10 septembre 2015
Cet article décrit le protocole détaillé et l'équipement nécessaire pour une double cartographie optique du potentiel transmembranaire (V m) et d'une connexion intra-réticulum sarcoplasmique (SR) Ca 2+ dans le coeur de lapin Langendorff perfusé. Cette méthode permet l'observation directe et la quantification de V m et SR Ca 2+ dynamique dans le coeur intact.
L’objectif global de cette procédure est de cartographier simultanément optiquement le réticulum intrasarcoplasmique libre, le calcium et le potentiel transmembranaire dans le cœur de lapin isolé intact et isolé perfusé de LOR. Ceci est accompli en excisant d’abord le cœur de lapin et en canulant l’aorte pour la perfusion rétrograde de lanor. La deuxième étape consiste à éliminer la contraction en ajoutant une contraction d’excitation se désolidarisant au perfu huit.
Ensuite, la perfusion est commutée sur une boucle de recirculation de petit volume et un indicateur de calcium de faible affinité est ajouté à température ambiante. Les dernières étapes consistent à réchauffer le cœur à 37 degrés Celsius à l’aide de la boucle de profusion de grand volume et à ajouter le colorant sensible à la tension. Ainsi, au cours de l’expérience, les changements dans le calcium et le potentiel transmembranaire sont mesurés en excitant le cœur avec de la lumière bleue et en mesurant la lumière émise avec des caméras CM OS à grande vitesse.
Le principal avantage de cette technique par rapport aux méthodes existantes est qu’elle permet aux chercheurs de sonder directement le réticulum sarcoplasmique ou SR pour une dynamique calcique courte sans interférence des signaux calciques transmembranaires. Cette méthode peut également aider à répondre à des questions clés liées au rôle de la manipulation du calcium SR dans la contribution aux arythmies, car le potentiel transmembranaire est enregistré simultanément avec le calcium SR, Généralement, les personnes novices dans cette méthode auront du mal car les signaux optiques de calcium SR sont de très faible amplitude. Par conséquent, le bon chargement de l’indicateur de calcium est essentiel Pour ce protocole, il est nécessaire d’avoir à portée de main une solution de tyro fraîchement préparée.
Quatre litres suffiront. Ne mélangez pas les solutions mères concentrées sans dilution. Préparez également les autres solutions à l’avance comme indiqué dans la bulle de protocole de texte l’alimentation des tyros avec 95 % d’oxygène et 5 % de dioxyde de carbone, et ajustez le débit de gaz pour régler le pH de la solution très proche de 7,4.
La solution doit être à température ambiante. Préparez le système de perfusion L andorf à recirculation en plaçant un filtre en nylon en ligne avec des pores de 11 microns pour filtrer le perfu sate. Maintenant, amorcez le système de profusion principal avec environ deux litres de tyros oxygénés.
Le volume total de deux litres comprend la solution dans le réservoir. Ensuite, préparez et amorcez une courte ligne de profusion qui contourne le réservoir de solution afin de créer une boucle de profusion à recirculation de petit volume pour la grippe oh cinq N am. En téléchargeant, le volume total dans le système de recirculation plus petit doit être d’environ 150 millilitres.
Pour préparer le système de surveillance de la pression, connectez un transducteur de pression à la conduite de profusion et connectez la sortie du transducteur à un amplificateur trans bridge. Allumez maintenant le système d’acquisition de données. Réglez-le pour surveiller en permanence l’ECG et la pression de profusion.
Ensuite, ajustez la pression de perfusion de base à zéro millimètre de mercure. Enfin, alignez la caméra de cartographie optique comme décrit dans le protocole texte. Pour commencer, fixez le lapin et anesthésiez-le avec du pentobarbital, ainsi qu’un bolus de 1000 unités d’héparine.
Couvrez les yeux pour calmer le lapin. Commencez par une incision médiane pour exposer le sternum et les côtes à l’aide de ciseaux à bout émoussé. Coupez le sternum entre le xiphoïde et le meibum.
Ensuite, ouvrez soigneusement le sternum sans endommager le cœur et écartez les côtes pour exposer le cœur. Ensuite, retirez rapidement tout le bloc cœur-poumon en coupant tous les vaisseaux et tissus environnants. Transférez le bloc cœur-poumon dans environ 100 millilitres de solution tyro glacée.
Dans le bloc de tissu excisé, localisez l’aorte et coupez l’aorte ascendante juste à proximité des trois branches de l’arc aortique. Ensuite, canulez l’aorte avec la canule de calibre huit attachée au système de profusion. Fixez l’aorte à la canule avec un morceau de suture en soie USP zéro.
Après avoir fixé la canule, disséquez soigneusement la trachée, les poumons et la graisse épicardique. Ensuite, identifiez la valve mitrale et utilisez soigneusement des pinces et des ciseaux tranchants pour endommager ou retirer un feuillet. Ainsi, une congestion de solution dans le ventricule gauche ne peut pas se produire.
Continuez en immergeant le cœur dans la chambre de perfusion horizontalement avec le côté antérieur vers le haut. Placez la canule sur un morceau de sain. Fixez la canule avec des broches en forme de U insérées à travers le morceau de sard et dans le fond en silicone du plat de perfusion.
Cela empêchera le cœur de bouger. Lors de l’imagerie, une petite épingle à insectes peut être utilisée pour stabiliser l’apex si nécessaire, mesurer la quantité de solution de tyro utilisée lors de la canulation et la remplacer par une solution fraîche pour maintenir la solution totale en circulation à deux litres. Maintenant, immergez complètement les électrodes ECG dans le bain de chaque côté du cœur, mais pas en contact avec le cœur.
Vérifiez ensuite que cela fait d’une dérivation normale une morphologie ECG. Pendant ce temps, maintenez la pression aortique à 60 à 70 millimètres de mercure en ajustant le débit des perfusibles entre 25 et 35 millilitres par minute. Maintenant, éteignez les lumières de la pièce et ajoutez 0,3 à 0,6 millilitre de solution mère de statine BLE au PERFU huit pour une concentration finale de 10 à 20 micromolaires.
Après 10 à 15 minutes, les contractions cardiaques devraient cesser. Passez ensuite au système de profusion de petits volumes. L’une des clés d’une imagerie calcique SR réussie est le bon chargement du colorant Flow Five N am.
Cela nécessite une perfusion de petit volume pour obtenir une concentration élevée de colorant et des conditions de température ambiante. Pour éviter la désestérification du D dans le cytosol, préparez maintenant 500 microlitres de solution de chargement de la grippe O cinq N am et mélangez-le avec 500 microlitres de solution routière. Ajoutez-le ensuite au PERFU huit.
Laissez le téléchargement se poursuivre pendant 45 minutes, puis allumez le bain-marie en circulation pour réchauffer le système à 37 degrés Celsius. Après une heure de téléchargement, revenez au volume plus important de Perfu huit. Ensuite, mélangez 50 microlitres du colorant sensible à la tension RH 2 37 dans un millilitre de tyros chauds.
Injectez-le lentement dans le système pendant environ cinq minutes et procédez à la cartographie optique du cœur. Pour commencer, concentrez les caméras de cartographie optique sur le champ approprié pour réduire le mouvement sur la surface du PERFU huit. Faites flotter une lamelle sur la solution.
Ajustez maintenant le faisceau lumineux LED pour fournir un éclairage uniforme au cœur. Pour chaque enregistrement optique, définissez le protocole de stimulation souhaité. Allumez le voyant d’excitation et collectez une à quatre secondes de données dans un délai d’une à deux heures.
Le bruit d’une fuite de colorant mettra fin à l’expérience. Ensuite, lavez le système avec de l’eau déminéralisée. Puis 70 % d’éthanol et terminez par un autre rinçage à l’eau déminéralisée.
En utilisant le protocole décrit, la séparation spectrale du signal de potentiel transmembranaire et du réticulum sarcoplasmique ou du signal calcique SR peut être séparée. Des traces optiques pendant la stimulation continue ont également été enregistrées. Des cartes d’activation ont ensuite été construites à partir des données en traçant le temps d’activation de chaque pixel.
Sur un graphique isochronal, il y a un retard typique de huit à 10 millisecondes entre les deux signaux. Il a été possible de quantifier la variation relative de la RS diastolique. Charge calcique et amplitudes systoliques de libération de calcium SR à différents cycles de stimulation. Une manipulation pathologique du calcium SR a été observée après l’application de l’isoprotérénol, agoniste des récepteurs bêta-adrénergiques.
Les flèches rouges indiquent une fuite de calcium évidente du sr. Dans ces conditions, le déclenchement des potentiels d’action par le calcium peut se produire. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne idée de la façon d’effectuer une cartographie optique simultanée du potentiel transmembranaire et des signaux calciques SR dans le cœur de lapin Perfusé de Lang Endorf intact
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Cet article décrit un protocole de cartographie optique double du potentiel transmembranaire et du calcium libre dans le réticulum sarcoplasmique dans le cœur de lapin perfusé selon Langendorff. Cette méthode permet l'observation directe et la quantification de ces dynamiques dans le cœur intact.
Cette méthode permet la mesure directe et simultanée du calcium intra-réticulum sarcoplasmique et du potentiel transmembranaire dans un tissu cardiaque intact, offrant ainsi un éclairage mécanistique sur le couplage excitation-contraction et les substrats arythmogènes. En précisant les dynamiques spatiales et temporelles de la gestion du Ca2+ du RS dans un modèle physiologiquement pertinent, elle soutient la validation ciblée et la réduction des risques en découverte de médicaments cardiovasculaires. L'approche établit un lien entre les mécanismes moléculaires et les phénotypes au niveau tissulaire, renforçant la fiabilité prédictive des évaluations précliniques de sécurité et d'efficacité.
La méthode s'inscrit dans le continuum de découverte allant de la validation de la cible jusqu'à l'optimisation du composé précurseur, en passant par le profilage préclinique de la sécurité, en particulier pour les composés agissant sur les canaux ioniques cardiaques ou les protéines régulatrices du calcium.