Name: Répétitif stimulation magnétique transcrânienne à lUnilatérale hémisphère de cerveau de rat (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-10-22T13:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 47 s
Description: Apprenez la stimulation magnétique transcrânienne répétitive unilatérale chez le rat pour explorer les mécanismes moléculaires cérébraux. Cette méthode permet d'étudier les différences interhémisphériques des réponses neuronales.

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Ce travail a été soutenu par la subvention de la Fondation pour la recherche sur la Corée financée par le gouvernement coréen (KRF-2008-313-E00458). Les auteurs remercient Jin-Joo Lee pour l’assistance technique.

Toutes les procédures utilisant des animaux ont été examinés et approuvés par le soin et l&#39;utilisation des animaux Commission institutionnelle de l&#39;hôpital universitaire national de Séoul. 1. Configuration expérimentale <ol><li> préparation des animaux <ol><li> Permettre des rats mâles Sprague-Dawley de 1 semaine à adapter à leur nouvel environnement avant de commencer l&#39;expérience. NOTE: Bien que 8 semaines chez des rats âgés ont été utilisés dans la présente étude, un développement ou cerveau adulte peut être choisi en fonction des hypothèses de recherche. </li></ol></li><li> anesthésie par inhalation pour l&#39;induction <ol><li> Et maintenir une anesthésie induire à 5% et 2% d&#39;isoflurane dissous dans 40% / 60% et 25% / 75% d&#39; oxygène / azote par l&#39; intermédiaire d&#39; une chambre et le nez conique, respectivement. Régler la profondeur de l&#39;anesthésie au niveau de l&#39;abolition du réflexe de retrait de la pédale de pincement de l&#39;orteil pour confirmer anesthetization bon. REMARQUE: L&#39;utilisation d&#39;animaux réveillées peut être un meilleur choix en termes de traduction, mais il y a des difficultés à retenir lors de la SMTr et they sont sujettes à un stress excessif. </li><li> Surveiller la température du corps avec une sonde rectale et le maintenir à 37 ° C à l&#39;aide d&#39;une couverture homéothermique. Surveiller profondeur de l&#39;anesthésie en utilisant la pédale réflexe de retrait, la température, la fréquence respiratoire et la fréquence cardiaque. </li></ol></li><li> Mettez-over à l&#39;anesthésie par voie intraveineuse pour l&#39;entretien <ol><li> Préparer la queue avec un tampon imbibé d&#39;alcool. Cathétériser une veine de la queue latérale avec un cathéter veineux calibre 24 pour le passage à l&#39; anesthésie intraveineuse (figure 1A). Charge propofol par voie intraveineuse (1 mg / kg · [min] pendant 10 min, en utilisant 10 mg / ml d&#39;émulsion) aux animaux. Cesser isoflurane 5 min après le début de propofol chargement. </li><li> Maintenir sédation au propofol à un taux de 500 pour perfusion - 700 ug / (kg · min) tout au long de l&#39;expérience, comme dans une étude précédente 16. Supplément d&#39; oxygène à 0,8 L / min par l&#39; intermédiaire d&#39; un cône de nez. NOTE: L&#39;anesthésie avec du propofol est de réduire la suppression potentielle de l&#39;excitabilité corticale par le inhalAgent ation 17-19. Cependant, l&#39;anesthésie ne soit pas obligatoire dans les expériences SMTr, et les animaux Réveillé peut également être utilisé. méthodes d&#39;anesthésie devraient être décidées en tenant compte des hypothèses de recherche. </li><li> Utilisez une pommade vétérinaire sur les yeux pour prévenir la sécheresse sous anesthésie. </li><li> Appliquer la stimulation magnétique (voir Section2) 10 min après la transition complète de l&#39; anesthésie iv. </li></ol></li><li> conditions de récupération <ol><li> Surveiller les signes vitaux pendant la phase de récupération. Ne pas laisser l&#39;animal sans surveillance jusqu&#39;à ce qu&#39;il ait repris connaissance suffisante pour maintenir décubitus sternale. Si un animal a subi une intervention chirurgicale, ne reviennent pas à la compagnie d&#39;autres animaux jusqu&#39;à guérison complète. REMARQUE: si une intervention chirurgicale pour un modèle de maladie est effectuée, la gestion de la douleur post-chirurgicale est nécessaire. Cependant, la gestion de la douleur est pas nécessaire pour cette expérience rTMS. </li></ol></li></ol> 2. Répétitive stimulation magnétique transcrânienne <ol><li> Stimulateur et la bobine <ol><li> Appliquer la stimulation à l&#39;aide d&#39; un stimulateur répétitif qui fournit des stimuli biphasique via un 25 mm en 8 bobine. Localisez le centre de la bobine de 0,5 cm latéralement au sommet sur la ligne biauricular et angulate la bobine 45 ° par rapport au sol. NOTE: La force maximale magnétique de la bobine de champ est de 4,0 T. La bobine magnétique est monté fermement sur un support intégré. </li></ol></li><li> seuil de moteur <ol><li> Déterminer le seuil moteur (MT) au point chaud, avec le centre de la bobine positionnée 0,5 cm latéralement au sommet sur la ligne biauricular et avec le plat de la surface sur la calvaria. Ceci est la même méthodologie utilisée dans une étude précédente 20. NOTE: Définir MT que l&#39;intensité minimale de stimulation évoquant 5 ou plus palpables contractions sur la patte controlatérale de 10 stimuli consécutifs. Vérifier si la stimulation est principalement la cause de la contraction du muscle controlatéral pour assurer une stimulation unilatérale. </li&gt; </ol></li><li> Application de rTMS <ol><li> Appliquer rTMS 10 min après la stabilisation de l&#39;anesthésie profonde. Placez le centre de la bobine sur le site SMTr cible, choisi parmi les cortex cérébraux en fonction des questions de recherche. Ensuite, incliner la bobine pour assurer un contact direct entre le centre de la bobine et la surface du crâne au point de stimulation. NOTE: Par exemple, angulate la bobine de 45 ° par rapport au sol afin de minimiser un effet direct potentiel de SMTr sur le cortex controlatéral (Figure 1B et 1C). </li><li> Soumettre les animaux à une session de 20 min-rTMS de l&#39;hémisphère unilatérale. Utilisation de la console du logiciel, de livrer rTMS avec une basse fréquence (1 Hz), à haute fréquence (20 Hz), ou d&#39;un protocole de stimulation factice, et régler l&#39;intensité de la stimulation à 100-110% de la MT. </li><li> Effectuer 1 stimulation Hz sans repos. Utilisation de la console d&#39;entrée du logiciel &quot;1200&quot; plans pour &quot;20&quot; min). Pour 20 stimulation Hz, effectuer 2 sec de la stimulation suivie par 28sec de repos. Utilisation de la console d&#39;entrée du logiciel &quot;1.600&quot; plans pour min &quot;20&quot;. </li><li> Pour une stimulation factice, inclinez la bobine perpendiculaire (rotation de 90 °) à la calvaria et placer le bord de la bobine 2 cm en dehors de la surface de la tête (figure 1D). Fixer le support de bobine fermement à l&#39;appareil principal; il n&#39;y a pas besoin de tenir la bobine à la main lors de l&#39;expérience. REMARQUE: Pour compenser les effets non spécifiques acoustiques et d&#39;autres, les protocoles de faux distincts doivent être utilisés pour des protocoles de stimulation distincts. Par exemple, une stimulation factice 1-Hz peut être utilisé pour 1 Hz SMTr expériences. </li></ol></li><li> Le refroidissement de la bobine <ol><li> Utilisez un système de refroidissement de l&#39; eau pour permettre la stimulation magnétique répétitive pendant plus de 20 min à 1- et 20 Hz fréquences de stimulation (figure 2). Faire circuler l&#39;eau glacée entourant toute la longueur de la bobine pendant l&#39;expérience pour éviter la surchauffe, bien que la température de la bobine ou stimulateur est pas surveillée. REMARQUE: disponibles dans le commerce des bobines refroidies de rat peuvent également être utilisés. </li><li> Si possible, surveiller la température de la batterie en observant la jauge de chauffage de la machine rTMS. NOTE: Il n&#39;y avait pas de conséquences fâcheuses liées à la stimulation rTMS. Il y a, cependant, un risque de brûlure potentiel si les étiquettes d&#39;identification de l&#39;oreille de métal sont utilisés à proximité de la bobine stimulant. </li></ol></li></ol> 3. tomographie par émission de positons Micro <ol><li> préparation des animaux <ol><li> Procéder à l&#39;anesthésie par inhalation pour l&#39;induction et l&#39;anesthésie iv pour l&#39;entretien (voir étape 1.2.1 et 1.3.1). Appliquer 1 Hz rTMS à un animal pendant 10 minutes à une intensité de stimulation de 100 à 110% du MT. </li><li> Cinq minutes après la fin de la stimulation rTMS, injecter 1 mCi de 2- [F-18] fluoro-désoxyglucose (FDG 18) dissous dans 0,5 ml de sérum physiologique par voie intraveineuse à l&#39;aide d&#39; un cathéter dans la veine caudale. Autoriser 30 min pour 18 FDG. REMARQUE: Placez le rat sous anesthésie pendant toute la micro-PEexpérience T. </li></ol></li><li> L&#39;analyse d&#39;image <ol><li> Utilisez un scanner TEP pour l&#39;imagerie cérébrale pour réaffirmer l&#39;unilatéralité de la stimulation. Reconstruire images avec un 3-D algorithme itératif. Pour évaluer les changements dans le métabolisme induites par SMTr, identifier les régions d&#39;intérêt (ROI) dans les images des coupes de cerveau transversales 21. </li></ol></li><li> Euthanasie <ol><li> Après avoir effectué l&#39;imagerie micro-PET, l&#39;euthanasie, les rats dans une chambre remplie au préalable avec du dioxyde de carbone, tandis que les rats sont en anesthésie profonde. </li></ol></li></ol> 4. ARNm Microarray <ol><li> Euthanasie <ol><li> Et maintenir une anesthésie induire à 5% et 2% d&#39;isoflurane dissous dans 40% / 60% et 25% / 75% d&#39; oxygène / azote par l&#39; intermédiaire d&#39; une chambre et le nez conique, respectivement. Anesthetize profondément au niveau de l&#39;abolition du retrait de la pédale réflexe de pincement de l&#39;orteil avant d&#39;être décapité. </li><li> Décapitez les rats pour l&#39;euthanasie 5 min après 1 session de 1 Hz SMTr. </li></ol></li><li> récolte de tissus <ol><li> Disposez les matériaux et les instruments chirurgicaux dans l&#39;ordre d&#39;utilisation, y compris les serviettes pliées en papier, une gouge osseuse, microciseaux, ciseaux chirurgicaux plus grands, un microforcep, une lame de scalpel n ° 10 ou 11, 10 cm plat lidded de Pétri en verre rempli de glace et 1,5 ml tubes. Préparer un sac en plastique pour l&#39;élimination de la carcasse. </li><li> Faire une incision cutanée médiane dans le anterioposteriorly du crâne. Carrément disséquer les tissus mous et les muscles environnants avec des ciseaux chirurgicaux, et enlever le morceau de crâne d&#39;os en utilisant une gouge osseuse. disséquer rapidement le cerveau frais soigneusement du crâne. Ensuite, posez-le sur la glace en utilisant les microforceps et microciseaux. Rincer le tissu cérébral dans la glace froide solution saline normale. </li><li> Transférer le cerveau à la glace sèche immédiatement, puis le stocker à -80 ° C dans un tube jusqu&#39;à ce que le traitement ultérieur. </li><li> Décongeler le tissu cérébral avant la récolte. </li><li> Placez le cerveau dorsale vers le haut, et récolter le tissu cérébral de la stimulated cortex cérébral (autour du point chaud dans le cortex moteur primaire) sur la glace en utilisant les microforceps et microciseaux. Placez le tissu prélevé dans le tube de 1,5 ml. </li></ol></li><li> préparation d&#39;ARN <ol><li> Extraire l&#39; ARN total à partir des homogénats de tissus en utilisant le réactif de lyse 22. Processus avec la digestion de DNase et les procédures de nettoyage. Quantifier les échantillons d&#39;ARN et aliquotes et stocker à -80 ° C jusqu&#39;à utilisation. </li><li> Pour le contrôle de qualité, d&#39;évaluer la pureté et l&#39;intégrité de l&#39;ARN par électrophorèse sur gel dénaturant, à un rapport de DO 260: 280, et de les analyser sur un analyseur disponible dans le commerce. </li></ol></li><li> Marquage et purification <ol><li> Amplifier et purifier l&#39;ARN total en utilisant un kit d&#39;amplification d&#39;ARN disponible dans le commerce pour donner ARNc biotinylé. En bref, reverse-transcription 550 ng d&#39;ARN total en ADNc en utilisant une T7 oligo (dT). Synthétiser et in vitro transcrire le deuxième brin d&#39; ADNc, puis l&#39; étiqueter avec de la biotine-NTP. </li><li> Après purification, quantifier l&#39;ADNc en utilisant un spectrophotomètre. </li></ol></li><li> Hybridation et exporter des données 23 <ol><li> Utiliser le BeadChip d&#39;expression pour l&#39;analyse de l&#39;expression de l&#39;ARNm. Hybrider les 750-ng échantillons d&#39;ADNc marqués à chaque rat-12 expression perles tableau pour 16 - 18 h à 58 ° C. Effectuer la détection du signal de réseau en utilisant la streptavidine-Cy3. </li><li> tableaux de numérisation avec un scanner confocal. Effectuer des données de réseau de traitement et d&#39;analyse d&#39;exportation en utilisant un logiciel disponible dans le commerce. </li></ol></li></ol>

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<li>Toro, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Brain+size+and+folding+of+the+human+cerebral+cortex%5BTitle%5D)+AND+%22Cereb+Cortex%22%5BJournal%5D)">Brain size and folding of the human cerebral cortex.</a> Cereb Cortex. 18 (10), 2352-2357 (2008).</li>
</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

<html> Le but principal de cette étude était d&#39;introduire un modèle animal de la rTMS unilatérales. Bien que la stimulation unilatérale est l&#39;une des caractéristiques les plus fondamentales de la recherche rTMS humaines, de nombreuses études ont pas adopté dans les petits animaux. Cependant, Rotenberg et al. 15 enregistré MPE controlatéral avec une stimulation de 100% de MT en utilisant une bobine de chiffre 8 d&#39;un diamètre de lobe extérieur de 20 mm, tandis que la stimulation avec 112,5% ...

La stimulation magnétique transcrânienne répétitive (SMTr), un outil pour la stimulation cérébrale non invasive et neuromodulation, a été appliqué dans le traitement de diverses conditions telles que la douleur centrale 1,2, la dépression 3, la migraine 4, et même temps 5-7. l&#39;évolution rapide du courant électrique à travers des bobines sur la tête induit un champ électrique sur le cortex cérébral et une activation neuronale résultant. L&#39;excitabilité du cortex cérébral peut être modulée par SMTr, qui peut durer plus de 30 minutes après la stimulation est terminée. Mécanismes suggérés des rTMS après-effet à long terme comprennent potentialisation / dépression comme l&#39; effet 8, changement transitoire dans l&#39; équilibre ionique 9 et métabolique change 10. En outre, Di Lazzaro et al. suggèrent que la stimulation de salve thêta intermittente affecte les entrées synaptiques excitateurs aux pyramidal neurones des voies, à la fois dans la stimulationet l&#39;hémisphère controlatéral 11. Des limites importantes, cependant, ont empêché les chercheurs de la conversion des preuves sur banc à des situations cliniques. Tout d&#39; abord, dans des études animales précédentes, rTMS a été utilisée pour la stimulation du cerveau entier 12. La stimulation du cerveau entier est tout à fait différent des protocoles utilisés dans les études humaines 9. L&#39;autre problème est lié à la durée de stimulation. Ceci est au moins en partie attribuable au fait qu&#39;un système de refroidissement efficace est indisponible pour les petites bobines dans le passé. Au cours des dernières années, des articles séminales ont été publiés en proposant des moyens permettant de surmonter ces difficultés dans l&#39;expérience rTMS sur le petit cerveau de l&#39;animal. Par ces modèles animaux, il a été révélé que le cerveau du rat montre également des modifications de l&#39; excitabilité du cortex semblables chez l&#39;être humain en réponse à la rTMS à basse fréquence 13. Plus important encore, les mécanismes cellulaires et moléculaires de la rTMS sont de plus en plus being étudiée en utilisant des modèles animaux de rTMS. Un exemple en est que un type distinct de interneuron inhibitrice est connu pour être le plus sensible à la stimulation thêta intermittente rafale 14. modèles murins de rTMS, par conséquent, offrent de nouvelles opportunités pour explorer des questions très recherchés sur les bases moléculaires des changements rTMS-induits. Si des petits modèles animaux de rTMS peuvent être utilisés dans plusieurs laboratoires, il peut grandement accélérer et renforcer la recherche dans ce domaine. Nous décrivons maintenant comment appliquer rTMS à l&#39;hémisphère unilatéral de cerveau de rat, une extension des travaux antérieurs 15. les changements induits par stimulation ont été évalués à l&#39;aide de micro-tomographie par émission de positons (TEP) et les microréseaux d&#39;ARNm pour étudier SMTr induite par des changements dans le cortex cérébral stimulé.

<table><tbody><tr><td>Couverture homéothermique avec sonde rectale</td><td>Appareil Harvard</td><td>507222F</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane (Forane sol.)</td><td>Choongwae</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Propofol (Provive Inj. 1 % 20 ml)</td><td>Claris Lifesciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stimulateur magnétique répétitif (Magstim Rapid2)</td><td>Magstim Company Ltd</td><td></td><td></td></tr><tr><td>25 mm bobine en 8</td><td>Magstim Company Ltd</td><td>1165-00</td><td></td></tr><tr><td>PET-CT</td><td>GE Healthcare</td><td></td><td></td></tr><tr><td>QIAzol Lysis Reagent</td><td>Qiagen</td><td>(Brevet américain n° 5,346,994)</td><td></td></tr><tr><td>RNeasy Lipid Tissue Mini Kit</td><td>Qiagen</td><td>74804</td><td></td></tr><tr><td>RNeasy Mini Spin Columns</td><td>Qiagen</td><td>(Mat No. 1011708)</td><td></td></tr><tr><td>Agilent 2100 Bioanalyzer Agilent</td><td>Technologies</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ambion Illumina Kit d’amplification d’ARN</td><td>Ambion</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nanodrop Spectrophotomètre</td><td>NanoDrop</td><td>ND-1000</td><td></td></tr><tr><td>Illumina RatRef-12 Expression BeadChip</td><td>Illumina, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Amersham fluorolink streptavidin-Cy3</td><td>GE Healthcare Bio-Sciences</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

répétitif stimulation magnétique transcrânienne à l&#39;unilatérale hémisphère de cerveau de rat

Repetitive Transcranial Magnetic Stimulation to the Unilateral Hemisphere of Rat Brain

Les modèles précédents de stimulation magnétique transcrânienne répétitive (SMTr) ont adopté la stimulation cérébrale globale au lieu de la SMTr hémisphérique unilatérale, ce qui est différent des protocoles utilisés pour les sujets humains. Nous rapportons une application réussie de la SMTr à l’hémisphère unilatéral du cerveau du rat. La SMTr a été administrée à l’aide d’un protocole de stimulation à basse fréquence (1 Hz), à haute fréquence (20 Hz) ou simulé à un côté du cerveau à l’aide d’une petite bobine en forme de 8 de 25 mm. Nous avons placé le centre de la bobine à 1 cm du sommet sur la ligne biauriculaire et angulé la bobine à 45° par rapport au sol pour minimiser un effet direct potentiel de la rTMS sur le cortex controlatéral. Nous avons également utilisé un système de refroidissement par eau interne pour permettre une stimulation magnétique répétitive pendant plus de 20 minutes, même à une fréquence de stimulation de 20 Hz. Les augmentations des transcriptions des gènes précoces immédiats (Arc, Junb et Egr2) étaient plus importantes après la SMTr qu’après une stimulation simulée. Après 5 jours consécutifs de SMTr à 1 Hz de 20 minutes, l’expression de l’ARNm bdnf était significativement plus élevée dans le cortex stimulé que dans le côté controlatéral. Le modèle présenté ici permettra d’élucider les mécanismes moléculaires de la SMTr en permettant l’analyse de la différence inter-hémisphérique dans son effet.

Quinze 8 semaines vieux rats Sprague-Dawley ont été utilisés pour une interévaluateurs analyse de fiabilité distincte de la détermination MT. Utilisation de la palpation des contractions musculaires, les MTs ont été obtenus dans tous les rats et mesurées à 33,00 ± 4,21% de sortie maximale du stimulateur (% MSO) et 33,93 ± 0,88% MSO, respectivement, par deux chercheurs indépendants. biais Bland-Altman était -0.93, et les limites de l&#39;accord de 95% étaient à 7,26% -9,13. <p class="...

Nous avons appliqué une stimulation magnétique transcrânienne répétitive (rTMS) à l’hémisphère unilatéral du cerveau du rat, en plaçant une bobine en forme de 8 de 25 mm à 1 cm du sommet sur la ligne biauriculaire et en angulant la bobine de 45°. Un système de refroidissement par eau interne a été utilisé pour le rTMS pendant plus de 20 min.

Répétitif stimulation magnétique transcrânienne à l&#39;Unilatérale hémisphère de cerveau de rat

Previous rodent models of repetitive transcranial magnetic stimulation (rTMS) adopted whole-brain stimulation instead of unilateral hemispheric rTMS, ...

L'objectif général de cette expérience est de réaliser une stimulation magnétique transcrânienne répétitive unilatérale, ou rTMS, chez un petit modèle animal. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés concernant les mécanismes moléculaires du rTMS, en permettant une stimulation unilatérale de l'hémisphère cérébral chez le rat. Le principal avantage de cette technique est qu'elle offre la possibilité d'explorer les différences interhémisphériques des événements moléculaires en réponse à une rTMS unilatérale.Les personnes novices dans cette méthode peuvent éprouver des difficultés car la bobine de stimulation magnétique transcrânienne répétitive (rTMS) peut être si grande qu'elle stimule l'ensemble du cerveau, et parce que le réglage du seuil moteur est long et fastidieux. Un technicien expérimenté de notre laboratoire, Jin-Joo Lee, démontrera la procédure. Insérez une sonde rectale dans un rat mâle adulte anesthésié afin de surveiller la température corporelle, en utilisant une couverture homeothermique pour maintenir la température à 37 degrés Celsius.Appliquer de la pommade sur les yeux de l'animal. Ensuite, 10 minutes après la transition complète à l'anesthésie intraveineuse, marquer un point situé à 0,5 centimètre latéralement par rapport au vertex sur la ligne biauriculaire, puis fixer fermement le support de la bobine à l'appareil. Puis, positionner le centre d'une bobine en forme de huit de 25 millimètres sur ce point, et incliner la bobine à 45 degrés par rapport au sol.En maintenant la surface de la bobine à plat contre la calvaria, augmentez progressivement l'intensité de la stimulation pour déterminer l'intensité de stimulus minimale nécessaire pour provoquer cinq contractions palpables ou plus de la patte antérieure controlatérale, au moyen de dix stimuli biphasiques consécutifs, transmis par la bobine. Vérifiez que la stimulation provoque principalement une contraction musculaire controlatérale, sans aucune contraction homolatérale, afin de garantir une stimulation unilatérale. Utilisez un système de refroidissement à eau pour refroidir la bobine pendant 10 minutes.En maintenant la température de la bobine à l’aide du système de refroidissement, utilisez la console logicielle pour régler l’intensité de la stimulation entre 100 et 110 % du seuil moteur. Ensuite, pour appliquer la stimulation magnétique transcrânienne répétitive (rTMS) à une fréquence de un hertz, réglez d’abord l’entrée sur 1200 impulsions, pendant 20 minutes. Puis, déplacez le centre de la bobine vers le site cible sur un hémisphère cérébral, et inclinez la bobine afin d’assurer un contact direct entre le centre de la bobine et la surface du crâne au point de stimulation.Pour une stimulation de 20 hertz, régler l'entrée sur 1600 impulsions pendant 20 minutes, et appliquer deux secondes de stimulation, suivies de 28 secondes de repos. Pour une stimulation factice, incliner la bobine à une rotation de 90 degrés par rapport à la calvaria, et placer le bord de la bobine à deux centimètres de la surface de la tête. À la fin de la stimulation, laisser l'animal se remettre sous surveillance complète.Dans cette expérience représentative, six rats âgés de huit semaines ont été analysés par micro-tomographie par émission de positons afin d'évaluer la fixation d'un isotope radioactif dans les régions d'intérêt des cortices cérébraux. L'activité radioactive dans la zone controlatérale a été utilisée comme référence pour normaliser les données obtenues dans la zone ipsilatérale. Les rapports moyens de fixation différentielle obtenus à partir de trois images transversales consécutives ont ensuite été moyennés pour calculer le rapport de fixation différentielle pour les rats, mettant en évidence une augmentation focale du métabolisme glucidique dans la zone corticale gauche stimulée, dans le groupe à un hertz.Appui à l’unilatéralité de la SMTr. Dans cette étude par microarray d'ARNm, les niveaux d'expression de plusieurs gènes précoces immédiats se sont révélés significativement plus élevés chez les animaux soumis à la SMTr que dans le groupe témoin. De plus, après une stimulation d'un hertz, l'expression de l'ARNm du facteur neurotrophique dérivé du cerveau était également significativement plus élevée dans le cortex stimulé, révélant des modifications induites par la SMTr différentes dans le cortex cérébral stimulé par rapport au cortex cérébral controlatéral.Une fois administrée, la technique de stimulation magnétique transcrânienne répétitive peut être réalisée en une heure, à condition qu'elle soit correctement effectuée. Lors de la réalisation de cette procédure, il est essentiel de bien positionner la bobine de stimulation magnétique transcrânienne répétitive et de préparer les contractions des pattes antérieures controlatérale et homolatérale afin de confirmer la stimulation unilatérale des hémisphères. Cette technique s'avérera utile dans le domaine de la recherche translationnelle en neuro-réadaptation, pour explorer les mécanismes moléculaires de la stimulation magnétique transcrânienne répétitive, grâce à l'analyse des différences interhémisphériques et des diverses conditions pathologiques.Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la manière d'effectuer une rTMS unilatérale chez un modèle animal de petite taille.

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Prenez un rat avec un accident vasculaire cérébral ischémique focal dans le cortex cérébral, entraînant une BHE compromise, une réduction du flux sanguin et une activité neuronale excessive.L’accident vasculaire cérébral induit également l’activation des astrocytes, conduisant à la formation d’astrocytes neurotoxiques qui libèrent des cytokines pro-inflammatoires.Cela déclenche une neuroinflammation, entraînant une dégénérescence des cellules neuronales et endothéliales.Retenez le rat et...

Stimulation magnétique transcrânienne répétitive thêta-burst pour favoriser la récupération après un AVC chez le rat

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Effets de la stimulation cérébrale profonde sur l’activité neuronale de l’hippocampe dans un modèle de rat

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Modifications répétitives induites par la stimulation magnétique transcrânienne dans les synapses corticomotoneuronales humaines

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Stimulation électrique transcrânienne du cortex moteur chez un rat éveillé

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Modulation de l’excitabilité corticale chez un rat à l’aide d’une stimulation magnétique transcrânienne répétitive

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Nous explorons l'utilisation de la stimulation magnétique transcrânienne répétitive (rTMS) pour améliorer les compétences linguistiques chez les patients ayant subi un AVC chronique et non couramment l'aphasie. Après avoir identifié un site dans la bonne gyrus frontal pour chaque patient qui répond de façon optimale à la stimulation, nous ciblons ce site pendant les dix jours de traitement par SMTr.

Utilisant Stimulation magnétique transcrânienne répétitive pour améliorer la fonction de la langue chez les patients avec un AVC chronique aphasie non fluente

Cette étude est conçue pour tester l’hypothèse selon laquelle la stimulation magnétique transcrânienne guidée par le système neuronavigationnel a une plus grande précision pour cibler la cible visée, comme le démontre l’obtention d’un plus grand degré d’aphasie virtuelle chez les sujets sains, mesuré par le retard du temps de réaction à la dénomination des images.

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Stimulation magnétique transcrânienne répétée en ligne du cortex préfrontal dorsomédial et dorsolatéral dans la prise de décision cognitive et la dissonance cognitive

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Répétitif stimulation magnétique transcrânienne à l'Unilatérale hémisphère de cerveau de rat

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