Les cellules souches pluripotentes induites (CISP) sont des cellules somatiques ont été reprogrammées génétiquement pour former des cellules souches indifférenciées. Comme les cellules souches embryonnaires, CISP peut être cultivé dans des conditions de culture qui favorisent la différenciation en différents types cellulaires. Ainsi, le CISP peut-être constituer une source potentiellement illimitée de tout type de cellules humaines, ce qui est une percée majeure dans le domaine de la médecine régénérative. Cependant, davantage de recherches dans la dérivation et la différenciation du CISP est toujours nécessaire d’utiliser effectivement ces cellules dans la pratique clinique.
Cette vidéo présente tout d’abord les principes fondamentaux derrière la reprogrammation cellulaire et puis montre un protocole pour la génération de CISP de fibroblastes embryonnaires de souris différenciées. Enfin, il examine plusieurs expériences dans lequel les scientifiques sont améliorer ou appliquer des techniques de génération d’iPSC.
Les cellules souches pluripotentes induites, comme les cellules souches embryonnaires humaines peuvent se différencient en presque n’importe quelle cellule dans le corps et donc très prometteuses dans le domaine de la médecine régénérative.
Cellules souches embryonnaires humaines, ou les CSEh, est obtenus à partir de pré-implantatoire des embryons, tandis que complètement différenciées des cellules somatiques sont utilisés pour générer des cellules souches pluripotentes induites, qui sont aussi appelés CISP.
Dans cette vidéo, vous allez en savoir plus sur les principes de base derrière générant CISP, un protocole étape par étape pour induire la pluripotence des cellules différenciées, et parmi les nombreuses applications en aval et les modifications du présent protocole.
Commençons par examiner les principes qui sous-tendent la génération de CISP de types de cellules somatiques.
Les cellules différenciées, comme les cellules de la peau ou des neurones, sont ceux dont le sort est décidé. Ils sont engagés à exécuter une fonction particulière. En revanche, les cellules souches pluripotentes sont ceux dont le sort est indéci, et ils peuvent se différencier en n’importe quel type de cellule.
Procédé consistant à modifier l’identité d’une cellule différenciée déjà à un État pluripotent est appelé reprogrammation cellulaire. Cela implique de changer le modèle d’expression de gène dans la cellule, car le nombre et les types de protéines produites par un jeu de cellule, un rôle majeur dans la définition de l’identité de la cellule.
Une des façons pour induire une reprogrammation cellulaire est en induisant l’expression de certains facteurs de transcription. Facteurs de transcription sont des protéines qui se lient à des séquences régulatrices dans un gène. Certaines de ces séquences sont appelés « promoteurs » et donc promouvoir la transcription d’un gène. Quelques facteurs de transcription peuvent influencer l’expression de nombreux gènes, qui a un impact énorme sur l’identité de la cellule.
Les quatre facteurs de transcription classique qui sont sont avérées pour induire la pluripotence sont Oct4, Sox2, cMyc et Klf4. Ces facteurs sont également appelés facteurs de Yamanaka, après le chercheur qui a découvert les effets de reprogrammation.
Plusieurs méthodes peuvent être utilisées pour induire l’expression de ces facteurs de transcription. Méthode la plus commune et efficace est l’utilisation d’un virus modifié pour fournir la transcription de gènes du facteur dans le noyau, où ils seront intégreront dans le génome.
Dans cette méthode, les gènes codant les quatre facteurs de Yamanaka sont individuellement emballés dans différents rétrovirus et ajoutés à différencier les cellules. Lorsque les cellules sont exposées à virus à jour, une petite fraction des cellules différenciées sont infectés toutes les quatre transcription factor porteurs de virus. Ils commencent à la dédifférenciation jusqu’à ce que les grands bouquets sphériques de cellules souches pluripotentes sont forment. La formation de cluster aide CISP pour créer un micro-environnement qui ressemble au in vivo des cellules souches et donc de les aider à maintenir leur pluripotence.
Étant donné que vous comprenez maintenant les principes de base derrière la génération de la CISP, Let ‘ s go grâce à un protocole général pour induire la pluripotence dans les fibroblastes embryonnaires de souris, ou MEFs, en utilisant un système de transduction virale.
Avant de commencer cette procédure, remarque que les virus peuvent infecter les cellules de votre corps, donc la suite aux directives de sécurité est très important.
Pour commencer le processus de transfection, le milieu de culture est supprimé d’une plaque contenant une forte densité de MEFs et les cellules sont lavées avec une solution tampon. Ensuite, une solution contenant une enzyme dégradant les protéines, comme la trypsine, est ajoutée pour soulever les cellules du fond du plat. Milieu de culture est ensuite ajouté à la plaque, et les cellules individuelles sont transférées dans un tube à centrifuger.
Après centrifugation, le culot est remises en suspension dans le milieu de culture. Ensuite, les cellules sont comptées et la concentration est ajustée afin qu’un nombre optimal de cellules peut être infecté par le virus le lendemain. Incuber les cellules pendant la nuit.
Après que les cellules sont sont installés dans leur nouveau plat, vieux médias est remplacé par les supports neufs, et machinés virus contenant les facteurs de transcription désiré sont ajoutés à la plaque. Les cellules sont ensuite incubées avec les virus pendant un temps suffisant permettre l’infection aura lieu. Après incubation, le support contenant le virus libres est supprimé et remplacé par les cellules souches embryonnaires frais moyen.
2 à 3 semaines après transformation, les cellules doivent être cultivées à 37 ° c dans un incubateur, et les milieux de culture doit être remplacé tous les jours.
Après ce laps de temps, iPSC colonies qui ressemblent à des colonies de cellules souches embryonnaires doivent devenir assez grands pour être ramassés. Les colonies peuvent être transférées à un plat frais contenant le support avec des facteurs de croissance et a permis de grandir encore. Afin de confirmer la pluripotence, une partie de la population cellulaire est colorée avec des marqueurs de pluripotence.
Maintenant que vous avez vu comment générer CISP de cellules différenciées, regardons quelques applications en aval et les modifications de cette méthode très utile.
Une caractéristique importante du CISP est qu’ils peuvent servir à générer presque n’importe quelle cellule dans le corps. Cet exemple illustre la génération des cellules du muscle cardiaque, appelé cardiomyocytes, de CISP. Pour ce faire, le CISP est transférés aux plaques non adhérents qui leur permettent de corps embryoïdes forme, qui sont des agrégats de cellules souches pluripotentes. Les corps embryoïdes sont cultivées en moyens spécialisé contenant du sérum et de l’acide ascorbique, qui améliore la différenciation cardiaque. Différenciation réussie peut être facilement observable lorsque certaines cellules commencent à battre.
Puisque le CISP peut potentiellement se différencier en n’importe quel type de cellule, ils peuvent aussi former un organisme tout entier, comme une souris. Cela peut être fait à l’aide d’un test appelé complémentation tétraploïde. Tout d’abord, un tétraploïde d’embryon, embryon contenant quatre séries de chromosomes, est formé par la fusion de deux cellules d’un embryon précoce ensemble à l’aide d’un champ électrique. L’embryon tétraploïde est autorisé à développer au stade blastocyste. CISP est ensuite injectées dans le stade de blastocyste, qui est ensuite transplantée dans un destinataire féminin pour la gestation. Les cellules tétraploïdes ne sont en mesure de former les structures extra-embryonnaires comme le placenta, donc les animaux issus de cette méthode est entièrement issus de CISP.
Certains chercheurs modifier la procédure reprogrammation pour rendre le processus d’identification des cellules correctement reprogrammés plus efficaces. Par exemple, dans cette expérience MEFs avec la capacité d’exprimer la protéine fluorescente verte sous l’influence du promoteur Oct4 a permis aux chercheurs d’identifier facilement les cellules qui ont acquis la pluripotence.
Vous avez juste regardé les vidéo de JoVE sur la production de cellules souches pluripotentes induites. Cette vidéo a examiné les principes derrière cette procédure et un protocole étape par étape pour générer le CISP de cellules différenciées. Nous avons également examiné comment cette méthode pourrait être appliquée ou modifiée pour des expériences en laboratoire.
La découverte du CISP a eu un impact énorme sur le domaine de la biologie des cellules souches, car il a un énorme potentiel pour le développement de thérapies qui peuvent être employées pour traiter les maladies dégénératives. Si beaucoup de progrès ont été réalisé avec le CISP, l’obstacle qui reste à franchir est le risque associé de cancer. Les procédures actuelles de reprogrammation risquent de se traduire par la croissance des cellules non réglementée qui peut causer le cancer. Par conséquent, davantage de recherche est nécessaire d’utiliser effectivement le CISP cliniquement. Comme toujours, Merci pour regarder !
Induced pluripotent stem cells, like human embryonic stem cells, can differentiate into almost any cell in the body, and therefore hold great promise in the field of regenerative medicine.
Human embryonic stem cells, or hESCs, are obtained from pre-implantation embryos, whereas fully differentiated somatic cells are used to generate induced pluripotent stem cells, which are also referred to as iPSCs.
In this video, you are going to learn about the basic principles behind generating iPSCs, a step-by-step protocol to induce pluripotency in differentiated cells, and some of the many downstream applications and modifications of this protocol.
Let’s begin by discussing the principles behind generation of iPSCs from somatic cell types.
Differentiated cells, like skin cells or neurons, are the ones whose fate is decided. They are committed to perform a particular function. On the other hand, pluripotent stem cells are the ones whose fate is undecided, and they can differentiate into any type of cell.
The process of changing the identity of an already differentiated cell to a pluripotent state is termed cellular reprogramming. This involves changing the pattern of gene expression in the cell, because the number and types of proteins produced by a cell play a major role in defining a cell’s identity.
One of the ways to induce cellular reprogramming is by inducing the expression of certain transcription factors. Transcription factors are proteins that bind to regulatory sequences within a gene. Some of these sequences are called “promoters,” and therefore promote transcription of a gene. A few transcription factors can influence the expression of numerous genes, which has a huge impact on cell identity.
The four classical transcription factors that have been demonstrated to induce pluripotency are Oct4, Sox2, cMyc, and Klf4. These factors are also known as Yamanaka factors, after the researcher who discovered their reprogramming effects.
Multiple methods can be used to induce expression of these transcription factors. The most common and efficient method is the use of a modified virus to deliver the transcription factor genes into the nucleus, where they will integrate into the genome.
In this method, the genes encoding the four Yamanaka factors are individually packaged into different retroviruses and added to differentiated cells. When the cells are exposed to modified viruses, a small fraction of differentiated cells become infected with all four transcription factor-carrying viruses. They begin to dedifferentiate until large spherical clusters of pluripotent stem cells are formed. The cluster formation helps iPSCs to create a microenvironment that is similar to in vivo stem cells, and therefore assist them in maintaining their pluripotency.
Since you now understand the basic principles behind the generation of iPSCs, let’s go through a general protocol for inducing pluripotency in mouse embryonic fibroblasts, or MEFs, using a viral transduction system.
Before starting this procedure, note that viruses can infect the cells in your body, so following safety guidelines is extremely important.
To begin the transfection process, the culture medium is removed from a plate containing a high density of MEFs, and the cells are washed with buffer solution. Next, a solution containing a protein-degrading enzyme, like trypsin, is added to lift the cells from the bottom of the dish. Culture medium is then added to the plate, and the detached cells are transferred to a centrifuge tube.
Following centrifugation, the pellet is re-suspended in the culture medium. Next, the cells are counted and the concentration is adjusted so that an optimal number of cells can be infected with virus the next day. Incubate the cells overnight.
After the cells have settled onto their new dish, old media is replaced by fresh media, and engineered viruses containing the desired transcription factors are added to the plate. The cells are then incubated with the viruses for sufficient time to allow infection to take place. After incubation, the medium containing free viruses is removed and replaced with fresh embryonic stem cell medium.
For 2-3 weeks following transformation, the cells should be grown at 37° in an incubator, and the culture media should be replaced daily.
After this time period, iPSC colonies that look similar to embryonic stem cell colonies should become large enough to be picked up. The colonies can be transferred to a fresh plate containing medium with appropriate growth factors, and allowed to grow further. In order to confirm pluripotency, a portion of the cell population is stained with pluripotency markers.
Now that you’ve seen how to generate iPSCs from differentiated cells, let’s look at some downstream applications and modifications of this highly useful method.
An important feature of iPSCs is that they can be used to generate almost any cell in the body. This example shows generation of heart muscle cells, called cardiomyocytes, from iPSCs. In order to do that, the iPSCs are transferred to non-adherent plates that allow them to form embryoid bodies, which are aggregates of pluripotent stem cells. The embryoid bodies are cultured in specialized medium containing serum and ascorbic acid, which enhances cardiac differentiation. Successful differentiation can be easily observed when some cells start to beat.
Since iPSCs can potentially differentiate into any cell type, they can also form an entire organism, like a mouse. This can be done using an assay called tetraploid complementation. First, a tetraploid embryo, an embryo containing four sets of chromosomes, is formed by fusing two cells of an early embryo together using an electric field. The tetraploid embryo is allowed to develop to the blastocyst stage. iPSCs are then injected into the blastocyst, which is then transplanted into a recipient female for gestation. The tetraploid cells are only able to form extraembryonic structures like the placenta, so animals resulting from this method are derived entirely from iPSCs.
Some researchers modify the reprogramming procedure to make the process of identifying successfully reprogrammed cells more efficient. For example, in this experiment MEFs with the ability to express green fluorescent protein under the influence of the Oct4 promoter helped researchers to easily identify cells that have acquired pluripotency.
You’ve just watched JoVE’s video on generating induced pluripotent stem cells. This video reviewed the principles behind this procedure, and a step-by-step protocol to generate iPSCs from differentiated cells. We also reviewed how this method could be applied or modified for in-lab experiments.
The discovery of iPSCs has had a huge impact on the field of stem cell biology, since it has an enormous potential for developing therapies that can be employed to treat degenerative disorders. Although much progress has been made with iPSCs, the hurdle that still needs to be crossed is the associated risk of cancer. The current reprogramming procedures have the potential to result in unregulated cell growth that may result in cancer. Therefore, more research is required to actually use iPSCs clinically. As always, thanks for watching!
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