Name: Un modèle de culture de coupe organotypique du glioblastome humain pour létude de la migration des cellules tumorales et des effets spécifiques des patients contre les médicaments anti-invasifs (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-07-20T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 35 s
Description: Découvrez une méthode de culture de tranches organotypiques de glioblastome humain pour analyser les comportements migratoires invasifs des cellules tumorales primaires. Cette technique préserve l'architecture tissulaire in vivo.

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Nous tenons à remercier le Dr Lee Niswander et le Dr Rada Massarwa pour leur expertise technique et leurs contributions au protocole d&#39;imagerie confocale de la culture en coupe décrite ici. Merci encore au docteur Kalen Dionne qui a fourni une expertise en matière d&#39;optimisation des paramètres de coupe et de culture des tissus tumoraux du cerveau.

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<li>Verhaak, R. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Integrated+genomic+analysis+identifies+clinically+relevant+subtypes+of+glioblastoma+characterized+by+abnormalities%5BTitle%5D)+AND+%22in+PDGFRA%2C+IDH1%2C+EGFR%2C+and+NF1.+Cancer+cell%22%5BJournal%5D)">Integrated genomic analysis identifies clinically relevant subtypes of glioblastoma characterized by abnormalities.</a> in PDGFRA, IDH1, EGFR, and NF1. Cancer cell. 17, 98-110 (2010).</li>
<li>Gill, B. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((MRI-localized+biopsies+reveal+subtype-specific+differences+in+molecular+and+cellular+composition+at+the+margins+of+glioblastoma%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">MRI-localized biopsies reveal subtype-specific differences in molecular and cellular composition at the margins of glioblastoma.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 111, 12550-12555 (2014).</li>
<li>Snuderl, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mosaic+amplification+of+multiple+receptor+tyrosine+kinase+genes+in+glioblastoma%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+cell%22%5BJournal%5D)">Mosaic amplification of multiple receptor tyrosine kinase genes in glioblastoma.</a> Cancer cell. 20, 810-817 (2011).</li>
<li>Kakita, A., Goldman, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patterns+and+dynamics+of+SVZ+cell+migration+in+the+postnatal+forebrain%3A+monitoring+living+progenitors+in+slice+preparations%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Patterns and dynamics of SVZ cell migration in the postnatal forebrain: monitoring living progenitors in slice preparations.</a> Neuron. 23, 461-472 (1999).</li>
<li>Meijering, E., Dzyubachyk, O., Smal, I., van Cappellen, W. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tracking+in+cell+and+developmental+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Sem+Cell+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Tracking in cell and developmental biology.</a> Sem Cell Dev Biol. 20, 894-902 (2009).</li>
<li>Parker, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gefitinib+selectively+inhibits+tumor+cell+migration+in+EGFR-amplified+human+glioblastoma%5BTitle%5D)+AND+%22Neurooncol%22%5BJournal%5D)">Gefitinib selectively inhibits tumor cell migration in EGFR-amplified human glioblastoma.</a> Neurooncol. 15, 1048-1057 (2013).</li>
<li>Brat, D. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pseudopalisades+in+glioblastoma+are+hypoxic%2C+express+extracellular+matrix+proteases%2C+and+are+formed+by+an+actively+migrating+cell+population%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Pseudopalisades in glioblastoma are hypoxic, express extracellular matrix proteases, and are formed by an actively migrating cell population.</a> Cancer Res. 64, 920-927 (2004).</li>
<li>Shweiki, D., Itin, A., Soffer, D., Keshet, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vascular+endothelial+growth+factor+induced+by+hypoxia+may+mediate+hypoxia-initiated+angiogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Vascular endothelial growth factor induced by hypoxia may mediate hypoxia-initiated angiogenesis.</a> Nature. 359, 843-845 (1992).</li>
<li>Shamir, E. R., Ewald, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Three-dimensional+organotypic+culture%3A+experimental+models+of+mammalian+biology+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Rev+Mol+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Three-dimensional organotypic culture: experimental models of mammalian biology and disease.</a> Nat Rev Mol Cell Biol. 15, 647-664 (2014).</li>
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<li>Di Cristofori, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+vacuolar+H%2B+ATPase+is+a+novel+therapeutic+target+for+glioblastoma%5BTitle%5D)+AND+%22Oncotarget%22%5BJournal%5D)">The vacuolar H+ ATPase is a novel therapeutic target for glioblastoma.</a> Oncotarget. 6, 17514-17513 (2015).</li>
<li>Vaira, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preclinical+model+of+organotypic+culture+for+pharmacodynamic+profiling+of+human+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+USA%22%5BJournal%5D)">Preclinical model of organotypic culture for pharmacodynamic profiling of human tumors.</a> Proc Natl Acad Sci USA. , 8352-8356 (2010).</li>
<li>Gerlach, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Slice+cultures+from+head+and+neck+squamous+cell+carcinoma%3A+a+novel+test+system+for+drug+susceptibility+and+mechanisms+of+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22Br+J+Cancer%22%5BJournal%5D)">Slice cultures from head and neck squamous cell carcinoma: a novel test system for drug susceptibility and mechanisms of resistance.</a> Br J Cancer. 110, 479-488 (2014).</li>
<li>Holliday, D. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+practicalities+of+using+tissue+slices+as+preclinical+organotypic+breast+cancer+models%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Pathol%22%5BJournal%5D)">The practicalities of using tissue slices as preclinical organotypic breast cancer models.</a> J Clin Pathol. 66, 253-255 (2013).</li>
<li>Maund, S. L., Nolley, R., Peehl, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimization+and+comprehensive+characterization+of+a+faithful+tissue+culture+model+of+the+benign+and+malignant+human+prostate%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Invest%22%5BJournal%5D)">Optimization and comprehensive characterization of a faithful tissue culture model of the benign and malignant human prostate.</a> Lab Invest. 94, 208-221 (2014).</li>
</ol>

Les auteurs n&#39;ont rien à dévoiler.

Les cultures de tranche organotypiques issues de tissus cancéreux humains constituent une plate-forme attrayante et sous-utilisée pour une expérimentation de traduction préclinique. La compréhension des comportements au niveau de la population des cellules tumorales en ce qui concerne la migration, la prolifération et la mort cellulaire dans le microenvironnement tumoral natif est insuffisante. De manière critique, l&#39;étude de la réponse tumorale au traitement d&#39;une manière dynamique, résolue dans le temps au niv...

L&#39;étude en laboratoire du glioblastome (GBM) est entravée par un manque de modèles qui récapitulent fidèlement les caractéristiques pathologiques requises de la maladie humaine, à savoir la migration des cellules tumorales et l&#39;invasion. Les études comparatives des essais d&#39;invasion in vitro 2D et 3D ainsi que des modèles de culture en tranche de rongeurs 3D ont révélé des programmes de migration cellulaire variés mécaniquement dans ces deux contextes, limitant potentiellement la traduction des résultats des systèmes 2D à la maladie humaine 1 , 2 , 3 . La culture de la tranche tumorale organotypique et le paradigme d&#39;imagerie décrit ici permettent l&#39;étude de la migration des cellules tumorales dans des tranches de tissu tumoral humain ex vivo obtenu à partir d&#39;une résection chirurgicale. Ainsi, les cultures en tranche de tissu tumoral réséqué chirurgicalment en conjonction avec une microscopie confocale temporelle fournissent une plate-forme pour étudier la migration de cellules tumorales chez le natifMicroenvironnement sans dissolution tissulaire ou passage à la culture. Il existe une littérature approfondie employant des modèles de culture de tranche de cerveau de rongeurs de GBM générés à partir de xénogreffes de tumeur humaine, de tumeurs induites par des retrovirus et de superpositions cellulaires pour étudier l&#39;invasion tumorale 1 , 2 , 3 , 4 , 5 . Récemment, plusieurs groupes ont décrit la génération de cultures de tranches organotypiques directement à partir de tissu GBM humain 6 , 7 , 8 , 9 , 10 . Cependant, il existe une variation marquée entre les protocoles publiés en ce qui concerne la technique de découpe et les médias de culture. En outre, l&#39;utilisation de cultures de tranches organotypiques s&#39;est concentrée sur des paramètres expérimentaux statiques qui ont inclus des changements dans les signaux cellulairesNg, la prolifération et la mort. Le protocole décrit ici se développe sur des paradigmes antérieurs de culture en tranche en incorporant une observation résolue dans le temps des comportements dynamiques de cellules tumorales par microscopie confocale à balayage laser. La découverte récente de la variation génétique intra 11 et intratumorale 12 , 13 dans le GBM humain souligne l&#39;importance de lier cette hétérogénéité aux comportements des cellules tumorales et ses implications sur la réponse tumorale au traitement. Ici, nous rapportons un protocole simplifié et reproductible pour l&#39;utilisation de cultures en coupe directe à partir d&#39;un tissu cancéreux humain pour visualiser la migration des cellules tumorales en temps quasi réel.

<table><tbody><tr><td>DMEM Glycémie élevée&nbsp ;</td><td>Invitrogen (Gibco)</td><td>11960-044</td><td></td></tr><tr><td>Neurobasal-A Medium, moins le rouge de phénol</td><td>Invitrogen (Gibco)</td><td>12349-015</td><td></td></tr><tr><td>Supplément B-27 (50x), sans sérum</td><td>Invitrogen (Gibco)</td><td>17504-044</td><td></td></tr><tr><td>Pénicilline-Streptomycine (10 000 U/mL)</td><td>Invitrogen (Gibco)</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>Supplément GlutaMAX</td><td>Invitrogen (Gibco)</td><td>35050-061</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamine (200 mM)</td><td>Invitrogen (Gibco)</td><td>25030-081</td><td></td></tr><tr><td>HEPES (1 M)</td><td>Invitrogen (Gibco)</td><td>15630-080</td><td></td></tr><tr><td>Suspension de nystatine</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>N1638-20ML</td><td>10 000 unités/mL en DPBS, traité de manière aseptique, BioReagent, adapté à la culture cellulaire</td></tr><tr><td>UltraPure Low Point Melting Agarose</td><td>Invitrogen (Gibco)</td><td>16520-050</td><td>Fond à 65,5 &#176 ; C, Reste fluide à 37 &#176 ; C, et se fixe rapidement en dessous de 25 &#176 ;C.</td></tr><tr><td>Isolectine GS-IB4 de Griffonia simplicifolia, Alexa Fluor 647 Conjugué</td><td>Thermo Fisher (Sondes moléculaires)</td><td>I32450</td><td>Utilisé dans les milieux pour marquer les microglies/macrophages</td></tr><tr><td>pRetroX-IRES-ZsGreen1 Vector</td><td>Clonetech</td><td>632520</td><td></td></tr><tr><td>Concentrateur Retro-X&nbsp ;</td><td>Clonetech</td><td>31455</td><td>Résine de liaison pour la concentration non ultracentrifuge de surnageants viraux</td></tr><tr><td>vecteur pVSG-G</td><td>Clonetech</td><td>631530</td><td>faisant partie du système d’expression rétrovirale universel Retro-X</td></tr><tr><td>GP2-293 Cellules d’emballage viral</td><td>Clonetech</td><td>631530</td><td>faisant partie du système universel d’expression rétrovirale Retro-X</td></tr><tr><td>Colle cyanoacrylate (Super Glue)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z105899</td><td>Moule d’enrobage à viscosité moyenne</td></tr><tr><td><fort>équipement</fort></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Peel-A-Way (carré - S22)</td><td>Polysciences, Inc.</td><td>18646A-1</td><td>Moules pour l’enrobage d’échantillons tumoraux</td></tr><tr><td>Micro-spatules en acier inoxydable</td><td>Fisher Scientific</td><td>S50823</td><td>Pliez l’instrument à 45 degrés au niveau du col de la lame de la cuillère</td></tr><tr><td>Pince de dissection à pointe fine incurvée</td><td>Fisherbrand Fisher Scientific&nbsp ;</td><td>08-875</td><td></td></tr><tr><td>Lame de rasoir à un seul tranchant (rasoirs de sécurité américains)</td><td>Fisher Scientific</td><td>17-989-001</td><td>Le bord de la lame a une épaisseur de 0,009 po. Le couvercle à bord émoussé serti est retiré avant le chargement sur le vibratome.</td></tr><tr><td>Vibratome Leica VT1000 S Insert</td> de culture cellulaire en PTFE hydrophile <td>Leica Biosystems</td><td>VT1000 S</td><td></td></tr><tr><td>&nbsp ;</td><td>EMD Millipore</td><td>PICM0RG50</td><td>30 mm, PTFE hydrophile, 0,4 & micro ; m pore size</td></tr><tr><td>35 mm Plats à fond en verre&nbsp ;</td><td>MatTek</td><td>P35G-1.5-20-C Manchon</td> en <td>verre de 20 mm de diamètre. Epaisseur du verre 1,5 mm</td></tr><tr><td>LSM 510 Micoscope confocal</td><td>Zeiss</td><td>LSM 510</td><td>10x Objectif à air (c-Apochromat NA 0.45)</td></tr><tr><td>Incubateur de scène</td><td>PECON PeCON Allemagne</td><td>(Discontinué)</td><td>L’incubateur PM 2000 RBT est un produit compatible conçu pour être utilisé avec les microscopes Zeiss.</td></tr></tbody></table>

un modèle de culture de coupe organotypique du glioblastome humain pour l&#39;étude de la migration des cellules tumorales et des effets spécifiques des patients contre les médicaments anti-invasifs

A Human Glioblastoma Organotypic Slice Culture Model for Study of Tumor Cell Migration and Patient-specific Effects of Anti-Invasive Drugs

Le glioblastome (GBM) continue de présenter un pronostic clinique extrêmement médiocre malgré une intervention chirurgicale, chimiothérapeutique et radiothérapeutique. L&#39;invasion tumorale progressive dans le parenchyme du cerveau environnant représente un défi thérapeutique durable. Pour développer des thérapies anti-migration pour GBM, les systèmes modèles qui fournissent un fond physiologiquement pertinent pour une expérimentation contrôlée sont essentiels. Ici, nous présentons un protocole pour générer des cultures en coupe à partir de tissu GBM humain obtenu lors d&#39;une résection chirurgicale. Ces cultures permettent une expérimentation ex vivo sans passage à travers des xénogreffes animales ou des cultures cellulaires simples. En outre, nous décrivons l&#39;utilisation de la microscopie confocale à balayage laser à temps partiel en conjonction avec le suivi des cellules pour étudier quantitativement le comportement migratoire des cellules tumorales et la réponse associée à la thérapeutique. Les tranches sont reproduites de manière reproductible dans les 90 minutes suivant l&#39;acquisition de tissus chirurgicaux. Cellule fluorescente à médiation rétroviraleL&#39;imagerie confocale et les analyses de migration des cellules tumorales sont complétées dans les deux semaines suivant la culture. Nous avons réussi à utiliser ces cultures en tranche pour découvrir des facteurs génétiques associés à un comportement migratoire accru dans le GBM humain. En outre, nous avons validé la capacité du modèle à détecter les variations spécifiques du patient en réponse aux traitements anti-migration. En avançant, les cultures de tranche GBM humaine sont une plate-forme attrayante pour une évaluation rapide et ex vivo de la sensibilité tumorale aux agents thérapeutiques, afin de favoriser une thérapie neuro-oncologique personnalisée.

<html> Notre groupe a généré avec succès des cultures en tranches de plus de 50 patients soumis à une résection GBM initiale. Ce protocole de génération, de culture, d&#39;étiquetage rétroviral, d&#39;imagerie et d&#39;analyse de migration a été rationalisé en un flux de travail reproductible ( Figure 1 ). De manière critique, ces tranches de GBM organotypiques démontrent une concordance avec le tissu tumoral originaire à travers la culture, y compris le maintien des sign...

Les modèles existants ex vivo de glioblastome (GBM) ne sont pas optimisés pour une étude physiologiquement pertinente de l&#39;invasion de tumeur humaine. Ici, nous présentons un protocole pour la génération et la maintenance de cultures de tranches organotypiques à partir de tissu GBM humain frais. Une description de la microscopie temporelle et des techniques quantitatives d&#39;analyse de la migration cellulaire est fournie.

Un modèle de culture de coupe organotypique du glioblastome humain pour l&#39;étude de la migration des cellules tumorales et des effets spécifiques des patients contre les médicaments anti-invasifs

Glioblastoma (GBM) continues to carry an extremely poor clinical prognosis despite surgical, chemotherapeutic, and radiation therapy. Progressive tumor ...

L'objectif général de cette procédure est d'observer et d'analyser les comportements invasifs et migratoires des cellules primaires de glioblastome humain. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la neuro-oncologie, telles que quelles sont les propriétés phénotypiques et moléculaires à l'origine des différences spécifiques aux patients en termes de progression de la maladie et de réponse au traitement ? Le principal avantage de cette technique réside dans sa capacité à permettre la manipulation directe de cellules primaires tout en préservant l'architecture tissulaire in vivo et l'hétérogénéité cellulaire du glioblastome.Commencez par utiliser des pinces stériles pour placer des inserts de culture en PTFE vides dans chaque puits d'une plaque à six puits contenant un millilitre de milieu de maintenance de culture de tranches par puits. Une fois tous les inserts ajoutés, placez la plaque dans un incubateur de culture tissulaire à double enceinte humidifié, à 37 degrés Celsius et 5 %CO2. Ensuite, placez les fragments de tissu tumoral dans une boîte de Pétri contenant du milieu de traitement glacé, et utilisez une pipette pour rincer doucement le tis

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Cette vidéo montre le développement d’un système de co-culture 3D. Des tranches de cerveau de souris sont placées sur une membrane et des cellules tumorales cérébrales humaines marquées par fluorescence sont autorisées à se développer dessus. Une fois que le système est prêt, il est coloré pour l’imagerie.

Etablissement d’une tumeur cérébrale dans un modèle de co-culture en coupe organotypique

La vidéo montre la génération et la maintenance de cultures de tranches organotypiques à partir de tissus de glioblastome. Le tissu isolé est noyé dans une matrice d’agarose, et des lames minces sont obtenues à l’aide d’un vibratome. Ces sections sont ensuite placées sur des inserts de membrane perméable à l’intérieur d’une microplaque et cultivées dans un milieu de maintenance de culture en tranches pour une maintenance à long terme.

Génération et maintien de cultures de tranches à partir de tissus de glioblastome humain

Source : Parker, J. J., et al. Un modèle de culture de coupe organotypique de glioblastome humain pour l’étude de la migration des cellules tumorales et des effets spécifiques au patient des médicaments anti-invasifs. J. Vis. Exp. (2017)Cette vidéo présente l’imagerie de coupes de tissu de glioblastome exprimant la protéine fluorescente verte (GFP) par microscopie confocale. Des images haute résolution sont capturées à intervalles réguliers pour suivre le mouvement et la direction des cellules...

Imagerie de la migration des cellules tumorales dans le tissu du glioblastome à l’aide de la microscopie confocale à balayage time-lapse

La co-culture organotypique de tranche de cerveau avec des cellules de carcinome permet la visualisation des changements morphologiques par fluorescence, ainsi que champ lumineux (vidéo) microscopie pendant le processus d'invasion cellulaire de carcinome du tissu cérébral. Ce système permet également de modèle pour change de cellule et de réapprovisionnement des approches et offre une grande variété de manipulations et analyses.

Système de co-culture avec un cerveau organotypique et 3D sphéroïde de cellules de carcinome

De nombreux types de tumeurs cérébrales humaines sont localisés dans des régions spécifiques du cerveau et sont difficiles à développer en culture. Ce protocole aborde le rôle du microenvironnement tumoral et étudie de nouveaux traitements médicamenteux en analysant des cellules tumorales cérébrales primaires fluorescentes se développant dans une tranche de cerveau de souris organotypique.

Une tumeur au cerveau / organotypiques Slice système de co-culture pour l&#39;étude des tumeurs Microenvironnement et ciblée Thérapies de drogue

Hippocampe organotypiques (CSST) représentent un modèle in vitro qui simule la situation in vivo très bien. Nous décrivons ici une base vibratome amélioré tranchage protocole pour obtenir des tranches de haute qualité devant servir à évaluer le potentiel neuroprotecteur de substances nouvelles ou le comportement biologique des cellules tumorales.

Hippocampe organotypiques comme modèle d’étude Neuroprotection et son caractère invasif des cellules tumorales

Ici, nous décrivons un essai d’invasion facile à utiliser pour le glioblastome. Cet essai convient aux cellules souches du glioblastome. Une macro fidjienne pour faciliter la quantification de l’invasion, de la migration et de la prolifération est également décrite.

Un modèle sphéroïde 3D pour le Glioblastome

Nous introduisons un protocole pour mesurer la réponse de drogue en temps réel dans les tranches organotypic de tissu de tumeur. La stratégie expérimentale décrite ici fournit une plate-forme pour effectuer des écrans de drogue à débit moyen-élevé sur des tranches de tissu dérivées des tumeurs cliniques ou de souris dans des conditions ex vivo.

Mesurer la réponse en temps réel des médicaments dans les tranches de tissu tumoral organotypique

Les embryons de poussins sont utilisés pour étudier les tumeurs cérébrales du glioblastome humain (GBM) en co-cultures ovo et ex vivo de tranches cérébrales. Le comportement des cellules GBM peut être enregistré par microscopie time-lapse dans des co-cultures ex vivo , et les deux préparations peuvent être analysées au point final expérimental par une analyse confocale 3D détaillée.

Utilisation du cerveau de l’embryon de poussin comme modèle pour les analyses in vivo et ex vivo du comportement des cellules de glioblastome humain

Ici, nous décrivons un protocole complet pour générer et utiliser des organoïdes de glioblastome modifiés en laboratoire (LEGO) pour étudier les dépendances génotype-phénotype et cribler des médicaments potentiels pour le traitement du glioblastome.

Culture organoïde de glioblastome conçue en laboratoire et criblage de médicaments

Nous présentons un modèle de migration 3D du glioblastome utilisant des gliomasphères magnétiques dérivées du patient générées à partir de tumeurs nouvellement diagnostiquées et récurrentes. Cette plateforme permet de visualiser la dynamique migratoire spécifique au patient et d’évaluer l’efficacité thérapeutique. Le test peut être multiplexé après migration afin d’évaluer la localisation et les schémas d’expression des protéines.

Essai de migration du glioblastome 3D reproductible avec localisation sphéroïde médiée par nanoparticules magnétiques dans des conditions hypoxiques

Découvrez une méthode de culture de tranches organotypiques de glioblastome humain pour analyser les comportements migratoires invasifs des cellules tumorales primaires. Cette technique préserve l'architecture tissulaire in vivo.

Un modèle de culture de coupe organotypique du glioblastome humain pour létude de la migration des cellules tumorales et des effets spécifiques des patients contre les médicaments anti-invasifs (Vidéo) | JoVE Journal

Un modèle de culture de coupe organotypique du glioblastome humain pour l'étude de la migration des cellules tumorales et des effets spécifiques des patients contre les médicaments anti-invasifs

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