Name: Isoler cellules progénitrices Mesangiogenic (PPM) de Human Bone Marrow (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-07-15T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 53 s
Description: Découvrez l'isolation de cellules progénitrices mésangiogéniques (MPC) à partir de moelle osseuse humaine par culture sélective. Cette méthode permet d'obtenir des cultures MSC reproductibles pour la recherche en médecine régénérative.

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Les auteurs seraient particulièrement à remercier le Dr Paolo Parchi, département de chirurgie, de médecine et de pathologie moléculaire et Critical Care Medicine, Université de Pise, pour fournir des échantillons de moelle osseuse et son expertise en ostéo-progéniteurs humains

NOTE: Après consentement écrit, des échantillons HBM ont été obtenus au cours de la chirurgie orthopédique pour le remplacement de la hanche. Immédiatement après l&#39;ostéotomie du col du fémur et du fémur avant aléser une seringue de 20 ml contenant 500 UI d&#39;héparine, a été utilisée pour aspirer le BM frais. Le protocole doit être considéré comme largement applicable à toute source BM. 1. Isolement de l&#39;os humain de cellules de moelle osseuse mononucléaires (HBM-PTM) <ol><li> Diluer 5 - 10 ml de BM frais de 50 ml, en appliquant la solution saline tamponnée au phosphate de Dulbecco (D-PBS) et on mélange par inversion. répartir également 25 ml dans deux nouveaux tubes coniques de 50 ml, ajouter 25 ml de D-PBS à chaque tube et mélanger par retournement. </li><li> Laisser les tubes reposer pendant 10 min à température ambiante, pour la séparation de fragments d&#39;os minéraux et de matières grasses de la solution. </li><li> Retirez délicatement la graisse flottante avec une pipette et filtre Pasteur suspension cellulaire stérile à travers 70 um filtres sans perturber l&#39;os minéral fragment pellet. </li> &lt;li&gt; Ensemble de quatre tubes de 50 ml avec 15 ml de milieu à gradient discontinu de densité de centrifugation (1,077 g / ml). Assurez-vous que ce milieu est à la température ambiante. </li><li> Déposer délicatement 20 - 25 ml de dilution BM au-dessus du milieu de gradient de densité. Effectuez cette opération avec soin, laissant suspension cellulaire filet sur les parois du tube pour empêcher les couches de mélange. </li><li> Effectuer un gradient de densité centrifugation à 400 xg pendant 30 min à température ambiante avec frein désactivé. </li><li> Récupérer la bague blanchâtre de cellules situées entre les deux phases à l&#39;aide d&#39;une pipette Pasteur stérile et le transférer dans un nouveau tube de 50 ml. </li><li> Laver les cellules avec un milieu de culture frais: rouge de phénol libre, faible taux de glucose (1,000 mg / l) milieu de Eagle modifié Dulbecco (DMEM), 10% (v / v) mise en commun de type AB sérum humain (PhABS), 2 mM de L-glutamine et des antibiotiques (DMEM / 10% PhABS). Centrifuger à 400 g pendant 5 min. </li><li> Aspirer le surnageant et remettre en suspension le culot dans 5 à 10 ml de DMEM frais / 10% PhABS. </li><li> Passez à la numération cellulaire.Déterminer le nombre de globules blancs par dilution 1: 1 en trypan. Appliquer à l&#39;hémocytomètre, et observer sous microscope à contraste de phase. Exclure les petites et parfaitement arrondis érythrocytes et les cellules mortes colorées en bleu de la numération cellulaire. NOTE: Il est fortement recommandé de PhABS écran lots pour leur performance dans la récupération MPC. PhABS provenant de sources USA ont donné de meilleurs résultats alors que la plupart des sérums d&#39;origine différente a donné lieu à des cultures MPC avec des pourcentages plus élevés de cellules MSC-like. </li></ol> 2. Isolement des PPM de HBM-PTM <ol><li> Fixer hydrophobes flacons T-75 avec 15 ml de DMEM frais / 10% PhABS et laisser le pH et la température équilibrent par une pré-incubation à 37 ° C dans 5% de CO2 pendant 30 min. </li><li> Seed 4-6 x 10 7 HBM-MNC par flacon et incuber à 37 ° C dans 5% de CO 2 pendant 48 heures. </li><li> Aspirer et jeter les cellules moyennes et non-adhérentes des flacons. Ajouter 15 ml de DMEM frais / 10% PhABS et incuber à 37 ° Cà 5% de CO 2. Maintenir les cultures pour 6 - 8 jours, le changement moyen toutes les 48 heures. EN OPTION: Pour augmenter le rendement MPC, les cellules non-adhérentes de 2.3 pourraient être ré-étalées dans un nouveau flacon de culture et maintenus comme décrit pour les cultures primaires. </li><li> Aspirer et jeter milieu des flacons, laver avec du DMEM frais et ajouter 2 ml d&#39;animaux protéase libre solution détachant. Incuber à 37 ° C pendant 5 - 15 min (éviter une incubation prolongée). </li><li> Ajouter 10 ml de DMEM frais / 10% PhABS, aspirer la suspension cellulaire et centrifuger à 400 g pendant 5 min </li><li> Aspirer et éliminer le surnageant et remettre en suspension le culot dans 1 - 2 ml de DMEM frais / 10% PhABS. Passez à nombre de cellules comme décrit à l&#39;étape 1.10. NOTE: Ne pas utiliser de trypsine / EDTA comme détachant réactif. PPMs sont trypsine résistants. le dépistage morphologique des cultures, avant la récolte des cellules, est fortement recommandée afin d&#39;évaluer la présence de cellules MSC-like en forme de fuseau. En cas quantité considérable de cellules MSC-like sont detected, d&#39;augmenter la pureté du produit cellulaire en éliminant sélectivement les cellules contaminées. Pour ce faire, digestion par la trypsine peut être réalisée avant la récolte MPC, en ajoutant 2 ml de trypsine / EDTA 0,05% pendant 2 min. cultures Laver deux fois avec 5 ml de DMEM / 10% PhABS, puis procéder à la protéase traitement comme ci-dessus. </li></ol> 3. Cellule Caractérisation <ol><li> La cytométrie en flux <ol><li> Mettre en place des échantillons en double de 10 5 cellules fraîchement isolées dans la solution de lavage: D-PBS additionné de 0,5% (v / v) de sérum - albumine bovine (BSA) et 0,02% (p / v) d&#39; azoture de sodium. Centrifuger à 400 g pendant 5 min. ATTENTION: L&#39; azoture de sodium est toxique. </li><li> Remettre en suspension des pastilles dans 200 ul de solution de lavage et ajouter de l&#39;anti-CD90, anti-CD45, anti-CD73 et anti-CD31 des anticorps conjugués avec des colorants fluorescents ( «TEST»); en parallèle mis en place des contrôles isotypiques ( &quot;CTRL&quot;). NOTE: Les quantités de coloration des anticorps doivent être déterminés par titrage ou according aux instructions du fabricant. </li><li> Incuber les échantillons à 4 ° C pendant 30 min. </li><li> Centrifuger à 400 g pendant 5 min. Resuspendre les cellules dans 500 ul de solution de lavage et l&#39; acquisition d&#39; au moins 5 x 10 4 sur le flux des événements multicolore cytomètre 7 9 10. </li><li> Analyser les résultats par point-parcelles et utiliser &quot;CTRL&quot; événements enregistrés pour définir quadrants. NOTE: Afin de définir la culture comme la culture MPC le pourcentage de CD73 CD90 neg neg CD45 + CD31 + cellules devrait être supérieure à 95%. Pour certaines applications spécifiques, par exemple une analyse d&#39;expression génique, la reprise de coupure doit être augmenté à 97-98%. </li></ol></li><li> détection Nestin et F-actine analyse de l&#39;organisation <ol><li> Plate PPMs fraîchement isolés sur des lames de la chambre de culture (20 000 / cm 2). Permettre aux cellules d&#39;adhérer par une incubation pendant une nuit à 37 ° C dans 5% de CO2. </li><li> Laver les cellules dans une solution de lavage et de fix dans 4% (p / v) de para-formaldéhyde à la température ambiante pendant 15 min. Pour supprimer fixateur ajouter la solution de lavage, incuber pendant 2 min et versez. </li><li> Répéter deux fois le lavage. </li><li> Perméabiliser les cellules dans D-PBS additionné de 0,05% (v / v) de Triton X-100 pendant 15 min à température ambiante. </li><li> Arrêter la réaction en protéine libre amplificateur de signal (30 min à température ambiante) ou d&#39;une solution de blocage standard (D-PBS additionné de 3% (p / v) de BSA). </li><li> Retirer le signal activateur / solution de blocage. </li><li> Ajouter 7 pg / ml (p / v) de l&#39;anticorps primaire anti-humain de la nestine et incuber à 4 ° C pendant une nuit dans une chambre humidifiée. En parallèle, utiliser des anticorps de contrôle isotypiques pour évaluer les signaux de fluorescence non spécifiques. </li><li> Laver les lames en ajoutant D-PBS, laisser pendant 2 minutes et verser. Répéter deux fois. </li><li> Ajouter 2 pg / ml (p / v) de colorant fluorescent, un anticorps secondaire conjugué et on incube à 4 ° C pendant 1 heure dans l&#39;obscurité. </li><li> Laver les lames comme ci-dessus. </li><li> Ajouter phalloïdine fluorescente (5 UI / ml), laisser à température ambiante pendant 30 mdans dans l&#39;obscurité et laver 3 fois dans D-PBS. </li><li> Retirer les parois de la chambre et monter les diapositives dans un milieu de montage aqueux additionné de antifade réactif et 4 &#39;, 6-diamidino-2-phénylindole (DAPI) pour la détection des noyaux. Passez à l&#39; imagerie 7 9 10. </li></ol></li></ol> 4. Mesengenic Différenciation des PPM <ol><li> Planche 2 x 10 4 / cm 2 PPMs fraîchement isolés dans TC-traités T75 flacons de culture et laisser les cellules adhérer pendant une nuit dans DMEM / 10% PhABS à 37 ° C dans 5% de CO 2. </li><li> Remplacer le milieu DMEM / 10% PhABS avec un milieu standard de sérum réduit, d&#39; environ 200 pl / cm 2, conçu pour l&#39; expansion des cellules mésenchymateuses du stroma (milieu CSM-RS). Cultiver les cellules jusqu&#39;à la confluence (P1-MSCs), généralement de 7 à 10 jours à compter de l&#39;induction. Actualisez moyenne tous les 2 jours. </li><li> Aspirer et jeter milieu des flacons, se laver avec du milieu MSC-RS fraîche et ajouter 2 ml d&#39;animaux protéase libre solution détachant. Incuber à 3776; C pendant 5 - 15 min (éviter une incubation prolongée). </li><li> Ajouter 10 ml de milieu MSC-RS fraîche, aspirer la suspension cellulaire et centrifuger à 400 g pendant 5 min </li><li> Aspirer le surnageant et remettre en suspension le culot dans 1 - 2 ml de milieu MSC-RS frais. Passez à nombre de cellules comme décrit à l&#39;étape 1.10 </li><li> Passez à la sous-culture par ensemencement les 3-5 x 10 3 cellules / cm 2. Cultiver les cellules jusqu&#39;à la confluence (P2-MSCs). </li><li> cellules de récolte par protease digestion comme décrit à l&#39;étape 4.3 à l&#39;étape 4.5 et de procéder à la caractérisation comme décrit dans la section 3. REMARQUE: Un pourcentage de CD73 + CD90 + CD45 des cellules CD31 nég nég inférieure à 95% indique que la différenciation partielle et exiger un nouveau passage en culture. </li><li> Plate P2-MSCs à 2 x 10 4 / cm 2 dans six plaques et TC-traitées et de croître jusqu&#39;à la confluence dans un milieu MSC-RS. </li><li> Marquer deux puits comme &quot;No Diff&quot; et actualisez moyen MSC-RS. </li><li> Mark deux biens comme «ostéo» et remplacer moyenne avec 200 pl / cm 2 de milieu osteogene standard, spécialement conçu pour la différenciation MSC. </li><li> Marquer deux puits comme &quot;Adipo&quot; et remplacer moyenne avec 200 pl / cm 2 de milieu adipogénique standard, spécialement conçu pour la différenciation MSC. </li><li> Maintenir les cultures à 37 ° C dans 5% de CO 2 en changeant l&#39;ensemble des supports 48 par heure. NOTE: Il est fortement recommandé d&#39;utiliser les médias de différenciation standards disponibles dans le commerce pour la reproductibilité du test. Après 2/3 semaines dans des conditions de différenciation, les dépôts de calcium apparaissent dans ostéogéniques induit des cultures, tandis que des gouttelettes lipidiques intracellulaires accumulation est évident dans les cellules adipogènes induite. </li><li> Aspirer et jeter les milieux de culture, puis laver avec du D-PBS. </li><li> Fixer les cultures en ajoutant 1 ml de 4% (p / v) de paraformaldehyde pendant 15 minutes à température ambiante. </li><li> Pour supprimer fixateur ajouter D-PBS, incuber pendant 2 min et versez. Répétez le lavagedeux fois. </li><li> Colorer un &quot;No Diff&quot; en même temps que les deux «ostéo» marqué puits dans une solution fluorescente spécifique hydroxyapatite et un &quot;No Diff&quot; avec les deux &quot;Adipo&quot; marqué puits dans 200 nM solution rouge Nil. Incuber pendant 30 min à température ambiante , 11,12. </li><li> Retirer la coloration des solutions et laver dans D-PBS deux fois. </li><li> Retirer du D-PBS, ajouter du D-PBS supplémenté avec 50% (v / v) de glycérine et de procéder à l&#39; imagerie 7 9 10. </li></ol> 5. MPC Spheroid Germination Assay <ol><li> Pour produire sphéroïdes 3D, poser des gouttes de 20 pi de suspension fraîchement isolés de MPC (1,5 x 10 4 cellules / goutte) sur la surface intérieure d&#39;un plat couvercle Petri. NOTE: Comme des gouttes de manipulation pourraient conduire à leur rupture, il est fortement recommandé de les poser en excès. </li><li> utiliser avec précaution le couvercle pour récapituler une boîte de Pétri contenant du D-PBS pour empêcher la pendaison chute évaporation. Incuber à 37 ° C dans 5% de CO 2la nuit pour permettre aux cellules d&#39;agréger en sphéroïdes 3D. </li><li> Définir un gel épais de protéines murines matrice extracellulaire (ECM) en ajoutant 300 uL d&#39;aliquotes de protéines d&#39;ECM standards dans une plaque de pré-réfrigérée culture à 24 puits et incuber à 37 ° C pendant 30 min. </li><li> Basculez avec précaution sur le plat couvercle Petri et ramasser doucement les sphéroïdes à l&#39;aide d&#39;une pipette Pasteur stérile. </li><li> Déposer sphéroïdes sur le gel de protéine d&#39;ECM, ajouter 700 ul de parties aliquotes de milieu de croissance endothélial cellulaire VEGF riche standard et laisser incuber à 37 ° C dans 5% de CO2. </li><li> Après 24 heures et à 7 jours de culture, prendre des photos des cultures 3D à 4X puissance de grossissement. Évaluer la germination de sphéroïdes appliquant un logiciel d&#39;analyse d&#39;image en mesurant la distance radiale entre la dernière cellule d&#39;invasion et le bord sphéroïde. mesures répétées le long d&#39;au moins 20 directions différentes. la distance moyenne est considéré comme positif lorsque 50 um ou plus. </li></ol>

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</ol>

Les auteurs n’ont pas d’intérêts financiers concurrents ou d’autres conflits d’intérêts.

Au cours des dernières décennies, les CSM ont fait l’objet de recherches approfondies et d’évaluations précliniques en vue d’une éventuelle application dans le traitement de divers troubles osseux/articulaires, immunologiques, neurologiques, cardiovasculaires, gastro-intestinaux et hématologiques14,15. L’isolement facile et peu coûteux de CSM multipotentes, à partir de nombreux tissus différents, ainsi que leur absence d’immunogénicité significative16, contribuent à faire de ces cellules l’une des populations cellulaires les plus intéressantes à appliquer dans les thérapies cellulaires. Néanmoins, la très faible fréquence dans le tissu d’origine représente une grande limitation à l’application des CSM en clinique, forçant l’expansion de ces cellules, in vitro, avant la perfusion ou la transplantation. 
Les cultures MSC élargies ont révélé des niveaux élevés d’hétérogénéité et de variabilité17-19 , ce qui rend difficile l’obtention d’un consensus sur les protocoles de production et de caractérisation des MSC. De plus, des études récentes ont suggéré la présence de plusieurs ancêtres in vivo des CSM dans un large éventail de tissus, ce qui contribue à l’hétérogénéité de la culture10,20. En fait, il a été proposé que des conditions de culture particulières puissent sélectionner ou simplement promouvoir des sous-populations spécifiques de progéniteurs de CSM présents, en pourcentages divers, dans des échantillons « bruts » et non traités comme la moelle osseuse (hBM-MNCs) ou les tissus adipeux (fraction vasculaire stromale)2. Ainsi, la variabilité des populations cellulaires initiatrices de CSM, ainsi que le grand nombre de protocoles d’enrichissement/isolement et de culture différents appliqués, représentent un grand obstacle à la définition de thérapies réalisables à base de CSM.
Un facteur crucial affectant l’hétérogénéité des cultures MSC est la supplémentation sérique21. Entre nos mains, le remplacement du FBS par du PhABS dans les cultures primaires à partir de MH-MNC, combiné à un ensemencement à haute densité sur des plastiques hydrophobes, a conduit à l’isolement d’une nouvelle population cellulaire hautement adhérente avec des caractéristiques biologiques distinctes appelées MPCs5,6. Nous avons observé que l’ajout de petits pourcentages de PhABS aux cultures primaires FBS permettait également l’isolement des MPC, suggérant la présence d’agents inducteurs de MPC dans le sérum humain6. À l’heure actuelle, le protocole d’isolement/caractérisation des MPC est une méthode unique disponible pour obtenir des MPC presque pures. Le protocole a été soigneusement ajusté et il est hautement reproductible pour le criblage de qualité des préparations MPC avant d’autres applications.
Les MPC pourraient être utilisées comme source pour la production de MSC, limitant ainsi la variabilité introduite par l’utilisation de matières premières non fractionnées. La définition précise des multiples étapes caractérisant la différenciation mésengène des MPC rapportée9 permettrait une expansion synchronisée des cellules mésenchymateuses. Néanmoins, cette dernière condition a pu être réalisée exclusivement en appliquant une population de MPC hautement purifiées, en conséquence de la caractérisation des produits cellulaires obtenus par le protocole décrit ici, résultats d’une importance cruciale. Cette méthode d’isolement a été rapportée permettant la récupération des MPC avec une pureté généralement autour de 95 %. Cependant, la variabilité donneur/patient, ainsi que la variabilité liée aux différents lots de sérum humain mélangé appliqués, pourraient conduire à un pourcentage significatif de cellules de type CSM co-isolées avec des CMP, dans des conditions sélectives. 
Il n’est pas clair si ces cellules « contaminantes » de type CSM pourraient provenir des autres progéniteurs in vivo décrits dans la moelle osseuse22 ou d’une différenciation incontrôlée et spontanée des CPM. Dans tous les cas, un pourcentage constant de cellules de type MSC dans les produits MPC annule la possibilité d’appliquer ces cellules comme matériau de départ homogène pour l’expansion MSC. Ainsi, il a été suggéré ici une méthode simple et peu coûteuse, basée sur la résistance du MPC à la digestion de la trypsine, augmentant la pureté des produits MPC. Des résultats similaires, voire meilleurs, pourraient être obtenus en matière de purification des cultures MPC par le tri cellulaire fluorescent ou magnétique effectuant une appauvrissement en CD73 et/ou CD90, mais en prolongeant considérablement le temps de traitement et en augmentant les coûts.
De plus, les MPC ont montré l’expression de marqueurs associés à la pluripotence et de Nestin, tous rapidement perdus lors de la différenciation mésengène7. Le test de germination a révélé la capacité de la MPC à envahir le gel de protéine ECM murin. Pris ensemble, ces résultats indiquent que les MPC doivent être considérées comme un progéniteur plus immature, conservant le potentiel angiogénique. Néanmoins, l’enthousiasme initial pour le potentiel de différenciation mésodermique des MPC est en train de s’estomper. En fait, après plus de 7 ans d’études sur les MPC, le potentiel mésengène et angiogénique a été largement décrit5-9, mais la différenciation vers d’autres cellules d’origine mésodermique fait encore défaut. Ainsi, nous proposons ici une nouvelle définition, plus rigoureuse, de ces cellules en tant que « cellules progénitrices mésangiogéniques », en maintenant l’acronyme MPCs.
Nous pensons également que la plupart des controverses sur le potentiel angiogénique des CSM pourraient être liées à la composition hétérogène des cultures élargies composées de sous-populations de CPM et de CSM en pourcentages variables23.
Enfin, les MPC pourraient également jouer un rôle crucial pour la mise en œuvre de CBMP applicables à la reconstruction tissulaire, car ces cellules pourraient également soutenir la néo-vascularisation. En fait, les études futures sur la régénération devraient prendre en considération le fait que la croissance tissulaire nouvellement formée devrait être soutenue par une néo-angiogenèse concomitante. La coexistence du potentiel mésengène et angiogénique dans les MPC pourrait améliorer significativement le potentiel de régénération de nouvelles approches thérapeutiques impliquant ces cellules intéressantes.

Les cellules souches mésenchymateuses (CSM) ont une valeur clinique pertinente pour leur capacité de différenciation de lignées multiples et de leur capacité à soutenir l&#39; hématopoïèse, pour sécréter des facteurs de croissance / cytokines , ainsi que pour jouer un rôle dans l&#39; immunorégulation 1. Dans la définition de la production et de l&#39; application à base de MSC thérapies cellulaire ont fait l&#39;objet d&#39; une vaste recherche clinique et pré-clinique 2, avec une attention particulière à la réglementation internationale spécifique pour la sécurité et l&#39; efficacité de la cellule produit médicinal (CBMP) traitements 3 base. MSCs humaines sont largement cultivées dans des milieux contenant des suppléments et des réactifs d&#39;origine animale, tel que le sérum fœtal bovin (FBS) et de la trypsine bovine. Par conséquent, aux côtés de risques infectieux associés à la manipulation des cellules, les patients sont également confrontés à prion exposition ainsi que les risques immunologiques liés à des protéines, des peptides ou d&#39;autres biomolécules d&#39;origine animale qui pourraient persister après la récolte de cellules et Transplantation 4. Pour contourner le problème, nous avons cultivé l&#39;os humain MSCs -derived dans un milieu exempt d&#39;animaux de moelle (HBM), en remplacement de FBS avec humain regroupé type AB sérum (PhABS). Dans ces conditions, aux côtés de MSCs croissance, nous avons identifié une nouvelle population de cellules. Ces cellules sont morphologiquement et phénotypique différent de MSCs et ont montré un profil d&#39;expression des gènes distinctifs ainsi que les propriétés caractéristiques culture / adhérence. Ils conservaient les deux cellules mesengenic et le potentiel angiogéniques et ont donc été nommés mésodermique progénitrices (PPM) 5. Par la suite, nous avons été en mesure de définir les conditions de culture sélective et reproductibles pour générer au PPM haute qualité de pureté 6. Nous avons également étudié les propriétés morphologiques et biologiques des PPM. Les PPM ont montré être nestine positif, lent dans le cyclisme, Ki-67-négatif, et avec des chromosomes caractérisés par de longs télomères 5. Ils ont exprimé plurFacteurs de transcription ipotency associé MSC principaux régulateurs Runx2 et Sox9 7 octobre-4 et Nanog plutôt que. Phénotypique, PPMs exprimé endogline (CD105) au niveau inférieur à MSCs tout en manquant des marqueurs mésenchymateuses CD73, CD90, CD166. PPM a également montré un motif distinctif de molécules d&#39;adhésion caractérisés par l&#39; expression cohérente de PECAM (CD31), intégrines αL (CD11a), aM (CD11b), aX (CD11c) ainsi que β2 intégrine (CD18) qui soutient spécifiquement les structures podosomes-like 8 . Dans les médias de l&#39; expansion de MSC standard, PPM différencié rapidement en MSCs par une étape intermédiaire , avec l&#39;activation de Wnt5 / calmoduline signalisation cellulaire 9. PPM a également conservé des propriétés angiogéniques, comme l&#39;a démontré leur capacité à germer à partir de sphéroïdes dans murins matrice extracellulaire (ECM) cultures protéines 3D. Le potentiel angiogénique a été rapidement perdu après différenciation MPC le long de la lignée mesengenic. Nous présentons ici protocols optimisés pour isoler et caractériser PPMs hautement purifiés à partir d&#39;échantillons de sang HBM. protocoles reproductibles pour MPC mesengenic et la différenciation angiogéniques sont également décrits.

<table><tbody><tr><td>Matrigel Console de membrane basale</td><td>BD Bioscience (San Jose, CA-USA)</td><td>354230</td><td>Protéines ECM murines Concentration de stock : 100 % (9 - 12 mg/ml) Concentration finale : 100 %</td></tr><tr><td>Saline tamponnée au phosphate de Dulbecco (D-PBS)</td><td>Sigma (St. Louis, MO, USA)</td><td>D8537</td><td></td></tr><tr><td>70 &mu ; m Filters</td><td>Miltenyi Biotec (BergischGladbach, Allemagne)</td><td>130-095-823</td><td></td></tr><tr><td>Ficoll-Paque PREMIUM&nbsp ;</td><td>GE Healthcare (Uppsala, Suède)</td><td>17-5442-03</td><td>milieu pour centrifugation à gradient de densité discontinuos</td></tr><tr><td>Sérum humain de type AB regroupé (PhABS)</td><td>LONZA (Walkersville MD-USA)</td><td>14-490E</td><td>Concentration finale : 10 %</td></tr> <tr><td>Glutamax-I</td><td>ThermoFisher (Waltham,&nbsp ; MA USA)</td><td>35050-038</td><td>L-Glutamine stabilisée Concentration stock : 100x Concentration finale : 2 mM</td></tr><tr><td>d’albumine sérique bovine (BSA)</td><td>Sigma (St. Louis, MO, USA)</td><td>A8412</td><td>Concentration stock : 7,5 % Concentration finale : 0,5 %</td></tr><tr><td>Azoture de sodium</td><td>Sigma (St. Louis, MO, USA)</td><td>S8032</td><td>Concentration finale : 0,02</td></tr> % <tr><td>Pénicilline/Streptomycine (Pen Strep)</td><td>Gibco ( Grand Island, NY, États-Unis)</td><td>15070-063</td><td>Antibiotiques Concentration du stock : 5 000 UI/ml de pénicilline, 5 000 &#956 ; g/ml Streptomycine Concentration finale : 50 UI/ml de pénicilline, 50 &#956 ; g/ml</td></tr><tr><td>Fiole de culture de streptomycine T-75 pour cultures en suspension</td><td>Greiner Bio-one&nbsp ; (Frickenhausen, Allemagne)</td><td>658 190</td><td></td></tr><tr><td>Fiole de culture T-75 traitée TC</td><td>Greiner Bio-one&nbsp ; (Frickenhausen, Allemagne)</td><td>658170</td><td></td></tr><tr><td>ThermoFisher TrypLE Select</td><td>(Waltham,&nbsp ; MA USA)</td><td>12563-011</td><td>Solution de détachement de protéases exemptes d’animaux Concentration de stock : 1x Concentration finale : 1x</td></tr><tr><td>Trypsin/EDTA</td><td>ThermoFisher (Waltham,&nbsp ; MA USA)</td><td>15400-054</td><td>Phenol red free Concentration de stock : 0,5 % Concentration finale : 0,25 %</td></tr> <tr><td>anticorps anti-CD90 APC. (CD90)</td><td>MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Allemagne)</td><td>130-095-402</td><td>Concentration finale : 1:40</td></tr><tr><td>d’anticorps anti-CD45 APC-Vio770 (CD45)</td><td>MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Allemagne)</td><td>130-096-609</td><td>Concentration finale : 1:40</td></tr><tr><td>d’anticorps anti-CD73 PE (CD73)</td><td>MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Allemagne)</td><td>130-095-182</td><td>Concentration finale : 1:40</td></tr><tr><td>d’anticorps anti-CD31 PE Vio-770 (CD31)</td><td>MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Allemagne)</td><td>130-105-260</td><td>Concentration finale : 1:40</td></tr><tr><td>Anticorps IgG1 APC de souris</td><td>MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Allemagne)</td><td>130-098-846</td><td>Concentration finale : 1:40</td></tr><tr><td>Anticorps IgG2a APC Vio770 de souris</td><td>MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Allemagne)</td><td>130-096-637</td><td>Concentration finale : 1:40</td></tr><tr><td>Anticorps IgG1 PE de souris</td><td>MiltenyiBiotec ( BergischGladbach, Allemagne)</td><td>130-098-845</td><td>Concentration finale : 1:40</td></tr><tr><td>Anticorps IgG1 PE Vio-770 de souris</td><td>MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Allemagne)</td><td>130-098-563</td><td>Concentration finale : 1:40</td></tr><tr><td>Low Glucose Dulbecco’s Modified Eagle Medium&nbsp ; (DMEM)</td><td>ThermoFisher (Waltham,&nbsp ; MA USA)</td><td>13-1331-82</td><td>Sans rouge de phénol milieu essentiel minimal Concentration stock : 1 000 mg/L de glucose</td></tr><tr><td>Sérum fœtal bovin&nbsp ; (FBS)</td><td>ThermoFisher (Waltham,&nbsp ; MA USA)</td><td>10500</td><td>Concentration stock :0.2 mg/ml Concentration finale : 2 &mu ; g/ml</td></tr> de <tr><td>réactif anti-décoloration Prolong Gold avec 4',6-diamidino-2-phénylindole</td><td>Invitrogen (Waltham, MA,&nbsp ; États-Unis)</td><td>P-36931</td><td>Milieu d’enrobage aqueux + DAPI Concentration finale : 1x</td></tr><tr><td>Paraformaldéhyde</td><td>Sigma (St. Louis, MO, USA)</td><td>P6148</td><td>Fixatif Concentration finale : 4 %</td></tr><tr><td>LAB-TEK lames de chambre à deux puits</td><td>Sigma (St. Louis, MO, USA)</td><td>C6682</td><td></td></tr><tr><td>Anticorps anti-Nestin [clone 10C2]</td><td>Abcam (Cambridge, UK)</td><td>ab2035</td><td>Concentration du stock : 1 mg/ml Concentration finale : 7 &mu ; g/ml</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 555 Phalloidin</td><td>ThermoFisher (Waltham,&nbsp ; MA USA)</td><td>A34055</td><td>Concentration de stock : 200 UI/ml Concentration finale : 5 UI/ml</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Euroclone (Milan, Italie EMR237500</td><td></td> <td>Concentration finale : 0,05 %</td></tr><tr><td>MesenPRO RS Medium&nbsp ; (MSC-RS moyen)</td><td>ThermoFisher (Waltham,&nbsp ; MA USA)</td><td>12746-012</td><td></td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 kit SFX anti-souris</td><td>ThermoFisher (Waltham,&nbsp ; MA USA)</td><td>A31619</td><td>Anticorps secondaire anti-souris de chèvre + amplificateur de signal Concentration stock : 2 mg/ml Concentration finale : 2 &mu ; g/ml</td></tr><tr><td>Pipette Pasteur</td><td>Kartell Labware&nbsp ; (Noviglio (MI), ITALIE )</td><td>329</td><td></td></tr><tr><td>StemMACS AdipoDiff&nbsp ; Média</td><td>MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Allemagne)</td><td>130-091-679</td><td></td></tr><tr><td>StemMACS OsteoDiff&nbsp ; Média</td><td>MiltenyiBiotec (BergischGladbach, Allemagne)</td><td>130-091-678</td><td></td></tr><tr><td>Ostéoimage Dosage de minéralisation osseuse</td><td>LONZA (Walkersville MD-USA)</td><td>PA-1503</td><td>Solution de coloration fluorescente spécifique à l’hydroxyapatite</td></tr><tr><td>50 ml Tube conique en polystyrène</td><td>Greiner bio-one (Kremsm&uuml ; nster Autriche)</td><td>227261</td><td></td></tr><tr><td>ThermoFisher rouge du Nil</td><td>(Waltham,&nbsp ; MA USA)</td><td>N1142</td><td>Solution de coloration fluorescente pour lipides Concentration stock : 100 mM Concentration finale : 200 Nm</td></tr><tr><td>Glycérine</td><td>Sigma (St. Louis, MO, USA)</td><td>G2289</td><td>Concentration finale : 50 %</td></tr><tr><td>Boîtes de Pétri Polistirene</td><td>Sigma (St. Louis, MO, USA)</td><td>P5606</td><td></td></tr><tr><td>Plaques à 24 puits traitées TC</td><td>Greiner Bio-one GmbH (Frickenhausen, Allemagne)</td><td>662160</td><td></td></tr><tr><td>Milieu de croissance endothéliale, EGM-2 BulletKit&nbsp ; (AGE-2)</td><td>LONZA (Walkersville MD-USA)</td><td>CC-3162</td><td>Milieu de croissance des cellules endothéliales riche en VEGF</td></tr><tr><td>Leica Qwin Image Analisys Software</td><td>Leica (Wetzlar, Allemagne)</td><td></td><td>Logiciel d’analyse d’images</td></tr></tbody></table>

isoler cellules progénitrices mesangiogenic (ppm) de human bone marrow

Isolating Mesangiogenic Progenitor Cells (MPCs) from Human Bone Marrow

Dans une étude de recherche visant à isoler des cellules stromales mésenchymateuses (CSM) dérivées de la moelle osseuse humaine (CSM) pour des applications cliniques, nous avons identifié une nouvelle population cellulaire spécifiquement sélectionnée pour la croissance dans un milieu supplémenté en sérum humain. Ces cellules sont caractérisées par des caractéristiques morphologiques, phénotypiques et moléculaires distinctes des CSM et nous les avons nommées cellules progénitrices mésodermiques (MPC). Les MPC sont rondes, avec une région centrale épaisse et hautement réfringente ; Ils présentent une forte adhérence résistante à la trypsine au plastique. L’incapacité à étendre directement les MPC a révélé qu’ils sont lents à cycler. C’est aussi ce que suggère la négativité du Ki-67. D’autre part, la culture de MPC dans un milieu standard conçu pour l’expansion des MSC a donné naissance à une population de cellules de type MSC à croissance exponentielle. En plus de montrer une capacité de différenciation mésenchymateuse, les MPC ont conservé un potentiel angiogénique, confirmant leur nature progénitrice de lignées multiples. Nous décrivons ici un protocole optimisé et hautement reproductible pour isoler et caractériser les hBM-MPC par cytométrie en flux (CD73, CD90, CD31 et CD45), l’expression de la nestine et l’organisation de l’actine F. Des protocoles de différenciation mésengène et angiogénique des MPC sont également fournis. Ici, nous suggérons également une nomenclature plus appropriée pour ces cellules, qui a été rebaptisée « cellules progénitrices mésangiogéniques ».

Les conditions de culture sélective décrites ici ont permis l&#39;isolement d&#39;une nouvelle population de cellules adhérentes et presque monomorphe que 1,0% de la HBM-MNC (0,5 - 2,0 x 10 6 HBM-SMN de 5 - 10 ml d&#39;échantillons BM frais) 5,6 . Nous avons identifié ces grands (40 - 60 m de diamètre), arrondie, les cellules au repos, Ki-67-négatives PPM 5. Morphologiquement, ils sont caractérisés par un oeuf-forme distinctive frit avec une région centrale épaisse entourée d&#39;une périphérie mince plat montrant beaucoup de filopodes à une puissance de grossissement (flèches blanches sur la figure 1 A.1). Allongement polaire de la limite externe de la cellule est souvent observée (flèches noires sur la figure 1 A.1). Une telle morphologie est clairement différente de l&#39;apparence mésenchymateuses de cellules stromales fusiforme typique rapportée dans des cultures de MSC standards. Cytométrie de flux a montré plus de 95% des PPM fraîchement isolés pour exprimer CD31 et CD45 en mmarqueurs associés de esenchymal CD90 et CD73 13 étaient indétectables (Figure 1 A.2). Nous considérons cet ensemble restreint de quatre antigènes comme indicatif pour les PPM. D&#39; autres caractéristiques distinctives des PPM sont en pointillés distribution F-actine révélant un certain nombre de structures de podosomes-like (rouge dans la figure 1 A.3) et l&#39; expression intense de nestine (vert sur ​​la figure 1 A.3), qui est détecté dans les cellules coloré avec l&#39;anticorps témoin isotypique (données non présentées). PPMs culture dans standard RS moyen conçu pour obtenir des résultats d&#39;expansion MSC dans la différenciation rapide dans les cellules MSC-like en croissance exponentielle (Figure 1 B.1). Après deux passages cellules finalement passer leur phénotype de CD73 neg neg CD90 CD45 + CD31 + CD73 + CD90 à + CD45 neg neg CD31 (Figure 1 B.2). Dans le processus, PPMs re-organize F-actine en fibres de stress alors que l&#39; expression de la nestine devient limitée à quelques rares cellules (Figure 1 B.3). MPC différenciation mesengenic en un phénotype MSC comme défini se produit par deux étapes distinctes révélées par différentes morphologies cellulaires. Après une semaine en milieu MSC RS une population résiduelle de cellules MPC-like est encore détectable dans une couche confluente de plat, des cellules multibranchées polygonales (P1-MSCs dans la Figure 2 A). Un autre passage est nécessaire pour obtenir une culture presque monomorphe de cellules MSC comme la broche en forme (P2-MSCs dans la Figure 2 A). Ces cellules en croissance exponentielle peuvent facilement se différencier en ostéoblastes ou adipocytes lorsqu&#39;ils sont transférés dans des milieux sélectifs pendant au moins 2 semaines, confirmant ainsi leur MSC nature. Dans ostéogéniques induite cultures, les dépôts de calcium peuvent être détectés par l&#39; une tache Alizarine-S colorimétriques ou des colorants fluorescents spécifiques (vert dans la figure 2 B). Après que les cellules d&#39;induction adipogéniquesmontrer gouttelette lipidique accumulation comme l&#39;a révélé soit colorimétriques Oil Red ou fluorescent rouge Nil tache (rouge dans la figure 2 B). MPC typage a été confirmée par la germination dosage de l&#39;angiogenèse. PM ont montré leur capacité d&#39;envahir (plus de 50 pm) de gel de protéine d&#39;ECM sphéroïdes de souris 3D après 24 h VEGF-stimulus (figure 2 C). Après que les cellules envahissant d&#39;une semaine ont été détectés à 300-600 um de distance. A l&#39; inverse, la capacité d&#39;invasion a été perdu dans P2-après différenciation des MSC mesengenic (figure 2 D). <img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/54225/54225fig1.jpg" /> Figure 1. PPMs fraîchement isolés ont des caractéristiques distinctives. La culture HBM-MNC dans DMEM / 10% PhABS pendant sept jours donne lieu à une population de PPM de repos (A) facilement distinguables de MSCs (B) </strong&gt; en termes de morphologie (A.1, B.1, barres d&#39;échelle = 100 um), phénotype (A.2, B.2), F-actine de distribution (rouge en A.3, B.3), et expression de la nestine (vert en A.3, B.3, barres d&#39;échelle = 20 pm). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54225/54225fig1large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> <img alt="Figure 2" src="/files/ftp_upload/54225/54225fig2.jpg" /> Figure 2. PPMs Différencier en MSCs standard et Afficher Germination angiogenèse in vitro. Le remplacement de DMEM / PhABS avec RS disponibles dans le commerce à moyen conçu pour l&#39; expansion MSC déclenche l&#39; induction mesengenic des PPM. Après une semaine en culture quelques PM résiduels sont encore détectables (P1-MSC) , tandis qu&#39;un autre passage dans du milieu CSM-RS conduit à une population de cellules confluentes MSC-like (P2 MSCs, A barres d&#39;échelle = 100 um). P2-MSCs différencier en ostéocytes terminale ou adipocytes sous des stimuli appropriés comme révélé par le dépôt de calcium (vert B) et de l&#39; accumulation de lipides de gouttelettes (rouge B, barres d&#39;échelle = 200 um), respectivement. PPMs montrent la germination cohérente de sphéroïdes en gel de protéine de ECM murin (C) à une différence avec P2-MSCs (D, barres d&#39;échelle = 1,0 mm). <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/54225/54225fig2large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a>

Nous décrivons ici un protocole optimisé et hautement reproductible pour isoler les cellules progénitrices mésodermiques (MPC) de la moelle osseuse humaine (hBM). Les MPC ont été caractérisées par cytométrie en flux et expression de la nestine. Ils ont montré leur capacité à donner lieu à des cultures cellulaires de type CSM à croissance exponentielle tout en conservant leur potentiel angiogénique.

Isoler cellules progénitrices Mesangiogenic (PPM) de Human Bone Marrow

In a research study aimed to isolate human bone marrow (hBM)-derived Mesenchymal Stromal Cells (MSCs) for clinical applications, we identified a novel ...

L'objectif général de cette procédure est d'isoler des cellules progénitrices mésangiogéniques, ou MPC, à partir de la moelle osseuse humaine par des conditions de culture sélectives. Nous évaluons à la fois leur potentiel mésogénique et angiogénique. Les cellules progénitrices mésangiogéniques sont identifiées en faible pourcentage à l'aide d'une culture cellulaire mesen-ki-ma-stro-mo optimisée pour une application clinique.Lorsque le FBS est remplacé par du sérum humain. Cette technique est unique en ce sens qu'elle permet l'isolement très reproductible d'un grand nombre de CPN alli-pol-onifiés, adaptés à l'angiogenèse par bourgeonnement, ainsi que la génération de cultures synchronisées de CSM. Nous avons fait cette découverte lorsqu'après plusieurs digestions de cultures de CSM en sérum talgrum, quelques cellules de forme œuf sur le plat sont restées attachées, puis se sont différenciées en CSM après un traitement au FPS.Pour isoler les cellules mononucléées (MNC) de la moelle osseuse humaine, commencez par diluer cinq à 10 millilitres de moelle osseuse fraîche jusqu'à un volume total de 50 millilitres avec du DPBS, puis mélangez la solution cellulaire par retournement. Ensuite, répartissez équitablement 25 millilitres de cellules dans deux nouveaux tubes coniques de 50 millilitres et ajoutez 25 millilitres de DPBS frais à chaque tube, puis mélangez à nouveau par retournement. Laissez ensuite reposer les cellules à température ambiante afin de permettre la séparation des fragments osseux minéraux et de la graisse de la solution.Après 10 minutes, utilisez une pipette Pasteur pour retirer soigneusement la graisse en surface et filtrez les suspensions cellulaires à travers des filtres individuels de 70 microns sans perturber les culots de fragments osseux minéraux. Pour isoler la couche de MNC, déposez 20 à 25 millilitres de moelle osseuse diluée au-dessus de 1,007 gramme par millilitre de milieu de gradient de densité à température ambiante dans chacun des deux tubes de 50 millilitres, puis séparez les cellules par centrifugation. Ensuite, utilisez une pipette Pasteur stérile pour rassembler les anneaux blanchâtres de cellules situés aux interfaces dans un nouveau tube de 50 millilitres.Lavez les cellules mononucléées isolées avec du milieu de culture frais pendant cinq minutes à 400 ×g et à température ambiante. Ensuite, resuspendez le culot dans cinq à dix millilitres de milieu de culture frais. Pour isoler les MPC, équilibrez des flacons T75 hydrophobes avec 15 millilitres de milieu de culture frais à 37 degrés Celsius et cinq pour cent de dioxyde de carbone.Après 30 minutes, ensemencer quatre à six fois 10 à la puissance sept cellules mononucléées de moelle osseuse humaine par flacon pour une incubation de 48 heures. Au deuxième jour, éliminer le milieu et les cellules non adhérentes des flacons et alimenter les cellules avec 15 millilitres de milieu de culture frais. Remettre les cultures dans l'incubateur pendant six à huit jours.À la fin de l'incubation, laver les cellules adhérentes avec du DMEM frais. Incuber ensuite les cellules avec deux millilitres de solution de détachement sans composant d'origine animale pendant cinq à quinze minutes à 37 degrés Celsius. Lorsque les cellules se sont détachées du fond du flacon, ajouter 10 millilitres de milieu de culture frais pour arrêter la réaction, puis recueillir les cellules par centrifugation et resuspendre le culot dans un à deux millilitres de milieu de culture frais.Après avoir compté les plaques MPC, mettre en culture deux fois dix puissance quatre cellules par centimètre carré dans des flacons de culture T75 traités pour la culture tissulaire, puis laisser les cellules s’adhérer toute la nuit dans 15 millilitres de milieu de culture frais dans l’incubateur de culture cellulaire. Le lendemain matin, remplacer le milieu de culture par 200 microlitres par centimètre carré de milieu de culture pour cellules stromales mésenchymateuses (MSC) ou milieu d’expansion des MSC, et poursuivre la culture pendant sept à dix jours supplémentaires. Lorsque les cultures ont atteint la confluence, réaliser une sous-culture à raison de trois à cinq fois dix puissance trois cellules par centimètre carré jusqu’à obtention d’une nouvelle confluence au passage deux des MSC, puis effectuer une digestion protéasique pour récupérer les cellules comme décrit précédemment.Plaquez deux fois dix puissance quatre cellules par centimètre carré dans des plaques de 6 puits traitées pour la culture tissulaire et du milieu d'expansion frais. Après avoir fait repousser les cultures jusqu'à confluence, marquez deux puits comme étant sans différenciation et renouvelez le milieu d'expansion. Marquez deux puits comme étant destinés aux ostéoblastes et remplacez le milieu par 200 microlitres par centimètre carré de milieu ostéogénique standard spécifiquement conçu pour la différenciation des CSM.Ensuite, marquez deux puits comme sites adipo et remplacez le milieu par 200 microlitres par centimètre carré de milieu adipogénique standard spécifiquement conçu pour la différenciation des CSM. Remettez les cellules dans l’incubateur de culture cellulaire pendant deux à trois semaines, jusqu’à ce que les cellules soient différenciées. Puis, procédez à la détection fluorescente des dépôts extracellulaires de calcium et à l’accumulation de gouttelettes lipidiques intracellulaires.Pour produire des sphéroïdes tridimensionnels, déposez un grand nombre de gouttes de 20 microlitres de suspension fraîchement isolée de MPC sur la surface intérieure du couvercle d'une boîte de Pétri. Une fois toutes les gouttes placées, posez soigneusement le couvercle sur une boîte de Pétri contenant du DPBS afin d'éviter l'évaporation des gouttes suspendues, puis placez la boîte dans l'incubateur de culture cellulaire pendant la nuit. Le lendemain matin, ajoutez 300 microlitres d'aliquots de protéines matricielles extracellulaires standards dans chaque puits d'une plaque de culture de 24 puits préalablement refroidie à quatre degrés Celsius, puis laissez gélifier les protéines matricielles à 37 degrés Celsius pendant 30 minutes.Ajoutez 700 micro litres de milieu de croissance endothélial riche en facteur de croissance endothélial vasculaire standard sur les protéines de la matrice extracellulaire gélifiées. Lorsque les cellules progénitrices mésenchymateuses se sont agrégées en sphéroïdes tridimensionnels, retournez soigneusement le couvercle de la boîte de Pétri et utilisez une pipette de Pasteur stérile pour récolter délicatement les sphéroïdes. Enfin, ensemencez les sphéroïdes dans les puits de culture et replacez la plaque dans l'incubateur.Sur le plan morphologique, les CMP se caractérisent par leur forme distinctive d'œuf au plat, avec une région centrale épaisse entourée d'une périphérie plate et mince présentant de nombreux filipodes. Une élongation polaire du contour cellulaire externe est également souvent observée. La culture des CMP dans un milieu d'expansion des CSM entraîne une différenciation rapide mais partielle en cellules plates et multipolaires prolifératives, des CMP non différenciées résiduelles restant encore détectables.Après un passage supplémentaire, les cultures donnent lieu à une monocouche de cellules de type MSC en prolifération exponentielle. Au cours de ce processus, les MPC réorganisent leur F-actine en fibres de stress, tandis que l'expression de la nestine se limite à quelques rares cellules. L'analyse en cytométrie en flux des MPC fraîchement isolées montre que plus de 95 % des cellules expriment CD31 et CD45, mais ne possèdent pas les antigènes associés au mésenchyme CD90 et CD73.Ces derniers antigènes sont fortement exprimés uniquement après une différenciation complète en CSM. Leur nature de CSM est confirmée lorsqu'ils sont cultivés dans un milieu différenciant pendant au moins deux semaines, au cours desquelles ces cellules peuvent facilement être induites en ostéoblastes, comme en témoignent leurs dépôts de calcium, ou en adipocytes, comme le montre l'accumulation de gouttelettes lipidiques. Cela confirme la nature de CSM des cultures cellulaires prédifférenciées.Le typage des MPC est en outre confirmé par un test de formation de vaisseaux sanguins en phase de bourgeonnement, au cours duquel les cellules montrent une capacité à envahir un gel de protéines matricielles extracellulaires de type Matrigel® à partir de sphéroïdes tridimensionnels après 24 heures de stimulation par le facteur de croissance endothélial vasculaire. Après une semaine, les cellules envahissantes migrent sur une distance encore plus grande, une capacité d'envahissement qui est perdue chez les CSM de deuxième passage après la différenciation mésangénique. Une fois maîtrisée, la culture de CSM peut être établie en une heure, à condition d'être correctement réalisée, fournissant entre un et deux millions de MPC en moins d'une semaine.Lors de la mise en œuvre de cette procédure, il est important d'évaluer les performances des lots de CR humains avant de les utiliser en culture. À l'heure actuelle, notre protocole d'isolement des MPC est le seul permettant d'obtenir une culture de CM quasi pure et hautement reproductible pour des applications ultérieures en aval. Depuis son développement, cette technique a ouvert la voie aux chercheurs dans le domaine des thérapies cellulaires pour explorer la possibilité d'utiliser les MPC dans la régénération des tissus squelettiques.

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Research

Recherche

JoVE Journal

Developmental Biology

Biologie du développement

Ce protocole décrit l'isolement et à l'expansion ultérieure des cellules stromales mésenchymateuses et les cellules endothéliales formant colonie sans l'utilisation de sérum animal pour générer des paires autologues à des fins de transplantation expérimentale.

Isolement et animale expansion sans sérum du cordon ombilical humain dérivé cellules stromales mésenchymateuses (CSM) et des cellules endothéliales progénitrices Colony Forming (CPEF)

Les vaisseaux sanguins à l'intérieur du squelette port musculaire plusieurs populations de précurseurs multi-lignée humaine qui sont idéales pour les applications de régénération. Cette méthode permet l'isolement de purification simultanée de trois populations de cellules précurseurs pluripotentes respectivement à partir de trois couches de structure des vaisseaux sanguins: les cellules myogéniques endotheliales de l'intima, média de péricytes et les cellules de l'adventice de l'adventice.

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du tissu cardiaque humain héberge des populations de cellules précurseurs pluripotentes périvasculaires qui peuvent être appropriés pour la régénération du myocarde. La technique décrite ici permet l'isolement et la purification simultanée de deux populations de cellules stromales pluripotentes associées aux vaisseaux sanguins d' origine, c. -à- CD146 + CD34 - péricytes et les cellules CD34 + CD146 - cellules de l' adventice, du myocarde humain.

Isolement de périvasculaire Multipotentes Précurseurs cellulaires Populations de Cardiac Human Tissue

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