Name: Préparation et essai dimpédance basée sur biopuces fluidiques avec des cellules RTgill-W1 pour lévaluation rapide des échantillons deau potable pour la toxicité (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-07T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 19 s
Description: Apprenez à préparer des biopuces avec des cellules épithéliales branchiales de truite arc-en-ciel pour évaluer rapidement la toxicité de l'eau potable par impédance électrique. Cette méthode portable permet des tests sur le terrain.

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Ce travail a été soutenu par le Commandement de la recherche médicale et du matériel de l’armée américaine et par le programme de recherche sur l’innovation dans les petites entreprises et le programme de transfert de technologie pour les petites entreprises ; Contrat n° W81XWH-13-C-0093. Nous tenons à remercier la Dre Lucy Lee de l’Université de Fraser d’avoir été notre mentor en culture cellulaire RTgill-W1, et à remercier le Dr Niels Bols de l’Université de Waterloo pour le développement de la lignée RTgill-W1cell.

1. Préparation du matériel de test NOTE: Afin de préparer les biopuces pour les essais, plusieurs flacons confluentes de cellules RTgill-W1 doivent être prêts. Une bonne estimation du nombre de flacons nécessaires est l&#39;un confluentes T175 flacon pour 16 biopuces à ensemencer. <ol><li> Effectuez les étapes suivantes dans une armoire de classe II biologique de sécurité (biohood) en utilisant une technique aseptique. Utiliser 70% d&#39;éthanol pour désinfecter l&#39;biohood et tous les matériaux placés dans le capot. <ol><li> Préparer le substrat de fibronectine pour les biopuces fluidiques en décongelant un flacon de 1 mg de fibronectine et dilution dans 100 ml de solution stérile L-15 supports pour une concentration de 10 pg / ml. Congeler dans 40 ml aliquotes dans 50 ml tubes en polypropylène coniques stériles à -20 ° C. Décongeler à la température ambiante pendant plusieurs heures avant l&#39;ensemencement des biopuces. Une fois décongelé, ne pas recongeler. </li><li> Préparer un milieu de culture cellulaire en ajoutant 50 ml de sérum bovin fœtal, 5 ml de 200 mM d&#39;un sup L-alanyl-L-glutaminecomplément, et 5 ml d&#39;une solution de pénicilline / streptomycine (10.000 unités de pénicilline / ml et 10.000 pg de streptomycine / ml) de bouillon à 500 ml de L-15 médias. On obtiendra alors 560 ml de milieu de culture cellulaire contenant 9% de sérum. Réfrigérer. Remarque: Ce sera le milieu complet de culture cellulaire utilisée pour les flacons de culture et les biopuces. </li></ol></li><li> Poudres médias Flacons <ol><li> Préparer à l&#39;avance flacons 0,1 dram snap-bouchon contenant 60 mg ± 0,5% de poudre L-15ex en utilisant un distributeur de poudre automatisé. Etiqueter les flacons avec la date de la poudre a été distribué et flacons réfrigérer (en quantités de 50) dans refermables poly sacs métallisés; chacun contenant trois paquets de dessication de gel de silice 1 g. Remarque: les flacons L-15ex médias en poudre peuvent être fabriqués et stockés jusqu&#39;à 9 mois à l&#39;avance des tests. </li></ol></li><li> Faire une solution de 100 ml de 20% l&#39;eau de Javel en diluant l&#39;eau de Javel avec (DI) de l&#39;eau déminéralisée. Estimation que 5 ml de solution d&#39;eau de Javel seront nécessaires pour chaque biochip. </li><li> Faire des assemblages de tubes de biopuce en coupant 27 sections mm de tube biocompatible autoclavable (2 sections pour chaque biopuce à ensemencer) et monter les deux extrémités du tube avec raccords Luer en polycarbonate de glissement. Placez les assemblages de tubes dans un sac autoclavable et autoclave pendant 8 min à 134 ° C. Aussi bouchons autoclave de biopuces (2 par biopuce) dans un sac séparé aux mêmes paramètres. </li><li> Autoclave eau DI pendant 30 min at121 ° C. Remarque: Cette eau sera utilisée pour le lavage des biopuces après l&#39;ensemencement. Estimer que 10 ml seront nécessaires pour chaque biopuce. Remarque: Le volume réel de chaque canal de biopuce est de 2 ml, mais 5 ml d&#39;eau stérile est rincé à travers chaque canal après le retrait de la solution d&#39;eau de Javel. </li><li> Fabriquer des ensembles de tubes d&#39;injection de la seringue en coupe 27 mm sections de tube biocompatible et la fixation des raccords mâle Luer slip aux deux extrémités du tube. Placez les assemblages de tubes dans une poche de stérilisation papier thermo-soudage et autoclave pendant 8 min à 134 &amp;# 176; C. </li></ol> 2. Fluidic Procédure biopuce Semis Remarque: Effectuez toutes les procédures où les biopuces ou les médias sont manipulés dans une enceinte de sécurité biologique de classe II en utilisant une technique aseptique. <ol><li> Vingt-quatre heures avant le semis prévu, retirez les biopuces du fabricant d&#39;emballage dans le biohood et dans les cas d&#39;instruments en plastique stérilisés. </li><li> Stériliser les biopuces en utilisant une solution d&#39;eau de Javel à 20% de la manière suivante Remarque: Dans le passé, ce procédé de blanchiment a empêché la croissance fongique dans les biopuces au cours du stockage à long terme dans le cas où la stérilisation par plasma des biopuces effectuées par le fabricant n&#39;a pas été efficace. <ol><li> En utilisant une seringue de 20 ml stérile avec une tubulure d&#39;injection de seringue ensemble attaché et travaillant dans le biohood, injecter 2 ml de la solution d&#39;eau de Javel à 20% dans chaque canal de la biopuce. Autoriser les biopuces à siéger pendant 1 h avec la solution d&#39;eau de Javel. </li><li> Après une heure, vide aspen colère la solution d&#39;eau de Javel à partir des deux canaux en utilisant un mâle ensemble slip luer stérile attaché à la tuyauterie d&#39;aspiration sous vide. Utilisez l&#39;un des ensembles de tubes de biopuce comme un drain lors du rinçage des biopuces. </li><li> En utilisant une seringue de 20 ml stérile fixé à un ensemble d&#39;injection de seringue stérile, rincer chaque canal de la puce avec 5 ml d&#39;eau stérile, permettant à l&#39;excès d&#39;eau dans un récipient dans le biohood. Ensuite, le vide-aspirée hors de l&#39;eau que nous venons de décrire pour l&#39;eau de Javel et placez les biopuces de nouveau dans les cas d&#39;instruments en plastique et laisser dans le biohood jusqu&#39;à ensemencées avec des cellules le jour suivant. </li></ol></li><li> Soixante minutes avant l&#39;ensemencement des biopuces, injecter 2 ml de la / ml solution fibronectine 10 pg dans chaque canal de la biopuce. Laissez les biopuces dans le biohood pendant 60 min, puis sous vide Aspirer l&#39;fibronectine (tel que décrit à l&#39;étape 2.2.3) avant de semer la biopuce avec des cellules. Placez deux sections des assemblages de tubes de biopuce stériles (voirsection 1.4) sur les ports des biopuces. </li><li> Trypsiniser un confluentes RTgill-W1 flacon T175 pour 16 biopuces en utilisant les procédures décrites dans l&#39;American Type Culture Collection (ATCC) description du produit feuille 16. <ol><li> Aspirer le support du flacon (s) confluente de cellules. </li><li> Rincer la couche cellulaire avec 15 ml de PBS, puis aspirer hors tension. </li><li> Ajouter 6 ml de trypsine / EDTA à la couche de cellules dans chaque flacon T175 et permettent aux cellules de trypsiniser pendant environ 5 min. </li><li> Ajouter 15 ml de L-15 complète des milieux de culture cellulaire dans chaque flacon pour arrêter trypsinisation. </li><li> Combiner les suspensions de cellules dans un récipient jetable stérile. Remarque: La taille des conteneurs peut varier de 150-500 ml, en fonction du nombre de biopuces étant ensemencée. Estimation que 5 ml de suspension cellulaire seront nécessaires par biopuce. </li></ol></li><li> Retirer ~ 1 ml de la suspension cellulaire et le placer dans un tube à centrifuger pour le comptage. À l&#39;aide d&#39;un microscope à fond clair avec un 10X objectivationve et un hémocytomètre, compter une aliquote de 10 pi de cellules et de calculer le volume de toutes les L-15 milieux de culture cellulaire nécessaire pour atteindre une suspension cellulaire de 2,5 x 10 5 cellules / ml. Remarque: Si vous utilisez la suspension cellulaire aux semences des flacons pour continuer la culture, ce serait le point de le faire. Ajuster la concentration de la suspension cellulaire en utilisant toutes les L-15 milieux de culture cellulaire. </li><li> En utilisant une solution stérile de 20 ml syringeattached à un ensemble de tubes d&#39;injection de seringue stérile (voir section 1.6), injecter 2,5 ml de la suspension cellulaire dans l&#39;orifice externe de chaque canal de la biopuce ( par exemple, les ports qui ne possèdent pas le tube en annexe), permettant à une partie de la suspension cellulaire supplémentaire à sortir du tube dans un conteneur de déchets dans la biohood. Remarque: Cela permettra d&#39;assurer que l&#39;ensemble du canal et le tube fixé seront pleins de la suspension cellulaire. <ol><li> Créer une boucle fermée pour chaque canal de biopuce en insérant l&#39;extrémité libre du tuyau avec les Fitti luerng dans les ports externes pour chaque canal. </li><li> Essuyez tous les médias en excès hors des boucles fermées avec une serviette en papier humidifié avec 70% d&#39;éthanol et de placer les biopuces dans la boîte en plastique dans un incubateur à 20 °. Donnez à chaque biopuce un numéro d&#39;identification unique. </li></ol></li><li> Les jours 4 et 7, retirez les biopuces de la 20 ° C incubateur et reconstituer les médias dans tous les biopuces avec toutes les L-15 milieux de culture cellulaire équilibrée température. Suivre la même procédure que dans l&#39;étape 2.6, sauf utilisation juste L-15 milieux de culture cellulaire à la place (pas de suspension cellulaire). Placez les biopuces de retour dans le 20 ° C incubateur après le jour 4 alimentation. <ol><li> Après la journée 7 alimentation, enlever et jeter les tuyaux des copeaux et insérez les bouchons de vidange autoclavées dans les biopuces. </li><li> Placez les biopuces dans une boîte dans un incubateur à 6 ° jusqu&#39;à utilisation pour les tests. Remarque: Les puces peuvent être conservés à des températures réfrigérées pour un maximum de 9 mois et sont encore viables pour les tests in les lecteurs ECIS. </li></ol></li></ol> 3. Test ECIS avec biopuces <ol><li> Préparer des produits chimiques d&#39;essai en cas d&#39;utilisation. (Voir Brennan et al., 2012 7 pour la préparation de produits chimiques d&#39;essai). </li><li> Retirer ECIS lecteur et fournitures de test de la mallette de transport. Retirer une biopuce préparée à partir de la 6 ° C incubateur. Placez la biopuce sur une serviette en papier. Allumez le lecteur ECIS. </li><li> En utilisant 10 ml seringues, distribuer 10 ml d&#39;eau de contrôle dans un 0,5 oz pot de contrôle en plastique transparent marqué et 10 ml de l&#39;échantillon d&#39;essai dans un 0,5 oz pot d&#39;essai en plastique transparent marqué. Note: 1) Assurez-vous d&#39;enlever les bulles pour une mesure précise. 2) Les seringues et les bocaux sont codés par couleur; bleu pour le contrôle et le rouge pour le test. </li><li> Retirer les deux flacons de médias en poudre des sachets. Ouvrez l&#39;un des flacons de médias en poudre (utilisation de l&#39;outil multifonction si nécessaire) et verser tout le contenu d&#39;un flacon dans le bocal avec de l&#39;eau de contrôle, laissant tomber l&#39;ensemble du flacon danssolution aussi bien. Répétez cette procédure avec le pot de test. Cap et secouer les bocaux pour assurer que la poudre soit dissoute. </li><li> Remplir chacune des couleurs 10 ml seringues avec 9 ml de lutte (seringue bleu) ou test (seringue rouge) solutions de flacons respectifs. Retirer les bulles d&#39;air des seringues. </li><li> Retirer les bouchons des ports de biopuces et fixer le drain. </li><li> Placez la biopuce dans le bac amovible en plastique dans le lecteur ECIS et fermer le couvercle. </li><li> Fixer des seringues remplies aux ports de biopuces extérieures et fixer le piston de la seringue. </li><li> Depuis l&#39;écran principal, sélectionnez &quot;NEXT&quot; pour lancer pré-test. Remarque: le logiciel Reader vérifiera impédances. Si impédances sont à portée définie par l&#39;utilisateur (généralement entre 1000 et 3000 ohms) l&#39;écran va enregistrer &quot;Cartouche Passed&quot; comme indiqué dans la figure 3, et de charger l&#39;utilisateur de sélectionner &quot;Suivant&quot; et le logiciel va passer à l&#39; étape 3.10). Si les impédances ne sont pas à l&#39;intérieurla plage de jeu en raison d&#39;une biopuce défectueux ou mauvaise connexion de la biopuce au lecteur (généralement en raison d&#39;un mauvais alignement des électrodes), puis l&#39;écran va enregistrer &quot;Cartouche Echec&quot; et l&#39;utilisateur aura la possibilité soit de &quot;Abort&quot; ou &quot;Vérifier&quot; le test. <ol><li> Sélectionnez &quot;Abandonner&quot; pour revenir à l&#39;étape 3.9). Sélectionnez «Vérifier» pour passer à l&#39;étape 3.10) après avoir reçu une &quot;cartouche Passed&quot; message et en sélectionnant &quot;Suivant&quot;. Note: Il est préférable de prendre la biopuce sortir et inspecter visuellement pour des défauts ou des fuites si une &quot;cartouche a échoué&quot; message est reçu avant de procéder à une nouvelle biopuce. </li></ol></li></ol><img alt="Figure 3" src="/files/ftp_upload/53555/53555fig3.jpg" /> Figure 3:. ECIS lecteur Capture d&#39; écran d&#39;une biopuce avec des lectures d&#39;impédance acceptables La capture d&#39; écran montre des lectures d&#39;impédance initiales en ohms de chacun des 4 coélectrodes ntrol (CE) et 4 électrodes d&#39;échantillons de test (SE) au sein de la biopuce fluidiques. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53555/53555fig3large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <ol start="10"><li> Lorsque vous êtes invité par le lecteur, entrez les informations échantillon en utilisant un clavier virtuel, puis sélectionnez «Accepter» lorsque vous avez terminé. Remarque: Le logiciel de lecture ECIS estampillera automatiquement chaque jeu de données avec la date, l&#39;heure et d&#39;autres informations saisies par l&#39;utilisateur; tels que le nombre de biopuces, et le type de produit chimique et la concentration. Deux minutes de données d&#39;impédance seront collectées à partir de la biopuce insérée et une minuterie sur écran compte à rebours du temps. </li><li> Au bout de deux minutes lorsque vous êtes invité par les instructions à l&#39;écran qui clignotent dans une boîte rouge, appuyez sur &quot;NEXT&quot;. Lorsque vous êtes invité par une boîte verte clignotante à &quot;Injecter échantillons maintenant&quot;, injecter le contrôle et les médias de test à partir des seringues attachées simultanément dans le chann biopuceels. Laissez les seringues en place sur les biopuces lorsque vous avez terminé. Remarque: Les valeurs d&#39;impédance seront collectées une fois par minute pendant 60 minutes. Si le logiciel de lecture ECIS détermine que le canal de traitement est statistiquement différent du canal de commande à tout moment entre 10 et 60 min après le début du test, puis l&#39;affichage à l&#39;écran indique que l&#39;échantillon est &quot;contaminé&quot;. Si le traitement ne diffère pas de la chaîne de commande, l&#39;écran affiche &quot;Aucune contamination détectée» à la fin de l&#39;essai. </li><li> les résultats des tests d&#39;enregistrement comme contaminés ou non contaminés pour chaque échantillon. </li><li> A la fin de l&#39;essai, enlever et jeter la biopuce. Rincer et sécher à l&#39;air les seringues, les flacons d&#39;essai et plateau en plastique amovible qui abritait la biopuce pendant les essais. Remarque: Le lecteur ECIS dispose de 4 Go de stockage à bord pour le logiciel d&#39;exploitation, les modèles de contrôle et les fichiers de test générés par l&#39;exécution d&#39;un test. Cela permet plusieurs thousand fichiers de test devant être stockées sur le lecteur. Les fichiers peuvent être récupérés avec une commande de saut USB et transférées à un ordinateur pour une analyse ultérieure à des fins de recherche, si désiré. </li></ol>

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</ol>

Les opinions, interprétations, conclusions et recommandations sont celles des auteurs et ne sont pas nécessairement approuvées par l’armée américaine. Les citations d’organisations commerciales ou de noms commerciaux dans ce rapport ne constituent pas une approbation officielle du ministère de l’Armée ou des produits ou services de ces organisations. Les auteurs Linda M. Brennan et Mark W. Widder, tous deux du Centre de recherche en santé environnementale de l’armée américaine, déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents. Michael Mayo, Michael McAleer et Alex Greis sont des employés de Nanohmics, qui produit les biopuces et les instruments jetables utilisés dans cet article.10251980

La technologie ECIS de bons résultats dans un environnement de laboratoire et a été en mesure de détecter les contaminants potentiels de l&#39;eau à des concentrations qui sont pertinentes pour la santé humaine. La portabilité et l&#39;emballage de la technologie, il est favorable à une utilisation sur le terrain. Les étapes critiques dans le protocole pour le succès de la technologie sont les suivants: 1) Maintenir des conditions aseptiques pendant la culture, l&#39;ensemencement, et l&#39;alimentation des biopuces, 2) Garder les biopuces ensemencées dans des conditions réfrigérées jusqu&#39;à ce prêt pour les essais puisque les cellules RTgill-W1 ne survivra pas très longtemps une fois qu&#39;ils sont soumis à des températures supérieures à 25 ° C, 3) peser avec précision le l-15ex dans les flacons de médias en poudre et mesurer avec précision les échantillons d&#39;eau pour éviter de produire des faux positifs, qui peuvent être causés par un changement dans la osmolalité des médias plutôt que la toxicité de l&#39;échantillon, 4) Suivez les instructions de l&#39;utilisateur sur l&#39;écran ECIS pour l&#39;exécution des tests. Le logiciel dans le lecteur avertit l&#39;utilisateur si un biochip est inacceptable pour les essais (sur la base des lectures d&#39;impédance initiale) lorsque la biopuce est d&#39;abord insérée dans le lecteur. Si les niveaux d&#39;impédance sont inacceptables pour les tests, le logiciel ne sera pas permettre à l&#39;utilisateur de procéder à l&#39;essai jusqu&#39;à ce qu&#39;un nouveau biopuce est utilisé. Raisons pour les lectures d&#39;impédance inacceptables sont généralement dues à un léger défaut d&#39;alignement des électrodes de biopuces avec les broches du lecteur ECIS ou une fuite de fluide le long d&#39;un des bords de collage de la biopuce. Il y a des limites à cette technologie car le capteur de ECIS a seulement été testé avec de l&#39;eau potable et non avec de l&#39;eau de surface. Les cellules RTgill-W1 qui sont sur la biopuce ne peuvent pas tolérer le gel ou à des températures bien au-dessus de 25 ° C pendant des périodes de temps prolongées (laps de temps peut être de quelques heures à jours dépendant de la température. Les biopuces fonctionnent mieux dans une plage de température de réfrigération à température ambiante 7. Ils sont prêts pour une utilisation immédiate, cependant, juste après avoir été removed de la chambre froide. conteneurs frigorifiques portables sont actuellement utilisés par le personnel de l&#39;armée dans le domaine des fournitures sensibles à la température. Ces mêmes conteneurs peuvent être utilisés pour le transport de biopuce ensemencée. Une autre limite de cette technologie est que, même si elle est un capteur de toxicité à large bande, il ne répond pas bien, voire pas du tout, à des composés inhibiteurs de la cholinestérase, tels que certains pesticides. Pour combler cette lacune de capacité, le capteur de ECIS est conçu pour être utilisé en conjonction avec un test d&#39;essai de pesticides rapide disponible dans le commerce lors de l&#39;essai des échantillons d&#39;eau afin de fournir à l&#39;utilisateur une plus large gamme de tests de toxicité. Le kit est un dosage enzymatique rapide conçu pour détecter organophosphates et de carbamates pesticides dans les 30 minutes. Le capteur de ECIS complète le SAQB-PM (Eau Système d&#39;analyse de la qualité - médecine préventive) Système de test de l&#39;eau sur le terrain, actuellement utilisé par le personnel de la médecine préventive militaires pour détecter, arsenIC, le plomb, ou de cyanure dans un échantillon d&#39;eau potable. Bien que le capteur de ECIS n&#39;identifier ce que le contaminant est, il indiquera si certains métaux ou des composés organiques sont présents, ce qui indique que l&#39;eau ne peut pas être propre à la consommation humaine. Les résultats des tests de ECIS sont disponibles au sein d&#39;une heure. Les échantillons d&#39;eau peuvent ensuite être envoyés pour une analyse ultérieure pour l&#39;identification du polluant en cas de résultat positif du test. Comme décrit ci-dessus, le lecteur de ECIS est conçu pour faire partie d&#39;un système qui comprend un kit ACE enzymatique séparé afin de couvrir un large spectre de détection de contaminants. Ces deux lecteurs sont actuellement conditionnés dans un boîtier robuste pour le transport sur le terrain pour une utilisation sur le terrain par des soldats.

L&#39;objectif global était de développer une méthode pour l&#39;ensemencement des cellules, le stockage et le test de biopuces fluidiques dans le biocapteur ECIS. L&#39;objectif pour le développement de ce biocapteur était de répondre aux spécifications de l&#39;armée américaine pour un appareil portable sur le terrain qui pourrait détecter une éventuelle contamination de l&#39;approvisionnement en eau potable utilisée par les soldats. Les exigences pour le capteur de toxicité étaient qu&#39;il pourrait détecter un large spectre de composés industriels toxiques rapidement (en une heure) à des concentrations pertinentes pour la santé humaine, que le dispositif soit champ portable, et les composants biologiques aurait une durée de vie de au moins neuf mois. Réfrigération, mais pas le gel, des composants périssables était acceptable. Historiquement, les portables technologies de test de l&#39; eau sur le terrain avec une composante biologique pour les (tels que des anticorps, des enzymes, ou des acides nucléiques) ont été 1-3 spécifique de l&#39; analyte. L&#39;inconvénient de ces types de biocapteurs est qu&#39;ils ONLy détecter un type de produit chimique à la fois. Plusieurs capteurs sont nécessaires si l&#39;on soupçonne que plus d&#39;un produit chimique est présent. Si un capteur spécifique est pas dans le répertoire de test, les contaminants chimiques dans l&#39;eau pourraient facilement passer inaperçus. capteurs de toxicité à base large, d&#39;autre part, ont le potentiel pour combler cette lacune de la technologie. Ceux - ci ont généralement un composant cellulaire pour les 4 à 8. Les avantages de biocapteurs de toxicité à base élargie sont qu&#39;ils peuvent détecter la présence d&#39;un large éventail de contaminants chimiques, y compris les mélanges et inconnues, dans une période relativement courte de temps 5,9,10. Le concept d&#39;utiliser la mesure de l&#39; impédance électrique des monocouches de cellules en tant que capteur de toxicité possible, ce qui est également connu comme substrat cellulaire électrique de détection d&#39; impédance (ECIS), a été décrite par Giaever et 11 Keese. Au cours des deux dernières décennies, il a été montré comme un indicateur sensible de la cellule viabilité et la cytotoxicité. Fondamentalement, la monocouche cellulaire qui adhère aux électrodes sur les biopuces est exposée à haute fréquence et à basse tension et l&#39;intensité signal de courant alternatif. La monocouche confluente de cellules empêche l&#39;écoulement des électrons. Lorsque l&#39;intégrité de la monocouche cellulaire est compromise ( par exemple, quand un produit chimique toxique est introduit), le capteur ECIS enregistre une variation de l&#39;impédance électrique 14/11. La figure 1 illustre le principe de l&#39; ECIS par rapport à la monocouche de cellules sur la biopuce . <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/53555/53555fig1.jpg" /> Figure 1:.. Principe de ECIS Illustration d&#39;une monocouche cellulaire sur une biopuce avec lecteur de ECIS simplifié schéma électrique <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53555/53555fig1large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <p class="jove_content"&gt; Dans un premier temps , les lignées cellulaires de mammifères ont été ensemencées dans des biopuces et fluidiques ont été utilisés dans la technologie du capteur décrit ci - ECIS 12. Ces cellules ne sont pas pratiques pour une utilisation sur le terrain, cependant, parce qu&#39;ils nécessité des changements fréquents des médias, a eu une durée de vie limitée, et a nécessité un CO 2 environnement artificiel et une température d&#39;incubation C 37 °. Il a été découvert qu&#39;une lignée cellulaire disponible dans le commerce provenant de cellules épithéliales truite arc maillants (RTgill W-1 cellules) pourrait être testé à la température ambiante au CO ambiant 2, formé une monocouche confluente dans les biopuces, pourraient être conservés à des températures de réfrigération, et eu une réponse rapide (1 h ou moins) à un large éventail de produits chimiques à des concentrations pertinentes pour la santé humaine 12. Applications de cellules RTgill-W1 en toxicologie, ainsi que dans la recherche fondamentale, sont examinés par Lee et al 15. Méthodes pour l&#39;ensemencement, le stockage et le test de biopuces fluidiques contenantmonocouches de cellules RTgill-W1 sur biopuces fluidiques dans un biocapteur de ECIS sont décrites ici. Les biopuces fluidiques peuvent être stockés pendant jusqu&#39;à 9 mois dans un état réfrigéré et peuvent être transportés dans un conteneur de stockage à froid, pour les tests de l&#39;eau potable supplies.The accompagnant les lecteurs de ECIS, ou unités de test, sont expédiés séparément. Les biopuces ont deux composantes à eux; une couche de polycarbonate supérieure avec deux canaux de fluide séparés, et une couche inférieure électronique qui contient quatre plots d&#39;électrodes par canal pour une impédance de détection. Il y a 10 électrodes de travail par bloc; chaque électrode est de 250 um de diamètre. Les biopuces assemblées ont des connexions d&#39;électrodes d&#39;or pour l&#39;acquisition de lectures d&#39;impédance lorsqu&#39;il est inséré dans l&#39;unité de test de ECIS. Chacun des deux canaux fluidiques fermés en forme de U va contenir 2 ml de la suspension cellulaire RTgill-W1. La figure 2 montre une biopuce fluidiques dans le lecteur ECIS avec un grossissement d&#39;un cellules confluentes sur une seule électrode de détection. Figure 2:.. Biopuces fluidiques dans ECIS lecteur zone Magnified montre une monocouche confluente de cellules RTgill-W1 sur une seule électrode de détection <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53555/53555fig2large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a>

<table><tbody><tr><td>Sérum fœtal bovin</td><td>Life Technologies, Inc. www.lifetechnologies.com</td><td>16000-085</td><td>Conserver @ -20 &deg ;C. Décongeler @ température ambiante avant utilisation. Ingrédient pour milieu de culture cellulaire L-15 complet (10 %).</td></tr><tr><td>Fibronectine, plasma bovin</td><td>EMD Millipore Corp. &nbsp ; www.emdmillipore.com &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ;</td><td>341631-1 mg</td><td>Conserver @ -20 &deg ;C. Décongeler @ température ambiante avant utilisation. Mélanger avec un milieu L-15 pour une concentration de 10 &#956 ; g/ml et congélation @ -20 &deg ; C en aliquotes. Utilisation comme substrat pour les biopuces.</td></tr><tr><td>Milieu L-15 sans L-glutamine</td><td>Lonza&nbsp ; www.lonzabioscience.com</td><td>12-700F</td><td>Milieu basal pour la culture cellulaire et l’alimentation de biopuces. Conserver à 6 °C.</td></tr><tr><td>Milieu en poudre L-15ex avec rouge de phénol</td><td>US Biological&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; www.usbio.net</td> milieu <td>L1501</td><td>est pesé en aliquotes de 60 mg dans des flacons de 0,1 dram et stocké à 6 &deg ; C dans les sachets en aluminium avec des packs dessicants. Durée de conservation de neuf mois. Mélangé à 10 ml d’échantillon d’eau pour l’analyse dans des biopuces.</td></tr><tr><td>PBS, sans Ca2+ ou Mg2+</td><td>Lonza&nbsp ;</td><td>www.lonzabioscience.com 17-516F</td><td>Conserver à température ambiante. Utilisé pour le rinçage des milieux lors de l’essaypsinisation des flacons de culture cellulaire. &nbsp ;</td></tr><tr><td>Trypsine, EDTA</td><td>Lonza&nbsp ; www.lonzabioscience.com</td><td>CC-5012</td><td>Conserver @ -20 &deg ;C. Décongeler à température ambiante et utiliser pour trypsiniser les flacons de culture cellulaire.&nbsp ;</td></tr><tr><td>Fioles de culture T175</td><td>Fisher Scientific www.fishersci.com</td><td>12-565-30</td><td>Utilisé pour la culture des cellules RTgill-W1.</td></tr><tr><td>Eau de Javel</td><td>Chlorox&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; </td><td></td> www.chlorox.com <td>Dilué à 20 % avec de l’eau millique ou distillée pour le nettoyage des puces ECIS. Tout agent de Javel domestique est acceptable.</td></tr><tr><td>Alcool éthylique</td><td></td><td></td> à 70 % <td>Pour désinfecter les surfaces du biohood et tous les matériaux placés dans le biohood.</td></tr><tr><td>Cellules branchiales de la truite arc-en-ciel (RTgill-W1)&nbsp ;</td><td>Collection de culture tissulaire de type américain&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; www.atcc.org</td><td>CRL-2523</td><td>Cellules cultivées et utilisées pour les biocapteurs (biopuces d’ensemencement).</td></tr><tr><td>GlutaMAX-1 Supplement, 200 mM</td><td>Lonza&nbsp ; www.lonzabioscience.com</td><td>35050-061</td><td>Conserver à température ambiante.&nbsp ; Ingrédient pour milieu de culture cellulaire L-15 complet (1 %).</td></tr><tr><td>Stock Penn/Strep 10K/10K</td><td>Lonza&nbsp ; www.lonzabioscience.com</td><td>17-602E</td><td>Stocker @ -20 &deg ;C. Décongeler @ température ambiante avant utilisation. Ingrédient pour milieu de culture cellulaire L-15 complet (1 %).</td></tr><tr><td>Tubes BPT Parmed</td><td>U.S. Plastic Corp. &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; www.usplastic.com</td><td>57317</td><td>Découpé en tronçons de 27 mm et autoclave. Utilisé pour l’ensemencement de biopuces avec des cellules et en boucle fermée entre les changements de milieu.</td></tr><tr><td>Raccords Luer en polycarbonate pour assemblages de tubes Pharmed</td> Value <td>Plastics&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ;</td><td>MTLS210-9</td><td>Fixé à chaque extrémité du tube Pharmed coupé pour l’insertion dans les bichips.</td></tr><tr><td>Seringues de 20 ml, à embout coulissant</td><td>VWR Scientific&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; us.vwr.com</td><td>BD302831</td><td>Utilisé pour l’injection de suspension cellulaire pour l’ensemencement des puces ECIS, ainsi que pour l’alimentation des puces.</td></tr><tr><td>Microflacons en polypropylène à bouchon pression 0,1 dram</td><td>Bouteilles, bocaux et tubes, Inc.&nbsp ; &nbsp ; www.bottlesjarsandtubes.com</td><td>30600</td><td>Utilisé pour stocker 60 mg d’aliquotes de milieu en poudre L-15ex.</td></tr><tr><td>60 mil Lexan fluidic ECIS biochips</td><td>Nanohmics, Inc.&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; </td><td></td> www.nanohmics.com <td>Fabriqués sur mesure par Nanohmics, Inc. Les cellules RTgill-W1 seront injectées dans les biopuces et les puces ensemencées seront placées dans le lecteur ECIS pour être testées.</td></tr><tr><td>Boîte à instruments en plastique autoclavable 17 1/2 » x 7 3/4 » x 2 3/8</td> » <td>Medi-Dose EPS&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; medidose.com</td><td>IB701</td><td>Utilisé pour stocker les éléments suivants : bouchons autoclavés, biopuces nettoyées, biopuces ensemencées.</td></tr><tr><td>Sachets de stérilisation en papier thermoscellés, 7 & frac12 ; &rdquo; x 13 po</td><td>CardinalHealth&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; www.cardinalhealth.com</td><td>90713</td><td>Utilisé pour l’autoclavage des tubes et des raccords et bouchons.</td></tr><tr><td>Distributeur automatique de poudre Quantos</td><td>Mettler Toledo&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; www.mt.com</td><td>QB5</td><td>Distribution automatisée de 60 mg d’aliquotes de L-15ex en poudre dans des flacons de 0,1 dram.</td></tr><tr><td>Lecteur ECIS</td><td>Nanohmics, Inc.&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; </td><td></td> www.nanohmics.com <td>Fabriqué sur mesure par Nanohmics, Inc. La biopuce ensemencée est insérée dans le lecteur pour effectuer des tests de toxicité de l’eau.</td></tr><tr><td>3 x 5 sacs refermables en polypropylène métallisé de 2,5 mil</td><td>Uline&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; www.uline.com</td><td>S-16893</td><td>Emballage et stockage des biopuces ensemencées et des flacons de milieux L-15ex en poudre.</td></tr><tr><td>Leatherman squirt ps4</td><td>Amazon&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; </td><td></td> www.Amazon.com <td>Utilisé pour ouvrir des flacons de milieux en poudre.</td></tr><tr><td>1 g de sachets de gel de silice déshydratant</td><td>Uline&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; www.uline.com</td><td>S-3902</td><td>Mettre dans des sacs en polypropylène avec des flacons de milieu en poudre L-15ex pour éviter que la poudre ne reçoive de l’humidité.</td></tr><tr><td>Flacons stériles Nalgene de 250 ou 500 ml</td><td>Fisher Scientific www.fishersci.com</td><td>09-740-25C ou E</td><td>Hold suspensions cellulaires pour l’ensemencement de puces ECIS dans le biohood.</td></tr><tr><td>Bouchons pour biopuces</td><td>Nanohmics, Inc.&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; </td><td></td> www.nanohmics.com <td>Fabriqué sur mesure par Nanohmics, Inc. Utilisé pour sceller les ports sur les biopuces avant le stockage à 6 °C.</td></tr><tr><td>Drains pour biopuces ECIS</td><td>Nanohmics, Inc.&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; </td><td></td> www.nanohmics.com <td>Fabriqué sur mesure par Nanohmics, Inc. Placé sur 2 ports internes sur des biopuces avant d’être inséré dans le lecteur ECIS. Permet à l’excès de fluide de s’écouler des canaux pendant les injections d’essai.</td></tr><tr><td>Hémocytomètre</td><td>Fisher Scientific www.fishersci.com</td><td>S17040</td><td>Nécessaire pour compter les cellules avant d’ajuster la suspension cellulaire pour l’injection dans les biopuces.</td></tr><tr><td>Microscope à fond clair avec objectif 10X</td><td>Leitz Labovert</td><td></td><td>N’importe quel microscope à fond clair est acceptable.</td></tr><tr><td>Toute enceinte</td><td></td><td></td><td>de sécurité biologique de classe II où la culture cellulaire peut être effectuée dans des conditions stériles est acceptable.</td></tr><tr><td>Tubes de microcentrifugation, 0,6 ml</td><td>Fisher Scientific www.fishersci.com</td><td>02-681-311</td><td>Contient 1 ml de suspension cellulaire avant de compter les cellules.</td></tr><tr><td>Slip 10 cc seringues rouges</td><td>Procedure Products, Inc.&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; www.procedureproducts.com</td><td>S/49S 30-R</td><td>Prélève 9 ml de l’échantillon d’eau d’essai et l’injecte dans la biopuce.</td></tr><tr><td>Seringues bleues Slip 10 cc</td><td>Procedure Products, Inc.&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; www.procedureproducts.com</td><td>S/49S 30-B</td><td>Prélève 9 ml d’échantillon d’eau témoin et l’injecte dans la biopuce.</td></tr><tr><td>&frac12 ; Pot en plastique PET transparent avec bouchons doublés côtelés blancs</td><td>SKS Bottle & Packaging, Inc.&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; www.sks-bottle.com</td><td>0605-30</td><td>Flacons d’échantillon utilisés pour mélanger la poudre de L-15ex et 10 ml d’échantillon d’eau pour l’essai.</td></tr><tr><td>Tubes à centrifuger coniques stériles en polypropylène de 50 ml</td><td>Fisher Scientific&nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; &nbsp ; www.fishersci.com</td><td>12-565-269</td><td>Utilisé pour contenir 40 ml d’aliquotes de 10 &#956 ; g/ml de fibronectine à -20 &deg ;C.</td></tr><tr><td>Test de détection des inhibiteurs de l’acétylcholinestérase NIDS ACE</td><td>ANP Technologies, Inc. www.anptinc.com</td><td>Capteur ACE-400</td><td>conçu pour la détection rapide des pesticides dans l’eau potable</td></tr></tbody></table>

préparation et essai d&#39;impédance basée sur biopuces fluidiques avec des cellules rtgill-w1 pour l&#39;évaluation rapide des échantillons d&#39;eau potable pour la toxicité

Preparation and Testing of Impedance-based Fluidic Biochips with RTgill-W1 Cells for Rapid Evaluation of Drinking Water Samples for Toxicity

Ce manuscrit décrit comment préparer des biopuces fluidiques avec des cellules épithéliales branchiales de truite arc-en-ciel (RTgill-W1) pour une utilisation dans un capteur de toxicité de l’eau portable sur le terrain. Une monocouche de cellules RTgill-W1 se forme sur les électrodes de détection enfermées dans les biopuces. Les biopuces sont ensuite utilisées pour des tests dans un dispositif portable de détection d’impédance de substrat de cellule électrique (ECIS) conçu pour les tests de toxicité rapides de l’eau potable. Le manuscrit décrit en outre comment effectuer un test de toxicité à l’aide des biopuces préparées. Un échantillon d’eau témoin et l’échantillon d’eau d’essai sont mélangés à un milieu pulvérulent pré-mesuré et injectés dans des canaux séparés de la biopuce. Les lectures d’impédance des électrodes de détection dans chacun des canaux de la biopuce sont mesurées et comparées par un logiciel statistique automatisé. L’écran de l’instrument ECIS indiquera « Contamination détectée » ou « Aucune contamination détectée » dans l’heure suivant l’injection de l’échantillon. Les avantages sont la facilité d’utilisation et la réponse rapide à un large éventail de produits chimiques inorganiques et organiques à des concentrations pertinentes pour la santé humaine, ainsi que la stabilité à long terme des biopuces stockées dans un état prêt à être testé. Les limites sont la nécessité de stocker les biopuces au froid et la sensibilité limitée aux pesticides inhibiteurs de la cholinestérase. Les applications de ce détecteur de toxicité sont pour l’analyse rapide et portable sur le terrain des approvisionnements en eau potable par le personnel de médecine préventive de l’armée ou pour une utilisation dans les installations municipales de traitement de l’eau.

La technologie ECIS décrite dans le présent document ont subi des tests à l&#39;US Environmental Protection Agency (USEPA) -sponsored Testing Technology et le programme d&#39;évaluation (TTEP). Treize produits chimiques ont été sélectionnés pour tester en tant que représentants d&#39;un large éventail de composés industriels toxiques qui pourraient être contaminants possibles de l&#39;eau potable. Lors de l&#39;essai, 9 des 13 ont été détectés par ECIS au sein d&#39; une heure à des concentrations qui sont pertinentes pour la santé humaine 8. Le tableau 1 illustre les résultats de ce test contaminant. Figure 4 est représentatif de ce qu&#39;est un &quot;contaminé&quot; résultat ressemblerait sur l&#39;écran du lecteur ECIS. Pour la plupart, les impédances cellulaires ont diminué pour des échantillons contaminés par rapport aux témoins. Occasionnellement, certains composés peuvent provoquer une augmentation de l&#39;impédance. Aussi résumées dans le tableau 1 </strong&gt; est l&#39;analyse de l&#39;eau propre. Quarante échantillons d&#39;eau potable ont été effectuées et aucune contamination n&#39;a été détectée dans aucun des échantillons (voir figure 5) pour une capture d&#39;écran représentant de &quot;No Contamination détectée&quot;. <img alt="Figure 4" src="/files/ftp_upload/53555/53555fig4.jpg" /> Figure 4: ECIS lecteur Capture d&#39; écran d&#39;un &quot;contaminé&quot; échantillon d&#39;eau Un exemple de graphiques normalisés d&#39;impédance et les résultats d&#39;un échantillon d&#39;eau qui a été contaminée.. les lignes bleues représentent les impédances normalisées de chacune des électrodes de commande; lignes rouges représentent les impédances normalisées de chacune des électrodes d&#39;échantillons de test. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53555/53555fig4large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <img alt="Figure 5" src="/files/ftp_upload/53555/53555fig5.jpg" /> Figure 5: ECIS lecteur Capture d&#39; écran d&#39;un échantillon d&#39;eau &quot;Aucune contamination détectée&quot; Un exemple de graphiques normalisés d&#39;impédance et les résultats d&#39;un échantillon d&#39;eau qui n&#39;a pas été contaminée.. les lignes bleues représentent les impédances normalisées de chacune des électrodes de commande; lignes rouges représentent les impédances normalisées de chacune des électrodes d&#39;échantillons de test. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/53555/53555fig5large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> Catégorie </td><td> contaminant </td><td colspan="3"> Concentration Testé (mg / L) 1 </td><td colspan="2"> Détecté ≤1 heure n = 4/4 jetons </td></tr><tr><td rowspan="8"> pesticides </td><td> aldicarbe </td><td colspan="3"> 0,17 </td><td colspan="2"> non </td></tr><tr><td> Arsen<html> ic (arsénite de sodium) </td><td colspan="3"> 4.5 </td><td colspan="2"> Oui </td></tr><tr><td> Azide (azoture de sodium) </td><td colspan="3"> 46,7 </td><td colspan="2"> Oui </td></tr><tr><td> fénamiphos </td><td colspan="3"> 0,56 </td><td colspan="2"> non </td></tr><tr><td> méthamidophos </td><td colspan="3"> 1.4 </td><td colspan="2"> non </td></tr><tr><td> parathion de méthyle </td><td colspan="3"> 33,6 </td><td colspan="2"> Oui </td></tr><tr><td> Paraquat (dichlorure) </td><td colspan="3"> 4.6 </td><td colspan="2"> non </td></tr><tr><td> Pentachlorophénate (sodium) </td><td colspan="3"> 71,9 </td><td colspan="2"> Oui </td></tr><tr><td rowspan="5"> Produits chimiques industriels </td><td> Ammoniac </td><td colspan="3"> 924 </td><td colspan="2"> Oui </td></tr><tr><td> Cuivre (cuivre II, le sulfate) </td><td colspan="3"> 103 </td><td colspan="2"> Oui </td></tr><tr><td> Cyanhydrique (sodium) </td>3 &quot;&gt; 14 </td><td colspan="2"> Oui </td></tr><tr><td> Le mercure (chlorure) </td><td colspan="3"> 24.7 </td><td colspan="2"> Oui </td></tr><tr><td> Toluène </td><td colspan="3"> 444 </td><td colspan="2"> Oui </td></tr><tr><td> Clean Water 2 </td><td> aucun </td><td colspan="3"> N / A </td><td colspan="2"> non </td></tr><tr><td colspan="7"> 1 Les concentrations testées sont les mêmes que dans le manuscrit par Widder et al. (2014). </td></tr><tr><td colspan="7"> 2 40 échantillons d&#39;eau potable ont été effectuées sans contamination. </td></tr></tbody></table> Tableau 1: les contaminants dans les échantillons d&#39; eau détectées par ECIS.

Ce manuscrit décrit comment préparer des biopuces fluidiques avec des cellules épithéliales branchiales de truite arc-en-ciel pour une utilisation dans un capteur d’impédance de substrat de cellule électrique portable sur le terrain. Le protocole d’exécution d’un test rapide de toxicité de l’eau potable avec le capteur est également décrit.

Préparation et essai d&#39;impédance basée sur biopuces fluidiques avec des cellules RTgill-W1 pour l&#39;évaluation rapide des échantillons d&#39;eau potable pour la toxicité

This manuscript describes how to prepare fluidic biochips with Rainbow trout gill epithelial (RTgill-W1) cells for use in a field portable water toxicity ...

L'objectif général de cette procédure est de démontrer comment utiliser un biocapteur pour évaluer la toxicité d'échantillons d'eau potable. Cela est réalisé en créant des bio-puces contenant une monocouche de cellules de branchies de truite arc-en-ciel, puis en les utilisant comme partie intégrante d'un biocapteur basé sur l'impédance. Cette procédure permet de détecter rapidement la toxicité chimique dans les approvisionnements en eau potable à des niveaux pertinents pour la santé humaine.Les principaux avantages de cette technique sont que les biopuces peuvent être utilisées en conditions de terrain, qu'elles peuvent être conservées au froid jusqu'à neuf mois sans aucun soin ni entretien des cellules, et qu'elles sont prêtes à l'emploi et peuvent être utilisées à tout moment après leur retrait du réfrigérateur. Cette procédure sera démontrée par Jordan McNairn, un étudiant de premier cycle de notre laboratoire. La veille du semis cellulaire, retirez les biopuces de leur emballage et placez-les dans des boîtes en plastique stérilisées destinées à l'instrumentation.Fixez un des ensembles de tubulure à la seringue et aspirez une solution d'eau de javel à 20 % dans une seringue de 20 millilitres. Injectez deux millilitres de la solution dans chaque canal du biochip. Une fois terminé, laissez les biochips reposer pendant une heure avec la solution d'eau de javel.Après une heure, utilisez une seringue stérile d'un millilitre équipée d'un raccord luer mâle fixé à une ligne de vide pour aspirer la solution d'eau de Javel des deux canaux. Après avoir aspiré l'eau de Javel du biopuce, fixez une tubulure stérile équipée de raccords luer mâles à chaque extrémité sur la biopuce afin de l'utiliser comme canal d'évacuation pendant le rinçage des biopuces. Ensuite, aspirez de l'eau stérile dans une seringue de 20 millilitres et rincez chaque canal de la puce avec cinq millilitres d'eau.Aspirez le liquide à l’aide d’un aspirateur à vide, comme précédemment. Replacez les biopuces dans leurs boîtiers en plastique. Laissez les biopuces dans la hotte de sécurité biologique jusqu’au lendemain.Une heure avant de semer les bio-puces, injecter deux millilitres d'une solution de fibronectine à 10 microgrammes par millilitre dans chaque canal de la bio-puce. Incuber les bio-puces dans la hotte de sécurité biologique pendant 60 minutes, puis aspirer sous vide la solution de fibronectine. Enfin, placer deux ensembles stériles de tubulures pour bio-puces sur les orifices des bio-puces, et mettre les bio-puces de côté jusqu'à ce que les cellules soient prêtes à être semées.Retirer un flacon T-175 confluent contenant des cellules épithéliales branchiales de truite arc-en-ciel de l’incubateur, puis le placer dans la hotte de sécurité biologique. Un flacon T-175 confluent permettra d’ensemencer environ 16 bio-puces. Aspirer le milieu des cellules.Rincez-les avec du PBS, puis aspirez le PBS. Ensuite, ajoutez six millilitres de solution de trypsine-EDTA sur la couche cellulaire. Incubez le flacon à température ambiante pendant environ cinq minutes.Ensuite, ajoutez 15 millilitres de milieu de culture cellulaire L-15 complet dans chaque flacon afin d'inactiver la trypsine. Prélevez un petit aliquot de la suspension cellulaire et utilisez un hématimètre pour mesurer la concentration des cellules. Observez les cellules à l'aide d'un microscope en champ clair équipé d'un objectif 10x.Ensuite, calculez la concentration actuelle des cellules et ajustez la suspension cellulaire à une concentration d'un quart de million de cellules par millilitre. Puis, utilisez une seringue stérile de 20 millilitres pour injecter 2,5 millilitres de la suspension cellulaire dans le port extérieur de chaque canal de la puce bioanalytique. Laissez l'excès de suspension cellulaire s'écouler hors du tube dans un récipient de déchets.Ensuite, créez une boucle fermée pour chaque canal du biochip en insérant l'extrémité libre du tuyau munie d'un raccord luer dans le port extérieur de chaque canal. Humidifiez ensuite une serviette en papier avec de l'éthanol à 70 % et utilisez-la pour essuyer tout excès de milieu sur les boucles fermées. Puis, replacez les biochips dans une boîte en plastique.Les jours quatre et sept, retirez les biopuces de l'incubateur et remplacez le milieu dans les biopuces par du milieu de culture cellulaire L-15 complet équilibré en température. Après le changement de milieu du jour sept, retirez et jetez les tuyaux des puces, puis insérez les bouchons de vidange stérilisés à l'autoclave dans les biopuces.Placer les biopuces dans une boîte à l'intérieur d'un incubateur à six degrés Celsius jusqu'à ce qu'elles soient utilisées pour les tests. Retirer le lecteur de test ECIS et les fournitures de leur mallette de transport, puis allumer le lecteur. Sortir également une des biopuces préparées de l'incubateur à six degrés Celsius et la placer sur une serviette en papier.À l’aide d’une seringue de 10 millilitres, distribuez 10 millilitres d’eau témoin dans un flacon en plastique transparent de 0,5 once étiqueté. Veillez à éliminer les bulles pour une mesure précise. Ensuite, utilisez une seringue distincte et versez 10 millilitres de l’échantillon d’essai dans un flacon en plastique transparent de 0,5 once destiné au test.Ensuite, retirez deux flacons de milieu en poudre. Ouvrez l'un des flacons de milieu en poudre et versez l'ensemble de son contenu dans le flacon contenant l'eau témoin, en y introduisant également le flacon vide. Répétez cette procédure avec le flacon d'essai.Ensuite, fermez les bocaux et agitez-les pour vous assurer que la poudre est complètement dissoute. Remplissez la seringue bleue de 10 millilitres avec neuf millilitres de la solution témoin. Et la seringue rouge de 10 millilitres avec neuf millilitres de la solution d'essai provenant de leurs flacons respectifs.Retirez toutes les bulles d'air éventuelles des seringues. Ensuite, retirez les bouchons des ports de la puce biologique et fixez le drain. Placez la puce biologique dans le plateau en plastique amovible du lecteur ECIS, fermez le couvercle, puis fixez les seringues remplies aux ports extérieurs de la puce biologique.Enfin, fixez les pistons des seringues. À partir de l'écran principal du lecteur, sélectionnez Suivant pour lancer le test préliminaire. Le logiciel vérifiera ensuite les impédances initiales.Si les impédances sont dans la plage prévue, l'écran affichera « Cartouche approuvée » et invitera l'utilisateur à sélectionner Suivant. Saisissez ensuite les informations concernant l'échantillon à l'aide d'un clavier virtuel, puis sélectionnez Accepter une fois terminé. À ce stade, deux minutes de données d'impédance seront recueillies à partir du biochip inséré, et un minuteur à l'écran indiquera le temps restant.Après deux minutes, appuyez sur Suivant. Lorsqu'une boîte verte clignotante vous invite à « Injecter les échantillons maintenant », injectez simultanément les milieux témoin et de test provenant des seringues attachées dans les canaux de la puce biochimique. Laissez les seringues en place sur les puces biochimiques une fois l'opération terminée.Si le logiciel du lecteur ECIS détermine que le canal de traitement est statistiquement différent du canal témoin à un moment quelconque du test, l'affichage à l'écran indiquera que l'échantillon est contaminé. Sinon, il indiquera qu'aucune contamination n'a été détectée à la fin de la période de surveillance. Enregistrez les résultats du test comme « Contaminé » ou « Non contaminé » pour chaque échantillon.À la fin de l'essai, retirer et jeter la puce à ADN. Rincer et faire sécher à l'air les seringues, les tubes d'essai et le plateau en plastique amovible qui contenait la puce à ADN pendant les essais. Treize produits chimiques, présentés ici, ont été sélectionnés pour les essais en tant que représentants d'un large spectre de composés industriels toxiques pouvant contaminer l'eau potable.Pendant les tests, neuf des treize échantillons ont été détectés par la méthode de détection d'impédance électrique sur support cellulaire en moins d'une heure, à des concentrations pertinentes pour la santé humaine. Les résultats typiques observés après un test de détection d'impédance électrique sur support cellulaire sont présentés ici. Les échantillons contaminés présentent des niveaux d'impédance significativement plus faibles par rapport aux échantillons de contrôle d'eau propre.Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez bien comprendre comment préparer une puce à ADN avec une monocouche de cellules épithéliales de branchies de truite arc-en-ciel et comment utiliser ensuite cette puce dans un test d'otoxicité basé sur l'impédance pour évaluer la toxicité de l'eau potable. Lors de la réalisation de cette procédure, il est important de se rappeler de travailler de manière aseptique lors de la préparation des puces, ainsi que de garder les puces réfrigérées jusqu'à leur utilisation. Chaque puce ne peut être utilisée qu'une seule fois, puis doit être jetée.Une fois maîtrisée, la préparation de la puce biochimique peut être effectuée en environ 10 minutes. Il s'agit d'une estimation, car les puces sont préparées par lots. Le test d'impédance de l'échantillon, y compris la préparation de l'échantillon, prend environ une heure et 10 minutes s'il est réalisé correctement.Après avoir suivi cette procédure, d'autres méthodes telles que la chimie analytique peuvent être appliquées à un échantillon ayant produit un résultat contaminé, afin d'identifier la ou les substances chimiques suspectées. Le développement de cette technique ouvre la voie aux chercheurs intéressés par la détection de la toxicité de l'eau, leur permettant d'utiliser une technologie basée sur des cellules épithéliales branchiales de truite arc-en-ciel et la détection par impédance. Nous espérons que vous trouverez ces techniques utiles et attendons avec intérêt les futures innovations que ces nouvelles capacités pourront aider à faciliter.Merci et passez une excellente journée.

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Préparation et essai dimpédance basée sur biopuces fluidiques avec des cellules RTgill-W1 pour lévaluation rapide des échantillons deau potable pour la toxicité (Vidéo) | JoVE Journal

Préparation et essai d'impédance basée sur biopuces fluidiques avec des cellules RTgill-W1 pour l'évaluation rapide des échantillons d'eau potable pour la toxicité

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