelles cages d'essai. Trois à cinq jours après avoir effectué tous les tests de préférence, réalisez le test d'évitement en utilisant une nouvelle cage d'essai.Pour chaque souris, réalisez le test d'évitement. Comme pour le test d'attraction, remplacez uniquement l'odeur agréable par l'odeur d'évitement, constituée de l'acide deux méthyl butyrique. Pour le test de sensibilité, une cage peut être réutilisée entre les essais pour la même souris.Marquez donc le côté eau de la cage et préparez-vous à nettoyer les parois courtes avec du papier imbibé d'éthanol à 70 % entre chaque essai. Le jour de l'expérience, préparez quatre concentrations d'urine selon une série de dilutions dix fois. En utilisant de l'eau doublement distillée comme dans le test d'évitement, habituez chaque animal à sa cage de test pendant cinq minutes.Ensuite, exposer chaque souris à l'urine à la dilution la plus élevée dans un premier temps, soit un à 10 000. Pendant l'enregistrement, appliquer la dilution d'urine dans la cage de test et appliquer de l'eau sur le mur opposé. Comme cela a été fait pour les autres tests, laisser l'animal explorer.Pendant deux minutes. Ensuite, transférez l'animal dans une cage propre pour souris. Une fois que tous les animaux ont été exposés à la concentration la plus faible, nettoyez les parois de toutes les cages de test et répétez l'expérience sur chaque souris en utilisant l'urine de concentration immédiatement supérieure.Continuer ce processus jusqu'à ce que l'urine pure soit testée. Après avoir recueilli toutes les données d'une expérience, ouvrir les vidéos dans ImageJ pour les réglages et les détails de traitement, dont les protocoles sont fournis dans le texte en utilisant les protocoles décrits. Deux lignées d'invalidation différentes.Les groupes B et C ont été comparés au groupe témoin constitué de litière du groupe A. Un test T de Student non directionnel avec variance égale ou inégale compare le temps passé entre l'odeur et l'eau au sein des génotypes. Comparez le comportement entre les génotypes à l'aide d'une ANOVA à un facteur. Les deux groupes expérimentaux, B et C, n'ont montré aucune préférence pour l'odeur attractive. Dans le test d'évitement, la réponse face à l'odeur répulsive de l'acide 2-méthylbutyrique était conforme aux attentes pour les groupes A et B, mais le groupe C n'a montré aucun comportement d'évitement face à cette odeur.Dans le test de sensibilité, le seuil d'attraction a été obtenu en soustrayant le temps passé avec l'urine du temps passé avec l'eau, l'urine étant préférée à l'eau à une dilution de un à 1000. Alors que les deux groupes expérimentaux, B et C, nécessitaient une concentration 100 fois plus élevée pour montrer une préférence. Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée en quelques heures si elle est effectuée correctement, puis d'autres méthodes, telles que l'apprentissage olfactif et l'extinction, peuvent être appliquées selon cette procédure afin d'étudier la plasticité olfactive et l'apprentissage.

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