Name: Quantitative Fundus autofluorescence pour lévaluation des maladies rétiniennes (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-03-11T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 22 s
Description: Apprenez l'autofluorescence quantitée du fond d'œil pour évaluer la lipofuscine dans l'épithélium pigmentaire rétinien. Cette technique CSLO permet un suivi reproductible des dégénérescences maculaires liées à l'âge.

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Nous tenons à remercier nos collaborateurs, François Delori, Tomas Burke, et Tobias Duncker. Soutien à la recherche: NIH / NEI R01 EY015520 (RTS, JPG), et des fonds non affectés de la recherche pour prévenir la cécité (RTB).

Déclaration éthique: Tous les patients inclus dans ces études ont été réalisées en conformité avec examen institutionnel approuvé conseil de surveillance à New-York University School of Medicine. 1. Sélection des patients et préparation initiale pour l&#39;imagerie Remarque: Les documents suivants sont requis: solution ophtalmique tropicamide 0,5%, solution ophtalmique de phényléphrine 2,5%, cSLO équipé domaine spectral tomographie optique de cohérence (SD-OCT), et la référence de fluorescence interne. <ol><li> Avant imagerie, mis en place de manière appropriée cSLO pour l&#39;acquisition de données selon les instructions du fabricant. </li><li> Monter une référence fluorescente interne dans le cSLO. Remarque: La référence fluorescente interne, acheté auprès du fabricant, est logé dans un anneau métallique et est placé directement derrière la lentille de la caméra. Si un cSLO d&#39;un autre fabricant est utilisé, il peut y avoir une configuration différente de celle qui est décrite dansce protocole. <ol><li> Afin d&#39;insérer la référence dans le cSLO, tourner la lentille pour la retirer, dévisser la bague métallique de la machine, et le remplacer par la nouvelle bague métallique contenant la référence. Remarque: la référence fluorescente interne est essentielle à la technique QAF, car elle permet la correction de la variation de la puissance du laser et le détecteur de sensibilité / de gain. </li></ol></li><li> Demandez aux patients recrutés pour l&#39;imagerie subissent un examen de routine des yeux dilatés et d&#39;obtenir des informations de base concernant l&#39;histoire oculaire passé et des conditions médicales sous-jacentes qui peuvent se manifester avec des résultats oculaires. </li><li> Dilater élèves avec 0,5% et 2,5% tropicamide phényléphrine. ÉTAPE CRITIQUE: Dilater élèves à au moins 6 mm. Note: Ceci est essentiel pour le passage ininterrompu de la lumière, et donc pour une visualisation optimale et la mesure du fundus. </li><li> Avant imagerie, positionner le patient correctement sur le cSLO, avec le menton appuyé sur la mentonnière, le front placé contre le forehead repos, et canthi latéral correctement alignés avec les indicateurs. </li></ol> 2. Baseline Imaging des Fundus Ocular <ol><li> Tout d&#39;abord, l&#39;image du fond avec réflexion infrarouge (IR) proche (longueur d&#39;onde de 820 nm) afin de centraliser la caméra sur la macula et d&#39;obtenir l&#39;accent rugueux. <ol><li> Avec le patient correctement positionné, changer le réglage du matériel sur le panneau de commande en mode d&#39;imagerie infrarouge, caméra de position manuellement jusqu&#39;à ce que le fond est en pleine mise au point, et prendre une image </li><li> Réglez le paramètre sur le panneau de commande pour &quot;IR-OCT&quot;, qui utilise de domaine spectral tomographie optique de cohérence (SD-OCT), en liaison avec l&#39;imagerie infrarouge pour évaluer la macula de la maladie sous-jacente. </li><li> Utilisez les guides présents dans la fenêtre d&#39;imagerie pour orienter correctement les PTOM à l&#39;image IR du fundus. Pour obtenir un fonctionnement optimal SD-OCT qualité, positionner la caméra de telle sorte que l&#39;image OPO est dans le premier tiers de sa fenêtre d&#39;imagerie. Acquérir au moins un sc de ligne horizontaleun par la fovéa et couvrant le champ d&#39;imagerie. </li></ol></li></ol> 3. Mise en place QAF Imaging <ol><li> Utilisez l&#39;acquisition d&#39;images &quot;haute vitesse&quot;. Remarque: Ce paramètre permet l&#39;acquisition d&#39;images plus rapide, ce qui diminue le risque de perte de signal due à un mouvement du patient et de blocage résultant de la lumière par l&#39;iris ou des paupières. </li><li> Utilisez &quot;moyenne de 9&quot; frames. Remarque: Ce paramètre permet de, la capture séquentielle rapide de 9 trames d&#39;image, qui peuvent être par la suite &quot;en moyenne&quot; pour réduire le bruit et l&#39;artefact (voir ci-dessous). </li><li> Utilisez champ &quot;30 x 30 degrés&quot;. Note: Ceci se rapporte aux degrés de la zone rétinienne capturé lors de l&#39;acquisition d&#39;image. </li><li> Avant imagerie, prévenir le patient au sujet de la lumière bleue, comme cela peut être inquiétant au premier abord. </li><li> Activez le mode AF et aligner l&#39;axe de la caméra de telle sorte que l&#39;écran est au maximum &quot;rempli&quot; avec fundus AF (brunissement minimal des côtés et des coins de l&#39;image). <ol><li> Si les patients hdifficulté ave tolérer la lumière bleue brillante, commencer l&#39;imagerie avec l&#39;appareil photo plus loin de l&#39;œil, puis amener la caméra lentement vers le patient jusqu&#39;à ce que le fond est en pleine vue. ÉTAPE CRITIQUE: Si la lumière entrant dans ou sortant de l&#39;oeil est obstruée, une diminution de signal entraînera. diminution localisée est visible comme assombrissement asymétrique d&#39;un côté de l&#39;image ou dans un coin. perte Généralisé de signal est observé lorsque les mouvements des yeux seul obstacle passage de la lumière. </li></ol></li><li> Alignez la caméra de telle sorte que le signal AF est à son plus haut niveau dans tout le champ. Objectif pour le signal maximal plutôt que l&#39;image la plus nette, mais ils sont corrélés à peu près. Réglez la mise au point de la caméra en déplaçant le cSLO pour repositionner la caméra manuellement ou avec le joystick ophtalmoscope. </li><li> Réglez la sensibilité / gain de telle sorte que AF rétinienne est facilement visible, mais éviter la saturation. Lors de l&#39;acquisition de l&#39;image, des pixels colorés visibles soit dans la référence interne (situé en haut de laimage) ou le fond indiquent sur-saturation et donc une perte de signal. </li></ol> 4. Image Acquisition Remarque: ÉTAPE CRITIQUE: L&#39;objectif en matière d&#39;acquisition d&#39;image devrait être d&#39;obtenir 2 de haute qualité 9-cadre piles d&#39;images par session pour contrôler la variabilité entre les images dans une session. Après le repositionnement du patient et de la caméra, obtenir une deuxième session de deux images afin d&#39;évaluer et de contrôle de la variabilité. Toutes les images seront en fin de compte être étalonnés à la référence interne (décrite ci-dessous). <ol><li> Acquérir les images seulement après au moins 20 secondes de &quot;blanchiment&quot; (exposition complète de la rétine à la lumière AF) pour minimiser l&#39; absorption de la lumière par la rhodopsine dans la rétine sensorielle 9. <ol><li> Utilisez cette période pour optimiser l&#39;alignement de la caméra, la concentration et la sensibilité. </li></ol></li><li> Avoir les sujets clignotent avant chaque acquisition d&#39;image en tant que film lacrymal frais améliore la qualité du signal. </li><li> Éviter les paupières dans le plan d&#39;acquisition. Remarque: Il peut être utile de manuellement les paupières ouvertes pour les patients les plus difficiles. Les auteurs recommandent que l&#39;assistant effectue cette tâche. </li><li> Optimiser l&#39;alignement avant chaque acquisition d&#39;image pour assurer que la lumière ne soit pas obstrué par l&#39;iris résultant en une diminution de signal. Remarque: Au moins mineur mouvement est très commun, les auteurs recommandent bien réalignement nécessaire avant chaque acquisition d&#39;image. Guider et encourager le patient tout en imagerie permet le mouvement de baisse. Les auteurs recommandent également d&#39;utiliser le pied de la pédale de la machine comme le «bouton d&#39;acquisition&quot; de manière à minimiser l&#39;opérateur distraction. </li><li> Effectuer le traitement post-image en calculant la &quot;moyenne&quot; de la pile 9-cadre pour augmenter le rapport signal-bruit. Calculer la moyenne d&#39;une pile à l&#39;aide du logiciel cSLO en sélectionnant l&#39;option pour calculer la moyenne. Note: Il peut y avoir des piles où certains cadres ne sont pas de qualité optimale (ie, ont localisé ou généralisé diminué signal par rapport aux cadres optimales), donc inspecter soigneusement chaque pile et désélectionner cadres suboptimales avant le calcul de la moyenne. Remarque: les images moyennes avec des rapports signal sur bruit acceptables peuvent être traités à partir d&#39;au moins 3 cadres. Il est normal pour les côtés et les coins de chaque image pour avoir le signal plus faible que les 20 degrés centraux en raison des limitations dans le cSLO lui-même. <ol><li> Si le logiciel demande si l&#39;opérateur souhaite normaliser les niveaux de gris (c. -à étirer l&#39;histogramme) entre 0 et 255, sélectionnez &quot;Non&quot;. Cela permet de maintenir des niveaux de gris inchangés pour l&#39;analyse. </li></ol></li></ol> 5. Analyse de l&#39;image <ol><li> Analyser les images AF comme précédemment décrit en utilisant un logiciel d&#39;analyse d&#39;images mis au point pour la technique QAF (IGOR; 9). Une brève description d&#39;une analyse d&#39;image typique utilisant ce logiciel est inclus ci-dessous. <ol><li> Chargez le programme QAF en IGOR et importer des images (au format .bmp) exportés de lalogiciel cSLO avec un rapport d&#39;aspect de pixel 768 x 768 (paramètre de sortie par défaut). </li><li> Sélectionnez l&#39;image dans le menu déroulant et lancer l&#39;analyse. </li><li> Repositionner indicateurs d&#39;étalonnage sur l&#39;image de telle sorte que les &quot;réticule&quot; recouvrent la fovéa et le &quot;support&quot; bute le disque optique (ces indicateurs sont utilisés à l&#39;échelle et positionner les ROIs). Lorsqu&#39;il est correctement positionné, utilisez un logiciel invites puis remplir l&#39;image avec ROIs circonférentielles autour de la fovéa (voir les figures 1, 2). </li><li> Sélectionnez l&#39;option dans IGOR pour étalonner les niveaux de gris globaux de chaque image aux niveaux présents dans la référence fluorescente interne. Remarque: Cette étape permet le calibrage des facteurs liés à la machine, y compris le niveau zéro électronique de chaque image et le facteur d&#39;étalonnage interne de référence de chaque machine, ainsi que les facteurs liés au patient, y compris l&#39;âge, la réfraction et de la courbure de la cornée. Remarque: Le logiciel d&#39;analyse affiche alors le r fixeégions sur l&#39;image résultante et une valeur Qaf est démontrée au sein de chaque région. Les valeurs QAF sont également entrés automatiquement dans un format de feuille de calcul dans une fenêtre séparée &quot;. </li><li> Générer Qaf &quot;cartes de chaleur&quot; en sélectionnant l&#39;option dans les invites de commande. Toutes les images et les données peuvent être exportées à partir du logiciel IGOR dans une feuille de calcul Excel en sélectionnant les options appropriées. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Strauss, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+retinal+pigment+epithelium+in+visual+function%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+reviews%22%5BJournal%5D)">The retinal pigment epithelium in visual function.</a> Physiological reviews. 85, 845-881 (2005).</li>
<li>Ach, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+autofluorescence+and+cell+density+maps+of+the+human+retinal+pigment+epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+ophthalmology+%26+visual+science%22%5BJournal%5D)">Quantitative autofluorescence and cell density maps of the human retinal pigment epithelium.</a> Investigative ophthalmology & visual science. 55, 4832-4841 (2014).</li>
<li>Ach, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Lipofuscin+redistribution+and+loss+accompanied+by+cytoskeletal+stress+in+retinal+pigment+epithelium+of+eyes+with+age-related+macular+degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+ophthalmology+%26+visual+science%22%5BJournal%5D)">Lipofuscin redistribution and loss accompanied by cytoskeletal stress in retinal pigment epithelium of eyes with age-related macular degeneration.</a> Investigative ophthalmology & visual science. 56, 3242-3252 (2015).</li>
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<li>Duncker, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+fundus+autofluorescence+distinguishes+ABCA4-associated+and+non-ABCA4-associated+bull%27s-eye+maculopathy%5BTitle%5D)+AND+%22Ophthalmology%22%5BJournal%5D)">Quantitative fundus autofluorescence distinguishes ABCA4-associated and non-ABCA4-associated bull's-eye maculopathy.</a> Ophthalmology. 122, 345-355 (2015).</li>
<li>Greenberg, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+fundus+autofluorescence+in+healthy+eyes%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+ophthalmology+%26+visual+science%22%5BJournal%5D)">Quantitative fundus autofluorescence in healthy eyes.</a> Investigative ophthalmology & visual science. 54, 5684-5693 (2013).</li>
<li>Delori, F. C., Goger, D. G., Dorey, C. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Age-related+accumulation+and+spatial+distribution+of+lipofuscin+in+RPE+of+normal+subjects%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+ophthalmology+%26+visual+science%22%5BJournal%5D)">Age-related accumulation and spatial distribution of lipofuscin in RPE of normal subjects.</a> Investigative ophthalmology & visual science. 42, 1855-1866 (2001).</li>
<li>Sparrow, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+fundus+autofluorescence+in+mice%3A+correlation+with+HPLC+quantitation+of+RPE+lipofuscin+and+measurement+of+retina+outer+nuclear+layer+thickness%5BTitle%5D)+AND+%22Investigative+ophthalmology+%26+visual+science%22%5BJournal%5D)">Quantitative fundus autofluorescence in mice: correlation with HPLC quantitation of RPE lipofuscin and measurement of retina outer nuclear layer thickness.</a> Investigative ophthalmology & visual science. 54, 2812-2820 (2013).</li>
<li>Delori, F. C., Webb, R. H., Sliney, D. H. American National Standards Institute. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Maximum+permissible+exposures+for+ocular+safety+%28ANSI+2000%29%2C+with+emphasis+on+ophthalmic+devices%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+Optical+Society+of+America.+A%2C+Optics%2C+image+science%2C+and+vision%22%5BJournal%5D)">Maximum permissible exposures for ocular safety (ANSI 2000), with emphasis on ophthalmic devices.</a> Journal of the Optical Society of America. A, Optics, image science, and vision. 24, 1250-1265 (2007).</li>
</ol>

STA : pas de divulgation, JPG : pas de divulgation, RTS : consultant, Ocata Therapeutics.

distribution lipofuscin RPE anormale, que ce soit augmentée ou diminuée, est un marqueur sensible de la maladie de la rétine et est généralement associée à la perte de la fonction de la rétine sensorielle. Ici, nous décrivons l&#39;application de QAF pour l&#39;évaluation des RPE lipofuscine. L&#39; incorporation d&#39;une référence fluorescente interne pour corriger la puissance du laser et le détecteur de sensibilité variable 9 aux côtés de notre technique d&#39;imagerie standardisée permet une quantificati...

L&#39;épithélium pigmentaire rétinien (EPR) prend en charge la fonction de la rétine sensorielle par de nombreux procédés 1. liée à l&#39;âge de la dégénérescence maculaire (DMLA) est la plus importante cause de cécité incurable dans les pays industrialisés et se caractérise par des changements dans l&#39;EPR, y compris la perte de pigment, la perte de fonction et l&#39;atrophie. Dans la DMLA et au vieillissement normal, l&#39;EPR, accumule organites lysosomes dérivé contenant des fragments fluorescents photoréceptrices phagocytés, appelés granules de lipofuscine. L&#39;accumulation de lipofuscine RPE a été pensé pour indiquer un dysfonctionnement oxydatif 1, mais des études récentes ont montré que la morphologie RPE reste normale dans les yeux âgés avec des niveaux élevés de lipofuscine 2. Marqueurs Toutefois, les tendances anormales de la distribution de lipofuscine, en particulier la perte de lipofuscine, sont documentés pour AMD et AMD progression, à la fois histologiquement et cliniquement 3,4 procès- défectueuxchanter RPE lipofuscin a également été observé chez certaines dégénérescences rétiniennes héréditaires. Les patients souffrant de la maladie de Stargardt (STGD) accumulent lipofuscine dans le RPE à un jeune âge, éventuellement développer une perte de vision similaire à celle observée chez AMD 5. Ces résultats suggèrent que l&#39; accumulation de lipofuscine peut lui - même être toxiques et entraîner un dysfonctionnement RPE 6,7. Cependant, une étude d&#39;imagerie détaillée des sujets avec STGD au fil du temps n&#39;a pas confirmé que l&#39; accumulation de lipofuscine focal a conduit à la perte subséquente de RPE 8. Par conséquent, bien que des anomalies lipofuscine sont des marqueurs de dégénérescences rétiniennes, un rôle pour la toxicité directe des lipofuscin reste à prouver. L&#39;EPR est la couche la plus postérieure de la cellule de la rétine, mais produit la majeure partie de signal fluorescent provenant du fond de l&#39;oeil. La génération et la détection de l&#39;autofluorescence (AF) dérivée de l&#39;EPR peut être effectuée en utilisant une ophtalmoscopie laser à balayage confocal (cSLO), ce qui permet de visualization de la distribution spatiale de la FA scléral. Certains dégénérescences rétiniennes démontrent modèles distinctifs de fundus AF, et les aides d&#39;imagerie AF dans le diagnostic et le suivi de ces conditions. Bien que l&#39;imagerie AF standard est cliniquement importante, AF quantitative (QAF) est devenu un moyen important d&#39;évaluer la santé de l&#39;EPR. Nous et d&#39; autres ont mis au point une approche normalisée qui peut déterminer de façon fiable les niveaux QAF à des endroits spécifiques de la rétine 9. QAF a des applications potentielles dans le diagnostic et le suivi des conditions de la rétine, et peut également avoir une utilité dans le pronostic et le risque de stratification. En outre, les capacités de diagnostic de QAF ont également été décrits pour certains troubles rétiniens 10-12. Ici, nous fournissons étape sage de détails pour réaliser notre technique accompagnée d&#39;une démonstration visuelle de son application dans l&#39;évaluation des yeux sains et malades.

<table><tbody><tr><td>Spectralis HRA + OCT</td><td>Heidelberg Engineering</td><td></td><td></td></tr><tr><td>0,5 % tropicamide solution</td><td></td><td></td> ophtalmique <td>Toute marque peut être utilisée</td></tr><tr><td>2,5 % de phényléphrine solution</td><td></td><td></td> ophtalmique <td>N’importe quelle marque peut être utilisée</td></tr><tr><td>Référence fluorescente interne</td><td>Heidelberg Engineering</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Logiciel IGOR Pro</td><td>WaveMetrics</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

quantitative fundus autofluorescence pour l&#39;évaluation des maladies rétiniennes

Quantitative Fundus Autofluorescence for the Evaluation of Retinal Diseases

L’épithélium pigmentaire rétinien (EPR) est juxtaposé à la rétine sensorielle sus-jacente et soutient la fonction du système visuel. Parmi les tâches effectuées par l’EPR figurent la phagocytose et le traitement des segments photorécepteurs externes à travers les organites dérivés des lysosomes. Ces produits de dégradation, stockés et appelés granules de lipofuscine, sont composés en partie de bisrétinoïdes, qui ont de larges spectres d’absorption et d’émission de fluorescence qui peuvent être détectés cliniquement comme l’autofluorescence du fond d’œil avec ophtalmoscopie laser à balayage confocal (cSLO). L’accumulation de lipofuscine est associée à l’âge, mais se retrouve également dans divers modèles dans les maladies dégénératives acquises et héréditaires de la rétine. Ainsi, l’étude de son modèle d’accumulation et la corrélation de ces modèles avec les changements dans la rétine sensorielle sus-jacente sont essentielles pour comprendre la physiopathologie et la progression de la maladie rétinienne. Ici, nous décrivons une technique employée par notre laboratoire et d’autres qui utilise cSLO afin de quantifier le niveau de lipofuscine RPE dans les yeux sains et malades.

Cette technique a été utilisée pour étudier QAF dans les deux sains 13 et états pathologiques 10-12. Dans les yeux sains (figure 1), AF émise par l&#39;EPR est répartie de façon relativement uniforme dans l&#39;ensemble du fond d&#39; oeil (figure 1A). intensité réduite est perçue dans la région maculaire centrale à cause du blocage de la lumière par le pigment maculaire, et sur les côtés et les coins de l&#39;image due à l&#39;opti...

L’épithélium pigmentaire rétinien (EPR) soutient la rétine sensorielle en recyclant les sous-produits du cycle visuel, qui s’accumulent sous forme de lipofuscine. Ces produits sont autofluorescents et peuvent être imagés qualitativement in vivo. Ici, nous décrivons une méthode d’imagerie quantitative de la lipofuscine EPR à l’aide de l’ophtalmoscopie laser à balayage confocal.

Quantitative Fundus autofluorescence pour l&#39;évaluation des maladies rétiniennes

The retinal pigment epithelium (RPE) is juxtaposed to the overlying sensory retina, and supports the function of the visual system. Among the tasks ...

L'objectif général de la fluorescence autofluorescente quantitative, ou qAF, est d'évaluer le niveau global de lipofuscine dans les cellules de soutien de la rétine, l'épithélium pigmentaire rétinien, ou RPE, tant dans les yeux sains que malades. Cette technique peut aider à répondre à des questions essentielles en biologie cellulaire rétinienne, telles que la manière dont la santé de l'épithélium pigmentaire rétinien interagit avec le développement de la dégénérescence maculaire liée à l'âge, ou DMLA. Le principal avantage de cette technique réside dans sa capacité à déterminer des niveaux absolus de fluorescence autofluorescente de la lipofuscine dans le fond d'œil, permettant ainsi un suivi quantitatif et reproductible entre patients, entre séances d'imagerie chez un même patient, et dans de grandes populations étudiées.Avant l'imagerie, configurez correctement l'ophtalmoscopie laser à balayage confocal, ou CSLO, pour l'acquisition des données conformément aux instructions du fabricant. Pour installer une référence fluorescente interne, achetée auprès du fabricant, tournez l'objectif pour l'enlever, dévissez l'anneau métallique de l'appareil, puis remplacez-le par le nouvel anneau métallique contenant la référence. Il est essentiel que les pupilles soient dilatées d'au moins 6 mm afin de permettre un passage ininterrompu de la lumière.Avec de la tropicamide à 0,5 % et de la phényléphrine à 2,5 %, dilater les pupilles du patient d'au moins 6 mm, ce qui est essentiel pour permettre un passage ininterrompu de la lumière afin de visualiser et de mesurer le fond de l’œil. Positionner correctement le patient sur le CSLO, le menton reposant sur le support pour le menton, le front appuyé contre le repose-front, et les canthi latéraux correctement alignés avec les indicateurs. Pour acquérir des images de base, imager d'abord le fond de l’œil en réflectance infrarouge, ou lumière IR, afin de centrer la caméra au-dessus de la macula et d'obtenir un réglage approximatif du foyer.Une fois le patient correctement positionné, basculez le réglage du matériel sur le panneau de commande en mode d'imagerie IR, positionnez manuellement la caméra jusqu'à ce que le fond d'œil soit parfaitement au point, puis prenez une image. Ajustez le réglage sur le panneau de commande en mode IROCT, qui utilise la tomographie par cohérence optique à domaine spectral, ou SDOCT, en association avec l'imagerie IR, afin d'évaluer la macula pour détecter d'éventuelles maladies sous-jacentes. Utilisez les repères présents dans la fenêtre d'imagerie pour orienter correctement l'OCT par rapport à l'image IR du fond d'œil.Pour obtenir une qualité optimale d'OCT-DS, positionnez la caméra de manière à ce que l'image d'OCT se situe dans le tiers supérieur de sa fenêtre d'imagerie. Réalisez au moins une coupe linéaire horizontale passant par la fovéa et couvrant l'ensemble du champ d'imagerie. Pour configurer l'imagerie qAF, utilisez une acquisition d'image à haute vitesse, ce qui diminue le risque de perte de signal due aux mouvements du patient, ainsi que le blocage de la lumière par l'iris ou les paupières.Utilisez la moyenne de 9 images, qui capture rapidement et séquentiellement neuf images ensuite moyennées afin de réduire le bruit et les artefacts. Choisissez un champ de 30 x 30 degrés, ce qui correspond aux degrés de la zone rétinienne capturée lors de l'acquisition d'images. Après avoir averti le patient de la lumière bleue, activez le mode AF et alignez l'axe de la caméra de manière à remplir au maximum l'écran avec la fluorescence du fond d'œil, en minimisant l'assombrissement des côtés et des coins de l'image.Si les patients ont du mal à tolérer la lumière bleue intense, éloignez la caméra de l’œil pour commencer l’imagerie, puis rapprochez lentement la caméra du patient jusqu’à ce que le fond d’œil soit entièrement visible. Ajustez l’alignement de la caméra manuellement ou à l’aide du joystick de l’ophtalmoscope, en déplaçant le CSLO de manière à repositionner la caméra afin que le signal AF soit maximal sur tout le champ, plutôt que d’obtenir l’image la plus nette possible. Pendant l’acquisition d’image, la présence de pixels colorés dans le référentiel interne ou sur le fond d’œil indique une surcharge, et donc une perte de signal.Exposer complètement la rétine à la lumière AF pendant au moins 20 secondes afin de minimiser l'absorption de la lumière par la rhodopsine dans la rétine sensorielle pendant l'acquisition d'images. Utiliser cette période pour optimiser l'alignement, la mise au point et la sensibilité de la caméra. Demander aux sujets de cligner des yeux avant chaque acquisition d'image, car un film lacrymal frais améliore la qualité du signal.Évitez les paupières dans le plan d'acquisition et prenez l'image. Il est important de générer au moins deux images de haute qualité par séance d'imagerie pour l'analyse des données. Effectuez le traitement post-acquisition à l'aide du logiciel CSLO pour calculer la moyenne des neuf images de la série, afin d'augmenter le rapport signal sur bruit.Réalisez l'analyse d'image conformément au protocole écrit. Comme illustré ici, chez les yeux sains, la fluorescence autofluorescente émise par l'épithélium pigmentaire rétinien est répartie de manière relativement uniforme sur tout le fond d'œil. Une intensité réduite est observée dans la région maculaire centrale en raison du blocage de la lumière par le pigment maculaire, ainsi sur les côtés et aux coins en raison de l'optique de l'œil et de la caméra.Les vaisseaux doivent être sombres et parfaitement nets. Cette figure présente une représentation correspondante sous forme de carte thermique des niveaux de qAF issus de cette figure. Les couleurs plus froides correspondent aux zones de faible intensité de la fluorescence, tandis que les couleurs plus chaudes correspondent aux zones d’intensité plus élevée de la fluorescence.L'intensité maximale est généralement observée dans le deuxième anneau concentrique à huit segments, et les intensités moyennes dans cette zone sont utilisées pour la plupart des analyses de données. On voit ici une analyse représentative de l'œil atteint de DMLA, illustrant une atrophie géographique, une forme avancée de DMLA. Cette forme de DMLA entraîne des zones localisées de perte de l'épithélium pigmentaire rétinien (EPR), témoignées par une autofluorescence nettement réduite ou absente, et provoque une perte progressive de la vision centrale.Lors de la réalisation de cette procédure, il est important de se souvenir de sélectionner soigneusement les patients candidats et d'obtenir de manière reproductible des images de haute qualité afin de maximiser la qualité des données. L'utilisation de cette procédure permet un suivi longitudinal de la santé rétinienne pour déterminer l'évolution des dégénérescences rétiniennes. Après son développement, cette technique a ouvert la voie aux chercheurs dans le domaine de l'ophtalmologie pour suivre et analyser les dégénérescences rétiniennes.Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la manière d'utiliser l'autofluorescence quantitative pour évaluer vos patients présentant des dégénérescences rétiniennes. Merci d'avoir regardé, et bonne chance dans vos expériences.

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