Name: Le modèle Rongeur de non-artéritique neuropathie optique ischémique antérieure (de rNAION) (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 49 s
Description: Apprenez à créer un modèle rongeur de neuropathie optique ischémique antérieure non artéritique pour étudier les mécanismes de réponse à l'accident vasculaire cérébral et tester l'efficacité des agents neuroprotecteurs.

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Nous remercions les nombreux étudiants et stagiaires qui ont travaillé sur ce modèle pour améliorer son efficacité, et de comprendre ses mécanismes. Des remerciements spéciaux sont dus au Dr de. Mary Johnson (University of Maryland-Baltimore), Nitza Goldenberg-Cohen (Hôpital Schneiderman enfants, Petah-Tikva, Israël), Charles Zhang (Einstein Medical College, Bronx, NY), et Valérie Touitou (Hopital Salpetrie, Paris, France). Cette étude a été financée en partie par RO1 EY015304 au SLB.

Ce protocole a été approuvé par l&#39;Université du Maryland Comité d&#39;utilisation des institutions de protection des animaux et (IACUC, Baltimore, MD, USA) 1. Experimental Set-up <ol><li> Faire une coutume conçue lentilles de contact à partir d&#39;une qualité optique claire circulaire de 7 mm de diamètre en plexiglas, d&#39;une épaisseur de 3 mm. Couper les lentilles circulaires avec une perceuse à colonne. Utilisez un foret standard pour rendre la courbe intérieure, et enfin polir les courbes extérieures et intérieures à l&#39;aide d&#39;un polissoir de lentilles de contact des grains ultrafine (1000/3000). </li><li> Préparer 2,5 mM Rose Bengale (RB) de pH 7,4 tampon phosphate salin (PBS) à l&#39;avance, le filtre stériliser avec un filtre à seringue de 0,45 micron et stocker 1 ml aliquotes à -20 ° C dans un récipient étanche à la lumière pour un maximum de 6 mois. NOTE: L&#39;utilisation d&#39;animaux mâles consanguines albinos, tels que Sprague Dawley minimise les différences de réponse dépendant des souche, permet une facilité accrue de l&#39;induction et réduit la variabilité qui peut se produire avec oestrus cycling femelle. </li><li> Mettre en place la fréquence doublée néodyme-grenat d&#39;yttrium aluminium (Fd-YAG) du laser médical ophtalmique, qui génère une lumière laser de 532 nm. Monter le laser sur une lampe à fente ophtalmique Haag-Streit en utilisant un adaptateur laser ophtalmique standard. Ce dispositif disponible dans le commerce permet la visualisation simultanée de l&#39;application localisée des yeux et laser de l&#39;animal. Le laser médical a également un faisceau de visée pour la focalisation et centration appropriée en utilisant même taille de la tache que l&#39;induction laser. les paramètres de puissance de laser sont les suivants: <ol><li> Pour rat rNAION induction: utiliser 500 um tache de taille / 50 laser mW / 1000 msec / 1000 intervalle msec. </li><li> Pour la souris rNAION induction: changer la taille de la tache à 300 um pour les plus petits disque optique et de laisser d&#39;autres paramètres le même que le réglage du rat. </li><li> utiliser systématiquement un dispositif de mesure de puissance laser pour assurer la puissance de sortie du laser. </li></ol></li></ol> 2. Procédure expérimentale <ol><li> Allumez la puissance du laseret mettre en place le paramètre laser approprié. Chauffer le laser pendant au moins cinq minutes avant utilisation. </li><li> Peser l&#39;animal pour déterminer la dose appropriée pour la kétamine / xylazine et RB colorant. Anesthésier l&#39;animal par injection intraperitoneale de 1 ml / kg de mélange de 80 mg / ml de kétamine et 4 mg / ml de xylazine. </li><li> Laissez l&#39;animal dans une cage chauffée jusqu&#39;à entièrement anesthésié. Vérifiez aucune réponse à des stimuli aversifs (queue ou d&#39;un orteil pincement). Vérifier les animaux pour la profondeur de l&#39;anesthésie toutes les 10 min. </li><li> Dilater les élèves de l&#39;animal avec 1% tropicamide et anesthésier la surface de l&#39;œil avec 0,5% proparacaine. Si l&#39;utilisation d&#39;animaux pigmentés, tels que Long Evans, 2,5% des gouttes oculaires néosynéphrine va augmenter la dilatation des pupilles. </li><li> Utilisez des ciseaux pour couper les moustaches à proximité de la bouche sur le côté pour être incités à ne pas bloquer la vue. </li><li> Mettre une goutte de 1% de méthylcellulose ou d&#39;une autre goutte de couplage ophtalmique à l&#39;intérieur de la lentille de contact sur mesure, et ensuite appliquer la lentille sur til oeil de rat. </li><li> Placer l&#39;animal sur une plate-forme adaptée à la hauteur de la lampe à fente. Fixer la tête de l&#39;animal à un angle de 45 °, de sorte que l&#39;oeil est perpendiculaire à la lampe à fente et le faisceau laser. </li><li> Visualisez l&#39;oeil à travers la lampe à fente ophtalmique. Assurez-vous que le faisceau de visée est la bonne taille ainsi que ciblée et centrée directement sur le nerf optique visualisé. Photographie du fond de la rétine à l&#39;aide d&#39;un appareil photo numérique à haute ASA (1200 - 2000) vitesse monté sur l&#39;une des pièces de l&#39;oeil de la lampe à fente avec un adaptateur personnalisé. REMARQUE: La capacité de voir les vaisseaux choroïdiens révèle la transparence de la rétine. Ceci est un signe important afin d&#39;être en mesure de détecter l&#39;ischémie rétinienne plus tard, ce qui peut confondre l&#39;interprétation si elle se produit. rNAION est une ischémie du nerf optique, qui se traduit par une perte isolée RGC, alors que les résultats de l&#39;ischémie rétinienne en dommages à la rétine qui affecte toutes les cellules des couches rétiniennes internes. </li><li> Eventuellement, autre image de la rétine etnerf optique à l&#39; aide d&#39; un domaine-optique spectrale cohérence tomographe (SD-OCT 8) pour évaluer l&#39;œil induit non. Numériser en face (figure 3B), ainsi que 7 scans en coupe à travers la rétine (figure 3C). Le SD-OCT imagerie utilise la même lentille de contact utilisée pour l&#39;induction laser. </li><li> Injecter 1 ml / kg par voie intraveineuse RB par veine de la queue, et attendre pendant 30 secondes, puis d&#39;activer la puissance du laser. Cette temporisation permet au BO de distribuer uniformément dans toute la circulation. Nous utilisons une impulsion laser de 50 mW à un sec / impulsion. énergies supérieures (≥ 60 mW) peuvent endommager la rétine ou de provoquer une ischémie vasculaire rétinienne. Attention: Assurez - vous que tout le monde a une paire de lunettes de filtrage de sécurité laser de la longueur d&#39; onde de blocage approprié pour empêcher la lumière laser parasite entrant dans l&#39;œil de l&#39; enquêteur. REMARQUE: L&#39;administration du laser doit être administré rapidement après l&#39;injection IV RB étant donné que le colorant est rapidement éliminé de la circulation sanguine. Plus l&#39;induction laser, le plus sévère du nerf optique ischémie. En général, les animaux sont donnés 7 - 12 impulsions par seconde dans une succession rapide. Le contact de la lumière laser avec le colorant circulant donne les vaisseaux du nerf optique une belle lueur d&#39; or qui peut être vu à travers la lampe à fente (figure 4B). Cela prouve que le colorant a été injecté par voie systémique et distribué dans le flux sanguin. Si la lueur est faible, ou pas du tout (figure 4A), le colorant n&#39;a pas été injecté par voie intraveineuse. Dans ce cas, ne pas donner une seconde injection immédiatement, puisque l&#39;animal aura besoin de récupérer pendant au moins deux jours avant réinjection. </li><li> Immédiatement après l&#39;induction, retirer la lentille de contact. Couvrir les deux yeux avec ophtalmique antibiotique triple (Neosporin / polymyxine / bacitracine) pommade avec la dexaméthasone, et placez l&#39;animal sur un coussin chauffant à 37 ° C dans une seule cage logé sous observation jusqu&#39;à ce que la récupération complète. <ol><li> Nettoyez la lentille de contact avec distillée water et essuyez avec un chiffon de nettoyage non abrasif pour une utilisation future. </li><li> Deux jours après l&#39;induction d&#39; évaluer le nerf optique oedème à la fois par la photographie de fundus de couleur et SD-OCT analyse 8. NOTE: En comparant le degré de nerf optique oedème donne une estimation de la gravité du nerf optique ischémie. A deux jours, la marge du nerf optique disque est floue, et les veines rétiniennes sont légèrement dilaté, par rapport à l&#39;oeil (induite par non) controlatéral. Effectuer électrorétinogramme (ERG) et flash visuel potentiel évoqué (VEP 11) à deux et quatre semaines après l&#39; induction pour l&#39; analyse de l&#39; électrophysiologie. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Banik, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nonarteritic+Anterior+Ischemic+Optic+Neuropathy%3A+An+Update+on+Demographics%2C+Clinical+Presentation%2C+Pathophysiology%2C+Animal+Models%2C+Prognosis%2C+and+Treatment%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Experimental+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Nonarteritic Anterior Ischemic Optic Neuropathy: An Update on Demographics, Clinical Presentation, Pathophysiology, Animal Models, Prognosis, and Treatment.</a> J. Clin. Experimental Ophthalmol. 10, 1-5 (2013).</li>
<li>IONDT study group. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characteristics+of+patients+with+nonarteritic+anterior+ischemic+optic+neuropathy+eligible+for+the+Ischemic+Optic+Neuropathy+Decompression+Trial%5BTitle%5D)+AND+%22Arch+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Characteristics of patients with nonarteritic anterior ischemic optic neuropathy eligible for the Ischemic Optic Neuropathy Decompression Trial.</a> Arch Ophthalmol. 114, 1366-1374 (1996).</li>
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<li>Huang, T. L., Chang, C. H., Chang, S. W., Lin, K. H., Tsai, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficacy+of+Intravitreal+Injections+of+Antivascular+Endothelial+Growth+Factor+Agents+in+a+Rat+Model+of+Anterior+Ischemic+Optic+Neuropathy%5BTitle%5D)+AND+%22IOVS%22%5BJournal%5D)">Efficacy of Intravitreal Injections of Antivascular Endothelial Growth Factor Agents in a Rat Model of Anterior Ischemic Optic Neuropathy.</a> IOVS. 56, 2290-2296 (2015).</li>
</ol>

Les auteurs ont rien à révéler.

Bien qu&#39;il existe un certain nombre de modèles de lésions du nerf optique (optique écrasement du nerf 12, section du nerf optique 13, et PION 14), le modèle de rNAION est humain, adaptable à des rats et des souris. Il ressemble plus à l&#39;état clinique humain de NOIAN. Cette condition comprend antérieure progressive du nerf optique œdème, un syndrome du compartiment de nerf optique antérieure, l&#39;ischémie focale axonale, isolé cellules ganglionnaires de la rétine des lésions axo...

Antérieure non - artéritique neuropathie optique ischémique (NOIAN) est une lésion ischémique focal de la partie antérieure du nerf optique (ON) 1. NOIAN est la cause la plus fréquente de soudaine nerf optique perte de vision liée chez les personnes âgées de plus de 50 2. Le mécanisme est considéré comme un syndrome du compartiment qui se traduit par un œdème intraneurale, et provoque une compression des capillaires alimentant les axones dans le nerf optique 3. Depuis l&#39;ON est en fait un système nerveux (CNS) tractus central, le NOIAN rongeur (rNAION) modèle peut être utilisé pour étudier les mécanismes et les réponses aux isolés du SNC substance blanche coups. Le modèle rNAION peut donc être utile à disséquer de nombreux problèmes associés à l&#39;AVC dommages liés à la substance blanche. Il peut être utilisé pour évaluer les différentes stratégies et agents neuroprotecteurs en blanc coup de matière. L&#39;une des caractéristiques les plus attrayantes du modèle est qu&#39;il est, Une procédure non invasive indolore. La puissance du laser peut être ajusté pour produire divers degrés d&#39;altération ischémique. Une autre caractéristique est qu&#39;il repose sur les radicaux superoxydes laser induit endommager l&#39;endothélium capillaire, produisant un dysfonctionnement capillaire progressive. Il est ce dysfonctionnement et progressive oedème qui est censé être remarquablement similaire au mécanisme qui provoque NOIAN. La recherche a montré qu&#39;il ne provoque pas la coagulation capillaire directe, mais fonctionne à travers au moins deux mécanismes: superoxyde mort induite et le décapage d&#39;une partie du capillaire des cellules endothéliales 4 et NFkB (facteur nucléaire kappa-chaîne légère-activateur des cellules B activées ) associée à la régulation inflammatoire dans l&#39; endothélium restante, avec une augmentation du transport du fluide à travers les membranes cellulaires dans l&#39;interstitium 5. La fermeture des capillaires du nerf optique et la compression causées par la suite de l&#39;accumulation de liquide interstitiel dans la tête du nerf optique ischémie. Une image schématique est représenté dansLa figure 2. Le modèle rNAION peut être utilisé dans les deux espèces de rats et de souris 6,7, et on peut faire varier le niveau de sa gravité, d&#39;une lésion bénigne à une destruction complète, mais sans douleur du nerf optique et la rétine, par exemple comme l&#39;occlusion de l&#39;artère centrale de la rétine (CRAO).

<table><tbody><tr><td>Laser 50 mW 532 nm</td><td>Laser ophtalmique standard</td><td>Iridex</td><td></td></tr><tr><td>0 - 100 mW Laser 532 nm</td><td>Technologies</td><td></td> Laserglow <td>Substitut de l’iridex</td></tr><tr><td>Adaptateur de lampe à fente laser</td><td>Iridex</td><td></td><td>SMA Adaptateur couplé pour la sortie laser</td></tr><tr><td>Compteur laser cohérent Fieldmate avec capteur à thermopile</td><td>Cohérent</td><td></td><td>autres également appropriés</td></tr><tr><td>Examen ophtalmique Lampe à fente biomicroscope</td><td>Divers</td><td></td><td>Haag-Streit est le meilleur ; versions moins chères disponibles sur ebay</td></tr><tr><td>Rose Bengal</td><td>Sigma</td><td>330000-1G</td><td>Agent photoducteur</td></tr><tr><td>Fundus Lentille de contact ou verre couvre-slip</td><td>custom/Cantor and Nissel (Royaume-Uni)</td><td></td><td>Lentille plastique planoconvexe conçue sur mesure pour l’examen de la vue et l’induction</td></tr><tr><td>Tropicamide 1 %</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pâte à polir</td><td>Tamiya Tamiya, INC</td><td>87068</td> lentille <td>de contact de polissage</td></tr><tr><td>2,5 % Hypromellose (Goniovisc)/1 % Méthycellulose</td><td>HUB Pharmaceuticals</td><td>agent de couplage pour</td><td></td> lentilles de contact</tr><tr><td>2,5 % Néosynéphrine Gouttes ophtalmiques</td><td>Alcon labs</td><td></td><td>Agent dilatateur de la pupille</td></tr><tr><td>Tropicamide 1 %</td><td>Alcon labs</td><td></td><td>agent dilatateur de la pupille</td></tr><tr><td>0,5 % Proparacaïne</td><td>Alcon labs</td><td></td><td>topique Anesthésique</td></tr><tr><td>30 G seringue à insuline à aiguille fusionnée</td><td>Divers</td><td>Divers</td><td>pour l’injection intraveineuse de rose bengale</td></tr><tr><td>Pommade antibiotique ophtalmique avec dexaméthasone ajoutée (pommade antibiotique triple)</td><td>Divers</td><td></td><td>Divers Appliquer après induction pour minimiser les cicatrices cornéennes</td></tr><tr><td>Heidelberg Corporation Domaine spectral-Tomographe par cohérence optique</td><td>Heidelberg Mesures</td><td>de base et post-induction de la Corporation for Optical Coherence ; non essentielles pour l’induction</td><td></td></tr></tbody></table>

le modèle rongeur de non-artéritique neuropathie optique ischémique antérieure (de rnaion)

The Rodent Model of Nonarteritic Anterior Ischemic Optic Neuropathy (rNAION)

La neuropathie optique ischémique antérieure non artéritique (NAION) est une lésion ischémique focale du nerf optique qui affecte 1/700 individus tout au long de leur vie. NAION entraîne un œdème du nerf optique, une perte sélective des neurones des cellules ganglionnaires rétiniennes (CGR) et une atrophie du nerf optique. Un modèle de NAION chez le rongeur qui exprime la plupart des caractéristiques et des séquelles de NAION a été développé, qui s’applique à la fois aux rats et aux souris. Ce modèle utilise une application laser focale de longueur d’onde de 532 nm pour éclairer un colorant photoactif, Rose Bengal (RB), afin de provoquer des lésions capillaires et des fuites au niveau du nerf optique antérieur ciblé (la région laminaire). Après l’induction de rNAION, il y a une ischémie précoce du nerf optique, un œdème du nerf optique et une inflammation intraneurale, suivis d’une RGC sélective et d’une perte axonale. Étant donné que le nerf optique est un faisceau de substance blanche du SNC, le modèle rNAION est applicable aux études mécanistes de l’ischémie sélective de la substance blanche, ainsi qu’aux analyses neuroprotectrices et aux mécanismes à court et à long terme de la réponse gliale et neuronale à l’ischémie.

<html> La visualisation des lentilles de contact activé centrale de la rétine (figure 1). Le spot laser focale illumine le disque optique à l&#39;arrière de la rétine (figure 2). La rétine induite non normale est représentée en image par une lampe à fente bio-microscope (figure 3A) et par SD-OCT (figure 3B et 3C). Lors de l&#39; induction par laser, en l&#39; absence de colorant est présent dans la circulation, la lumière...

Le rapport suivant décrit comment reproduire le modèle de rongeur de la neuropathie optique ischémique antérieure non artéritique (rNAION), en utilisant les paramètres appropriés de colorant, de lentille de contact et de laser. Nous révélons également les étapes appropriées pour évaluer la lésion de rNAION in vivo.

Le modèle Rongeur de non-artéritique neuropathie optique ischémique antérieure (de rNAION)

Nonarteritic anterior ischemic optic neuropathy (NAION) is a focal ischemic lesion of the optic nerve that affects 1/700 individuals throughout their ...

L'objectif général de cette procédure est de produire un modèle rodent de neuropathie optique ischémique antérieure, afin d'étudier les mécanismes de réponse aux accidents vasculaires cérébraux et d'analyser l'efficacité d'agents neuroprotecteurs dans le traitement des accidents vasculaires du nerf optique. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine des accidents vasculaires du nerf optique.Notamment les mécanismes d'œdème, l'inflammation post-accident vasculaire cérébral et les voies de protection et de réparation. Le principal avantage de cette technique est que les lésions ischémiques sont limitées à la portion antérieure du nerf optique. Sans chirurgie, la technique est indolore.Et la gravité des lésions peut être modulée de manière reproductible à volonté. Cette méthode évite la douleur associée à de nombreux modèles de lésions nerveuses, notamment la compression ou la section du nerf optique.Il permet également une analyse détaillée des effets de l'ischémie exogène isolée sur une seule classe de neurones, in vivo. Commencez par obtenir une lentille de contact sur mesure conçue selon les spécifications indiquées. Préparez également du rose bengal à 2,5 milimolaire dans du tampon salin phosphate à pH 7,4.Les solutions sont stérilisées à l’aide d’un filtre à seringue de 0,5 micron. Prélevez des aliquotes d’un millilitre, placez-les dans un récipient hermétique protégé de la lumière et conservez-les à moins 20 degrés Celsius pendant jusqu’à six mois. Le jour de l’intervention, préparez le laser ophtalmologique médical au néodyme-yttrium-aluminium-grenat à fréquence doublée.Qui génère une lumière laser de 532 nanomètres. Monter le laser sur une lampe à fente ophtalmique Haag-Streit, à l'aide d'un adaptateur laser ophtalmique standard, afin de permettre la visualisation simultanée de l'œil de l'animal et l'application du spot laser. Allumer le laser et le laisser chauffer pendant au moins cinq minutes avant utilisation.Régler les paramètres appropriés de puissance du laser pour l'animal utilisé dans l'expérience. Monter une caméra numérique haute sensibilité sur l'un des oculaires de la lampe à fente, à l'aide d'un adaptateur sur mesure. Après avoir anesthésié correctement l'animal d'expérience et vérifié le niveau adéquat d'anesthésie par l'absence de réponse à une pincée du orteil.Dilater les pupilles des animaux avec de la tropicamide à un pour cent. Et anesthésier la surface de l'œil avec de la proparacaine à 0,5 pour cent. Ensuite, utiliser les ciseaux pour couper les vibrisses près du museau du côté de l'induction, afin de permettre une vue claire de l'œil.Ensuite, déposez une goutte de méthylcellulose à un pour cent, ou une autre goutte ophtalmique de couplage, à l'intérieur de la lentille de contact sur mesure. Puis appliquez la lentille sur l'œil du rat. Placez l'animal sur une plateforme réglée à la hauteur de la lampe à fente.Placer la tête de l'animal à un angle de 45 degrés, de sorte que l'œil soit perpendiculaire au faisceau de la lampe à fente et du laser. Ensuite, visualiser l'œil à l'aide de la lampe à fente ophtalmique. Dans un œil sain, la tête du nerf optique présente une bordure nette et un pourtour rougeâtre Q. Les vaisseaux rétiniens sont fins et régulièrement répartis.Veillez à ce que le faisceau de visée ait la taille correcte, soit bien focalisé et centré directement sur le nerf optique visualisé. Ensuite, photographiez le fond de l’œil à l’aide de l’appareil photo numérique.Ensuite, injecter un milligramme par kilogramme de bengale rose par voie intraveineuse par le biais de la veine de la queue. Et attendre 30 secondes. Une injection lisse, continue et interveineuse de bengale rose doit être suivie, après 30 secondes, par une exposition laser de la tête du nerf optique.La variation de durée entre ces deux étapes entraîne une augmentation de la variabilité du degré de lésion du nerf optique. Ce qui peut introduire un biais dans vos résultats. Après 30 secondes, activez la puissance du laser.Le nerf optique présente une lueur dorée dans les vaisseaux, émergeant du disque au point d'impact du laser. Cela indique la présence de rose bengale dans la circulation sanguine, illuminé par la lumière laser verte. Immédiatement après l'induction, retirez la lentille de contact et appliquez sur les deux yeux une pommade ophtalmique contenant un antibiotique triple et de la dexaméthasone.Héberger l'animal seul dans une cage sur un tapis chauffant à 37 degrés Celsius, sous surveillance étroite jusqu'à récupération complète. Cette image colorée du fond d'œil montre un gonflement du nerf optique et une pâleur du disque optique, avec perte de l'irrégalité choroidienne environnante.Les veines sont élargies et incurvées. Cette image SDOCT de face n, après induction, montre un œdème du disque et une dilatation veineuse. Le sens de balayage est indiqué par une flèche verte ; la coupe transversale visible sur l'image suivante est générée à partir de l'intérieur du cadre vert.Ici, une coupe transversale montre un œdème du disque du nerf optique, mis en évidence par une intensité grise réduite et une augmentation de l'épaisseur de la couche des fibres nerveuses rétiniennes. Cohérent avec une teneur en eau plus élevée. Le diamètre du nerf optique intrarétinien, indiqué entre les flèches noires, est augmenté.Lors de la réalisation de cette procédure, il est important de disposer d'une lentille de contact propre et lisse, ou d'une lamelle, permettant une bonne visualisation du nerf et un focalisation précise de la lumière laser sur le nerf. Après cette procédure, d'autres méthodes telles que l'immunohistochimie, l'analyse des cytokines ou l'analyse de l'expression génique peuvent être réalisées afin de répondre à des questions supplémentaires.Comme les réponses inflammatoires après un accident vasculaire cérébral, ou les modifications des tissus cibles.

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Ce protocole montre comment rétrograde marquer les cellules ganglionnaires de la rétine, et la façon de faire ultérieurement une lésion du nerf optique écraser dans le but d'analyser la rétine survie des cellules ganglionnaires et l'apoptose. Il s'agit d'un modèle de maladie expérimentale pour différents types de neuropathie optique, notamment un glaucome.

Un modèle Optic Nerve Crush blessures murins pour étudier la rétine de survie des cellules ganglionnaires

L'objectif de ce protocole est d'induire photochimique lésion ischémique du nerf optique postérieure chez le rat. Ce modèle est essentiel à l'étude de la physiopathologie de la neuropathie optique ischémique postérieure, et des approches thérapeutiques pour ceci et d'autres neuropathies optiques, ainsi que d'autres maladies ischémiques du système nerveux central.

Modèle de rat de Photochimiquement induite postérieur neuropathie optique ischémique

Ici, nous présentons le protocole de néovascularisation choroïdienne induite par laser (CNV) de souris, un modèle expérimental qui recrée les caractéristiques vasculaires de la dégénérescence maculaire liée à l’âge (DMLA) néovasculaire. Une fois maîtrisé, il peut induire de manière fiable et efficace la CNV en tant que système modèle pour tester diverses mesures expérimentales.

Un modèle de souris pour induite par laser néovascularisation choroïdienne

Le glaucome se caractérise par des lésions des cellules ganglionnaires rétiniennes. L’induction du glaucome dans des modèles animaux peut donner un aperçu de l’étude de cette maladie. Ici, nous décrivons une procédure qui induit une perte de CGR dans un modèle de rat in vivo et démontrons la préparation de rétines entières pour l’analyse.

Glaucomes induisant une procédure dans un<em&gt; In Vivo</em&gt; Modèle de rat et Whole-mount Retina Préparation

La dégénérescence des cellules ganglionnaires rétiniennes (CGR) secondaire survient généralement dans le glaucome. Cette étude décrit une approche innovante du dispositif pour la résection partielle du nerf optique. L’utilisation de cette approche du dispositif encombrant étend le champ d’application du modèle et permet l’exploration des mécanismes de la lésion secondaire au CGR d’une manière nouvelle.

Résection partielle du nerf optique chez le rat : un modèle mis en place avec une nouvelle approche du dispositif d’évaluation secondaire dégénérescence des cellules ganglionnaires rétiniennes

Ici, nous présentons un protocole pour induire l'hypertension oculaire et la neurodégénérescence glaucomatous dans les yeux de souris par injection intracamérale d'huile de silicone et la procédure pour l'enlèvement d'huile de silicone de la chambre antérieure pour retourner la pression intraoculaire élevée à Normal.

Un modèle d'hypertension oculaire induite par l'huile de silicium réversible chez les souris

La rétinopathie induite par l’oxygène (OIR) peut être utilisée pour modéliser les maladies rétiniennes ischémiques telles que la rétinopathie de la prématurité et la rétinopathie diabétique proliférative et pour servir de modèle pour des études de preuve de concept dans l’évaluation des médicaments antiangiogéniques pour les maladies néovasculaires. OIR induit une néovascularisation robuste et reproductible dans la rétine qui peut être quantifiée.

Modèle de rétinopathie induite par l’oxygène pour les maladies rétiniennes ischémiques chez les rongeurs

Ici, nous décrivons un modèle de souris de l’ischémie rétinienne par occlusion commune transitoire d’artère carotide utilisant des sutures simples et une pince. Ce modèle peut être utile pour comprendre les mécanismes pathologiques de l’ischémie rétinienne provoquées par des anomalies cardio-vasculaires.

Un modèle murin des dommages rétiniens ischémiques induits par occlusion commune transitoire d’artère carotide

Cet article présente des instructions détaillées pour effectuer un écrasement du nerf optique dans un modèle de lapin en utilisant des techniques chirurgicales ophtalmiques standard.

Une approche chirurgicale pour l’écrasement du nerf optique dans un modèle de lapin

Ce protocole décrit une technique unique utilisant une approche transconjonctivale pour accéder au nerf optique du rat pour des injections.

Approche transconjonctivale pour l’injection dans le nerf optique du rat

Apprenez à créer un modèle rongeur de neuropathie optique ischémique antérieure non artéritique pour étudier les mécanismes de réponse à l'accident vasculaire cérébral et tester l'efficacité des agents neuroprotecteurs.

Le modèle Rongeur de non-artéritique neuropathie optique ischémique antérieure (de rNAION)

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