Name: Amélioration du taux de croissance initiale des plantes agricoles à laide de champs magnétiques statiques (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-07-08T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 17 s
Description: Découvrez comment accélérer la croissance initiale des plantes agricoles à l'aide de champs magnétiques statiques. Cette méthode économe en énergie utilise Impatiens balsamina pour des pratiques agricoles durables.

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Cette étude a reçu le soutien de la Fondation nationale de recherche de Corée (NRF) (2011-0012728). Une affiche présentant cette étude a reçu le prix de la meilleure affiche de la Société coréenne des sciences biologiques appliquées (KSABC).

1. Réglages initiaux <ol><li> Espèces de plantes agricoles <ol><li> Utiliser Garden Balsam (Impatiens balsamina), Mizuna (Brassica rapa var. Japonica), Komatsuna (Brassica rapa var. Perviridis), et Mescluns (Lepidium sativum). NOTE: Impatiens balsamina (jardin Balsam ou Rose Balsam) est une espèce indigène à l&#39; Inde; quelques membres sont également situés au Myanmar. Komatsuna (Brassica rapa var. Perviridis ou komatsuna) est une variante de la même espèce que le navet commun. Cress Garden (Lepidium sativum) est un type de plante qui est taxonomiquement liée à cresson et la moutarde. Ils ont des saveurs et des parfums similaires, pour lesquels ils sont utilisés dans le commerce de 5,7. </li></ol></li><li> Cultures végétales <ol><li> Culture Jardin Balsam (Impatiens balsamina), Mizuna (Brassica rapa var. Japonica), Komatsuna (Brassica rapa var. Perviridis), et Mescluns (Lepidium sativum) graines dans un diamètre de 100 mm (100 pi) boîte de Pétri. Assurez-vous que une plaque ne contient qu&#39;un seul type d&#39;espèce. </li><li> Pour des conditions de culture, placer les graines sur une serviette en cellulose. Immergez la serviette et les graines dans de l&#39;eau distillée triple. Mesurer et confirmer que le laboratoire intérieur RT est 18-25 ° C, avec une humidité allant de 65-75% (s&#39;il vous plaît consulter la section 3.1.2). </li><li> Pour nombre de graines, de la culture 10 ± 1 graines de jardin Balsam, 50 ± 10 graines de Mizuna, 330 ± 20 graines de Komatsuna, et 380 ± 20 graines de Mescluns. Utiliser des conditions identiques mesurées comme 18-25 ° C, avec une humidité allant de 65-75% (s&#39;il vous plaît consulter la section 2.1.1). NOTE: Toutes les expériences ont été réalisées sur des conditions intérieures avec l&#39;humidité régulée et plage de température dans le laboratoire. L&#39;humidité et la température était pas statique, mais à condition que les conditions identiques pour aimant traité et le groupe témoin. </li></ol></li></ol> 2. Culture des Quatre plantes agricoles<ol><li> Procédure expérimentale <ol><li> Suivez la section 1.2.3) pour les espèces de conditions de plantes et de la culture dans le contrôle et le groupe appliqué à aimant. </li><li> Appliquer trois aimants de 1.750 ± 350 Gauss (10.000 Gauss = 1 Tesla) au fond des boîtes de 100 pi pour Garden Balsam. Lors de l&#39;application, en sorte que les trois aimants ne sont pas en contact direct avec les semences, et sont séparés par le fond en plastique de la boîte de Pétri. La distance directe entre les semences et les aimants doit être de 2-4 mm. Appliquer des aimants pour 168 heures (7 jours) pour quatre plantes agricoles. </li><li> Après toutes les étapes identiques à 2.1.2), appliquer deux aimants, un (N côté tourné vers le haut) sur le côté de S supérieur et autre aimant (face vers le haut) sur le fond du jardin Balsam plaque de culture. NOTE: Les pôles sont appliqués différemment dans le jardin Balsam. Cependant, l&#39;orientation polaire est pas considéré comme un facteur crucial dans cette étude pour des altérations de la croissance, comme tous les environnements sont identiques, sauf pour la directiondu flux magnétique. Le but de N et S application pole pour Garden Balsam était de voir sa capacité pratique à l&#39;utiliser dans les champs, où l&#39;orientation pôle pourrait être difficile à gérer. </li></ol></li></ol> 3. tubuline Coloration de jardin Balsam <ol><li> Magnet Applications avec Condition Lumière Réglementé <ol><li> Placez deux aimants (N pôles orientés vers le haut) en bas de la plaque de 100 mm pendant 48 heures, à l&#39;aide de conditions à l&#39;étape 1.2.2. NOTE: Pour la modification de la lumière, les boîtes de culture ont été placés sur une étagère en plastique dans l&#39;incubateur. Incubateur a été utilisé pour l&#39;interception de la lumière et de maintien en température à 25 ° C pendant 48 heures dans des environnements sombres. Finalement, cette condition n&#39;a pas été utilisé dans cette expérience en raison de fortes variations de longueur de la croissance. </li></ol></li><li> Coloration des plantes <ol><li> Fixer le impatiens entiers SPP fleur double plante, (y compris les tiges et les racines) cultivées dans des conditions identiques à l&#39;étape 3.1.2) dans 4% de paraformaldehyde et 0,1 Mun tampon phosphate (pH 7,4) pendant 15 min. </li><li> Retirer l&#39;échantillon impatiens et immerge pendant 2 heures dans un tampon de blocage (2% de sérum de cheval / 1% de sérumalbumine bovine / 0,1% de Triton X-100 dans du PBS, pH 7,5). Laver l&#39;échantillon impatiens par immersion avec du PBS pendant 15 min. </li><li> Pour une double immunocoloration, incuber l&#39;échantillon avec un anticorps primaire, anti-alpha tubuline (1: 1000), O / N à 4 ° C. </li><li> Retirer l&#39;échantillon et immerger les échantillons une fois avec du PBS pendant 10 min pour se laver. L&#39;utilisation conjuguée à FITC anti-souris IgG (1: 400) comme anticorps secondaire et on incube pendant 2 heures à 25 ° C. </li><li> Immerger l&#39;échantillon dans du PBS et couvrir glisser l&#39;ensemble de l&#39;échantillon dans le fond de plaque à 24 puits. Obtenir des images en utilisant un microscope à fluorescence conventionnelle pour observer l&#39;orientation de la tubuline (λ = 550 nm, grossie à 100X, 200X et 400X). NOTE: Dans ce cas, le groupe d&#39;aimants traités (n = 10) et les contrôles (n = 11) ont été confirmés pour Garden Balsam (Impatiens balsamina) seulement, cultivé dans des conditions non sombres. </li&gt; </ol></li></ol> Méthodes 4. Collecte de données <ol><li> Time-lapse Création de croissance Quatre plantes agricoles <ol><li> Photographie de l&#39;usine à intervalles de 10 min, en réglant l&#39;obturateur pour auto (cela peut être fait dans un appareil photo numérique). Réglez l&#39;ouverture à F 3.2 et la valeur ISO 400. </li><li> Collecter 700-900 images pendant 7-10 jours. Branchez l&#39;appareil photo avec des fils électriques depuis la batterie peut être déchargée. </li><li> Faites glisser les images en cliquant et en laissant tomber chaque image chronologiquement sous la ligne de streaming avec le logiciel moviemaking (voir matériaux et table d&#39;équipement). Mettez-le sur une ligne de streaming en durées égales de 0,045 à 0,05 s pour chaque en un total de film de 30-40 sec. Vérifiez afin qu&#39;il n&#39;y ait pas de lacunes sombres avec la sélection de la chaque image dans un ordre chronologique. </li><li> Après l&#39;étape 4.1.3, cliquez sur le bouton de lecture dans le logiciel pour assurer le-film compilé dans un time-lapse vidéo slide 30-40 sec et cliquez rendre et enregistrer sur .mpeg ou au format .avi. Pour la taille markers, utilisez Quarter canadien, un Penny américain, et une règle de centimètres sur le côté de la photo. </li><li> Effectuer t -test et boîte à moustaches pour l&#39; analyse statistique 11,12. NOTE: Les groupes de cinq nombre résumés ont été utilisés pour calculer la limite inférieure (L) valeur Q1 - [1,5 × (Q3 - Q1)] et plus de limite (H) valeur Q3 + [1,5 × (Q3 - Q1) ]. Cette approche a été incorporé dans l&#39; étape 1.2.2 pour la collecte de données de longueur 11. Les L et H montrent des valeurs de la zone de 99% des parcelles T de distribution, ce qui signifie que les points de données observées en dehors de cette gamme peuvent être considérés comme des valeurs aberrantes. Parcelles de boîte et de Student t -test ont été utilisées pour analyser les différences dans les hauteurs de semis 12. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Martin, F. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+measurement+of+pollen+tube+growth+inhibition%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">In vitro measurement of pollen tube growth inhibition.</a> Plant Physiol. 49, 924-925 (1972).</li>
<li>Pfahler, P. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+germination+characteristics+of+maize+pollen+to+detect+biological+activity+of+environmental+pollutants%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Health+Perspect%22%5BJournal%5D)">In vitro germination characteristics of maize pollen to detect biological activity of environmental pollutants.</a> Environ Health Perspect. 37, 125-132 (1981).</li>
<li>Yao, Z., Tan, X., Du, H., Luo, B., Liu, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+high-current+microwave+ion+source+with+permanent+magnet+and+its+beam+emittance+measurement%5BTitle%5D)+AND+%22Rev+Sci+Instrum%22%5BJournal%5D)">A high-current microwave ion source with permanent magnet and its beam emittance measurement.</a> Rev Sci Instrum. 79, 073304(2008).</li>
<li>Hendrickson, C. L., Drader, J. J., Laude, D. A., Guan, S., Marshall, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fourier+transform+ion+cyclotron+resonance+mass+spectrometry+in+a+20+T+resistive+magnet%5BTitle%5D)+AND+%22Rapid+Commun+Mass+Spectrom%22%5BJournal%5D)">Fourier transform ion cyclotron resonance mass spectrometry in a 20 T resistive magnet.</a> Rapid Commun Mass Spectrom. 10, 1829-1832 (1996).</li>
<li>Namba, K., Sasao, A., Shibusawa, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EFFECT+OF+MAGNETIC+FIELD+ON+GERMINATION+AND+PLANT+GROWTH%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Hort%22%5BJournal%5D)">EFFECT OF MAGNETIC FIELD ON GERMINATION AND PLANT GROWTH.</a> Acta Hort. 399, 143-148 (1995).</li>
<li>Hirota, N., Nakagawa, J., Kitazawa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+a+magnetic+field+on+the+germination+of+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Journals+of+Applied+Physics%22%5BJournal%5D)">Effects of a magnetic field on the germination of plants.</a> Journals of Applied Physics. 85, 5717-5719 (1999).</li>
<li>Penuelas, J., Llusia, J., Martinez, B., Fontcuberta, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Diamagnetic+Susceptibility+and+Root+Growth+Responses+to+Magnetic+Fields+in+Lens+culinaris%2C+Glycine+soja%2C+and+Triticum+aestivum%5BTitle%5D)+AND+%22Electromagnetic+Biology+and+Medicine%22%5BJournal%5D)">Diamagnetic Susceptibility and Root Growth Responses to Magnetic Fields in Lens culinaris, Glycine soja, and Triticum aestivum.</a> Electromagnetic Biology and Medicine. 23, 97-112 (2004).</li>
<li>Carbonell, M. V., Martinez, E., Amaya, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimulation+of+germination+in+rice+%28Oryza+Sativa+L.%29+by+a+static+magnetic+field%5BTitle%5D)+AND+%22Electro-+and+Magnetobiology%22%5BJournal%5D)">Stimulation of germination in rice (Oryza Sativa L.) by a static magnetic field.</a> Electro- and Magnetobiology. 19, 121-128 (2000).</li>
<li>Oakley, R. V., Wang, Y. S., Ramakrishna, W., Harding, S. A., Tsai, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Differential+expansion+and+expression+of+alpha-+and+beta-tubulin+gene+families+in+Populus%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Differential expansion and expression of alpha- and beta-tubulin gene families in Populus.</a> Plant Physiol. 145, 961-973 (2007).</li>
<li>Hoson, T., Matsumoto, S., Soga, K., Wakabayashi, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cortical+microtubules+are+responsible+for+gravity+resistance+in+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Signal+Behav%22%5BJournal%5D)">Cortical microtubules are responsible for gravity resistance in plants.</a> Plant Signal Behav. 5, 752-754 (2010).</li>
<li>Kim, S., Im, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Static+magnetic+fields+inhibit+proliferation+and+disperse+subcellular+localization+of+gamma+complex+protein3+in+cultured+C2C12+myoblast+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Biochem+Biophys%22%5BJournal%5D)">Static magnetic fields inhibit proliferation and disperse subcellular localization of gamma complex protein3 in cultured C2C12 myoblast cells.</a> Cell Biochem Biophys. 57, 1-8 (2010).</li>
<li>Benjamini, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Opening+the+Box+of+a+Boxplot%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+Statistician%22%5BJournal%5D)">Opening the Box of a Boxplot.</a> The American Statistician. 42, 257-262 (1988).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Dans toutes les conditions, les aimants doivent être appliqués dans la boîte de Pétri. Cette étude a examiné l&#39;influence des champs magnétiques sur le taux de graines de croissance pour plusieurs espèces agricoles, en mettant l&#39;accent sur le jardin Balsam en tant que représentant des plantes agricoles. Par exemple, la tubuline coloration a été réalisée sur Garden Balsam pour évaluer les changements au niveau moléculaire dans la racine et la tige micro-structures squelettiques suggérant l&#39;influence du champ m...

La germination est la croissance d&#39;une plante qui aboutit à la formation de la plantule 1. Sous certaines conditions, la germination des graines commence et les tissus embryonnaires reprendre la croissance. Elle commence par l&#39;hydratation de la semence afin d&#39;activer les enzymes pour la germination. Les graines peuvent être amenées à germer in vitro (dans une boîte de Pétri ou tube à essai) 1,2. Les champs magnétiques statiques sont des forces spéciales qui provoquent des mouvements de molécules avec des charges ioniques par l&#39; intermédiaire de la force de Lorentz 3,4. force de Lorentz est formé quand un ionisées ou chargées objet se déplace sous un champ magnétique. Chaque matériau est formé avec des atomes qui sont constituées d&#39;électrons et de protons. Lorsque les champs magnétiques deviennent présents, que ce soit statique ou alternatif, il affecte le mouvement du matériau chargé. Cela vaut également pour les plantes et les molécules d&#39;eau, ce qui affecte la condition molécule intracellulaire. Dans une précédente étude, bobines électromagnétiques ont été utiliséspour générer des champs magnétiques pulsés, et les plantes &#39;Komatsuna&#39; ont été choisis comme les sujets 5. Dans la présente étude, aimant généré des champs magnétiques statiques ont été utilisés pour donner des effets similaires mais différents comme une étude d&#39;expansion de la force de Lorentz. La fréquence du champ magnétique, plutôt que sa polarité, est un facteur crucial pour la germination des plantes. Des études antérieures ont suggéré que les taux de germination maximales étaient de 20% plus élevé que le contrôle lorsque la fréquence du champ magnétique était d&#39;environ 10 Hz. Lorsque le champ est éliminé d&#39; une manière rétrograde, le taux de croissance a été altérée 5. Les champs magnétiques statiques ont un effet considérable sur le 6-8 de croissance initiale, principalement sur ​​la germination 6 et la croissance des racines 7. Dans la présente étude, nous avons utilisé des aimants statiques pour examiner la possibilité de réguler la croissance des plantes agricoles en utilisant des champs magnétiques. En particulier, nous avons cherché à déterminer si certaines conditions d&#39;application de champ magnétique pourrait augmenter les taux de croissance à des niveaux plus élevés que ceux qui sont mentionnés dans la littérature. En outre, si la germination initiale des plantes peut être augmentée avec succès en utilisant un champ magnétique, l&#39;utilisation d&#39;engrais chimiques peut être évitée.

<table><tbody><tr><td>Aimants statiques</td><td>JIM</td><td></td><td>2000Gauss</td></tr><tr><td>2 % sérum de cheval/1 % albumine sérique bovine/0,1 % Triton X-100</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Fusionné avec 55514</td><td>Tampon bloquant</td></tr><tr><td>Anticorps primaire</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc-8035</td><td>a-Tubulin</td></tr><tr><td>Anticorps secondaire</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>sc-2010</td> Temps <td>d’IgG anti-souris conjugué FITC</td></tr><tr><td> Techniques photographiques</td><td>en lapse Valeur ISO 400</td><td></td><td>contrôlée manuellement & ouverture F 3.2</td></tr><tr><td>Sony Vegas Pro 13.0</td><td>Sony</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

amélioration du taux de croissance initiale des plantes agricoles à l&#39;aide de champs magnétiques statiques

Enhancement of the Initial Growth Rate of Agricultural Plants by Using Static Magnetic Fields

Les appareils électroniques et les fils à haute tension induisent des champs magnétiques. Un champ magnétique de 1,300-2,500 Gauss (0,2 Tesla) a été appliqué à des boîtes de Petri contenant des graines de jardin Balsam (Impatiens balsamina), Mizuna (Brassica rapa var. Japonica), Komatsuna (Brassica rapa var. Perviridis), et Mescluns (Lepidium sativum ). Nous aimants appliqué dans la boîte de culture. Pendant les 4 jours d&#39;application, nous avons observé que la tige et la racine de longueur augmentée. Le groupe soumis à un traitement de champ magnétique (n = 10) a montré une 1,4 fois plus rapide taux de croissance par rapport au groupe témoin (n = 11) dans un total de 8 jours (p &lt;0,0005). Ce taux est de 20% plus élevé que celui rapporté dans les études précédentes. Les lignes complexes tubuline n&#39;ont des points de connexion, mais les points de connexion se produisent lors de l&#39;application d&#39;aimants. Cela montre la différence complète de la commande, ce qui signifie des dispositions anormales. Cependant, la cause exacte reste incertaine. Ces resULTS d&#39;amélioration de l&#39;application d&#39;aimants de croissance suggèrent qu&#39;il est possible d&#39;augmenter le taux de croissance, d&#39;augmenter la productivité, ou de contrôler la vitesse de germination des plantes en appliquant des champs magnétiques statiques. En outre, les champs magnétiques peuvent provoquer des changements physiologiques dans les cellules végétales et peuvent induire la croissance. Par conséquent, une stimulation par un champ magnétique, peut avoir des effets possibles qui sont semblables à celles des engrais chimiques, ce qui signifie que l&#39;utilisation d&#39;engrais peut être évitée.

Tubuline coloration a montré une dispersion ou des structures aminci dans des plantes cultivées en présence de l&#39;aimant par rapport au témoin (figure 2). En outre, 7 jour des études time-lapse avec des plantes agricoles , y compris Komatsuna (Brassica rapa var. Perviridis) et Mescluns (Lepidium sativum) ont indiqué que un aimant dérivé champ magnétique statique augmente la croissance initiale de ces plantes (Figure 3). <p class=...

L’objectif de ce protocole est de démontrer l’accélération du taux de croissance initial des plantes en appliquant des champs magnétiques statiques sans énergie externe.

Amélioration du taux de croissance initiale des plantes agricoles à l&#39;aide de champs magnétiques statiques

Electronic devices and high-voltage wires induce magnetic fields. A magnetic field of 1,300-2,500 Gauss (0.2 Tesla) was applied to Petri dishes containing ...

L'objectif général de cette procédure est de favoriser le taux de croissance des plantes à l'aide de champs magnétiques statiques. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans les domaines de l'agriculture et de la médecine nutritionnelle, en abordant des techniques de production alimentaire. Le principal avantage de cette technique est qu'elle n'utilise ni énergie ni engrais.Pour commencer, faites germer des graines d’Impatiens balsamina ou de balsamine des jardins en les plaçant sur une serviette en cellulose dans des boîtes de Pétri séparées de 100 millimètres de diamètre. Ensuite, immergez la serviette et les graines dans de l’eau triple-distillée. Mesurez et vérifiez que la température intérieure du laboratoire se situe entre 18 et 25 degrés Celsius, avec une humidité relative comprise entre 65 et 75 %. Placez trois aimants de 1 750 plus ou moins 350 Gauss sous la boîte contenant la balsamine des jardins, avec une distance de deux à quatre millimètres entre les graines et les aimants.Ensuite, après avoir placé trois aimants sous une deuxième boîte de graines, empilez deux aimants avec le côté nord orienté vers le haut pour l'aimant supérieur et le côté sud orienté vers le haut pour l'aimant inférieur. Puis, placez les deux aimants ensemble sous la boîte de culture de balsamine. Pour générer des images en accéléré de la croissance des plantes, après avoir configuré un appareil photo numérique pour photographier la plante conformément au protocole décrit, placez des repères de taille, tels qu'un quart de dollar canadien, un cent américain et une règle graduée en centimètres, sur le côté du champ de vision.Ensuite, collectez 700 à 900 images pendant sept à dix jours. Après avoir utilisé un logiciel de montage vidéo pour créer un film accéléré à partir des images, conformément au protocole écrit, lancez le film pour le vérifier. Après avoir ensemencé les graines sur une serviette en cellulose, comme illustré précédemment dans cette vidéo, placez deux aimants avec le pôle nord orienté vers le haut sur le fond de la plaque de 100 millimètres et incubez pendant 48 heures.Pour colorer les plantes, placer l'ensemble de la plante à fleur double d'Impatiens spp. dans une solution de paraformaldéhyde à 4 % et de tampon Fast Feed 0,1 M, et fixer la plante pendant 15 minutes. Transférer l'échantillon de plante dans un tampon bloquant et incuber pendant deux heures. Ensuite, immergez l'échantillon d'Impatiens dans du PDS pendant 15 minutes pour le laver.Après le lavage, ajoutez les anticorps primaires anti-tubuline alpha et incubez à quatre degrés Celsius toute la nuit. Le jour suivant, transférez l'échantillon dans du PBS pendant 10 minutes. Ensuite, placez la plante dans de l'anti-IgG de souris conjugué à la FITC et incubez à l'obscurité à 25 degrés Celsius pendant deux heures.Après l'incubation, immergez l'échantillon dans du PBS dans une cavité d'une plaque de 24 puits et placez un couvre-objet sur l'ensemble de l'échantillon. Ensuite, utilisez un microscope à fluorescence pour observer l'orientation turbulente. Cette figure montre que, en conditions de croissance à l'obscurité, les plants de balsamine des jardins n'ont présenté qu'une augmentation marginale de leur taux de croissance lorsqu'ils ont été exposés à un champ magnétique statique.Cependant, le champ magnétique était associé à un taux de croissance accru lorsque les plantes étaient cultivées à la lumière. Au troisième jour, la différence de hauteur entre les plantes exposées au champ magnétique et les témoins était statistiquement significative. Et les différences se sont maintenues jusqu'au septième jour.Ces images de fluorescence montrent une turbulence développée en structures dispersées ou fines chez les plantes cultivées en présence d'aimants, par rapport aux plantes témoins. Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée en 72 heures si elle est correctement effectuée. Lors de la réalisation de cette procédure, il est important de veiller à contrôler l'intensité des aimants.Après avoir suivi cette procédure, des applications à d'autres organismes modèles peuvent être réalisées afin de répondre à des questions supplémentaires, telles que la base génétique de l'amélioration de la croissance sur le terrain. Après son développement, cette technique a ouvert la voie aux chercheurs dans le domaine de la médecine nutritionnelle pour explorer un régulateur clé de l'enrichissement nutritionnel et de la croissance des plantes. Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la manière d'améliorer la croissance initiale d'une plante à l'aide d'aimants.N'oubliez pas que le travail en contact direct avec des aimants peut être extrêmement dangereux et que des conditions telles que l'humidité peuvent provoquer la corrosion du fer et doivent toujours être prises en compte lors de l'exécution de cette procédure.

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