Name: La thérapie photodynamique avec Blended polymère conducteur / Fullerene nanoparticules photosensibilisants (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-10-28T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 45 s
Description: Découvrez la fabrication de nanoparticules de polymère conducteur/fullerène pour la thérapie photodynamique du cancer. Cette méthode permet d'évaluer l'efficacité in vitro sur des cellules cancéreuses agressives.

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Les auteurs remercient la National Science Foundation (NSF) pour le soutien financier de ce travail par le biais d’une bourse CAREER (CBET-0746210) et d’une bourse CBET-1159500. Nous tenons à remercier le Dr Turkson (Centre de cancérologie de l’Université d’Hawaï) et le Dr Altomare (Collège de médecine de l’Université de Floride centrale) pour leur aide avec la culture cellulaire.

1. Lignes de culture de cellules <ol><li> (Cellules humaines ovariennes tumorales) en maintenant les flacons de cryogène dans l&#39;eau chaude pour les moins de 2 min Thaw TE 71 (cellules épithéliales thymiques Souris), MDA-MB-231 (cellules de cancer du sein humain), de A549 (cellules de cancer du poumon humain) et OVCAR3 . Ajouter 10 ml de milieu DMEM supplémenté avec 10% de FBS à chaque lignée cellulaire et centrifuger pendant 6 min à 106 x g. </li><li> Aspirer la suspension et ajouter des médias 3ml au culot. Mélanger les cellules correctement par pipetage à plusieurs reprises. Ajouter cette solution à la cellule préchauffé 7 ml de milieu DMEM supplémenté avec 10% de FBS dans des flacons T75 et maintenir des flacons en atmosphère humidifiée de 95% d&#39;air / 5% de CO2 à 37 ° C. Étiqueter ce flacon comme Passage 0. </li><li> Lorsque la confluence des cellules atteint 80%, de récolter les cellules par incubation avec de la trypsine 0,05% pendant 10 min. Neutraliser la trypsine en ajoutant quantité égale de médias. Centrifugeuse cette solution pendant 6 minutes à 106 x g. Retirer la suspension et ajouter 3 ml de milieu frais à elle. Mélanger well et transférer petite quantité (100 ul) dans un flacon de culture contenant 7 ml de milieu. Incuber le flacon de culture dans un incubateur. Etiqueter le flacon comme Passage 1. </li><li> Culture des lignées cellulaires jusqu&#39;au passage 11 ou 12. </li></ol> 2. Fabrication de nanoparticules <ol><li> Préparation de ~ 10 -6 M (ajusté) non dilué solution stock MEH-PPV <ol><li> Dans un flacon de 1 mg ajouter Poly [2-méthoxy-5- (2-éthylhexyloxy) -1,4-phénylènevinylène] (MEH-PPV) ayant une masse moléculaire (moyenne en nombre Mn) 150,000-250,000 g / mol et 3 ml de tétrahydrofuranne (THF) . On agite le mélange pendant 2 heures tout en chauffant à 80 ° C sur une plaque chaude. </li><li> Filtrer la solution ci-dessus dans un nouveau flacon en utilisant un filtre à seringue de 0,2 pm. Étiqueter cette solution comme «MEH-PPV solution stock non dilué. Cette solution sera impliqué dans la préparation de nanoparticules après un réglage fin de la concentration comme décrit dans les étapes 2.1.3 et 2.1.4. </li><li> Ajouter 50 pi de la solution stock de MEH-PPV non dilué dans 3 ml de THF. Étiqueter cette solution comme «stock solution diluée MEH-PPV. Transférer dans une cuvette en quartz de 1 cm et mesurer l&#39;absorbance à 495 nm par spectroscopie UV-vis. </li><li> Si l&#39;absorbance de la solution stock de MEH-PPV diluée est supérieure à 0,17, diluer la solution stock de MEH-PPV non dilué en ajoutant plus de THF 1 ml à la fois, et répétez l&#39;étape 2.1.3 jusqu&#39;à ce que l&#39;absorbance mesurée à 495 nm est dans le aller 0,13 à 0,17. </li><li> Calculer la molarité de la solution stock de MEH-PPV diluée en utilisant la loi de Beer-Lambert, comme indiqué ci-dessous. Ici 0,15 absorbance est utilisée, par exemple, pour le reste du protocole (par exemple., D&#39;ajuster tous les calculs suivants sur la base de l&#39;absorbance observée), le coefficient d&#39;extinction MEH-PPV utilisé est de 10 7 M -1 cm -1 et la longueur de chemin d&#39;accès utilisé est 1 cm. A = ε xbxc (équation 1) (ε - le coefficient d&#39;extinction molaire, A - absorbance, b - longueur du trajet, c - concentration de la solution) 0.15 = 10 7 M -1 cm -1 x 1 cm xc (équation 2) c = 1,5 x 10 -8 M (équation 3) Utilisez cette concentration pour trouver la concentration de la solution mère de MEH-PPV non dilué comme suit: M 1 V 1 = V 2 M 2 (équation 4) 0,15 x 10 -7 M x M = 3050 pi 2 x 50 pi (équation 5) M 2 = 9,15 x 10 -7 M (équation 6) Ceci est la concentration de la &#39;MEH-PPV solution stock non dilué ajusté ». </li></ol></li><li> Calcul de masse de MEH-PPV dans la solution stock de MEH-PPV non dilué rajusté <ol><li> Calculer la masse de MEH-PPV dans 1 ml de la solution mère non dilué ajusté comme indiqué ci-dessous en utilisant la molarité obtenue dans la section 2.1.4 et le poids moléculaire (Mw) de MEH-PPV, qui est de 10 6 g / mol. M = n / V (n -. Pas de moles, V - le volume en L) (équation 7) Ainsi, la masse du MEH-PPV dans 1 ml de und ajustésolution stock iluted est 9,15 x 10 -4 g. </li></ol></li><li> Alliant PCBM dans MEH-PPV <ol><li> Calculer la masse de Phenyl-C 61 butyrique ester méthylique d&#39;acide (PCBM) pour être ajouté dans la solution mère de MEH-PPV de faire dopé solution MEH-PPV 50% en poids PCBM, où 50% PCBM est définie par rapport à la masse de MEH-PPV (par exemple, la moitié de la masse de MEH-PPV). En utilisant le poids de MEH-PPV obtenue dans la section 2.2. Messe de PCBM / 9,15 x 10 -4 g de MEH-PPV x 100% = 50% en poids PCBM (équation 8) Messe de PCBM = 4,57 x 10 -4 g (équation 9) </li><li> Peser 1 mg PCBM dans une fiole et ajouter 500 ul de THF. Calculer la concentration de cette solution en PCBM en utilisant le poids moléculaire du PCBM comme 910,88 g / mol Molarité de solution de PCBM = 0,001 g / (910,88 g / mol * 500 pi) (équation 10) Molarité de la solution de PCBM = 2,19 x 10 -9 mol / ul (équation 11) </li><li> Calculer le volume de solution de PCBM nécessaire d&#39;ajouter à la ME non dilué ajustéSolution H-PPV de stock pour obtenir le PCBM dopé solution à 50% en poids de MEH-PPV dans le THF en utilisant la molarité calculé à l&#39;étape 2.3.2 4,57 x 10 -4 g du PCBM x 1 mol / 1 910,88 gx ul / 2,19 x 10 -9 mol = 229 ul (équation 12) Ajouter 229 pi de la solution de PCBM dans 1 ml de solution stock ajusté MEH-PPV non dilué et bien mélanger. </li></ol></li><li> Préparation de nanoparticules par un procédé de reprécipitation <ol><li> Transférer 1 ml de la solution MEH-PPV / PCBM mélangé dans la seringue de 1 ml avec l&#39;aiguille attachée à elle. </li><li> Injecter rapidement 1 ml de la solution MEH-PPV / PCBM mélangé dans 4 ml d&#39;eau DI agitation à 1200 rpm. Arrêtez de remuer immédiatement après l&#39;injection. Utilisez ces nanoparticules sans autre traitement. </li></ol></li></ol> 3. Incubation de lignées cellulaires avec des nanoparticules pour l&#39;imagerie NOTE: Toutes les expériences d&#39;imagerie ont été achevés en boîtes de Pétri de 35 mm <ol><li> L&#39;absorption de nanoparticles dans des lignées cellulaires <ol><li> Des lignées cellulaires de culture jusqu&#39;à la 12 ème passage. À la 12 e des cellules de culture de passage à 35 mm boîtes de Pétri. Ajuster la concentration de cellules ajoutées aux 35 mm boîtes de Pétri de telle sorte qu&#39;après 24 h les cellules sont 40% de confluence. </li><li> A ce stade, retirer le support du DMEM supplémenté avec 10% de FBS à partir des boîtes de Pétri, laver les cellules deux fois avec du DPBS 1x, et ajouter 100 ul de la suspension de nanoparticules dans 2 ml de DMEM pour les boîtes de Pétri. </li><li> Après 24 heures enlever le DMEM / nanoparticules suspension des boîtes de Pétri et laver les cellules avec 1x DPBS 3 fois. Ensuite, fixer les cellules par incubation avec du paraformaldehyde à 4% pendant 10 min. Laver deux fois avec du DPBS. Colorer les cellules avec 300 nM DAPI par incubation avec le colorant pendant 2 min. Laver deux fois avec du DPBS. Puis maintenir les cellules dans du DPBS pour l&#39;imagerie. </li></ol></li><li> Détection de ROS <ol><li> A549 de la Culture et des lignées cellulaires OVCAR3 dans des boîtes de Pétri, 6 pour la lignée cellulaire, comme expliqué dans la section 3.1.1. Etiqueter leDes boîtes de Pétri comme indiqué dans le Tableau 1. </li><li> Ajouter 100 ul de la suspension de nanoparticules dans 2 ml de DMEM à trois des boîtes de Pétri comme indiqué dans le tableau 1 et incuber pendant 24 heures. Pour les boîtes de Pétri qui recevront des doses de lumière, laver les cellules après 24 h et les cellules en suspension dans HBSS (solution saline équilibrée de Hank) Dye médias libres. </li><li> Réchauffez la lampe du simulateur solaire pour 15 min. Placez filtre UV en avant de la lampe à filtrer les rayons UV. Calibrer la lampe avec une cellule solaire de référence en ajustant la puissance de la lampe pour obtenir 0,5 soleil (50 mW / cm 2) intensité à la surface de la boîte de Pétri. Dans cette configuration particulière que la condition a été réalisée avec 218 W de puissance fournie à la lampe. </li><li> Placer les boîtes de Pétri sous la lampe (couvercle ouvert) pendant 60 min, ce qui résulte en un dosage de lumière 180 J / cm 2 tel que représenté dans les calculs ci-dessous: 50 mW / cm 2 x 3.600 sec / 1,000 = 180 J / cm 2 </li><li> Retirer HBSS sans lavage et ajouter en outre de 2 ml de milieu DMEM supplémenté avec 10% de FBS pour les boîtes de Pétri. Incuber les cellules pendant encore 2 heures. </li><li> Pour le contrôle positif incuber les cellules avec 100 pM de peroxyde d&#39;hydrogène (H 2 O 2) pendant 30 min. </li><li> Colorer les cellules dans toutes les boîtes de Pétri avec une concentration finale de 5 uM du réactif de détection ROS en incubant les cellules avec le colorant pendant 30 min à 37 ° C. </li><li> Fixer les cellules par incubation avec du paraformaldehyde à 4% pendant 10 min. Laver deux fois avec du DPBS. Colorer les cellules avec 300 nM DAPI par incubation avec le colorant pendant 2 min. Laver deux fois avec du DPBS. Puis maintenir les cellules dans du DPBS pour l&#39;imagerie. </li></ol></li><li> Apoptose et la nécrose par PI et l&#39;annexine V FITC <ol><li> Culture de chaque lignée cellulaire dans 5 boîtes de Pétri. Trois de ces boîtes de Petri aura pour l&#39;expérience 2, tandis que les boîtes de Pétri restants seront échantillons témoins. Incuber les 3 boîtes de Pétri pour expérimenter avec des nanoparticules que l&#39;eXplained à la section 3.1.2. Les échantillons de contrôle ne sont pas incubées avec des nanoparticules. </li><li> Après 24 heures d&#39;incubation suivre l&#39;étape 3.2.3. </li><li> Placez les 3 boîtes de Pétri expérimentales sous la lampe (couvercle ouvert) et supprimer l&#39;un à 20 min, l&#39;un à 40 min et l&#39;autre à 60 min. Cela donne trois échantillons qui ont été exposés à des doses de lumière de 60, 120 et 180 J / cm 2, respectivement (calcul à la section 3.2.4). Ensuite, administrer un 180 J / cm 2 dosage de la lumière à l&#39;un des plats contrôle de Pétri. Ceci est la dose de lumière de contrôle appliqué en l&#39;absence de nanoparticules. Ne pas appliquer la dose de lumière à l&#39;échantillon de contrôle restant (pas de nanoparticules et aucune dose de lumière appliquée). </li><li> Remplacez le HBSS avec les médias DMEM supplémenté avec 10% de FBS et garder les boîtes de Pétri dans l&#39;incubateur pendant 4 heures. </li><li> Colorer les cellules dans le dispositif expérimental et les boîtes de Pétri de contrôle avec 20 pi d&#39;annexine V FITC en incubant les cellules avec le colorant pendant 15 min. Laver deux fois avec du DPBS. Colorer le caunes avec 300 nM DAPI ainsi que 300 nM PI (iodure de propidium) par incubation avec les colorants pour 2 min. Laver deux fois avec du DPBS. Puis maintenir les cellules dans du DPBS pour l&#39;imagerie. </li></ol></li></ol> 4. La cytotoxicité intrinsèque de nanoparticules <ol><li> Le comptage des cellules et mise en culture dans des plaques à 96 puits <ol><li> Récolter les cellules provenant des flacons de culture en supprimant médias et lavage des cellules deux fois avec du DPBS puis par incubation des cellules avec de la trypsine 0,05% pendant 10 min. Ajouter 2 ml de milieu DMEM supplémenté avec 10% de FBS à la solution de cellules résultante. Mélanger la solution appropriée pour séparer les amas de cellules en maillots. </li><li> Prendre 100 ul de la suspension de cellules et ajouter 900 ul de milieu DMEM supplémenté avec 10% de FBS. Bien mélanger. Placez 10 pi de cette suspension sur un hémocytomètre. Compter les cellules en utilisant un hémocytomètre et la régler la concentration de la suspension de cellules dans 4.1.1 à 5 x 10 4 cellules / ml. </li><li> Prenez 5 plaques à 96 puits étiquetés comme 0 h, 24 hr, 48 h, 72 h et 96 h. Ajouter 50 pi de 5 x 10 4 cellules / ml des solutions de cellules (TE 71 et A549) dans les puits comme indiqué dans le tableau 2, l&#39;ensemencement ainsi 2500 cellules / puits. Faites la même procédure pour les lignées cellulaires OVCAR3 et MDA-MB-231. </li><li> Après 24 h laver les puits avec du DPBS 1x et ajouter 50 ul de concentrations croissantes de nanoparticules dans les puits comme indiqué dans le tableau 2. Préparer différentes concentrations de nanoparticules par addition de 20, 100, et 180 ul de suspension de nanoparticules à 2.4.2 DMEM à obtenir un volume final de 2 ml, ce qui donne des concentrations de nanoparticules de 0,4 x 10 -4 mg / ml, 2,0 x 10 -4 mg / ml, et 3,6 x 10 -4 mg / ml, respectivement. Chaque lignée cellulaire a triple pour chaque concentration de nanoparticules. </li></ol></li><li> Mesure de la viabilité cellulaire dans l&#39;obscurité <ol><li> Ajouter 10 ul MTT à la plaque 0 h immédiatement après l&#39;ajout de nanoparticules. Incuber la plaque pendant 4 heures pour cryst formazanals pour former. Ajouter la solution de solubilisation de 50 ul dans les puits. Incuber la plaque pendant 6 heures pour dissoudre les cristaux de formazan. </li><li> Mesure de la viabilité cellulaire de la plaque de 0 h en enregistrant l&#39;absorbance à 570 nm avec un lecteur de microplaque. </li><li> Pour une plaque à 24 h, laver les cellules avec 1x DPBS et ajouter 50 médias ul dans chaque puits d&#39;incubation après 24 h avec des nanoparticules. Ajouter MTT et de lire la plaque, comme expliqué en 4.2.1 et 4.2.2. </li><li> Pour 48 h, 72 h et 96 h plaques, laver les cellules avec 1x DPBS et ajouter 50 médias ul dans les puits après 24 heures d&#39;incubation avec des nanoparticules. Incuber les cellules pendant les périodes restantes. </li><li> 4.2.5) Mesurer la viabilité cellulaire à des points de temps particuliers comme expliqué en 4.2.1 et 4.2.2. </li><li> Recommencer l&#39;expérience complète de 3 fois (n = 3) </li></ol></li></ol> 5. Mesure de la viabilité cellulaire Après PDT <ol><li> Le comptage des cellules et la mise en culture dans des plaques à 96 puits. <ol><li> Étiqueter un ensemble de 9Plaques de 6 puits comme indiqué dans le tableau 3, à la fois pour les plaques TE 71 + A549 et OVCAR3 + MDA-MB-231 plaques. La disposition des plaques sera le même, comme indiqué dans 4.1.3. </li><li> Ensemencer les plaques à 96 puits comme expliqué dans la section 4.1 avec la même disposition, comme indiqué dans le tableau 2 dans la section 4.1.2. </li><li> Après 24 h ajouter des nanoparticules pour les plaques comme expliqué dans la section 4.1.4. </li><li> 24 h après l&#39;addition de nanoparticules laver les cellules avec du DPBS 1x et ajouter 50 ul de HBSS à chaque puits. </li><li> Irradier les plaques avec les doses de lumière respectifs, comme expliqué au paragraphe 3.2.3. </li><li> Remplacer la HBSS avec 50 ul du milieu DMEM supplémenté avec 10% de FBS et on incube les plaques pendant les périodes de temps respectives après la PDT. </li><li> Après chaque période de temps de mesurer la viabilité cellulaire comme expliqué en 4.2.1 et 4.2.2. </li></ol></li></ol> 6. microscopie à fluorescence <ol><li> L&#39;absorption de nanoparticules <ol><li> Allumer les lampes du microscope une le laser 30 min avant l&#39;imagerie. Mettez la boîte de Pétri contenant les cellules fixes (comme expliqué dans la section 3.1) sur la scène du microscope. </li><li> Recueillir la fluorescence de nanoparticules et DAPI en utilisant des filtres comme indiqué dans le tableau 4. Superposez le contraste de phase, nanoparticules et images DAPI dans le logiciel ImageJ. </li></ol></li><li> Détection de ROS <ol><li> Allumer les lampes du microscope 30 minutes avant l&#39;imagerie. Mettez la boîte de Pétri contenant les cellules (comme expliqué dans la section 3.2) sur la scène du microscope. </li><li> Recueillir la fluorescence de nanoparticules, DAPI et le réactif de détection ROS en utilisant des filtres comme indiqué au tableau 4. Superposer le contraste de phase, nanoparticule, DAPI et les images ROS de réactif de détection dans le logiciel ImageJ. </li></ol></li><li> Apoptose et la nécrose par PI et l&#39;annexine V FITC <ol><li> Allumer les lampes du microscope 30 minutes avant l&#39;imagerie. Mettez la boîte de Pétri contenant les cellules (comme expliqué danssection 3.3) sur la scène du microscope. </li><li> Recueillir la fluorescence de nanoparticules, DAPI, PI, et Annexin V FITC en utilisant des filtres comme indiqué dans le tableau 4. Superposez le contraste de phase, nanoparticule, DAPI, PI et les images Annexin V FITC dans le logiciel ImageJ. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Dolmans, D., Fukumura, D., Jain, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photodynamic+therapy+for+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Cancer%22%5BJournal%5D)">Photodynamic therapy for cancer.</a> Nat Rev Cancer. 3 (5), 380-387 (2003).</li>
<li>Dougherty, T. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photodynamic+therapy%5BTitle%5D)+AND+%22J+Natl+Cancer+Inst%22%5BJournal%5D)">Photodynamic therapy.</a> J Natl Cancer Inst. 90 (12), 889-905 (1998).</li>
<li>Ferrari, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cancer+nanotechnology%3A+Opportunities+and+challenges%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Cancer%22%5BJournal%5D)">Cancer nanotechnology: Opportunities and challenges.</a> Nat Rev Cancer. 5 (3), 161-171 (2005).</li>
<li>Oleinick, N. L., Morris, R. L., Belichenko, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+apoptosis+in+response+to+photodynamic+therapy%3A+what%2C+where%2C+why%2C+and+how%5BTitle%5D)+AND+%22Photochem+Photobiol+Sci%22%5BJournal%5D)">The role of apoptosis in response to photodynamic therapy: what, where, why, and how.</a> Photochem Photobiol Sci. 1 (1), 1-21 (2002).</li>
<li>Ormond, A., Freeman, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dye+Sensitizers+for+Photodynamic+Therapy%5BTitle%5D)+AND+%22Materials%22%5BJournal%5D)">Dye Sensitizers for Photodynamic Therapy.</a> Materials. 6 (3), 817-840 (2013).</li>
<li>Pass, H. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photodynamic+Therapy+in+Oncology+-+Mechanisms+and+Clinical+Use%5BTitle%5D)+AND+%22J+Natl+Cancer+Inst%22%5BJournal%5D)">Photodynamic Therapy in Oncology - Mechanisms and Clinical Use.</a> J Natl Cancer Inst. 85 (6), 443-456 (1993).</li>
<li>Sariciftci, N. S., Smilowitz, L., Heeger, A. J., Wudl, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photoinduced+electron+transfer+from+a+conducting+polymer+to+buckminsterfullerene%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Photoinduced electron transfer from a conducting polymer to buckminsterfullerene.</a> Science. 258 (5087), 1474-1476 (1992).</li>
<li>Sperandio, F. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photoinduced+electron-transfer+mechanisms+for+radical-enhanced+photodynamic+therapy+mediated+by+water-soluble+decacationic+C-70+and+C84O2+Fullerene+Derivatives%5BTitle%5D)+AND+%22Nanomed-Nanotechnol%22%5BJournal%5D)">Photoinduced electron-transfer mechanisms for radical-enhanced photodynamic therapy mediated by water-soluble decacationic C-70 and C84O2 Fullerene Derivatives.</a> Nanomed-Nanotechnol. 9 (4), 570-579 (2013).</li>
<li>Fan, J. Q., Fang, G., Zeng, F., Wang, X. D., Wu, S. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Water-Dispersible+Fullerene+Aggregates+as+a+Targeted+Anticancer+Prodrug+with+both+Chemo-+and+Photodynamic+Therapeutic+Actions%5BTitle%5D)+AND+%22Small%22%5BJournal%5D)">Water-Dispersible Fullerene Aggregates as a Targeted Anticancer Prodrug with both Chemo- and Photodynamic Therapeutic Actions.</a> Small. 9 (4), 613-621 (2013).</li>
<li>Grynyuk, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photoexcited+fullerene+C-60+disturbs+prooxidant-antioxidant+balance+in+leukemic+L1210+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Materialwiss+Werkstofftech%22%5BJournal%5D)">Photoexcited fullerene C-60 disturbs prooxidant-antioxidant balance in leukemic L1210 cells.</a> Materialwiss Werkstofftech. 44 (2-3), 139-143 (2013).</li>
<li>Liu, X. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Separately+doped+upconversion-C-60+nanoplatform+for+NIR+imaging-guided+photodynamic+therapy+of+cancer+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Chem+Commun%22%5BJournal%5D)">Separately doped upconversion-C-60 nanoplatform for NIR imaging-guided photodynamic therapy of cancer cells.</a> Chem Commun. 49 (31), 3224-3226 (2013).</li>
<li>Trpkovic, A., Todorovic-Markovic, B., Trajkovic, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toxicity+of+pristine+versus+functionalized+fullerenes%3A+mechanisms+of+cell+damage+and+the+role+of+oxidative+stress%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Toxicol%22%5BJournal%5D)">Toxicity of pristine versus functionalized fullerenes: mechanisms of cell damage and the role of oxidative stress.</a> Arch Toxicol. 86 (12), 1809-1827 (2012).</li>
<li>Chen, Z. Y., MA, L. J., Liu, Y., Chen, C. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Applications+of+Functionalized+Fullerenes+in+Tumor+Theranostics%5BTitle%5D)+AND+%22Theranostics%22%5BJournal%5D)">Applications of Functionalized Fullerenes in Tumor Theranostics.</a> Theranostics. 2 (3), 238-250 (2012).</li>
<li>Park, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bulk+heterojunction+solar+cells+with+internal+quantum+efficiency+approaching+100%25%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Photonics%22%5BJournal%5D)">Bulk heterojunction solar cells with internal quantum efficiency approaching 100%.</a> Nat Photonics. 3 (5), 297-302 (2009).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Pour atteindre nanoparticule absorption, il était nécessaire de maintenir certaines mesures critiques tout en fabrication des nanoparticules. Une solution IM 10 -6 MEH-PPV (mélangé avec 50% en poids PCBM) dans du THF a été préparé pour l&#39;injection dans de l&#39;eau DI, comme il a été observé que la concentration de cette solution joue un rôle important dans la détermination de la taille des nanoparticules est formée. La concentration a été vérifiée par spectroscopie UV-vis. Notez que dans l&#39;étape de p...

En thérapie photodynamique (PDT) photosensibilisants sont administrés à un tissu cible, et lors de l&#39;exposition à la lumière du photosensibilisant génère Reactive Oxygen Species (ROS). ROS espèces tels que l&#39;oxygène singlet et superoxyde peuvent induire un stress oxydatif et les dommages structurels à la suite de cellules et de tissus 1-4. En raison de sa facilité d&#39;application de cette méthode a été activement étudiée et des essais cliniques ont eu lieu de 5,6. Cependant, des problèmes importants tels que la toxicité dans l&#39;obscurité des sensibilisateurs, la sensibilité du patient à la lumière (en raison de la distribution non-sélective de l&#39;agent de sensibilisation), et le caractère hydrophobe des sensibilisateurs (ce qui conduit à une biodisponibilité réduite et le potentiel de toxicité aiguë) restent. Nous rapportons ici un procédé pour la fabrication et l&#39;évaluation in vitro de la conduite nanoparticules de polymère mélangé avec les photosensibilisateurs fullerène en tant que nouvelle génération de PDT. Les nanoparticules sont formées par auto-agrégation desle polymère semi-conductrice MEH-PPV (poly [2-méthoxy-5- (2-éthylhexyloxy) -1,4-phénylènevinylène]) avec le PCBM de fullerène (C 61 phényl-butyrique ester méthylique d&#39;acide) lorsque ces matériaux dissous dans un compatible solvant sont rapidement injectés dans un solvant non compatible (figure 1A). Le choix de MEH-PPV que le polymère hôte est motivé par son coefficient d&#39;extinction élevé qui conduit à des taux élevés de formation de triplet, et à la fois la charge et le transfert d&#39;énergie efficace et ultrarapide pour le fullerène PCBM 7. Ces propriétés sont idéales pour la sensibilisation de l&#39;oxygène singulet et la formation de superoxyde dans la PDT. Fullerène a en fait été appliquée dans la PDT dans la forme moléculaire et nanoparticule 8-13. Cependant, la cytotoxicité sévère a entravé le développement 12. Ici, nous montrons que l&#39;encapsulation du fullerène dans une matrice hôte de MEH-PPV donné composites nanoparticules MEH-PPV / PCBM résultats dans un matériau sensibiliser PDT que jeest pas cytotoxique intrinsèque, montre spécificité envers les cellules cancéreuses en raison de la taille des nanoparticules et de la charge de surface, et les rendements de traitement PDT très efficace à des doses de faible luminosité due aux propriétés photophysiques susmentionnés.

<table><tbody><tr><td>Poly[2-méthoxy-5-(2-éthylhexyloxy)-1,4-phénylènevinylène] (MEH-PPV)</td><td>Sigma Aidrich</td><td>536512-1G</td><td>moyenne Mn/nbsp ; 150 000-250 000</td></tr><tr><td>[6,6]-phényle C61&nbsp ; ester méthylique d’acide butyrique (PCBM)</td><td>Sigma Aidrich</td><td>684449-500MG</td><td>>99.5 %</td></tr><tr><td>Tétrahydrofurane (THF)</td><td>EMD</td><td>TX0284-6</td><td>Drisolv</td></tr><tr><td>1 ml seringue</td><td>National Scientific Company</td><td>37510-1</td><td>Pour la filtration de la solution MEH-PPV</td></tr><tr><td>Filtre à seringue</td><td>VWR</td><td>28145-495</td><td>25 mm, 0.2 &micro ; m, Seringue en PTFE</td></tr><tr><td>1 ml</td><td>Hamilton Company</td><td>81320</td><td>Pour l’injection d’une solution MEH-PPV dans l’eau pour fabriquer des nanoparticules</td></tr><tr><td>Dulbecco’s Modification of Eagle’s Medium/Ham’s F-12 50/50 Mix (DMEM)</td><td>Corning (VWR)</td><td>45000-350</td><td></td></tr><tr><td>Hank’s Balanced Salt Solution sans rouge de phénol (HBSS)</td><td>Qualité biologique (VWR)</td><td>10128-740</td><td></td></tr><tr><td>Solution saline tamponnée au phosphate Dulbecco, 1x sans calcium ni magnésium (DPBS)</td><td>Corning (VWR)</td><td>45000-436</td><td></td></tr><tr><td>Sérum fœtal de bovin, régulier (inactivé par la chaleur) (FBS)</td><td>Corning (VWR)</td><td>45000-736</td><td></td></tr><tr><td>Trypsine EDTA 1x 0,25</td> %<td>Corning (VWR)</td><td>45000-664</td><td>Trypsine/2,21 mM EDTA dans HBSS sans bicarbonate de sodium, calcium et magnésium Parvovirus porcin testé</td></tr><tr><td>16 % Paraformaldéhyde</td><td>Sciences de la microscopie électronique&nbsp ;</td><td>15710</td><td>16 % de paraformaldéhyde est dilué à 4 % par ajout de PBS</td></tr><tr><td>DAPI&</td><td>nbsp ; Biotium VWR</td><td>89139-054</td><td>Coloration nucléaire</td></tr><tr><td>Pipettes 5 ml</td><td>VWR</td><td>82050-478</td><td></td></tr><tr><td>75 cm2 Flacon de culture</td><td>VWR</td><td>82050-856</td><td>pour l’élevage</td></tr><tr><td>de cellules Plaques à 96 puits</td><td>VWR</td><td>82050-771</td><td>pour essais MTT</td></tr><tr><td>Boîtes de culture tissulaire avec évents</td><td>Greiner Bio-One (VWR)</td><td>82050-538</td><td></td></tr><tr><td>Iodure de propidium</td><td>Sondes moléculaires</td><td>P3566</td><td></td></tr><tr><td>Annexine V FITC</td><td>Colorant Invitrogen</td><td>A13199</td><td>pour l’apoptose</td></tr><tr><td>Celltiter 96 non-R 1000 dosages</td><td>Promega (VWR)</td><td><a href="https://www.vwrsp.com/catalog/product/index.cgi?catalog_number=PAG4000">PAG4000</a></td><td>MTT</td></tr><tr><td>CellROX Green Reagent, pour la détection du stress oxydatif</td><td>Invitrogen</td><td>C10444</td><td>Pour ROS Spectromètre</td></tr><tr><td>UV-vis</td><td>de détection Agilent 8453</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Spectromètre de fluorescence</td><td>NanoLog HoribaJobin Yvon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Diffusion dynamique de la lumière</td><td>PD2000DLS, Détecteur</td><td></td><td></td>de précision</tr><tr><td>Incubateur</td><td>NuAir DH Microscope confocal à flux</td><td></td><td></td>automatique</tr><tr><td></td><td>Zeiss Axioskop2</td><td></td><td>63X lentille d’objectif à immersion dans l’huile</td></tr><tr><td>Microscope à épiluminescence</td><td>Olympus IX71</td><td></td><td>60X objectif à immersion dans l’eau, Andor Zyla caméra sCMOS</td></tr><tr><td>Simulateur solaire</td><td>Newport 67005 Oriel Instruments</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Référence cellule solaire</td><td>Oriel&nbsp ;</td><td></td><td>VLSI Standards Incorporated</td></tr><tr><td>Lecteur de microplaques</td><td>BioTek Ex808</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hémocytomètre</td><td>Hausser Scientific Partnership</td><td>3200</td><td>Pour le comptage de cellules</td></tr></tbody></table>

la thérapie photodynamique avec blended polymère conducteur / fullerene nanoparticules photosensibilisants

Photodynamic Therapy with Blended Conducting Polymer/Fullerene Nanoparticle Photosensitizers

Dans cet article, une méthode de fabrication et d’évaluation in vitro reproductible de nanoparticules de polymères conducteurs mélangées à du fullerène en tant que photosensibilisants de nouvelle génération pour la thérapie photodynamique (PDT) est présentée. Les nanoparticules sont formées par interaction hydrophobe du polymère semi-conducteur MEH-PPV (poly[2-méthoxy-5-(2-éthylhexyloxy)-1,4-phénylènevinylène]) avec le fullerène PCBM (ester méthylique de l’acide phényl-C 61-butyrique) en présence d’un solvant non compatible. MEH-PPV a un coefficient d’extinction élevé qui conduit à des taux élevés de formation de triplets et à un transfert efficace de charge et d’énergie vers le PCBM à fullerène. Ces derniers procédés améliorent l’efficacité du système PDT grâce à la formation de triplets et de radicaux assistés par le fullerène, et à la désactivation ultrarapide de MEH-PPV excité. Les résultats rapportés ici montrent que ce système de sensibilisation PDT nanoparticulaire est très efficace et présente une spécificité inattendue pour les lignées cellulaires cancéreuses.

L&#39;absorption et la cytotoxicité intrinsèque de nanoparticules Les 50% en poids de nanoparticules mélangées MEH-PPV / PCBM ont été incubées avec TE 71, MDA-MB-231, A549 et des lignées cellulaires OVCAR3. Le niveau PCBM de mélange a été choisi comme 50% PCBM, qui a été montré pour fournir des propriétés de charge et de transfert d&#39;énergie idéale entre les polymères et les fullerènes 14 conjugués. Images de fluorescence de nanoparticules absorption sont présentés dans <strong...

Ce protocole décrit une méthode de fabrication de nanoparticules de polymères conducteurs mélangées à du fullerène. Ces nanoparticules ont été étudiées pour leur utilisation potentielle en tant que photosensibilisateurs de nouvelle génération pour la thérapie photodynamique (PDT).

La thérapie photodynamique avec Blended polymère conducteur / Fullerene nanoparticules photosensibilisants

In this article a method for the fabrication and reproducible in-vitro evaluation of conducting polymer nanoparticles blended with fullerene as the next ...

L'objectif général de l'expérience suivante est de développer un photosensibilisateur de nouvelle génération pour une application de thérapie photodynamique, ou PDT, dans le traitement du cancer. Cela est réalisé en adaptant une méthode de précipitation pour la fabrication de nanoparticules polymériques conductrices dispersables dans l'eau. Dans un deuxième temps, les nanoparticules sont incubées avec des cellules cancéreuses in vitro, puis traitées à la lumière afin de générer des espèces réactives de l'oxygène, ou ROS, qui sont les radicaux actifs participant à la PDT.L'efficacité du traitement suivant est ensuite évaluée par des dosages quantitatifs et des analyses d'imagerie qualitatives afin de déterminer les fractions vivantes par rapport aux fractions TED de la population cellulaire. Les résultats montrent que des cancers agressifs tels que le cancer de l'ovaire, modélisés ici par OAR trois abondamment, internalisent efficacement le photosensibilisateur nanoparticulaire rapporté dans cette étude et que le traitement par thérapie photodynamique (PDT) est très efficace in vitro. Dans ce cas, l'efficacité de la PDT est directement corrélée à la quantité de nanoparticules internalisées par les différentes lignées cellulaires.Le principal avantage de cette technique par rapport aux méthodes existantes telles que la chimiothérapie, la radiothérapie et la chirurgie réside dans le fait que le traitement peut être ciblé spécifiquement sur le site de la maladie afin de réduire les effets secondaires. Le matériau actif utilisé ne présente aucune cytotoxicité in vitro, et des développements ultérieurs rendront le système de nanomatériaux encore plus spécifique au site de stimulation cérébrale transcrânienne en courant continu (tDCS). Commencez cette procédure par la culture des lignées cellulaires et la préparation de la solution mère de M-E-H-P-P-V, comme décrit dans le protocole textuel. Ajoutez 50 microlitres de la solution mère de M-E-H-P-P-V non diluée dans trois millilitres de TETRAHEDRAN ou de THF.Étiqueter cette solution comme solution mère diluée de M-E-H-P-P-V, transférer dans une cuve en quartz de un centimètre et mesurer l'absorbance à 495 nanomètres par spectroscopie ultraviolet-visible. Si l'absorbance de la solution mère diluée de M-E-H-P-P-V est supérieure à 0,17, diluer la solution mère non diluée de M-E-H-P-P-V en ajoutant du THF par incréments de un millilitre jusqu'à ce que l'absorbance mesurée à 495 nanomètres se situe entre 0,13 et 0,17. Ensuite, préparer les nanoparticules par la méthode de précipitation en transférant un millilitre d'une solution mixte de M-E-H-P-P-V-P-C-B-M dans une seringue de un millilitre munie d'une aiguille. Rapidement.Injecter un millilitre de la solution homogénéisée M-E-H-P-P-V-P-C-V-M dans quatre millilitres d’eau déionisée en agitation à 1200 tr/min, en arrêtant immédiatement après l’injection. Utiliser ces nanoparticules sans traitement supplémentaire pour réaliser la thérapie photodynamique (PDT) sur des cellules incubées avec les nanoparticules. Étiqueter d’abord un ensemble de plaques de 96 puits comme indiqué dans le protocole écrit.Appeler puis récolter les cellules à partir des flacons de culture en éliminant le milieu et en lavant les cellules deux fois avec du tampon phosphate de docos ou DPBS, suivi d'une incubation des cellules avec 0,05 % de tryine pendant 10 minutes à deux millilitres de milieu Eagle modifié par Delcos complété avec 10 % de sérum bovin fœtal, ajouté à la solution cellulaire obtenue. Mélanger correctement la solution afin de séparer les agrégats cellulaires en cellules isolées. Prélever 100 microlitres de la suspension cellulaire et ajouter à 900 microlitres de DMEM complété avec 10 % de SBF, bien mélanger, puis déposer 10 microlitres de cette suspension sur un hémocytomètre.Compter les cellules à l'aide du cytomètre sanguin et ajuster la concentration de la suspension cellulaire à 50 000 cellules par millilitre. Ensuite, ensemencer la plaque de 96 puits en ajoutant 50 microlitres de la solution cellulaire dans les puits, ce qui permet d'ensemencer 2 500 cellules par puits. Préparer ensuite différentes concentrations de nanoparticules en ajoutant 2 100 et 180 microlitres de la suspension de nanoparticules préparée dans du DMEM afin d'obtenir un volume final de deux millilitres.Après 24 heures, lavez les puits avec un X-D-P-B-S et ajoutez 50 microlitres de concentrations croissantes de nanoparticules dans les puits. Chaque lignée cellulaire possède des triplicats pour chaque concentration de nanoparticules. 24 heures après l'ajout des nanoparticules.Lavez les cellules avec un X-D-P-B-S et ajoutez 50 microlitres de solution saline équilibrée de Hank ou HBSS dans chaque puits, afin d'irradier les cellules ; faites chauffer la lampe du simulateur solaire pendant 15 minutes. Placez un filtre UV devant la lampe pour éliminer la lumière UV. Étalonner la lampe à l’aide d’une cellule solaire de référence en ajustant la puissance de la lampe pour obtenir une intensité de 0,5 soleil à la surface de la plaque de 96 puits ici.Cette condition a été obtenue avec une puissance de 218 watts fournie à la lampe. Placer la plaque de 96 puits sous la lampe, couvercle ouvert, et irradier les cellules pendant 60 minutes, ce qui correspond à une dose lumineuse de 180 joules par centimètre carré après irradiation. Remplacer le HBSS par 50 microlitres de DMEM, complété avec 10 % de FBS, puis incuber les plaques pendant les durées respectives après la thérapie photodynamique.Après chaque période, mesurez la viabilité cellulaire en ajoutant 10 microlitres de MTT dans le puits. Incubez la plaque pendant quatre heures afin que des cristaux se forment. Ensuite, ajoutez 50 microlitres de la solution de solubilisation dans les puits et incubez la plaque pendant six heures.Pour dissoudre les cristaux de formazan. Mesurer la viabilité cellulaire en enregistrant l'absorbance à 570 nanomètres à l'aide d'un lecteur de microplaques afin d'évaluer la cytotoxicité intrinsèque des nanoparticules. Lire la plaque 96 puits sans appliquer de thérapie photodynamique pour mesurer l'absorption des nanoparticules.Détection des ERO formées après la PDT et détection de l'apoptose et de la nécrose après la PDT. Allumez d'abord les lampes du microscope et le laser, 30 minutes avant l'acquisition d'images. Placez la boîte de Pétri contenant les cellules fixées sur la platine du microscope.Recueillir la fluorescence émise par les nanoparticules. Le réactif de détection RROS, le propidium, est coloré. Un XIN cinq fitsi et le DPI superposent les images de contraste de phase et les images de fluorescence dans le logiciel ImageJ. Des résultats représentatifs après incubation des nanoparticules avec différentes lignées cellulaires sont présentés ici.La lignée cellulaire Ocar présente la capture la plus élevée, suivie par les lignées 5 49 et MDA MB 2 31. La lignée TE 71 ne montre aucune fluorescence des nanoparticules. Les mesures de viabilité cellulaire sur ces lignées cellulaires, réalisées en l'absence de lumière, sont illustrées par les histogrammes ci-dessous.Il y a presque aucune mort cellulaire jusqu'à 96 heures dans aucune des lignées cellulaires. La formation de ROS détectée par le réactif de détection de ROS est montrée ici pour la lignée cellulaire car trois. Dans cet échantillon témoin.Il n'y a aucune fluorescence verte car il n'y a ni nanoparticules ni dose de lumière. Toutefois, lorsque les doses de nanoparticules et de lumière sont administrées simultanément aux cellules immédiatement après la thérapie photodynamique, la fluorescence verte intense du réactif détecteur R os devient visible. La viabilité cellulaire après le DT est indiquée ici par le graphique à barres pour différentes doses de nanoparticules.Les résultats de l'expérience de double coloration vivant-mort sont présentés ici, dans laquelle la lignée cellulaire car trois subit une nécrose à forte dose lumineuse, tandis qu'à faible dose lumineuse, les cellules subissent une mort apoptotique. Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la manière de fabriquer des nanoparticules composites de polymères conducteurs pour l'application de traitements de maladies basés sur la thérapie photodynamique.

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Chimie

La thérapie photodynamique (PDT) est une méthode non invasive et non chirurgicale pour le traitement du cancer du poumon. Les photosensibilisants s’accumulent sélectivement dans le tissu tumoral et entraînent la mort des cellules tumorales en présence d’oxygène et de la bonne longueur d’onde de la lumière. Dans cette vidéo de protocole, la méthode basée sur la PDT est utilisée pour évaluer le potentiel phototoxique d’un photosensibilisant potentiel dans les cellules cancéreuses du poumon.

Essai de phototoxicité in vitro : une méthode basée sur la PDT pour évaluer le potentiel phototoxique d’un photosensibilisant dans les cellules cancéreuses du poumon

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Une méthode &#39;Plug and Play&#39; pour créer Nanoassemblies dispersibles dans l&#39;eau contenant un polymère amphiphile, colorants organiques et Upconverting nanoparticules

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