Name: Préparation de mitochondriales fractions enrichies pour métabolique Analyse en Drosophila (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-09-30T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 22 s
Description: Découvrez l'isolation de fractions mitochondriales enrichies chez Drosophila melanogaster pour l'analyse métabolomique. Cette méthode par homogénéisation et centrifugation différentielle améliore la détection des changements métaboliques subtils.

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Ce travail a été soutenu par une subvention de développement du corps professoral de l’Université Adelphi et une subvention R15GM113156 du NIGMS attribuée à EVC, une subvention R01GM067862 du NIGMS et une subvention R01AG027849 du NIA attribuée à DMR.

1. Réactifs et solutions <ol><li> Préparation de la nourriture à la mouche et les médias <ol><li> Chaleur mouche ingrédients 11% de sucre, 2% de levure autolysée, 5,2% de farine de maïs, de l&#39;agar 0,79% p / v dans l&#39;eau dans une plaque fixée à 90 ° C. Remuez régulièrement jusqu&#39;à obtention d&#39;un mélange homogène légèrement dense. Préparer un volume final de 550 ml de nourriture à la mouche pour un total de 100 flacons de 5 ml voler la nourriture dans chaque. </li><li> Retirer de la source de chaleur, remuer de temps en temps jusqu&#39;à ce que la nourriture refroidit à 80 ° C et ajouter 0,2% tegosept-méthyl 4-hydroxybenzoate dissous dans 95% d&#39;éthanol. </li><li> Diviser la nourriture en deux volumes égaux. Ajouter 1,1 ml de 50 mM dissous dans de l&#39;éthanol rapamycine à un volume et 1,1 ml d&#39;éthanol à l&#39;autre volume. Agiter la rapamycine et les solutions d&#39;éthanol dans l&#39;aliment. Assurez-vous que la température diminue à 50 ° C avant d&#39;ajouter des médicaments. </li></ol></li><li> Isolement Buffer <ol><li> Préparez 500 ml d&#39;isolement tampon [mM mannitol 225 mM, saccharose 75, 10 mM 3- (N &lt;/ em&gt;-morpholino) propanesulfonique (MOPS) et 1 mM d&#39;acide éthylènediaminetétraacétique (EDTA), 2,5 mg / ml d&#39;albumine de sérum bovin (BSA)] dans l&#39;eau. </li><li> Ajuster le pH à 7,2 en utilisant de l&#39;hydroxyde de sodium. Le pH initial sera acide. </li><li> Utilisez des bouteilles de stockage de filtre stériles avec une taille de pores de 0,22 um pour stériliser la solution et de le stocker à 4 ° C. </li></ol></li><li> Wash Buffer <ol><li> Préparer 500 ml de tampon de lavage [225 mM de mannitol, saccharose 75 mM, KCl 10 mM, Tris-HCl 10 mM et 5 mM de KH 2 PO 4] dans l&#39;eau. </li><li> Ajuster le pH à 7,2 en utilisant de l&#39;hydroxyde de sodium. Le pH initial sera acide. </li><li> Utilisez des bouteilles de stockage de filtre stériles avec une taille de pores de 0,22 um pour stériliser la solution et de le stocker à 4 ° C. </li></ol></li></ol> 2. Elevage des souches de drosophile <ol><li> Pour contrôler la densité des larves au cours du développement, placer 25 paires de parents dans un flacon de culture et de leur permettre pondent des œufs pendant 48 heures. </li> &lt;li&gt; Supprimer parents après 48 h pour réguler la densité des œufs. </li><li> Répétez les étapes 2.1 et 2.2 en utilisant la F1 progéniture émergents, de sorte que deux générations de ce contrôle de la densité est atteint. </li><li> Pour collecter des adultes, anesthésier les mouches utilisant du dioxyde de carbone (CO 2) et séparée par sexe. <ol><li> Utilisez un régulateur en une seule étape à livré CO 2 pur à partir d&#39;un réservoir sous pression élevée à un flux continu de 5 psi. Pour éviter l&#39;électricité statique, utiliser des tubes en plastique pour catalyser la CO 2 dans un flacon de 500 ml de filtrage avec de l&#39;eau. </li><li> Utiliser un bouchon en caoutchouc avec un trou pour sceller le flacon. Utiliser un tube en plastique pour relier l&#39;ouverture latérale du ballon à un pad de CO 2. </li><li> Placez les mouches dans le pad pour pas plus de 10-15 minutes. Laisser remettre de l&#39;anesthésie pendant 24 heures avant de les placer dans des conditions expérimentales. </li></ol></li><li> Pour générer suffisamment de métabolites de fractions enrichies mitochondriales, utiliser 300 mouches par échantillon. Ici, utiliser les femelles, mais Gender peut être différent dans d&#39;autres expériences. Transférer 150 mouches à une maison 1 L démographie cage. Autoriser l&#39;accès à 5 ml de nourriture à la mouche dans un flacon. </li><li> Transférer les 150 restants vol à une autre cage L. Ne pas surpeupler cages avec plus de 150 mouches. </li><li> Utilisez six échantillons répétés par condition expérimentale. Depuis des extraits d&#39;animaux entiers donnent plus de métabolites, pour générer 1 échantillon de l&#39;animal entier isole, transférer 50 mouches femelles une cage. Comme pour les isolats mitochondriales, utilisez six échantillons répétés par condition expérimentale. </li><li> La place des cages à 25 ° C avec un cycle de 12 heures de lumière et 12 h foncé. </li><li> Fournir de la nourriture fraîche tous les 2 ou 3 jours dans un flacon de 5 ml de nourriture pour maintenir la qualité des aliments. </li><li> Maintenir des mouches sur la nourriture pendant 10 jours. Cette étape est nécessaire pour le traitement de la rapamycine 7. D&#39;autres traitements ou conditions seront différentes. </li></ol> 3. Isolation des fractions mitochondriales <ol><li> Dump vole d&#39;une cage (150 mouches) dans unverre-téflon homogénéisateur Dounce rempli avec 1 ml de tampon d&#39;isolement froid. </li><li> Homogénéiser en déplaçant le pilon de haut en bas pour 15 coups. Gardez le mortier sur la glace pour garder intacte mitochondries. </li><li> Transfert homogénat à un tube de 1,5 ml et centrifuger à 300 g pendant 5 min à 4 ° C. </li><li> Prendre le surnageant et centrifuger à 6000 g pendant 10 min à 4 ° C pour enrichir en mitochondries. </li><li> Comme le surnageant contient la fraction cytosolique, jeter le surnageant ou de l&#39;utiliser pour des expériences alternatives. Reprendre le culot dans 300 pl de tampon de lavage. </li><li> Répétez les étapes 3.1 à 3.5 pour la deuxième cage. Combiner les culots remis en suspension de deux cages dans un tube à centrifuger cryogénique. </li><li> Centrifugeuse à 6000 g pendant 10 min à 4 ° C. </li><li> Jeter le surnageant et flash-geler le culot dans de l&#39;azote liquide. </li><li> Stocker les fractions enrichies mitochondriales à -80 ° C ou une température plus basse. <ol><li> Sinon, pour le pré de l&#39;animal entierparation, placer les adultes dans un tube à centrifuger cryogénique. Flash geler le flacon dans de l&#39;azote liquide et stocker des adultes à -80 ° C ou plus basse température. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Scheffler, I. E. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aScheffler%2C+IE+%22Mitochondria+%28Scheffler%2C+Mitochondria%29%22">Mitochondria (Scheffler, Mitochondria)</a>. , Wiley-Liss. 484(2007).</li>
<li>Guarente, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondria--a+nexus+for+aging%2C+calorie+restriction%2C+and+sirtuins%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Mitochondria--a nexus for aging, calorie restriction, and sirtuins.</a> Cell. 132 (2), 171-176 (2008).</li>
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<li>Hogeboom, G. H., Schneider, W. C., Pallade, G. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytochemical+Studies+Of+Mammalian+Tissues+I+.+Isolation+Of+Intact+Mitochondria+From+Rat+Liver+Some+Biochemical+Properties+Of+Mitochondria+And+Submicroscopic+Particulate+Material%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Cytochemical Studies Of Mammalian Tissues I . Isolation Of Intact Mitochondria From Rat Liver Some Biochemical Properties Of Mitochondria And Submicroscopic Particulate Material.</a> Journal of Biological Chemistry. 172, 619-635 (1948).</li>
<li>Frezza, C., Cipolat, S., Scorrano, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organelle+isolation%3A+functional+mitochondria+from+mouse+liver%2C+muscle+and+cultured+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+protocols%22%5BJournal%5D)">Organelle isolation: functional mitochondria from mouse liver, muscle and cultured fibroblasts.</a> Nature protocols. 2 (2), 287-295 (2007).</li>
<li>Corcelli, A., Saponetti, M. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mitochondria+isolated+in+nearly+isotonic+KCl+buffer%3A+focus+on+cardiolipin+and+organelle+morphology%5BTitle%5D)+AND+%22Biochimica+et+biophysica+acta%22%5BJournal%5D)">Mitochondria isolated in nearly isotonic KCl buffer: focus on cardiolipin and organelle morphology.</a> Biochimica et biophysica acta. 1798 (3), 681-687 (2010).</li>
<li>Roede, J. R., Park, Y., Li, S., Strobel, F. H., Jones, D. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detailed+mitochondrial+phenotyping+by+high+resolution+metabolomics%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+one%22%5BJournal%5D)">Detailed mitochondrial phenotyping by high resolution metabolomics.</a> PloS one. 7 (3), e33020(2012).</li>
</ol>

Les auteurs ont rien à révéler.

Les étapes les plus critiques de ce protocole sont les suivants: 1) l&#39;élevage suffisamment vol dans l&#39;espace en abondance. Il est très important de ne pas surpeupler les cages de la démographie de plus de 150 chaque vol; 2) modification de la nourriture des cages fréquemment pour éviter la concurrence alimentaire et le stress nutritionnel; et 3) le maintien de tous les échantillons à 4 ° C pour assurer l&#39;intégrité lors de l&#39;isolement de la fraction mitochondriale. Il est également recommandé de refroidir...

Le but de cette procédure est de développer des fractions mitochondriales enrichis qui donnent suffisamment de métabolites mitochondriaux pour les études de métabolomique utilisant Drosophila melanogaster. Dans notre expérience, la métabolomique analyse en utilisant des méthodes d&#39;extraction cellulaire entiers sont incapables de détecter les changements subtils de métabolites mitochondriaux chez la drosophile. Cependant, fractionnement mitochondrial avant l&#39;analyse métabolomique augmente la sensibilité pour identifier les changements de métabolites mitochondriaux. Les mitochondries sont des organelles cellulaires responsables de fournir 90% de l&#39;énergie que les cellules ont besoin pour une fonction normale. Au cours des dernières années, il a été reconnu que les mitochondries jouent un rôle beaucoup plus dynamique dans la fonction cellulaire et organismique que de simplement produire de l&#39;adénosine triphosphate (ATP), et sont maintenant reconnus comme des plaques tournantes pour la régulation de l&#39;homéostasie métabolique 2,3. Les mitochondries sont le résultat d&#39;un processus d&#39;endosymbiose dans laquelle DISlignées microbiennes tinctes fusionné ~ il ya 1,5 milliards d&#39;années 4. Comme les mitochondries ont évolué en véritables organites, les gènes de la endosymbiote ont été incorporés dans le génome nucléaire émergents. Chez les animaux aujourd&#39;hui, environ 1500 protéines mitochondriales sont dotés d&#39;codée tandis que 37 gènes restent dans la ADNmt, 13 qui codent pour des protéines mitochondriales qui sont des sous-unités des complexes enzymatiques de la phosphorylation oxydative 5. La coordination entre les mitochondries et les compartiments nucléaires est nécessaire pour maintenir la fonction mitochondriale appropriée. En utilisant les méthodes décrites ici, nous avons pu détecter des changements métaboliques mitochondriales chez la drosophile qui résultent de la manipulation de la coordination entre les génomes mitochondriaux et nucléaires. Nous avons utilisé une souche de Drosophila dans lequel l&#39;ADNmt de son espèce sœur D. simulans a été placé sur un seul D. melanogaster fond nucléaire 6. Cette mitonuclear «perturbé»génotype a été comparé au génotype mitonuclear «natif», ou co-évolué de D. melanogaster portant le même génome nucléaire avec son D. natif melanogaster ADNmt. Le D. D. melanogaster et simulans ADNmt différer de ~ 100 acides aminés et&gt; 500 substitutions synonymes qui affectent la communication mitonuclear 7,8. Nous avons généré des extraits de mouches entiers et des extraits enrichis mitochondrial pour étudier les changements de métabolites en réponse au stress pharmacologique. Ici, nous montrons que lorsque vous utilisez mitochondriales enrichi fractions nous détectons des changements marqués dans métabolites mitochondriaux entre le génotype de co-évolué natif portant le D. ADNmt melanogaster et le génotype perturbé transportant D. simulans ADNmt. En revanche, les modifications des métabolites entre ces deux génotypes sont subtiles en utilisant des procédés qui utilisent des normales à la mouche extrait entier. Par conséquent, cette méthode a fourni un trajet de comprendre comment ADNmt médiation modifications mitochondriales dansréponse à différents médicaments.

<table><tbody><tr><td>0,2 % tégosept-méthyl 4-hydroxybenzoate</td><td>VWR</td><td>AAA14289</td><td></td></tr><tr><td>Éthanol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>792799</td><td></td></tr><tr><td>Mannitol</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M4125</td><td></td></tr><tr><td>Saccharose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S9378</td><td></td></tr><tr><td>3-<(em>N-morpholino) acide propanesulfonique (MOPS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M1254&nbsp ;</td><td></td></tr><tr><td>Acide éthylènediaminetétraacétique (EDTA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>38057&nbsp ;</td><td></td></tr><tr><td>Albumine sérique bovine (BSA)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>5470</td><td></td></tr><tr><td>KCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P9333</td><td></td></tr><tr><td>Tris HCl</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>RES3098T-B7</td><td></td></tr><tr><td>KH2PO4</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>1551139</td><td></td></tr><tr><td>CO2 pour anesthésier les mouches</td><td>Tritech Research</td><td>MINJ-DROS-FP</td><td></td></tr><tr><td>1 L cage</td><td>Web Restaurant Store</td><td>999RD32</td><td></td></tr><tr><td>1 L couvercle de cage</td><td>Web Restaurant Store</td><td>999LRD</td><td></td></tr><tr><td>un homogénéisateur en verre-téflon&nbsp ;</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9661231</td><td></td></tr><tr><td>Hydroxyde de sodium</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S8045</td><td></td></tr><tr><td>rapamycine&nbsp ;</td><td>LC Laboratories&nbsp ;</td><td>R-5000</td><td></td></tr><tr><td>anti-porine</td><td>MitoSciences</td><td>MSA03</td><td></td></tr><tr><td>anti-alpha tubuline</td><td>Études de développement Hybridoma Bank</td><td>12G10</td><td></td></tr><tr><td>Pierce BCA Protein Assay Kit&nbsp ;</td><td>Thermo Scientific&nbsp ;</td><td>23225</td><td></td></tr><tr><td>Tampon CO2</td><td>Tritech Research, Inc</td><td>MINJ-DROS-FP</td><td></td></tr><tr><td>flacon</td> filtrant <td>enasco</td><td>SB08184M</td><td></td></tr><tr><td>bouchon en caoutchouc</td><td>enasco</td><td>S08512M</td><td></td></tr></tbody></table>

préparation de mitochondriales fractions enrichies pour métabolique analyse en<em&gt; drosophila</em

Preparation of Mitochondrial Enriched Fractions for Metabolic Analysis in Drosophila

Étant donné que les mitochondries jouent un rôle dans le métabolisme des acides aminés, le métabolisme des glucides et l’oxydation des acides gras, les défauts de la fonction mitochondriale compromettent souvent la vie de ceux qui souffrent de ces maladies complexes. La détection des changements métaboliques mitochondriaux est essentielle à la compréhension des troubles mitochondriaux et des réponses mitochondriales aux agents pharmacologiques. Bien que le métabolisme mitochondrial soit au cœur de la régulation métabolique, la détection de changements subtils dans le métabolisme mitochondrial peut être entravée par la surreprésentation d’autres métabolites cytosoliques obtenus à l’aide d’extractions d’organismes entiers ou de tissus entiers. 
Ici, nous décrivons une méthode d’isolement qui a détecté des changements métaboliques mitochondriaux prononcés chez la drosophile qui étaient distincts entre les préparations de mouche entière et les préparations enrichies en mitochondries. Pour illustrer la sensibilité de cette méthode, nous avons utilisé un ensemble de drosophiles hébergeant des ADN mitochondriaux génétiquement diversifiés (ADNmt) et les avons exposés au médicament rapamycine. En utilisant cette méthode, nous avons montré que la rapamycine modifie le métabolisme mitochondrial d’une manière dépendante du génotype mitochondrial. Cependant, ces changements sont beaucoup plus distincts dans les études métabolomiques lorsque les métabolites ont été extraits de fractions enrichies en mitochondries. En revanche, les extraits de tissus entiers n’ont détecté que les changements métaboliques médiés par le médicament rapamycine indépendamment de l’ADNmt.

En utilisant le protocole exposé ci-dessus, nous avons effectué une analyse métabolomique fractions enrichies en mitochondrie et des extraits d&#39;animaux entiers de tester l&#39;effet du médicament sur ​​la rapamycine ADNmt 7 divergentes. Nous avons livré 200 uM de rapamycine par dissolution du médicament dans la nourriture des mouches. Les mouches ont été exposés à la rapamycine pendant 10 jours. Métabolites à partir d&#39;extraits de mouches entières et à partir d&#39...

mitochondries jouent un rôle central dans la régulation du métabolisme et de l’homéostasie. Des changements subtils dans le métabolisme mitochondrial qui affectent la physiologie de l’organisme pourraient être difficiles à détecter dans les études métabolomiques de l’organisme entier. Nous décrivons ici une méthode d’isolement qui améliore la détection de changements métaboliques subtils chez Drosophila melanogaster.

Préparation de mitochondriales fractions enrichies pour métabolique Analyse en<em&gt; Drosophila</em

Since mitochondria play roles in amino acid metabolism, carbohydrate metabolism and fatty acid oxidation, defects in mitochondrial function often ...

L'objectif général de l'expérience suivante est d'obtenir des fractions mitochondriales enrichies contenant suffisamment de métabolites mitochondriaux pour des études métabolomiques utilisant drosophila melanogaster. Cette étape est réalisée en élevant d'abord un nombre suffisant de mouches afin de produire assez de métabolites pour les fractions enrichies en mitochondries. Dans un deuxième temps, les mouches sont homogénéisées à l'aide d'un homogénéisateur en verre à piston en téflon, ce qui permet de rompre la membrane cellulaire sans endommager l'intégrité mitochondriale.Ensuite, les homogénats sont soumis à une centrifugation différentielle afin d'obtenir des échantillons enrichis en mitochondries. Les résultats montrent que des modifications métaboliques mitochondriales marquées ont été détectées à l'aide de ce protocole, modifications qui n'avaient pas été observées lors d'analyses métabolomiques basées uniquement sur des fractions enrichies en mitochondries ou des extraits d'animaux entiers. Le principal avantage de cette procédure par rapport à une analyse métabolomique réalisée sur des mouches entières est que l'isolement des mitochondries avant l'analyse métabolomique permet une sensibilité accrue et une détection améliorée des variations des métabolites mitochondriaux.Pour commencer l'expérience, chauffez les ingrédients de la nourriture pour mouches sur une plaque chauffante à 90 degrés Celsius. Remuez le mélange régulièrement jusqu'à ce qu'il devienne homogène et légèrement dense. Retirez la nourriture de la source de chaleur et remuez-la occasionnellement lorsque la température descend à 80 degrés Celsius, puis ajoutez du TE decept méthyl 4-hydroxybenzoate à 0,2 % dissous dans de l'éthanol à 95 %. Ensuite, divisez la nourriture en deux volumes égaux.Veillez à ce que la température de la nourriture ait diminué jusqu'à 50 degrés Celsius, puis ajoutez en remuant 1,1 millilitre de rapamycine à 50 millimolaire dissoute dans l'éthanol dans un premier volume et 1,1 millilitre d'éthanol non traité dans un second volume. Pour collecter les adultes, utilisez un régulateur à un seul étage afin d'acheminer du dioxyde de carbone pur à partir d'une bouteille haute pression. Avec un débit continu de cinq PS, j'évite l'électricité statique en utilisant un tube en plastique pour acheminer le dioxyde de carbone vers un ballon filtrant de 500 millilitres équipé d'un tuyau permettant de faire barboter le dioxyde de carbone à travers l'eau.Pour ce faire, utilisez un bouchon en caoutchouc à un trou pour sceller le flacon. Reliez un tube en plastique à l'orifice latéral du flacon et à un tampon de dioxyde de carbone afin de contrôler la densité larvaire pendant le développement. Placez 25 couples de parents dans un flacon de culture et laissez-les pondre des œufs pendant 48 heures.Ensuite, retirez les parents pour réguler la densité des œufs et répétez ces étapes en utilisant la descendance F1 émergente afin d'obtenir deux générations de ce contrôle de densité. Après deux générations en conditions de densité contrôlée, séparez les mouches par sexe, en les plaçant sur le coussin pendant pas plus de 10 à 15 minutes. Laissez les mouches se remettre de l'anesthésie pendant 24 heures avant de les placer dans les conditions expérimentales.Attribuez 300 mouches par échantillon afin de produire suffisamment de métabolites pour les fractions enrichies en mitochondries. Transférez 150 mouches dans une cage maison d’un litre. Ensuite, transférez les 150 mouches restantes dans une cage séparée d’un litre et n’entassez pas les cages avec plus de 150 mouches.Utilisez six échantillons répliqués par condition expérimentale et placez les cages à 25 degrés Celsius dans un cycle lumineux de 12 heures d’obscurité pour terminer l’élevage des drosophiles. Fournissez aux mouches de la nourriture fraîche tous les deux ou trois jours dans un flacon contenant cinq millilitres de nourriture afin de maintenir la qualité de la nourriture pendant une durée totale de 10 jours. Commencez l’isolement en versant les mouches d’une cage dans un homogénéisateur en verre et téflon rempli d’un millilitre de tampon d’isolement glacé.Ensuite, placez un peu de mortier sur de la glace pour maintenir les mitochondries intactes et homogénéisez les mouches en effectuant 15 allers-retours. En prenant soin de ne pas tourner le pilon, transférez l'homogénénat dans un tube de 1,5 millilitre et centrifugez le tube à 300 ×g pendant cinq minutes à quatre degrés Celsius. Transférez le surnageant dans un tube différent et centrifugez le surnageant à 6 000 ×g pendant 10 minutes à quatre degrés Celsius afin d'enrichir les mitochondries.Après la centrifugation, éliminer le surnageant contenant la fraction cytosolique. Resuspendre le culot dans 300 microlitres de tampon de lavage en pipetant plusieurs fois vers le haut et vers le bas. Répéter doucement les étapes précédentes pour la deuxième cage gyroscopique.Ensuite, combiner les culots re-suspendus des deux cages dans un tube de microcentrifugeuse cryogénique et centrifuger les culots combinés à 6 000 ×g pendant 10 minutes à 4 °C. Jeter le surnageant et congeler rapidement le culot dans de l'azote liquide. Enfin, conserver les fractions enrichies en mitochondries à −80 °C.Cette immunotransfert de type western montre un enrichissement de la protéine membranaire mitochondriale de transport poin, qui sert d'indicateur de la séparation efficace des mitochondries dans les fractions mitochondriales. La protéine poin est indétectable dans les fractions cytosoliques, tandis que la protéine tubuline, une protéine cytosolique des microtubules, n'est pas détectée dans la fraction mitochondriale, ce qui démontre une contamination minimale par des protéines cytosoliques. Les analyses des composantes principales, ou ACP, ont été réalisées à partir des valeurs obtenues par spectrométrie de masse, normalisées selon la concentration en protéines déterminée par la méthode de Bradford, transformées en logarithme et amputées des valeurs minimales observées pour chaque composé.Les graphiques ACP ont été générés à l'aide du métabolite complet. Les profils provenant de souches natives et altérées de mouches permettent de comparer les différents métabolites de l'ADN mitochondrial obtenus avec un extrait standard de la mouche entière à un graphique ACP des métabolites présents dans des extraits enrichis en mitochondries. Les profils métaboliques de la mouche entière se séparent le long de l'axe PC2 et reflètent les effets principaux du traitement par la rapamycine. Il existe uniquement de légères différences entre les génotypes alternatifs de l'ADNmt.En revanche, les profils de métabolites provenant des extraits enrichis en mitochondries montrent une séparation entre le génotype natif d'ADNmt sur aliment normal et les trois autres échantillons, l'ADNmt natif sous rapamycine, et l'ADNmt alternatif sur aliment normal ou sous rapamycine. Cela implique que l'effet de l'ADNmt alternatif modifie les profils de métabolites d'une manière analogue aux effets du traitement à la rapamycine. Lors de la réalisation de ce protocole, il est important, il est recommandé de réaliser toutes les manipulations le même jour, afin de réduire la variabilité entre les réplicats.Je recommanderai d'élaborer un plan à l'avance, d'étiqueter les vials et de tenir un suivi des enregistrements d'attente entre les réplicats afin d'améliorer la qualité de notre préparation des échantillons.

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Dans cette vidéo, nous allons vous montrer comment les complexes de la chaîne respiratoire mitochondriale des cellules souches embryonnaires humaines peuvent être analysées à l'aide des tests d'activité de gel.

Palpage pour activité complexe mitochondrial dans les cellules souches embryonnaires humaines

Nous décrivons une méthode rapide et efficace pour la purification des mitochondries de la...

Purification des mitochondries de cellules de levure

Cette procédure illustre comment isoler du cerveau de souris adulte les membranes des mitochondries associées à l'urgence ou la SMMA et les glycosphingolipides-fractions enrichies en microdomaines de MMA propres et préparations mitochondriales.

Les mitochondries associées à membranes ER (SMMA) et glycosphingolipides microdomaines enrichis (GEM): Isolement à partir de cerveau de souris

L’analyse de la relation structure-fonction mitochondriale est nécessaire pour une compréhension approfondie des mécanismes de régulation de la fonctionnalité mitochondriale. Des méthodes spécifiques pour étudier la structure et la fonction mitochondriales dans les ovaires de drosophile vivants et fixes sont décrites et démontrées dans cet article.

Étudier mitochondrial Structure et fonction Drosophila ovaires

Dans ce protocole, nous démontrons l’application de la tomographie électronique série-section d’élucider la structure mitochondriale dans les muscles de vol indirect de drosophile .

Ultrastructure Mitochondrial 3D de Drosophila vol Indirect musculaire révélée par la série-section Electron Tomography

Dans cet article, on décrit une méthode pour mesurer la consommation d’oxygène à l’aide de respirométrie haute résolution en thoraxes perméabilisées de drosophile. Cette technique nécessite une quantité minimale de tissu par rapport à la technique d’isolement mitochondrial classique et les résultats obtenus sont plus physiologiquement pertinents.

Mesure de la consommation d’oxygène mitochondriale dans les fibres perméabilisées de la drosophile à l’aide de petites quantités de tissu

Ce protocole décrit comment préparer des larves de drosophile pour analyse métabolomique basée sur GC-MS.

Préparation des échantillons de larves de drosophile pour chromatographie en phase gazeuse-spectrométrie de masse (GC-MS)-base de métabolomique

Nous présentons un protocole permettant de mesurer la consommation d’oxygène et l’acidification extracellulaire dans le cerveau larvaire et adulte de Drosophila melanogaster . Un analyseur métabolique est utilisé avec un protocole adapté et optimisé. Micro-tissu restrictions sont un élément essentiel du présent protocole et ont été conçues et créées spécialement pour leur utilisation dans cette analyse.

Analyse métabolique des larves de Drosophila melanogaster et un cerveau adulte

Malgré les progrès récents, de nombreuses protéines mitochondriales de levure restent encore avec leurs fonctions complètement inconnues. Ce protocole fournit une méthode simple et fiable pour déterminer la localisation de la soumissionochondriale des protéines, ce qui a été fondamental pour l’élucidation de leurs fonctions moléculaires.

Évaluation de la localisation des protéines submitochondriales dans la levure bourgeonnante Saccharomyces cerevisiae

Ici, nous décrivons une méthode détaillée pour l’isolement des mitochondries du muscle squelettique de la souris et l’analyse ultérieure de la respiration par taux de consommation d’oxygène (OCR) à l’aide de tests respirométriques sur microplaques. Ce pipeline peut être appliqué pour étudier les effets de multiples interventions environnementales ou génétiques sur le métabolisme mitochondrial.

Isolement des mitochondries du muscle squelettique de la souris pour les tests respirométriques

Nous présentons ici un protocole de respirométrie à haute résolution pour analyser la bioénergétique chez les mouches des fruits mutantes PINK1B9-null. La méthode utilise le protocole SUIT (Substrate-Uncoupler-Inhibitor-Titration).

Analyse de la fonction mitochondriale chez un mutantB9-Null de Drosophila melanogaster PINK1 à l’aide de la respirométrie à haute résolution

Découvrez l'isolation de fractions mitochondriales enrichies chez Drosophila melanogaster pour l'analyse métabolomique. Cette méthode par homogénéisation et centrifugation différentielle améliore la détection des changements métaboliques subtils.

Préparation de mitochondriales fractions enrichies pour métabolique Analyse en

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