Name: Préparation de thermosensible surfaces nanostructurées pour lingénierie tissulaire (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-01T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 22 s
Description: Découvrez la fabrication de surfaces nanostructurées thermosensibles par la méthode Langmuir-Schaefer pour contrôler l'adhésion cellulaire. Cette technique permet de récupérer des feuillets cellulaires en réponse aux changements de température.

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Cette étude a été financée par le Projet de développement de systèmes d’innovation du programme de création de centres d’innovation pour la recherche interdisciplinaire avancée « Cell Sheet Tissue Engineering Center (CSTEC) » du ministère de l’Éducation, de la Culture, des Sports, des Sciences et de la Technologie (MEXT), Japon.

1. Synthèse du bloc polystyrène- -poly (N -isopropylacrylamide) par deux étapes réversible transfert de chaîne Addition-fragmentation (RAFT) Radical Polymerization <ol><li> Dissoudre le styrène (153,6 mmol), de 4- cyano-4 (ethylsulfanylthiocarbonyl) d&#39;acide sulfanylpentanoic (TCE, 0,2 mmol) et de 4,4&#39;-azobis (acide 4-cyanovalérique) (ACVA; 0,04 mmol) dans 40 ml de 1, 4-dioxane. Congeler la solution dans de l&#39;azote liquide sous vide pendant 15-20 min pour éliminer les espèces réactives et progressivement décongeler à la température ambiante. Assurez-vous que la solution est complètement décongelé et répéter ce cycle de dégazage gel-pompe-décongélation trois fois. </li><li> Obtenir le polystyrène (PST) (PM: 13 500) en tant qu&#39;agent de macro RAFT par polymérisation à 70 ° C pendant 15 heures dans un bain d&#39;huile. </li><li> Précipité PSt agent de macro RAFT avec 800 ml d&#39;éther et sèche sous vide. </li><li> IPAAm dissoudre le monomère (4,32 mmol), de PSt macro agent RAFT (0,022 mmol) et de ACVA (0,004 mmol) dans 4 ml de 1,4-dioxane. </li><li> Retirerl&#39;oxygène dans la solution par les cycles de dégazage par congélation-décongélation pompe comme indiqué à l&#39;étape 1.1. </li><li> Effectuer une polymérisation à 70 ° C pendant 15 heures dans un bain d&#39;huile après dégazage. Obtenir la molécule St-IPAAm synthétisé (Mw: 32800) de la même manière que l&#39;agent de PSt macro RAFT. </li></ol> 2. Préparation des substrats en verre Silanized Hydrophobe modifiés <ol><li> des substrats en verre lavage (24 mm x 50 mm) avec un excès d&#39;acétone et d&#39;éthanol et de traitement par ultrasons pendant 5 minutes pour éliminer les contaminants de surface. </li><li> Sécher les substrats dans un four à 65 ° C pendant 30 min. Ensuite, en utilisant un plasma d&#39;oxygène (400 W, 3 min) pour activer les surfaces des substrats à température ambiante. </li><li> Immerger les substrats dans le toluène contenant 1% hexyltriméthoxysilane nuit à TA silaniser le substrat. </li><li> Laver les substrats silanisées dans le toluène et le plonger dans de l&#39;acétone pendant 30 min pour éliminer les agents ayant pas réagi. </li><li> recuire les substrats pendant 2 heures à 110 ° C pour immobiliser complètement le sta tête. </li><li> Couper les substrats silanisées par un coupe-verre à 25 mm x 24 mm pour adapter les boîtes de culture cellulaire (taille de plat: φ35 mm). </li></ol> 3. Préparation de Langmuir Films et Film transféré Surface <ol><li> Placer l&#39;instrument de Langmuir dans une enceinte pour empêcher l&#39;accumulation de poussière. </li><li> Laver la cuvette de Langmuir (taille: 580 mm x 145 mm) et les barrières à l&#39;eau distillée et de l&#39;éthanol pour éliminer les contaminants. </li><li> Sécher le creux et les barrières en essuyant avec une serviette non pelucheux. Ensuite, remplissez le bac avec environ 110 ml d&#39;eau distillée, et définir les barrières des deux côtés de l&#39;auge. Notez que l&#39;eau distillée doit être ajoutée sans répandre dans les étapes suivantes de 3,5 à 3,13. </li><li> Chauffer une plaque Wilhelmy de platine (périmètre: 39.24 mm) pour surveiller la tension de surface avec un brûleur à gaz jusqu&#39;à ce que la plaque devient rouge, puis laver avec de l&#39;eau distillée pour éliminer les contaminants. Suspendre la plaque Wilhelmy sur un fil attaché àl&#39;instrument surface de mesure de pression. </li><li> L&#39;instrument à zéro surface de mesure de pression selon le protocole du fabricant. Comprimer l&#39;interface air-eau sur la goulotte par les barrières sur les deux côtés de la cuvette jusqu&#39;à ce que l&#39;interface atteint environ 50 cm 2 sans gouttes de polymère. </li><li> Aspirer petits contaminants jusqu&#39;à ce que la pression de surface est presque 0 mN / m. </li><li> Repositionner les barrières des deux côtés, et ajouter de l&#39;eau distillée pour compenser la diminution de l&#39;eau distillée à l&#39;étape 3.6. </li><li> Dissoudre 5 mg de la molécule synthétisée St-IPAAm dans 5 ml d&#39;une solution de développement de chloroforme. Remarque: dichlorométhane ou le toluène peuvent également être utilisés comme solvant. </li><li> Laissez tomber doucement 27 pi de St-IPAAm dissous dans du chloroforme sur la cuve à l&#39;aide d&#39;une microseringue ou micropipette. </li><li> Après avoir attendu pendant 5 min pour permettre l&#39;évaporation complète du chloroforme, déplacer les deux barrières horizontalement pour comprimer le molécu St-IPAAmle à l&#39;interface. Maintenir le taux des obstacles à 0,5 mm / sec jusqu&#39;à ce que la zone cible de 50 cm 2 est atteint compression. Remarque: Un taux de compression rapide provoque des défauts dans le film de Langmuir. </li><li> Mesurer la pression de surface (π) -A m isothermes avec le platine Wilhelmy plaque fixée à l&#39;instrument surface de mesure de pression pendant la compression selon le protocole du fabricant. </li><li> Après avoir atteint la taille de la zone cible, maintenir la surface pendant 5 minutes pour permettre aux molécules de St-IPAAM de se détendre; les molécules ne parviennent pas à l&#39;équilibre immédiatement après compression. </li><li> Transférer le film de Langmuir à un substrat de verre modifié hydrophobiquement en utilisant un appareil de transfert pendant 5 min à adsorber solidement le film. Fixer le substrat de verre hydrophobe en parallèle sur le dispositif. Connectez l&#39;appareil à un stade d&#39;alignement et se déplacer perpendiculairement. </li><li> Soulever le substrat horizontalement du dispositif de transfert et sec pendant 1 jour dans un desiccator. </li></ol> 4. La culture de cellules et optimisation Cell Adhesion et détachement sur la surface Transférés Langmuir Film <ol><li> Pour préparer des suspensions cellulaires, des cellules endothéliales de culture bovine de l&#39; artère carotide (CEAB) à un tiers de confluence à 37 ° C dans 5% de CO2 et 95% d&#39; air sur la culture tissulaire en polystyrène (EPTC) avec du milieu Eagle modifié Dulbecco (DMEM) contenant 10% de fœtus sérum bovin (FBS) et 100 U / ml de pénicilline. </li><li> Après la confluence est atteinte, le traitement CEAB avec 3 ml de 0,25% de trypsine-EDTA pendant 3 min à 37 ° C dans 5% de CO2 et 95% d&#39; air. </li><li> Désactiver la trypsine-EDTA par addition de 10 ml de DMEM contenant 10% de FBS, et récupérer la suspension cellulaire dans un tube conique de 50 ml. </li><li> Centrifuger à 120 g pendant 5 min, et aspirer le surnageant. Remettre en suspension les cellules avec 10 ml de DMEM. </li><li> Placez les surfaces St-IPAAM sous la lumière ultraviolette sur un banc propre pour la stérilisation pendant 5 min. </li><li> Seed CE récupéréIIs sur le Saint-IPAAm surfaces à une concentration de 1,0 x 10 4 cellules / cm 2 comptées par un hémocytomètre jetable et d&#39; observer les cellules sur les surfaces d&#39;un microscope équipé d&#39;un incubateur à 37 ° C avec 5% de CO 2 et 95% air. Note: Stériliser les surfaces St-IPAAM par la lumière ultraviolette équipée d&#39;un banc propre. </li><li> images enregistrement time-lapse de CEAB adhérentes pour environ 24,5 heures à 37 ° C par un microscope à contraste de phase avec un grossissement de 10X. Après BAEC adhérence, le détachement d&#39;enregistrement des CEAB de la surface St-IPAAm à 20 ° C pendant environ 3,5 heures. </li></ol> Fiche 5. Cellule de fabrication sur les surfaces Langmuir Film-transférés <ol><li> CEAB de culture utilisés de la même manière décrite à la section 4. </li><li> Ensemencer un total de 1,0 x 10 5 cellules / cm 2 sur des surfaces de St-IPAAM et incuber pendant 3 jours à 37 ° C dans 5% de CO2. Confluent CEAB spontanément détaché à 20 ° C.</li>
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Tous les auteurs ont contribué à parts égales à la rédaction du manuscrit et ont approuvé la version finale. Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

Une surface sensible à la température a été fabriquée par le procédé de Langmuir-Schaefer et les propriétés de surface pour l&#39;adhérence cellulaire / détachement et une feuille de recouvrement cellulaire ont été optimisées. Lors de l&#39;utilisation de cette méthode pour la fabrication de surfaces, plusieurs étapes sont critiques. La composition moléculaire des molécules St-IPAAM a un effet important sur la structure de la surface et la stabilité de la surface, et par extension, sur l&#39;adhérence cellulaire et de d...

surfaces nanostructurées ont récemment attiré une attention considérable en raison de leurs diverses applications potentielles, y compris les motifs, la culture cellulaire, le nettoyage et la commutation de surface. Par exemple, les surfaces superhydrophobes inspirées par la nanostructure de la feuille de lotus et d&#39; autres surfaces sensibles sont capables de réagir à des stimuli externes 1-4. Le film de Langmuir est l&#39;un des revêtements les polymères les plus étudiés. Un film de Langmuir est formé en déposant des molécules amphiphiles sur une interface air-eau 8/5. Le film peut alors être transféré sur une surface solide par adsorption physique ou chimique, et la conformation moléculaire sur une surface solide peut être contrôlée en utilisant des procédés de transfert vertical et horizontal 9-12. La masse volumique du film de Langmuir peut être régulée avec précision par compression de l&#39;interface air-eau. Récemment, cette méthode est également avéré efficace pour la fabrication nanométriques structur mer-îlees en utilisant des copolymères à blocs amphiphiles. Les nanostructures sont supposés consister en un noyau de segments hydrophobes et une enveloppe de segments hydrophiles 13-17. En outre, le nombre de nanostructures sur une surface est régulée par le contrôle de la surface par molécule (A m) du copolymère séquencé à l&#39;interface. Nous nous sommes concentrés sur un original, d&#39;un tissu approche unique d&#39;ingénierie sans échafaudage, l&#39;ingénierie de la feuille cellulaire, en utilisant une surface de culture sensible à la température. La technologie développée a été appliquée à des thérapies régénératrices pour divers organes 18. Une surface de culture sensible à la température a été fabriquée par greffage de poly (N -isopropylacrylamide) (PIPAAm), une molécule sensible à la température, sur une surface de 19 à 27. PIPAAm et ses copolymères présentent une température de solution critique inférieure (LCST) en milieu aqueux à des températures proches de 32 ° C. La surface de culture a également présenté une alternati sensible à la température<html> entre le caractère hydrophobe et le caractère hydrophile. À 37 ° C, la surface PIPAAm greffée est devenu hydrophobe, et des cellules facilement attaché et prolifèrent sur la surface, ainsi que sur le polystyrène classique de culture tissulaire. Lorsque la température a été abaissée à 20 ° C, la surface devient hydrophile, et les cellules spontanément détaché de la surface. Par conséquent, les cellules confluentes cultivées sur la surface peuvent être récoltées comme une feuille intacte en changeant la température. Ces propriétés d&#39;adhérence cellulaire et de détachement sont également affichées par une surface fabriquée par Langmuir revêtement de film pour le laboratoire de démonstration 26, 27. Un film de Langmuir de copolymères à blocs constitués de polystyrène (P (St)) et PIPAAm (St-IPAAm) a été fabriqué. Le film de Langmuir avec spécifique A m peut être transféré horizontalement sur ​​un substrat en verre modifié hydrophobiquement. En outre, l&#39;adhésion cellulaire sur et le détachement de la surface préparée en réponse à la température ont été évalués. _content &quot;&gt; Ici, nous décrivons les protocoles pour la fabrication d&#39;un film de Langmuir nanostructuré composé de copolymères à blocs amphiphiles thermo-réactif sur un substrat de verre. Notre méthode peut fournir une technique de fabrication efficace pour nanofilms organiques dans divers domaines de la science des surfaces et peut faciliter plus un contrôle efficace de l&#39;adhérence cellulaire et sur le détachement spontané d&#39;une surface.

<table><tbody><tr><td>N-isopropylacrylamide</td><td>Kohjin</td><td></td><td>Sans numéro de catalogue</td></tr><tr><td>Azobis(acide 4-cyanovalérique)</td><td>Wako Pure Chemicals</td><td>016-19332</td><td></td></tr><tr><td>Styrène</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>S4972</td><td></td></tr><tr><td>1,3,5-trioxane</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T81108</td><td></td></tr><tr><td>1,4-dioxane</td><td>Wako Pure Chemicals</td><td>045-24491</td><td></td></tr><tr><td></td><td>DMEM Sigma&nbsp ;</td><td>D6429</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Nakarai</td><td>11482-15</td><td></td></tr><tr><td>Streptomycine</td><td>GIBCO BRL</td><td>15140-163</td><td></td></tr><tr><td>Pénicilline</td><td>GIBCO BRL</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>Trypsine-EDTA</td><td>Sigma</td><td>T4174</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Japon Biosérum</td><td>JBS-11501</td><td></td></tr><tr><td>BAECs</td><td>Health Science Reserch Resources Bank</td><td>JCRB0099</td><td></td></tr><tr><td>Lunettes de protection</td><td>Matsunami Glass Industry</td><td>C024501</td><td></td></tr><tr><td>AFM NanoScope V</td><td>Veeco</td><td></td><td></td></tr><tr><td>1H NMR INOVA 400</td><td>Varian, Palo Alto</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ATR/FT-IR NICOLET 6700</td><td>Thermo Scientific</td><td></td><td></td></tr><tr><td>GPC HLC-8320GPC</td><td>Tosoh</td><td></td><td></td></tr><tr><td>TSKgel Super AW2500, AW3000, AW4000</td><td>Auges de dépôt Tosoh</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Langmuir-Blodgett&nbsp ;</td><td>KSV Instruments</td><td>KN 2002</td><td>KSV NIWA Auge Midium</td></tr><tr><td>Nikon ECLIPSE TE2000-U</td><td>Nikon</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

préparation de thermosensible surfaces nanostructurées pour l&#39;ingénierie tissulaire

Preparation of Thermoresponsive Nanostructured Surfaces for Tissue Engineering

Des surfaces immobilisées en poly(N-isopropylacrylamide) thermoréactives (PIPAAm) pour contrôler l’adhésion et le détachement cellulaires ont été fabriquées par la méthode Langmuir-Schaefer. Des copolymères séquencés amphiphiles composés de polystyrène et de PIPAAm (St-IPAAms) ont été synthétisés par polymérisation radicalaire par transfert de chaîne d’addition-fragmentation réversible (RAFT). Une solution chloroforme de molécules de St-IPAAm a été doucement déposée dans un appareil en auge de Langmuir, et les deux barrières de l’appareil ont été déplacées horizontalement pour comprimer le film afin de réguler sa densité. Ensuite, le film St-IPAAm Langmuir a été transféré horizontalement sur un substrat de verre modifié hydrophobe par un dispositif fixé en surface. Les images de microscopie à force atomique ont clairement révélé des structures d’îles marines à l’échelle nanométrique à la surface. La force, la vitesse et la qualité de l’adhésion et du détachement des cellules sur la surface préparée ont été modulées par les changements de température dans la plage de température critique inférieure de la solution des molécules PIPAAm. De plus, une structure cellulaire bidimensionnelle (feuille de cellule) a été récupérée avec succès sur les surfaces optimisées. Ces surfaces PIPAAm uniques peuvent être utiles pour contrôler la force de l’adhésion et du détachement cellulaires.

Les copolymères à blocs composés de polystyrène et de poly (N -isopropylacrylamide) (St-IPAAms) avec des poids moléculaires spécifiques ont été synthétisés par polymérisation radicalaire RAFT. TCE a été préparée en tant qu&#39;agent de transfert de chaîne tel que décrit dans Moad et al. , 28. Deux molécules St-IPAAM de différentes longueurs de chaîne ont été synthétisés PIPAAm et les polymères à blocs obtenus sont caractérisés par 1 H résonance mag...

Des surfaces d’îles marines à l’échelle nanométrique composées de copolymères séquencés thermosensibles ont été fabriquées par la méthode Langmuir-Schaefer pour contrôler l’adhésion et le détachement cellulaires spontanés. La préparation de la surface ainsi que l’adhésion et le détachement des cellules à la surface ont été visualisés.

Préparation de thermosensible surfaces nanostructurées pour l&#39;ingénierie tissulaire

Thermoresponsive poly(N-isopropylacrylamide) (PIPAAm)-immobilized surfaces for controlling cell adhesion and detachment were fabricated by the ...

Le but global de cette méthode de Langmuir-Schaefer utilisant des copolymères en bloc consiste à fabriquer des feuillets cellulaires dans diverses conditions sur une surface sensible à la température, en contrôlant l'intensité de l'adhésion et des attaches cellulaires. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine des biomatériaux, telles que les matériaux biocompatibles, les surfaces de culture cellulaire et la bioséparation. Le principal avantage de cette technique réside dans le fait que l'interaction entre la surface sensible à la température et les cellules peut être contrôlée, et que les conditions de modification pour la récupération des feuillets cellulaires peuvent être optimisées.Bien que cette méthode puisse fournir des informations sur l'interaction entre la cellule et la surface, elle peut également être appliquée à d'autres systèmes, tels que la bio-séparation et les biofilms. Pour commencer, dissoudre le styrène, l'ECT et l'ACVA dans 40 millilitres de 1,4-dioxane. Congeler la solution dans de l'azote liquide sous vide pendant 15 à 20 minutes afin d'éliminer les espèces réactives.Après avoir décongelé progressivement la solution à température ambiante, répétez trois fois le cycle de congélation, pompage, décongélation et dégazage. Obtenez l'agent macro-RAFT en polystyrène par polymérisation à 70 degrés Celsius pendant 15 heures dans un bain d'huile. Précipitez l'agent macro-RAFT en polystyrène avec 800 millilitres d'éther, puis séchez sous vide.Ensuite, dissoudre le monomère IPAAm, l'agent macro-RAFT en polystyrène et l'ACVA dans quatre millilitres de 1,4-dioxane. Éliminer l'oxygène de la solution par des cycles de dégazage par congélation, pompage et décongélation, comme précédemment. Réaliser une polymérisation à 70 degrés Celsius pendant 15 heures dans un bain d'huile après le dégazage.Enfin, obtenir la molécule de St-IPAAm synthétisée de la même manière que l'agent macro-RAFT de polystyrène. Laver les substrats en verre avec un excès d'acétone et d'éthanol, puis les soniquer pendant cinq minutes afin d'éliminer les contaminants de surface. Sécher les substrats dans une étuve à 65 degrés Celsius pendant 30 minutes.Ensuite, utilisez un plasma d'oxygène pour activer les surfaces des substrats à température ambiante. Plongez les substrats dans du toluène contenant 1 % d'hexatriméthoxysilane pendant une nuit à température ambiante afin de silaniser le substrat. Puis, lavez les substrats silanisés dans du toluène et immergez-les dans de l'acétone pendant 30 minutes pour éliminer les agents non réagis.Hybrider les substrats pendant deux heures à 110 degrés Celsius afin d'immobiliser complètement la surface. Enfin, découper les substrats silanisés à l'aide d'un coupe-verre en morceaux de 25 millimètres sur 24 millimètres pour qu'ils s'adaptent aux boîtes de culture cellulaire. Placer l'instrument de film de Langmuir dans un cabinet pour éviter l'accumulation de poussière.Lavez le bac de Langmuir et les barrières avec de l'eau distillée et de l'éthanol afin d'éliminer les contaminants. Séchez le bac et les barrières en les essuyant avec un torchon sans peluches. Ensuite, remplissez le bac avec environ 110 millilitres d'eau distillée, puis placez les barrières de chaque côté du bac.Ensuite, chauffez une plaque de platine Wilhelmy utilisée pour le suivi de la tension superficielle à l’aide d’un bec Bunsen jusqu’à ce que la plaque devienne rouge. Lavez ensuite la plaque avec de l’eau distillée pour éliminer les contaminants. Suspendez la plaque de Wilhelmy à un fil attaché à l’instrument de mesure de la pression superficielle.Mettre à zéro l'instrument de mesure de la pression superficielle conformément au protocole du fabricant. Comprimer l'interface air-eau dans la cuve à l'aide des barrières situées des deux côtés de la cuve jusqu'à ce que l'interface atteigne environ 50 centimètres carrés, sans aucune goutte de polymère. Aspirer toutes les petites impuretés jusqu'à ce que la pression superficielle soit presque nulle, soit près de zéro millinewton par mètre.Repositionnez les barrières des deux côtés et ajoutez de l'eau distillée pour compenser la diminution d'eau distillée. Ensuite, dissolvez cinq milligrammes de la molécule St-IPAAm synthétisée dans cinq millilitres d'une solution de développement au chloroforme. Puis, laissez tomber délicatement 27 microlitres de St-IPAAm dissous dans le chloroforme dans la cuve à l'aide d'une microsyringe ou d'une micropipette.Après avoir attendu cinq minutes pour permettre l'évaporation complète du chloroforme, déplacez horizontalement les deux barrières afin de comprimer la molécule de St-IPAAm à la surface. Maintenez une vitesse de compression des barrières de 0,5 millimètre par seconde jusqu'à ce que la surface cible de 50 centimètres carrés soit atteinte. Mesurez les isothermes de pression de surface Pi-A à l'aide de la plaque de Wilhelmy en platine fixée à l'instrument de mesure de pression de surface pendant la compression, conformément au protocole du fabricant.Une fois la taille de la zone cible atteinte, maintenir la surface pendant cinq minutes afin de permettre aux molécules de St-IPAAm de se détendre. Les molécules n'atteignent pas l'équilibre immédiatement après la compression. Ensuite, transférer le film de Langmuir sur un substrat en verre modifié de manière hydrophobe à l'aide d'un appareil de transfert pendant cinq minutes afin d'assurer une absorption robuste du film.Fixez le substrat en verre hydrophobe parallèlement sur le dispositif. Connectez le dispositif à une platine d'alignement et déplacez-le perpendiculairement. Soulevez le substrat horizontalement à l'aide de l'appareil de transfert et faites-le sécher pendant un jour dans un dessiccateur.Pour préparer des suspensions cellulaires, cultiver des cellules endothéliales de l'artère carotide bovine, ou BAEC, jusqu'à une confluence d'un tiers à 37 degrés Celsius, sous 5 % CO₂ et 95 % air, sur du polystyrène pour culture cellulaire dans un milieu DMEM contenant du FBS et de la pénicilline. Une fois la confluence atteinte, traiter les BAEC avec trois millilitres de trypsine EDTA à 0,25 % pendant trois minutes à 37 degrés Celsius, sous 5 % CO₂ et 95 % air. Inactiver la trypsine EDTA en ajoutant 10 millilitres de DMEM contenant 10 % de FBS.Et recueillir la suspension cellulaire dans un tube conique de 50 millilitres. Après centrifugation à 120 ×g pendant cinq minutes, aspirer le surnageant et resuspendre les cellules dans 10 millilitres de DMEM. Ensemencer les cellules récupérées sur les surfaces St-IPAAm à une concentration de 10 000 cellules par centimètre carré, dénombrées à l’aide d’un hémocytomètre jetable.Observer les cellules sur les surfaces à l’aide d’un microscope équipé d’un incubateur à 37 degrés Celsius avec 5 % de CO2 et 95 % d’air. Ensuite, stériliser les surfaces de St-IPAAm à l’aide d’une lumière ultraviolette intégrée dans un banc propre. Enregistrer des images en enregistrement temporel des BAEC adhérents pendant environ 24,5 heures à 37 degrés Celsius à l’aide d’un microscope à contraste de phase avec un grossissement de 10x.Après l'adhésion des BAEC, enregistrer le détachement des BAEC de la surface St-IPAAm à 20 degrés Celsius pendant environ 3,5 heures. Après optimisation de l'adhésion et du détachement cellulaires sur la surface transférée de film de Langmuir, fabriquer les feuillets cellulaires en cultivant d'abord les BAEC comme précédemment. Ensemencer un total de 100 000 cellules par centimètre carré sur les surfaces St-IPAAm.Et incuber pendant trois jours à 37 degrés Celsius sous 5 % de CO2. Les BAEC confluentes se sont détachées spontanément à 20 degrés Celsius. La préparation d'une surface transférée de film de Langmuir sensible à la température est indiquée ici.La solution de St-IPAAm dans le chloroforme a été déposée délicatement sur une interface air-eau. Deux barrières ont été utilisées pour comprimer les molécules de St-IPAAm à l'interface jusqu'à ce qu'une surface cible de 50 centimètres carrés soit atteinte. La pression superficielle a été mesurée pendant la compression afin de détecter d'éventuels défauts dans le film de Langmuir.Après compression, un substrat de lame de verre modifié hydrophobiquement a été placé horizontalement sur l'interface à l'aide d'un dispositif d'alignement. Le substrat a été soulevé horizontalement et séché pendant un jour. Après cette étape, les surfaces St-IPAAm étaient prêtes à être utilisées dans des expériences de culture cellulaire.Des résultats représentatifs d'images topographiques par microscopie à force atomique des surfaces de St-IPAAm sont présentés ici. Des nanostructures ont été observées sur les deux types de surfaces de St-IPAAm. La taille et la forme des nanostructures dépendaient fortement de l'AM et de la composition du St-IPAAm.Ici, une image macroscopique d'une feuille cellulaire récupérée sur une surface de transfert de film de Langmuir avec du St-IPAAm 480, et une AM de 40 nanomètres carrés par molécule, est présentée. Les cellules ont atteint la confluence après trois jours de culture sur les surfaces de St-IPAAm 170 et de St-IPAAm 480 à 37 degrés Celsius. Et la feuille cellulaire a été rapidement récupérée après abaissement de la température de 37 à 20 degrés Celsius.Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment fabriquer et concevoir la composition moléculaire d'un polymère, fabriquer et transférer un film de Langmuir, contrôler l'adhésion et le détachement des cellules, et récupérer une feuille cellulaire. Depuis son développement, cette technique ouvre la voie aux chercheurs dans le domaine des biomatériaux et du génie tissulaire pour explorer les interactions entre les cellules et les surfaces, ainsi que les stratégies de culture cellulaire destinées à être utilisées en médecine régénérative. Les implications de cette technique s'étendent à la thérapie par transplantation cellulaire, car elle permet potentiellement de fabriquer des feuillets cellulaires à partir de divers types cellulaires provenant de patients.

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Bioingénierie

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