Name: Porphyromonas gingivalis comme un organisme modèle pour lévaluation de linteraction des bactéries anaérobies avec des cellules hôtes (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2015-12-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 16 s
Description: Découvrez des protocoles pour évaluer l'interaction des bactéries anaérobies avec les cellules hôtes en utilisant Porphyromonas gingivalis. Ces méthodes permettent de mesurer l'invasion bactérienne et la survie intracellulaire dans des conditions reflétant l'infection in vivo.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Nous tenons à remercier le Dr Hiroshi Miyazaki, le Dr Scott Henderson, le Dr Todd Kitten, le Dr Justin Hutcherson, le Dr Catherine Jauregui et Collin R. Berry. Ce travail a été soutenu par des subventions NIH NIDCR R01DE016124, R01DE018039 et R01DE023304 à J.P. Lewis.
Microscopie a été réalisée au département d’anatomie et de neurobiologie de la VCU, financée en partie par la subvention de base du NIH-NINDS Center (5P30NS047463).

Les protocoles suivants décrivent des procédés de mise en culture et l&#39;étude de l&#39;invasion par les espèces anaérobies, P. gingivalis; Toutefois, ces protocoles peuvent être utilisés pour un certain nombre d&#39;agents pathogènes anaérobies. Bien HUVECs sont utilisés, ce protocole peut être utilisé pour d&#39;autres cellules eucaryotes fois immunitaires et non immunitaires. 1. anaérobie Chambre utilisation et d&#39;entretien Remarque: P. gingivalis est un anaérobie sensibles à des niveaux normaux d&#39;oxygène rencontrées dans l&#39;air ambiant. Un environnement anaérobie contrôlé est essentiel pour la culture de P. gingivalis. <ol><li> Ici, maintenir une atmosphère artificielle désigné comme gaz anaérobie mixte (80% de N 2, 10% de H2, 10% CO 2) dans une chambre anaérobie de vinyle (figure 1A). Utiliser un sas (figure 1B) pour transférer des objets dans l&#39;environnement du laboratoire de la chambre anaérobie. Le sas fonctionne manuellement, twpurge de la glace avec du gaz N 2 avant d&#39;introduire le gaz anaérobie mixte. </li><li> Utilisation d&#39;une colonne d&#39;élimination de sulfure d&#39;hydrogène (Figure 1C) pour l&#39;enlèvement d&#39;entretien de l&#39;hydrogène sulfuré indésirable. Placer un déshumidificateur dans la chambre pour éliminer H 2 O créé par le catalyseur et d&#39;éviter les aérosols qui facilitent la propagation de la contamination. Remarque: Le sulfure d&#39;hydrogène est un sous-produit métabolique naturel de nombreuses bactéries anaérobies et son accumulation est toxique pour les bactéries et peut entraîner des dommages à l&#39;électronique et de diminuer la durée de vie d&#39;un catalyseur. </li><li> Utiliser une boîte de ventilateur pour faire circuler l&#39;atmosphère de la chambre à travers un catalyseur au palladium, ce qui élimine l&#39;oxygène en présence d&#39;hydrogène (figure 1D). Remarque: Une atmosphérique (HEPA) faire recirculer l&#39;air élimine les contaminants d&#39;une taille de 0,22 pm ou plus. </li><li> Culture bactéries anaérobies dans un incubateur à 37 ° qui se trouve à l&#39;intérieur de l&#39;anaérobiechambre. Utilisez des techniques aseptiques standards lorsque vous travaillez à l&#39;intérieur de la chambre anaérobie. </li></ol><img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/53408/53408fig1.jpg" /> Figure 1. chambre anaérobie de vinyle et ses composants. (A) une chambre anaérobie de vinyle scellé complètement à partir de l&#39;oxygène atmosphérique fournit espace de travail pour deux personnes à la fois (en 32 x 78 in). Il contient un incubateur réglé à 37 ° C (milieu du dos). (B) un sas est utilisé pour le transfert des objets dans l&#39;environnement de laboratoire à la chambre anaérobie. Sur la photo, un sas automatique commandé par un contrôleur qui peut être programmé pour exécuter automatiquement les procédures de vide et de purge nécessaires pour créer un environnement anaérobie. (C) Un sulfure d&#39;hydrogène colonne d&#39;élimination fournit haute capacité élimination sans entretien des indésirables du sulfure d&#39;hydrogène. (D) Deux boîtes de ventilateur de catalyseur sontplacé dans toute la chambre anaérobie pour faire circuler l&#39;atmosphère de la chambre à travers un catalyseur au palladium, ce qui, en présence d&#39;hydrogène, élimine l&#39;oxygène. La chambre anaérobie est mis en place selon les instructions du fabricant. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53408/53408fig1large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquez ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> 2. Préparation des bactéries anaérobies Remarque: P. gingivalis est aérotolérants et peut être stocké dans des conditions aérobies, mais il ne sera pas croître en présence d&#39;oxygène à des niveaux plus élevés de 6% 17,18. Une chambre anaérobie est nécessaire pour la bonne culture de P. gingivalis et d&#39;autres espèces anaérobies (figure 1). Une bonne formation et d&#39;éducation sur l&#39;utilisation de la chambre anaérobie est nécessaire avant de travailler avec microanaerobes 19. <ol><li> Equilibrer tous les milieux liquides et des plaques à condit anaérobieions pendant au moins 12 heures avant l&#39;expérimentation pour éliminer l&#39;oxygène résiduel. </li><li> Transfert P. gingivalis de -80 ° C congélateur chambre anaérobie, laisser décongeler. </li><li> Streak P. gingivalis sur des plaques de gélose au sang de soja trypticase (TSA II avec du sang de mouton à 5%). Enveloppez plaques en parafilm et conserver à 37 ° C dans un incubateur anaérobie pendant 4-7 jours. </li><li> Inoculer P. gingivalis dans 3 perfusion cardiaque ml du cerveau (BHI) complétées par hémine et ménadione, un milieu liquide non-sélectifs enrichis pour l&#39;isolement et la culture de micro-organismes anaérobies et fastidieux, en utilisant des boucles stériles. Remarque: Pour le stockage à long terme, mélanger les cultures bactériennes préparés BHI avec le glycérol ou DMSO (10-20% concentration finale) et placer dans un congélateur à -80 ° C. </li><li> Préparer une culture de départ de P. gingivalis en faisant une dilution 1:10 et permet aux bactéries de croître jusqu&#39;à la phase mid-log. </li></ol> Note: La densité optique du bacsuspension TÉRIAU est déterminé et la concentration pour chaque souche bactérienne à examiner est ajustée. Pour P. gingivalis une suspension à DO 660 de 0,7 correspond à la phase mi-log et ~ 7 x 10 8 cellules / ml. Les conditions de croissance décrites dans le protocole ci-dessus sont spécifiques de P. gingivalis et peuvent avoir besoin d&#39;être adapté pour d&#39;autres souches bactériennes. 3. cellules endothéliales Culture Remarque: Achat regroupé HUVECs primaires et de la culture en milieu de base contenant des facteurs de croissance endothéliaux vasculaires (VEGF) à 37 ° C dans 5% de CO 2 selon les instructions du fabricant. <ol><li> HUVECs de semences en flacons T-75 à 2,5 x 10 5 cellules / flacon dans 15 ml médias VEGF. Remarque: Vérifiez la viabilité par une dilution 1: 1 avec 4,0% de bleu trypan. Les cellules avec une membrane compromis conservera bleu trypan, les cellules saines avec des membranes intactes apparaîtront blanches lorsqu&#39;elles sont visualisées sous un microscope optique binoculaire. ConT 100 cellules, en sorte que plus de 80% des cellules sont viables 20. </li><li> Remplacez le support tous les 2 jours avec les médias préchauffé VEGF fraîche jusqu&#39;à ce que les cellules atteignent ~ 80% de confluence. </li><li> Laver les cellules une fois avec PBS préchauffé. Libérer les cellules de la fiole T75 par incubation avec 2 ml de trypsine-EDTA (0,25%) pendant 5 min, suivie de neutralisation par une solution de 2 ml de trypsine. </li><li> Recueillir HUVEC en suspension dans un tube conique de 50 ml. Laver toutes les cellules supplémentaires à partir de flacons T-75 avec du PBS et 50 ml de transférer des tubes coniques. </li><li> Centrifuger les cellules à 200 g pendant 10 min. </li><li> Retirer le surnageant, suspendre culot cellulaire dans 10 ml de médias de VEGF préchauffé. </li><li> Déterminer la concentration cellulaire en utilisant un hémocytomètre ou similaire dispositif de comptage cellulaire. </li><li> Calcul du montant de la suspension cellulaire à ajouter à soit plaque de 6 puits (400 000 / puits) ou une plaque de 12 puits avec des lamelles (50 000 / puits). HUVECs sera prêt pour l&#39;expérimentation le lendemain. </li></ol> 4. Essai de survie Invasion / Interaction(Placage) Remarque: Lorsque vous effectuez ce test, préparer deux plaques de cellules endothéliales ensemencées à 400.000 cellules / puits 6 puits. Une plaque sera utilisée pour évaluer bactéries fixées à internalisés et par des cellules hôtes. L&#39;autre plaque représentera pour les bactéries intracellulaires. La plaque de 6 puits permet en triple de deux échantillons à être effectuées en une seule expérience. Pour un aperçu de ce protocole s&#39;il vous plaît se référer à l&#39;analyse de la survie organigramme (Figure 2). <ol><li> Préparer des bactéries anaérobies comme décrit ci-dessus (voir la section 1) jusqu&#39;à ce qu&#39;ils atteignent la croissance mi-log (OD 660 0,5-0,7). </li><li> Bactéries centrifuger à 5000 g pendant 10 min. Remarque: Si la centrifugeuse est en dehors de la chambre anaérobie, porter échantillons bactériens dans un tube de 15 ml hermétiquement fermés, enveloppez le bouchon avec du parafilm pour éviter les fuites d&#39;oxygène. </li><li> Placez granulés P. gingivalis retour dans la chambre, éliminer le surnageant. Laver avec du PBS, les bactéries de granulés de nouveau avant remise en suspension dans VEGF-moidia. Préparer des suspensions pour toutes les souches bactériennes à tester à une DO 660 de 0,7 qui correspond à la phase mi-log (environ 7 x 10 8 cellules / ml). Les bactéries sont maintenant prêts pour l&#39;infection. </li><li> Transfert des plaques à 6 puits contenant des cellules HUVEC à partir de tissu en culture incubateur. Chambre anaérobie Retirez le support et laver trois fois avec PBS anaérobie. Ajouter 2 ml de milieu de VEGF anaérobie dans chaque puits et placer les plaques à 37 ° C dans l&#39;incubateur anaérobie pendant 20 minutes pour équilibrer la température de l&#39;infection. Remarque: les bactéries de plaque sur des plaques d&#39;agar de sang pour assurer ceux utilisés pour l&#39;infection sont homogènes et non contaminés lors de l&#39;infection. </li><li> Infecter les cellules hôtes avec des bactéries à une multiplicité d&#39;infection (MOI: bactéries hôtes) de 100: 1. Remarque: le nombre de cellules HUVEC est déterminé en effectuant un test d&#39;exclusion trypan sur un seul bien avant l&#39;infection. Le nombre de cellules bactériennes est déterminé par la densité optique (par exemple, de 0,5 OD = 5 x 10 8 cellules / ml). Bacterial concentration est ajustée à bon MOI basée sur la concentration HUVECs 21. </li><li> Placer plaques de 6 puits avec des cellules HUVEC infectées en incubateur anaérobie et les bactéries permettent d&#39;interagir avec les cellules hôtes pendant 30 min. </li><li> Préparation de saponine dans du BHI (1,0% p / v) à l&#39;intérieur de la chambre anaérobie et filtrer à travers un filtre de 0,2 um. </li><li> La survie de deux bactéries fixées et intériorisées. <ol><li> Retirer les plaques de l&#39;incubateur, les médias aspirer, laver trois fois avec PBS anaérobie et ajouter 2 ml filtrés 1,0% de saponine (préparé comme décrit dans l&#39;étape 4.8). Incuber pendant 15 min pour permettre la lyse de la cellule hôte. </li><li> Racler fond de chaque puits avec un grattoir à cellules. Recueillir le mélange de cellules de chaque puits et faire une dilution de 1: 1 dans du BHI. </li><li> Passez à réaliser des dilutions de l&#39;échantillon. Selon les espèces bactériennes et de la concentration, de régler des dilutions en série. Commencez avec 1: 100 ou 1: 1000 dilutions. </li><li> Plaque 200 ul de la dilution souhaitée sur des plaques de gélose au sang. Wrap til plaques en parafilm et placer dans l&#39;incubateur anaérobie à 37 ° C. </li><li> Après sept jours d&#39;incubation à 37 ° C, retirer les plaques et à compter unités formant colonie (UFC) en utilisant une boîte à lumière de compter manuellement colonies. Remarque: UFC sont énumérés. Pour de plus grandes quantités de UFC, les images peuvent être prises et des logiciels peuvent être utilisés pour faciliter le dénombrement des UFC. </li></ol></li><li> La survie des bactéries internalisées. <ol><li> Retirer les plaques de l&#39;incubateur. Laver trois fois avec du PBS et anaérobie ajouter 2 ml de milieux de VEGF avec additionné d&#39;antibiotiques (300 pg / ml de gentamicine et de 400 ug / ml de métronidazole). </li><li> Incuber pendant 1 heure. Veillez à tester les antibiotiques de sorte qu&#39;ils sont 100% efficace pour tuer la souche bactérienne désirée et assurez-vous qu&#39;ils ne pénètrent pas dans les cellules hôtes 22,23. </li><li> Aspirer le milieu, ajouter 2 mL de 1,0% filtrée saponine. Incuber pendant 15 min pour permettre la lyse de la cellule hôte. </li><li> Racler le fond de chaque well avec racleur de cellules. Recueillir le mélange de cellules de chaque puits et faire dilution 1: 1 dans du BHI. </li><li> Préparer des dilutions en série de l&#39;échantillon (1: 100, 1: 1000). </li><li> Plaque 200 ul de la dilution souhaitée sur des plaques de gélose au sang. Enveloppez plaques en parafilm et placer dans un incubateur anaérobie. </li><li> Après sept jours d&#39;incubation à 37 ° C enlever les plaques et à compter UFC. </li></ol></li></ol><img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/53408/53408fig2.jpg" /> Figure 2. Représentation schématique d&#39;un protocole utilisé pour la survie des bactéries anaérobies avec des cellules eucaryotes. Les deux tests pour une survie bactérienne totale et la survie des bactéries intériorisées peuvent être effectuées en même temps. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53408/53408fig2large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> 5. L&#39;internalisation des bactéries dans This HostLLS (microscopie à fluorescence) Remarque: P. gingivalis est marqué avec la 2 &#39;, 7&#39;-bis- (2-carboxyéthyl) -5- (et-6) -carboxyfluorescéine, acétoxyméthyl ester (BCECF-AM). BCECF-AM est un colorant de membrane perméable non fluorescent; BCECF sa conversion en fluorescéine sous l&#39;action des esterases intracellulaires de peut indiquer la viabilité cellulaire. P. gingivalis est marqué avec le colorant BCECF-AM et ensuite utilisé pour infecter des cellules eucaryotes. Après l&#39;infection, les cellules sont fixées et marquées au DAPI et TRITC-phalloïdine. La tache de DAPI utilisé pour colorer le noyau de la cellule eucaryote sera également étiqueter noyau de la cellule bactérienne, qui fournit une contre-mesure pour identifier les bactéries non viables qui ne peuvent pas métaboliquement cleave BCECF-AM. Les cellules hôtes sont mises en évidence par la phalloïdine-TRITC, un colorant rouge de l&#39;actine. <ol><li> Lamelles autoclave. Ajouter stérilement lamelles à plaques à 12 puits avant de semer les cellules endothéliales à 5 x 10 4 cellules / puits. (Journée Préparé avant l&#39;expérience) </li><li&gt; Ai préparés sur des cellules endotheliales de 18 mm (# 1.5) d&#39;épaisseur Lamelles circulaires dans des plaques à 12 puits comme décrit ci-dessus. </li><li> Préparer bactéries anaérobies cultivées jusqu&#39;à la phase mid-log (OD 660 = 0,5-0,7) comme décrit dans l&#39;article 1. </li><li> Laver les bactéries anaérobies 2x avec du PBS par centrifugation à 5000 xg et de mise en suspension le culot dans du PBS à 5-7 x 10 8 cellules / ml. </li><li> Ajouter 20 ul de 0,2 mM de BCECF-AM à 2 ml de suspension bactérienne (5-7 x 10 8 cellules / ml) jusqu&#39;à une concentration finale de BCECF-AM de 2 uM. </li><li> Incuber à 37 ° C pendant 30 min dans l&#39;obscurité. </li><li> Des plaques de transfert avec les cellules endothéliales ensemencées sur 18 mm (# 1.5) d&#39;épaisseur des lamelles circulaires de culture de tissu dans la chambre incubateur anaérobie. Laver avec du PBS et l&#39;échange avec les médias de VEGF anaérobie. Remarque: Vérifiez que HUVECs sont en bonne santé sous un microscope optique. HUVEC devrait être ~ 80% de confluence, la morphologie devrait être comparable à des fabricants. </li><li> Centrifuger étiqueté à bactéries5000 xg pendant 10 min pour éliminer le colorant résiduel BCECF-AM. Mettre en suspension dans 2 ml de milieu de VEGF anaérobie. </li><li> Infecter les cellules hôtes avec des bactéries marquées à MOI de 100: 1 (bactéries: accueil). </li><li> Incuber à chambre anaérobie à 37 ° C pendant 30 min. </li><li> Après que les cellules de lavage de l&#39;infection avec PBS trois fois et fixer fraîchement préparée 4,0% de paraformaldehyde pendant 10 min. Remarque: Après que les cellules de fixation, l&#39;expérience peut être menée à l&#39;extérieur de la chambre anaérobie. </li><li> Laver avec lamelles de PBS à trois reprises. </li><li> Ajouter 1 ml de 0,2% de Triton X-100 pendant 10 min. </li><li> Laver avec lamelles de PBS à trois reprises. </li><li> Ajouter 50 ul de TRITC phalloïdine (50 ug / ml) à lamelles pendant 45 minutes. </li><li> Lavez lamelles de trois fois, retirer de la plaque de 12 puits et les placer sur une diapositive avec soft-jeu milieu de montage contenant DAPI. Sceller les côtés avec du vernis à ongles. Remarque: Les lames peuvent être stockées pendant quelques mois dans l&#39;obscurité. Évitez exposition à la lumière pour éviter photo-blanchiment. </li><li> Voir les diapositivesen utilisant un microscope confocal. <ol><li> Ici, utilisez un système 34 de canal spectrale (détecteur de réseau 32-canal et deux détecteurs de PMT de côté, plus un détecteur de lumière transmise) configuré autour d&#39;un AxioObserver (inversé) stand avec un étage XY motorisé. Le système dispose de cinq lasers: diode bleue (405 nm), multi-ligne Argon (458, 488, 514 nm), diode verte (561 nm), rouge HeNe (633 nm) et un laser pulsé 440 nm. Équipé d&#39;un système d&#39;imagerie de vie de fluorescence avec 2 détecteurs de GaAsP hybrides (pour FRET-FLIM). </li><li> Détecter la fluorescence à partir de DAPI et TRITC dans une chaîne à l&#39;aide d&#39;un filtre bi-bande avec des longueurs d&#39;onde d&#39;excitation de 340-380 nm et 540-560 nm, et un filtre d&#39;émission de 435-485 nm et 570-590 nm, respectivement. Détecter la fluorescence de BCECF-AM en utilisant un filtre avec une excitation longueur d&#39;onde de 440-500 nm et un filtre d&#39;émission de 510 à 590 nm. Remarque: Les commandes de BCECF-AM doivent être effectuées sur chaque souche bactérienne à l&#39;étude pour assurer l&#39;étiquetage approprié des bactéries viables. Première valider que nonviabLe bactéries sont DAPI-positif et BCECF négatif. Deuxièmement, veiller à ce que des bactéries vivantes peuvent métaboliser BCECF-AM dans la fluorescéine BCECF. Peut-être besoin d&#39;être testés pour l&#39;étiquetage optimale des concentrations variables de bactéries ou BCECF-AM colorant. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Hentges, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Anaerobic+Microflora+of+the+Human+Body%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Infect.+Dis%22%5BJournal%5D)">The Anaerobic Microflora of the Human Body.</a> Clin. Infect. Dis. 16 (4), S175-S180 (1993).</li>
<li>Willis, A. T. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWillis%2C+AT+%22Anaerobic+bacteriology%3A+clinical+and+laboratory+practice%22">Anaerobic bacteriology: clinical and laboratory practice</a>. , (2014).</li>
<li>Wren, M. W., Baldwin, A. W., Eldon, C. P., Sanderson, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+anaerobic+culture+of+clinical+specimens%3A+a+14-month+study%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Med.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">The anaerobic culture of clinical specimens: a 14-month study.</a> J. Med. Microbiol. 10 (1), 49-61 (1977).</li>
<li>Woolard, M. D., Frelinger, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Outsmarting+the+host%3A+bacteria+modulating+the+immune+response%5BTitle%5D)+AND+%22Immunol.+Res%22%5BJournal%5D)">Outsmarting the host: bacteria modulating the immune response.</a> Immunol. Res. 41 (3), 188-202 (2008).</li>
<li>Mayrand, D., Holt, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Biology+of+asaccharolytic+black-pigmented+Bacteroides+species%5BTitle%5D)+AND+%22Microbiol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Biology of asaccharolytic black-pigmented Bacteroides species.</a> Microbiol. Rev. 52 (1), 134-152 (1988).</li>
<li>Lamont, R. J., Jenkinson, H. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Life+below+the+gum+line%3A+pathogenic+mechanisms+of+Porphyromonas+gingivalis%5BTitle%5D)+AND+%22Microbiol.+Mol.+Biol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Life below the gum line: pathogenic mechanisms of Porphyromonas gingivalis.</a> Microbiol. Mol. Biol. Rev. 62 (4), 1244-1263 (1998).</li>
<li>Haffajee, A. D., Socransky, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microbial+etiological+agents+of+destructive+periodontal+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Periodontol.+2000%22%5BJournal%5D)">Microbial etiological agents of destructive periodontal diseases.</a> Periodontol. 2000. 5 (1), 78-111 (1994).</li>
<li>Listgarten, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Structure+of+the+microbial+flora+associated+with+periodontal+health+and+disease+in+man.+A+light+and+electron+microscopic+study%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Periodontol%22%5BJournal%5D)">Structure of the microbial flora associated with periodontal health and disease in man. A light and electron microscopic study.</a> J. Periodontol. 47 (1), 1-18 (1976).</li>
<li>Ximénez-Fyvie, L. A., Haffajee, A. D., Socransky, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+the+microbiota+of+supra-+and+subgingival+plaque+in+health+and+periodontitis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Periodontol%22%5BJournal%5D)">Comparison of the microbiota of supra- and subgingival plaque in health and periodontitis.</a> J. Clin. Periodontol. 27 (9), 648-657 (2000).</li>
<li>Darveau, R. P., Hajishengallis, G., Curtis, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Porphyromonas+gingivalis+as+a+potential+community+activist+for+disease%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Dent.+Res%22%5BJournal%5D)">Porphyromonas gingivalis as a potential community activist for disease.</a> J. Dent. Res. 91 (9), 816-820 (2012).</li>
<li>Holt, S. C., Kesavalu, L., Walker, S., Genco, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Virulence+factors+of+Porphyromonas+gingivalis%5BTitle%5D)+AND+%22Periodontol.+2000%22%5BJournal%5D)">Virulence factors of Porphyromonas gingivalis.</a> Periodontol. 2000. 20 (1), 168-238 (1999).</li>
<li>Lamont, R. J., Yilmaz, öZ. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+or+out%3A+the+invasiveness+of+oral+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Periodontol.+2000%22%5BJournal%5D)">In or out: the invasiveness of oral bacteria.</a> Periodontol. 2000. 30 (1), 61-69 (2002).</li>
<li>Lamont, R. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Porphyromonas+gingivalis+invasion+of+gingival+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">Porphyromonas gingivalis invasion of gingival epithelial cells.</a> Infect. Immun. 63 (10), 3878-3885 (1995).</li>
<li>Belton, C. M., Izutsu, K. T., Goodwin, P. C., Park, Y., Lamont, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence+image+analysis+of+the+association+between+Porphyromonas+gingivalis+and+gingival+epithelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Fluorescence image analysis of the association between Porphyromonas gingivalis and gingival epithelial cells.</a> Cell. Microbiol. 1 (3), 215-223 (1999).</li>
<li>Rautemaa, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intracellular+localization+of+Porphyromonas+gingivalis+thiol+proteinase+in+periodontal+tissues+of+chronic+periodontitis+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Oral+Dis%22%5BJournal%5D)">Intracellular localization of Porphyromonas gingivalis thiol proteinase in periodontal tissues of chronic periodontitis patients.</a> Oral Dis. 10 (5), 298-305 (2004).</li>
<li>Kaufmann, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunity+to+intracellular+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Immunity to intracellular bacteria.</a> Annu. Rev. Immunol. 11 (1), 129-163 (1993).</li>
<li>Diaz, P., Rogers, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+oxygen+on+the+growth+and+physiology+of+Porphyromonas+gingivalis%5BTitle%5D)+AND+%22Oral+Microbiol.+Immunol%22%5BJournal%5D)">The effect of oxygen on the growth and physiology of Porphyromonas gingivalis.</a> Oral Microbiol. Immunol. 19 (2), 88-94 (2004).</li>
<li>Lewis, J. P., Iyer, D., Anaya-Bergman, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adaptation+of+Porphyromonas+gingivalis+to+microaerophilic+conditions+involves+increased+consumption+of+formate+and+reduced+utilization+of+lactate%5BTitle%5D)+AND+%22Microbiology%22%5BJournal%5D)">Adaptation of Porphyromonas gingivalis to microaerophilic conditions involves increased consumption of formate and reduced utilization of lactate.</a> Microbiology. 155, 3758-3774 (2009).</li>
<li>Edwards, A. N., Suarez, J. M., McBride, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Culturing+and+maintaining+Clostridium+difficile+in+an+anaerobic+environment%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Culturing and maintaining Clostridium difficile in an anaerobic environment.</a> J. Vis. Exp. (79), e50787(2013).</li>
<li>Strober, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trypan+blue+exclusion+test+of+cell+viability%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Protoc.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Trypan blue exclusion test of cell viability.</a> Curr. Protoc. Immunol. , (2001).</li>
<li>Koch, A. L., Crandall, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Photometric+measurement+of+bacterial+growth%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Biology+Teacher%22%5BJournal%5D)">Photometric measurement of bacterial growth.</a> The American Biology Teacher. 30 (6), 481-485 (1968).</li>
<li>Wikins, T. D., Holdeman, L. V., Abramson, I. J., Moore, W. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Standardized+single-disc+method+for+antibiotic+susceptibility+testing+of+anaerobic+bacteria+Antimicrob%5BTitle%5D)+AND+%22Agents+Chemother%22%5BJournal%5D)">Standardized single-disc method for antibiotic susceptibility testing of anaerobic bacteria Antimicrob.</a> Agents Chemother. 1 (6), 451-459 (1972).</li>
<li>Bauer, A. W., Kirby, W. M., Sherris, J. C., Turck, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Antibiotic+susceptibility+testing+by+a+standardized+single+disk+method%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Clin.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Antibiotic susceptibility testing by a standardized single disk method.</a> Am. J. Clin. Pathol. 45 (4), 493-496 (1966).</li>
<li>Mandell, G. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interaction+of+intraleukocytic+bacteria+and+antibiotics%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Interaction of intraleukocytic bacteria and antibiotics.</a> J. Clin. Invest. 52 (7), 1673-1679 (1973).</li>
<li>Menzies, B. E., Kourteva, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Internalization+of+Staphylococcus+aureus+by+endothelial+cells+induces+apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">Internalization of Staphylococcus aureus by endothelial cells induces apoptosis.</a> Infect. Immun. 66 (12), 5994-5998 (1998).</li>
<li>Naito, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Determination+of+the+genome+sequence+of+Porphyromonas+gingivalis+strain+ATCC+33277+and+genomic+comparison+with+strain+W83+revealed+extensive+genome+rearrangements+in+P.+gingivalis%5BTitle%5D)+AND+%22DNA+Res%22%5BJournal%5D)">Determination of the genome sequence of Porphyromonas gingivalis strain ATCC 33277 and genomic comparison with strain W83 revealed extensive genome rearrangements in P. gingivalis.</a> DNA Res. 15 (4), 215-225 (2008).</li>
<li>Goebel, W., Kuhn, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacterial+replication+in+the+host+cell+cytosol%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Microbiol%22%5BJournal%5D)">Bacterial replication in the host cell cytosol.</a> Curr. Opin. Microbiol. 3 (1), 49-53 (2000).</li>
<li>Gospodarowicz, D. III <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((C.+Extracellular+matrix+and+control+of+proliferation+of+vascular+endothelial+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">C. Extracellular matrix and control of proliferation of vascular endothelial cells.</a> J. Clin. Invest. 65 (6), 1351-1364 (1980).</li>
<li>DeQuach, J. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Simple+and+high+yielding+method+for+preparing+tissue+specific+extracellular+matrix+coatings+for+cell+culture%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Simple and high yielding method for preparing tissue specific extracellular matrix coatings for cell culture.</a> PloS One. 5 (9), e13039(2010).</li>
<li>Sellers, J. R., Cook, S., Goldmacher, V. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+cytotoxicity+assay+utilizing+a+fluorescent+dye+that+determines+accurate+surviving+fractions+of+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol.+Methods%22%5BJournal%5D)">A cytotoxicity assay utilizing a fluorescent dye that determines accurate surviving fractions of cells.</a> J. Immunol. Methods. 172 (2), 255-264 (1994).</li>
<li>Van Veen, H. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+a+proton+motive+force+by+the+excretion+of+metal-phosphate+in+the+polyphosphate-accumulating+Acinetobacter+johnsonii+strain+210A%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Generation of a proton motive force by the excretion of metal-phosphate in the polyphosphate-accumulating Acinetobacter johnsonii strain 210A.</a> J. Biol. Chem. 269 (47), 29509-29514 (1994).</li>
<li>Jackson, V. N., Halestrap, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+kinetics%2C+substrate%2C+and+inhibitor+specificity+of+the+monocarboxylate+%28lactate%29+transporter+of+rat+liver+cells+determined+using+the+fluorescent+intracellular+pH+indicator%2C+2%27%2C7%27-bis%28carboxyethyl%29-5%286%29-carboxyfluorescein%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">The kinetics, substrate, and inhibitor specificity of the monocarboxylate (lactate) transporter of rat liver cells determined using the fluorescent intracellular pH indicator, 2',7'-bis(carboxyethyl)-5(6)-carboxyfluorescein.</a> J. Biol. Chem. 271 (2), 861-868 (1996).</li>
<li>He, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+Porphyromonas+gingivalis+FeoB2+in+metal+uptake+and+oxidative+stress+protection%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">Role of Porphyromonas gingivalis FeoB2 in metal uptake and oxidative stress protection.</a> Infect. Immun. 74 (7), 4214-4223 (2006).</li>
<li>Anaya-Bergman, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Porphyromonas+gingivalis+ferrous+iron+transporter+FeoB1+influences+sensitivity+to+oxidative+stress%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">Porphyromonas gingivalis ferrous iron transporter FeoB1 influences sensitivity to oxidative stress.</a> Infect. Immun. 78 (2), 688-696 (2010).</li>
<li>Ueshima, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification%2C+gene+cloning%2C+gene+expression%2C+and+mutants+of+Dps+from+the+obligate+anaerobe+Porphyromonas+gingivalis%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">Purification, gene cloning, gene expression, and mutants of Dps from the obligate anaerobe Porphyromonas gingivalis.</a> Infect. Immun. 71 (3), 1170-1178 (2003).</li>
<li>Johnson, M. B., Criss, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence+microscopy+methods+for+determining+the+viability+of+bacteria+in+association+with+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22JoVE%22%5BJournal%5D)">Fluorescence microscopy methods for determining the viability of bacteria in association with mammalian cells.</a> JoVE. (79), (2013).</li>
<li>Cordes, T., Maiser, A., Steinhauer, C., Schermelleh, L., Tinnefeld, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+and+advancement+of+antifading+agents+for+fluorescence+microscopy+and+single-molecule+spectroscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Physical+Chemistry+Chemical+Physics%22%5BJournal%5D)">Mechanisms and advancement of antifading agents for fluorescence microscopy and single-molecule spectroscopy.</a> Physical Chemistry Chemical Physics. 13 (14), 6699-6709 (2011).</li>
<li>Pawley, J. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aPawley%2C+J+%22Handbook+of+biological+confocal+microscopy%22">Handbook of biological confocal microscopy</a>. , (2010).</li>
<li>Gursoy, U., Könönen, E., Uitto, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prevotella+intermedia+ATCC+25611+targets+host+cell+lamellipodia+in+epithelial+cell+adhesion+and+invasion%5BTitle%5D)+AND+%22Oral+Microbiol.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Prevotella intermedia ATCC 25611 targets host cell lamellipodia in epithelial cell adhesion and invasion.</a> Oral Microbiol. Immunol. 24 (4), 304-309 (2009).</li>
<li>Sengupta, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interaction+of+Prevotella+intermedia+strain+17+leucine-rich+repeat+domain+protein+AdpF+with+eukaryotic+cells+promotes+bacterial+internalization%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">Interaction of Prevotella intermedia strain 17 leucine-rich repeat domain protein AdpF with eukaryotic cells promotes bacterial internalization.</a> Infect. Immun. 82 (6), 2637-2648 (2014).</li>
<li>Reyes, L., Herrera, D., Kozarov, E., Roldán, S., Progulske-Fox, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Periodontal+bacterial+invasion+and+infection%3A+contribution+to+atherosclerotic+pathology%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Periodontol%22%5BJournal%5D)">Periodontal bacterial invasion and infection: contribution to atherosclerotic pathology.</a> J. Clin. Periodontol. 40, S30-S50 (2013).</li>
<li>Grant, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oxygen+tension+modulates+the+cytokine+response+of+oral+epithelium+to+periodontal+bacteria%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Periodontol%22%5BJournal%5D)">Oxygen tension modulates the cytokine response of oral epithelium to periodontal bacteria.</a> J. Clin. Periodontol. 37 (12), 1039-1048 (2010).</li>
<li>Biedermann, A., Kriebel, K., Kreikemeyer, B., Lang, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interactions+of+Anaerobic+Bacteria+with+Dental+Stem+Cells%3A+An+In+Vitro+Study%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Interactions of Anaerobic Bacteria with Dental Stem Cells: An In Vitro Study.</a> PloS One. 9 (11), e110616(2014).</li>
<li>Kriebel, K., Biedermann, A., Kreikemeyer, B., Lang, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anaerobic+Co-Culture+of+Mesenchymal+Stem+Cells+and+Anaerobic+Pathogens-A+New+In+Vitro+Model+System%5BTitle%5D)+AND+%22PloS+One%22%5BJournal%5D)">Anaerobic Co-Culture of Mesenchymal Stem Cells and Anaerobic Pathogens-A New In Vitro Model System.</a> PloS One. 8 (11), e78226(2013).</li>
<li>Peyyala, R., Kirakodu, S. S., Novak, K. F., Ebersole, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Oral+microbial+biofilm+stimulation+of+epithelial+cell+responses%5BTitle%5D)+AND+%22Cytokine%22%5BJournal%5D)">Oral microbial biofilm stimulation of epithelial cell responses.</a> Cytokine. 58 (1), 65-72 (2012).</li>
<li>Halldorsson, S., Lucumi, E., Gòmez-Sjöberg, R., Fleming, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advantages+and+challenges+of+microfluidic+cell+culture+in+polydimethylsiloxane+devices%5BTitle%5D)+AND+%22Biosens+Bioelectro%22%5BJournal%5D)">Advantages and challenges of microfluidic cell culture in polydimethylsiloxane devices.</a> Biosens Bioelectro. 63, 218-231 (2015).</li>
<li>Iyer, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((AdpC+is+a+Prevotella+intermedia+17+leucine-rich+repeat+internalin-like+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Infect.+Immun%22%5BJournal%5D)">AdpC is a Prevotella intermedia 17 leucine-rich repeat internalin-like protein.</a> Infect. Immun. 78 (6), 2385-2396 (2010).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Tous les procédés ci-dessus peuvent être utilisées pour concevoir des dosages spécifiques pour évaluer l&#39;interaction entre les bactéries anaérobies avec des cellules eucaryotes. Cependant, il ya plusieurs considérations à effectuer avec succès les expériences. D&#39;abord, les souches microbiennes à être utilisés dans une étude. Il est essentiel dans la comparaison des deux souches à la fois le test de survie, ainsi que par une analyse par microscopie qu&#39;ils sont à des phases de croi...

Les bactéries anaérobies colonisent presque toutes les surfaces du corps humain. Bien prédominant dans la flore intestinale des voies génito-urinaires et où les concentrations d&#39;oxygène sont faibles, ils existent également à des niveaux élevés sur la peau, de la bouche, du nez et de la gorge 1. Les bactéries anaérobies sont une cause fréquente d&#39;infections endogènes et sont fréquemment isolés à partir de sites malades. Toutefois, en raison de leur nature fastidieuse, anaérobies peuvent être difficiles à isoler et à la culture. Les études portant sur les bactéries anaérobies doivent être effectuées dans des conditions restreintes. Techniques anaérobie-culture moderne permettent aux chercheurs d&#39;imiter les paramètres anaérobies nécessaires à l&#39;étude de nombreuses souches de laboratoire anaérobie ou même des isolats cliniques 2,3. Des bactéries anaérobies pathogènes ont développé une relation dynamique et co-évolution avec les cellules de l&#39;hôte dans lequel ils résident. La plupart des bactéries anaérobies sont sensibles à la destruction par la réponse immunitaire de l&#39;hôte avant d&#39;atteindre infectiniveaux UO. Cependant, certaines bactéries pathogènes ont développé des mécanismes pour échapper à ou dénaturer la réponse immunitaire de l&#39;hôte. Ils atteindre cet objectif par le biais de mécanismes tels que l&#39;évasion de la reconnaissance immunitaire, neutralisation des médiateurs immunitaires, l&#39;altération de l&#39;immunité à médiation cellulaire, l&#39;invasion des cellules hôtes, et la modification de la signalisation 4 immunitaire. Porphyromonas gingivalis, un anaérobie à Gram négatif impliquées à la fois orale et maladies, extra- est un exemple d&#39;un agent pathogène bactérien très adapté capable de provoquer des changements pathogènes chez l&#39;hôte 7.5. Des poches de la plaque de biofilm courus dans de profondes crevasses formées entre les dents et le tissu muqueux gingival peuvent abriter des bactéries anaérobies qui sont protégés de l&#39;oxygène atmosphérique 8. Ces poches parodontales servir de niche de divers agents pathogènes anaérobies, telles que P. 9 gingivalis. P. gingivalis est un agent pathogène de la distorsion qui est capable de remodelering la communauté microbienne buccale de manière à promouvoir le développement et la progression des maladies parodontales 10. Elle produit un grand nombre de facteurs de virulence qui sont actifs contre un large spectre de protéines de l&#39;hôte et fournit des mécanismes pour l&#39;évasion de 11 défenses de l&#39;hôte. Il est également capable d&#39;envahir épithéliales, endothéliales, fibroblastes et les cellules du ligament parodontal in vitro et in vivo de 12 à 14 15. En envahissant efficacement les cellules de l&#39;hôte, P. gingivalis peut échapper à l&#39;immunité de l&#39;hôte. Invasion efficace de cellules hôtes non seulement permet à la bactérie de se échapper défenses de l&#39;hôte, mais sert également de réservoir pour l&#39;avenir ré-infection ainsi que modifie la cellule hôte. Des études sur les mécanismes moléculaires impliqués dans l&#39;adhésion et l&#39;internalisation de la bactérie par des cellules hôtes sont nécessaires. Recherche dans plusieurs laboratoires se concentre sur la compréhension des événements moléculaires associés à l&#39;internalisation de P. gingivalis par les cellules hôtesainsi que les mécanismes utilisés pour réprimer et détourner la réponse immunitaire et survivre aux mécanismes de défense de l&#39;hôte hostiles. Il existe de nombreux dosages capables d&#39;identifier et de caractériser des agents pathogènes qui sont capables d&#39;envahir les cellules hôtes. Cependant, des études in vitro avec des agents pathogènes anaérobies posent de nombreux problèmes expérimentaux pour le chercheur, principalement parce qu&#39;il est difficile de réaliser des études qui reposent sur ​​des instruments encombrants en l&#39;absence d&#39;oxygène. Cette situation est aggravée par le fait que les cellules eucaryotes besoin d&#39;oxygène pour se développer et doivent donc être préparés séparément dans des incubateurs de culture de tissus. Une façon d&#39;éviter ces obstacles serait d&#39;effectuer les études sous oxygène atmosphérique, mais ce serait faire de la croissance de bactéries anaérobies impossible. Une autre méthode serait d&#39;utiliser des bactéries tuées par la chaleur à infecter et à étudier les interactions de la cellule hôte. Cependant, des différences existent entre les bactéries tuées par la chaleur et viables qui diminuent la pertinence de la interacti hôte-pathogènele 16. Il est central pour étudier les bactéries viables avec l&#39;expression inchangé interagir avec des cellules hôtes; par conséquent, des procédés pour cultiver P. gingivalis dans un cadre anaérobie sont donnés. En outre, deux protocoles rentables simples sont démontrées pour évaluer la capacité de P. gingivalis à être internalisée par les cellules humaines ombilicales veineuses endothéliales (HUVEC). Le premier protocole est basé sur le dosage de protection populaire antibiotique. Bien que le test est simple, les considérations lors de l&#39;utilisation de micro-organismes anaérobies sont donnés. Le deuxième protocole nécessite l&#39;utilisation d&#39;un microscope à fluorescence à balayage visualiser et interagir internalisé P. gingivalis. Chaque test a ses limites et avantages qui seront discutés de fournir au chercheur un aperçu pour l&#39;étude de l&#39;envahissement de bactéries anaérobies. Bien que le manuscrit en cours étudie P. gingivalis et HUVECs, ces protocoles peuvent être utilisés pour de nombreuses autres bactéries anaérobies ainsique pour les autres types de cellules hôtes.

<table><tbody><tr><td>Chambre anaérobie en vinyle de type B</td><td>Coy Produits</td><td></td> de laboratoire <td>Modèle 2000 incubateur&nbsp ;</td></tr><tr><td>Gélose de soja TSA II trypticase avec 5 % de sang de mouton</td><td>BBL</td><td>221261</td><td></td></tr><tr><td>cellules endothéliales de la veine ombilicale humaine Pool 10 donneurs Technologie</td><td>LifeLine</td><td>FC-0044</td><td></td></tr><tr><td>VascuLife VEGF Medium Kit complet</td><td>LifeLine Technology</td><td>LL-0003</td><td></td></tr><tr><td>TrypKit</td><td>LifeLine</td><td>LL-0013</td><td></td></tr><tr><td>Saponin</td><td>Riedel-de Haen</td><td>16109</td><td></td></tr><tr><td>Sulfate de gentamicine Sel</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G-1264</td><td></td></tr><tr><td>Métronidazole</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M-3761</td><td></td></tr><tr><td>BCECF-AM</td><td>LifeTechnologies</td><td>B1150</td><td></td></tr><tr><td>TRITC Phalloïdine&nbsp ;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1951</td><td></td></tr><tr><td>18 mm Recouvrement circulaire</td><td>Microscopie électronique Sciences</td><td>72222-01</td><td></td></tr><tr><td>Support de montage VectaShield avec DAPI</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-1200</td><td></td></tr></tbody></table>

porphyromonas gingivalis comme un organisme modèle pour l&#39;évaluation de l&#39;interaction des bactéries anaérobies avec des cellules hôtes

Porphyromonas gingivalis as a Model Organism for Assessing Interaction of Anaerobic Bacteria with Host Cells

Les bactéries anaérobies sont beaucoup plus nombreux aérobies dans de nombreuses niches humaines telles que l&#39;intestin, de la bouche et le vagin. En outre, les infections anaérobies sont fréquents et souvent d&#39;origine indigène. La capacité de certains agents pathogènes anaérobies à envahir les cellules humaines leur donne des mesures d&#39;adaptation pour échapper à l&#39;immunité innée, ainsi que pour moduler le comportement de la cellule hôte. Cependant, veiller à ce que les bactéries anaérobies sont en direct pendant l&#39;enquête expérimentale des événements peuvent poser des problèmes. Porphyromonas gingivalis, un anaérobie à Gram négatif, est capable d&#39;envahir une variété de cellules non-phagocytaires eucaryotes. Cet article décrit comment réussir à la culture et d&#39;évaluer la capacité de P. gingivalis à envahir les cellules endothéliales de la veine ombilicale humaine (HUVEC). Deux protocoles ont été développés: de mesurer les bactéries qui peuvent survivre avec succès envahir et à l&#39;intérieur de l&#39;hôte, et l&#39;autre pour visualiser les bactéries qui interagissent avec les cellules hôtes. Ces techniques nécessitent l&#39;utilisation d&#39;un anaechambre pour fournir P. Robic gingivalis avec un milieu anaérobie pour une croissance optimale. Le premier protocole est basé sur le test de protection aux antibiotiques, qui est largement utilisé pour étudier l&#39;invasion des cellules hôtes par des bactéries. Toutefois, l&#39;essai de protection antibiotique est limité; seules les bactéries intracellulaires qui sont cultivables et après un traitement antibiotique de lyse de la cellule hôte sont mesurées. Pour évaluer toutes les bactéries interagissent avec les cellules hôtes, à la fois vivants et morts, nous avons développé un protocole qui utilise la microscopie à fluorescence pour examiner l&#39;interaction hôte-pathogène. Les bactéries sont marquées par fluorescence avec la 2 &#39;, 7&#39;-bis- (2-carboxyéthyl) -5- (et-6) -carboxyfluorescéine acétoxyméthyl ester (BCECF-AM) et utilisé pour infecter des cellules eucaryotes dans des conditions anaérobies. Suite à la fixation avec du paraformaldehyde et perméabilisation avec 0,2% de Triton X-100, les cellules hôtes sont marqués avec DAPI et TRITC phalloïdine pour marquer le cytosquelette de la cellule et du noyau, respectivement. Multiple images prises à différents points focaux (Z-Stack) sont obtenus pour la visualisation spatio-temporelle des bactéries. Les méthodes utilisées dans cette étude peuvent être appliqués à n&#39;importe quel anaérobie cultivable et n&#39;importe quel type de cellule eucaryote.

Protocoles décrits ci-dessus ont été utilisés dans l&#39;étude de l&#39;interaction hôte-pathogène entre P. gingivalis et les cellules endothéliales. P. gingivalis W83 et une p gingivalis V3150 portant une délétion de PG0228 ont été utilisés dans l&#39;étude. Le PG0228 est prédit pour coder pour une protéine susceptible de modifier les niveaux d&#39;ARN et de protéines, qui peuvent en fin de compte affecter l&#39;interaction de P. gingivalis avec les cellules hôtes. Pour étud...

Cet article présente deux protocoles : l’un pour mesurer les bactéries anaérobies qui peuvent envahir et survivre avec succès dans l’hôte, et l’autre pour visualiser les bactéries anaérobies interagissant avec les cellules hôtes. Cette étude peut être appliquée à n’importe quel anaérobie cultivable et à tout type de cellule eucaryote.

Porphyromonas gingivalis comme un organisme modèle pour l&#39;évaluation de l&#39;interaction des bactéries anaérobies avec des cellules hôtes

Anaerobic bacteria far outnumber aerobes in many human niches such as the gut, mouth, and vagina. Furthermore, anaerobic infections are common and ...

L'objectif général de cette vidéo est de démontrer des protocoles permettant d'évaluer l'interaction entre des bactéries anaérobies et des cellules hôtes. Les conditions utilisées pour cultiver les cellules ary sont toxiques pour les bactéries anaérobies et inversement. Cela pose un défi dans l'étude de leurs interactions, et des conditions optimales pour les deux doivent être obtenues afin qu'elles restent métaboliquement actives pendant la durée de l'étude.Ces conditions reflèteront plus précisément le scénario d'interaction hôte-pathogène observé in vivo. La méthode présentée ici permettra de répondre à des questions concernant les mécanismes impliqués dans la survie microbienne ainsi que dans la liaison et l'internalisation des cellules bactériennes anaérobies durant l'infection. En général, les personnes novices dans cette méthode éprouveront des difficultés, car le travail avec des bactéries anaérobies exige une connaissance de la chambre anaérobie et de bonnes techniques septiques.La démonstration visuelle de cette méthode est essentielle, car les étapes impliquant l'utilisation d'une enceinte anaérobie sont difficiles à apprendre. De plus, il est nécessaire de faire preuve de prudence lorsqu'on expérimente avec des enceintes anaérobies pour la culture et l'expérimentation avec Porphyromonas gingivalis. Une enceinte anaérobie en vinyle est maintenue avec une atmosphère artificielle contenant 80 % d'azote, 10 % d'hydrogène et 10 % de dioxyde de carbone. Placer 30 plaques d'agar sang, 500 millilitres de PBS et 30 millilitres de milieu de facteur de croissance endothélial vasculaire ou VEGF à l'intérieur de l'enceinte anaérobie.24 heures à l'avance, pour équilibrer les réactifs, ensemencer quatre fois dix puissance cinq cellules endothéliales de veine ombilicale humaine ou VE par puits dans des plaques de six puits en milieu VEGF et les laisser toute la nuit dans l'incubateur de culture cellulaire pour favoriser leur attachement. Préparer des cultures de Porphyromonas gingivalis en milieu d'infusion cerveau-cœur, ou milieu BHI, comme décrit dans le texte accompagnant et laisser les cultures atteindre la phase logarithmique, l'optique de densité de la culture à 660 nanomètres variant entre 0,5 et 0,7. Transférer les bactéries dans un tube de 15 millilitres et enrouler un morceau de parafilm autour du bouchon pour éviter une fermeture aérobie.Ensuite, centrifuger les bactéries à 5 000 ×g pendant 10 minutes à l'intérieur de la chambre anaérobie. Laver le culot bactérien avec du PBS anaérobie et centrifuger à nouveau à 5 000 ×g pendant 10 minutes. Reese met les bactéries dans un milieu VEGF pour infecter les HU X par transfert por-ominous.Transférez les plaques à six puits de l’incubateur vers la chambre anaérobie, aspirez le milieu des puits de test et rincez trois fois avec du PBS anaérobie. Déterminez le nombre de cellules à partir d’un puits représentatif par un test d’exclusion au bleu de trypan. Ajoutez ensuite deux millilitres par puits de milieu VEGF anaérobie et placez les plaques à 37 degrés Celsius dans l’incubateur anaérobie pendant 20 minutes afin d’équilibrer. Déterminez la densité optique des bactéries et resuspendez.Les suspendre dans un volume adéquat de milieu VEGF pour infecter les cellules à une multiplicité d'infection de 100, selon un rapport de bactéries à cellules de un pour un. Ajouter la suspension bactérienne aux cellules et incuber pendant 30 minutes à 37 degrés Celsius afin d'induire l'infection et la lyse cellulaire à l'intérieur de la chambre anaérobie. Préparer une solution de saponine à 1 % poids par volume dans du milieu BHI et filtrer à l'aide d'un filtre de 0,2 micron pour étudier les interactions bactériennes avec les cellules hôtes.Retirer la plaque à six puits de l’incubateur et aspirer le milieu d’infection. Laver trois fois avec du PBS anaérobie. Ensuite, ajouter deux millilitres de solution de saponine dans chaque puits et incuber pendant 15 minutes pour permettre la lyse cellulaire.Ensuite, grattez les cellules depuis le fond de la cavité et diluez le lysat cellulaire au ratio de un à un avec du milieu BHI. Préparez ensuite des dilutions sériées à partir d’un ratio de un à 100, et déposez 200 microlitres d’une dilution appropriée sur des boîtes de gélose au sang. Emballez les boîtes avec du perfil et incubez-les dans une étuve anaérobie à 37 degrés Celsius pendant sept jours afin de permettre la formation de colonies.Ensuite, à l’aide d’une boîte lumineuse, dénombrer les unités formant des colonies, ou UFC, sur chaque plaque après infection des cellules HU E. Laver les cellules trois fois avec du PBS anaérobie. Puis, ajouter deux millilitres de milieu VEGF supplémenté avec des concentrations préalablement optimisées d’antibiotiques aux cellules HU E.Incuber les cellules pendant une heure, aspirer le milieu et ajouter deux millilitres de solution de saponine à 1 % dans du BHI à chaque puits, puis incuber pendant 15 minutes. Ensuite, racler les cellules lysées et recueillir le lysat dans un tube de centrifugation. Diluer le lysat au ratio de un à un avec du milieu BHI, puis préparer des dilutions sérielles à partir d’un ratio de un à 100.Plaquez 200 microlitres des concentrations appropriées sur des boîtes de gélose au sang. Incubez les bactéries pendant sept jours dans une chambre anaérobie, puis dénombrez les colonies.La méthode de culture décrite tient compte uniquement des bactéries vivantes qui interagissent avec les cellules. Afin de surmonter cet inconvénient, nous utilisons la microscopie, qui permet de visualiser à la fois les bactéries vivantes et mortes associées à la cellule. Pour visualiser les bactéries internalisées, commencez par transférer de manière aseptique l'autoclave.Les lamelles de verre à l'intérieur de chaque puits d'une plaque de 12 puits, cinq fois 10 à la puissance 4 hve par puits sur la lamelle, et incuber pendant 24 heures pour marquer les bactéries, centrifuger, prélever la phase bactérienne et resuspendre le culot dans du PBS anaérobie, puis centrifuger à nouveau et répéter l'étape de lavage. Ajouter 20 microlitres de B-C-E-C-F-A-M à 0,2 millimolaire à deux millilitres de PBS anaérobie contenant cinq à sept fois 10 à la puissance 8.Incubez les bactéries par millilitre à 37 degrés Celsius pendant 30 minutes à l'obscurité. Le colorant fluorescent que nous utilisons peut marquer la plupart des bactéries anaérobies, ainsi aucun autre réactif tel qu'un anticorps spécifique n'est nécessaire. Centrifugez la suspension bactérienne à 5 000 × g pendant 10 minutes pour éliminer le réactif de marquage non lié et remettez en suspension les bactéries dans du milieu VEGF.Ensuite, infecter les cellules UIC à un ratio de 100 bactéries pour une cellule et incuber à 37 degrés Celsius pendant 30 minutes. Après l'incubation, retirer le milieu d'infection et laver les cellules trois fois avec du PBS. Puis ajouter du paraformaldéhyde à 4 % et incuber à température ambiante pendant 10 minutes.Pour fixer les cellules dans la chambre anaérobie, retirez les cellules fixées de la chambre, puis lavez les lamelles avec du PBS 3 fois. Incubez les lamelles dans un millilitre de Triton X-100 à 0,2 % pendant 10 minutes afin de rendre les cellules perméables. Lavez ensuite les lamelles avec du PBS 3 fois. Ajoutez 50 microlitres de T-R-I-T-C foid à 50 microgrammes par millilitre sur chaque lamelle et incubez pendant 45 minutes à température ambiante pour colorer l’actine cellulaire oligomérique.Après l'incubation, laver la lame couvre-objet avec du PBS 3 fois. Retourner la lame couvre-objet sur une lame porte-objet avec un milieu de montage doux contenant un microgramme par millilitre de dappy pour la coloration nucléaire. Ensuite, sceller le pourtour de la lame couvre-objet avec du vernis à ongles et observer au microscope confocal l'interaction de la bactérie anaérobie.Des pores gingivaux avec uve sont montrés dans ces résultats. Une dilution en série de la cellule, du lysat contenant des bactéries fixées ou internalisées jusqu'à 100 fois, a permis d'obtenir un nombre dénombrable d'UFC sur des géloses au sang. Sept jours après incubation, la comparaison du rendement en UFC sur gélose entre l'infection par la souche sauvage Porus vallis W 83 et celle par le mutant de délétion V 315 est présentée ici.La mutation affecte la capacité de la bactérie à infecter. L'VE illustrée ici est une représentation graphique des colonies bactériennes obtenues à partir de cellules infectées. Lors de l'évaluation de l'interaction, moins de bactéries mutantes ont été récupérées à partir des cellules infectées par rapport à la souche de type sauvage.Les résultats obtenus après élimination des bactéries extracellulaires par traitement antibiotique sont présentés dans les colonnes de droite. Là encore, la souche mutante s'est révélée inefficace pour envahir les cellules uve vivantes. Les bactéries sont observées après marquage avec BCE CFAM.Une coloration supplémentaire des filaments d'actine et du noyau cellulaire apparaît en fluorescence rouge et bleue, respectivement. Une fois maîtrisées, chacune de ces techniques peut être réalisée en six heures si elle est effectuée correctement. Lors de la réalisation de cette procédure, il est important de garder à l'esprit qu'il faut maintenir les bactéries en conditions anaérobies, ainsi que d'équilibrer tous les milieux et fournitures dans la chambre anaérobie jusqu'à 24 heures avant l'expérimentation.N'oubliez pas que le travail avec des pathogènes anaérobies peut être extrêmement dangereux et que des précautions telles que le port de gants, le lavage des mains et l'utilisation de techniques septiques doivent toujours être prises lors de la réalisation de cette procédure. Ainsi, cette méthode peut fournir des informations sur les pathogènes prédentaires. Elle peut également être appliquée à d'autres systèmes tels que l'aspiration, la pneumonie, les infections intra-abdominales, les infections gynécologiques et bien d'autres infections anaérobies présentes à divers sites du corps humain.Les implications de cette technique s'étendent à notre thérapie médicamenteuse contre divers pathogènes anaérobies, car des mesures inhibitrices peuvent facilement être ajoutées au protocole et l'internalisation peut être directement mesurée après le traitement. Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment cultiver des bactéries anaérobies et évaluer leur capacité à interagir avec les cellules hôtes.

porphyromonas-gingivalis-as-model-organism-for-assessing-interaction

Research

Recherche

JoVE Journal

Immunology and Infection

Immunologie et infection

Source : Calatayud Arroyo, M., et al. Évaluation de la viabilité d’un consortium bactérien synthétique à l’interface intestin-microbe in vitro. J. Vis. Exp. (2018).Cette vidéo présente un modèle intestin-microbe in vitro pour étudier la viabilité bactérienne. Une co-culture de cellules Caco-2 et HT29-MTX est incubée avec des bactéries pré-traitées dans des conditions digestives simulées. L’intégrité de la barrière épithéliale est évaluée à l’aide de résistance électrique transépithéliale, et...

Modèle intestinal in vitro pour évaluer l’adhésion et l’internalisation bactériennes

Source: Calatayud Arroyo, M., et al. Assessing the Viability of a Synthetic Bacterial Consortium on the In Vitro Gut Host-microbe Interface. J. Vis. Exp. (2018)The video demonstrates a method to evaluate the viability of anaerobic oral bacteria using fluorescent dyes and flow cytometry. It begins with culturing bacteria in oxygen-free broth, followed by resuspending a single colony from a blood agar plate. After incubation and dilution, the culture is stained with membrane-permeable and...

Fluorescence-Based Viability Assessment of Oral Anaerobic Bacteria

Source: Alshehri, M. et. al., Organotypic Tissue Model Systems for Investigating Host-Pathogen Interactions In Vitro. J. Vis. Exp. (2025)This video demonstrates a co-culture model using multi-species oral biofilms and human oral epithelium. It highlights epithelial immune activation and enables the downstream analysis of host-pathogen interaction.

A Transwell Tissue Model for Studying Interactions Between Human Oral Biofilms and Epithelium

Cette vidéo présente une technique permettant d’évaluer la capacité de Porphyromonas gingivalis, une bactérie pathogène anaérobie, à adhérer et à envahir les cellules endothéliales de la veine ombilicale humaine (HUVEC). Après avoir infecté les cellules hôtes avec les bactéries, les cellules hôtes sont lysées pour libérer les bactéries adhérentes et internalisées. Lorsque le lysat est plaqué dans un milieu approprié, la présence de colonies indique des interactions réussies entre la bactérie et...

Un test d’infection bactérienne pour l’étude des interactions entre les bactéries anaérobies et les cellules hôtes

Dans cette vidéo, nous montrons une procédure pour visualiser Porphyromonas gingivalis internalisé, une bactérie pathogène anaérobie, dans des cellules endothéliales humaines à l’aide de la microscopie confocale. Les bactéries sont colorées avec un colorant fluorescent tandis que le cytosquelette d’actine de la cellule endothéliale de l’hôte est marqué avec un colorant fluorescent différent. Les Porphyromonas gingivalis internalisés à l’intérieur des cellules endothéliales sont visualisés à...

Visualisation de bactéries anaérobies internalisées dans les cellules endothéliales de l’hôte

Dans cette vidéo, nous faisons la démonstration d’un test permettant d’évaluer la survie de Porphyromonas gingivalis à l’intérieur des cellules endothéliales humaines. La mesure de la survie et de la croissance de Porphyromonas gingivalis internalisée est évaluée par le nombre de colonies sur la plaque de gélose au sang.

Évaluation de Porphyromonas gingivalis internalisée dans les cellules endothéliales de l’hôte

Les modèles animaux se sont révélés être des outils précieux dans la définition de mécanismes spécifiques hôtes et pathogènes qui contribuent au développement de l'inflammation chronique. Nous décrivons ici un modèle murin d'infection par voie orale avec l'agent pathogène humain Porphyromonas gingivalis et méthodologies de détail pour évaluer la progression de l'inflammation au niveau des sites locaux et systémiques.

Un modèle de souris pour l&#39;inflammation chronique induite par pathogène sur les sites locaux et systémiques

Interactions hôtes-microorganismes gut ont été évaluées à l’aide d’une nouvelle approche combinant une communauté orale synthétique, in vitro digestion gastro-intestinale et un modèle de l’épithélium de l’intestin grêle. Nous présentons une méthode qui peut être adaptée pour évaluer l’invasion des cellules des agents pathogènes et des biofilms multi-espèces, ou même de tester la capacité de survie des probiotiques formulations.

Évaluation de la viabilité d’un Consortium bactérien synthétique sur l’Interface hôte-microbe In Vitro Gut

Le présent protocole décrit l’application de modèles tissulaires organotypiques pour étudier in vitro les interactions hôte-pathogène. Plus précisément, le système modèle décrit utilise un épithélium buccal multicouche exposé à des micro-organismes associés à des biofilms (plaque dentaire) dans le contexte de la santé buccodentaire par rapport à la maladie.

Systèmes de modèles de tissus organotypiques pour l’étude in vitro des interactions hôte-pathogène

Nous décrivons un protocole pour identifier les rôles clés des molécules de l'hôte de signalisation dans la réplication lytique d'un virus de l'herpès modèle, gamma herpèsvirus 68 (γHV68). L'utilisation de lignées de souris génétiquement modifiées et des fibroblastes embryonnaires de γHV68 réplication lytique, le protocole permet à la fois la caractérisation phénotypique et moléculaire de l'interrogatoire interactions virus-hôte dans la réplication virale lytique.

Dissection hôte-virus interaction dans la réplication lytique d&#39;un virus de l&#39;herpès modèle

Découvrez des protocoles pour évaluer l'interaction des bactéries anaérobies avec les cellules hôtes en utilisant Porphyromonas gingivalis. Ces méthodes permettent de mesurer l'invasion bactérienne et la survie intracellulaire dans des conditions reflétant l'infection in vivo.

Porphyromonas gingivalis comme un organisme modèle pour lévaluation de linteraction des bactéries anaérobies avec des cellules hôtes (Vidéo) | JoVE Journal

Porphyromonas gingivalis comme un organisme modèle pour l'évaluation de l'interaction des bactéries anaérobies avec des cellules hôtes

Explorer plus de vidéos