Name: Induire complète Polyp Régénération du aboral Physa de la mer Anémone Starlet Nematostella vectensis (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-14T13:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 17 s
Description: Découvrez la régénération complète du polype chez l'anémone de mer Nematostella vectensis. Cette méthode permet d'étudier les mécanismes de régénération tissulaire chez les cnidaires.

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1. Conditionnement des animaux pour la température, la nutrition et la Lumière Cycle foncé / <ol><li> Obtenir les adultes Nematostella de l&#39;un des nombreux laboratoires dans le monde entier Nematostella, ou un fournisseur sans but lucratif (tableau 1) </li><li> Maintenir Nematostella à température constante (typiquement entre 18 et 21 ° C) dans l&#39;obscurité, dans &quot;1 / 3x&quot; Artificial eau de mer (ASW) à une salinité de 12 parties par millier (ppt). Maintenir les cultures dans des plats simples sodocalcique culture en verre, généralement 250 ml ou 1,5 L capacité de 11. Note: Ces conditions de culture simples sont couramment utilisés chez les laboratoires qui étudient Nematostella, mais les soins de culture peuvent également être automatisés 19. </li><li> Parasites Nematostella Artemia fraîchement écloses nauplii 2 - 4x par semaine. Kystes Hatch Artemia à pleine puissance (36 ppt) ou 1 / 3x ASW à 30 ° C, dans un plat en verre rectangulaire peu profonde 20 ou dansun nombre quelconque de petite échelle, les couvoirs artémias commerciales ou artisanales. Si un incubateur ne sont pas disponibles, les crevettes vont éclore à la température ambiante, mais le faire plus lentement. Remarque: Cela exige souvent plus de 24 h pour l&#39;achèvement. </li><li> Remplacer l&#39;eau de culture anémone au moins une fois par semaine. Pour une meilleure santé des adultes, bien propre (sans savon) la culture bols une fois par semaine des sécrétions muqueuses accumulées, qui enrobent le bol et peuvent piéger les aliments non consommés et des déchets, et enchevêtrer les animaux. </li></ol> 2. Sélection et Relaxation des animaux nutritionnellement Conditionné <ol><li> Sélectionnez les polypes de taille appariés d&#39;environ la même longueur (3 - 5 cm, quand naturellement détendu) et placez-les dans un bol séparé de la colonie pendant trois jours avant l&#39;amputation. Remarque: Le nombre d&#39;animaux sélectionnés pour la coupe sera déterminée par l&#39;expérience menée, bien sûr, mais en général, nous recommandons au moins cinq animaux par point d&#39;échantillon avec six répétitions. Ainsi,Dans une expérience typique d&#39;un minimum de 30 animaux seraient choisis. En général, il est sage de choisir plus que le nombre minimum (30) depuis les amputations qui sont irrégulières (voir ci-dessous) peuvent ensuite affecter la notation. </li><li> Retirer le plat d&#39;animaux sélectionnés de l&#39;incubateur à la lumière ambiante au moins une heure avant l&#39;amputation. Remarque: L&#39;exposition à la lumière et les vibrations de la manipulation ambiante entraînera probablement les animaux à se contracter, de sorte qu&#39;ils doivent être adaptés ou &quot;détendue&quot; par incubation sur le banc de laboratoire. Les animaux deviennent réfractaires au toucher et exposition à la lumière et à ce moment peuvent être déplacés par pipetage doux. </li><li> Facultatif: Anesthetize les animaux en ajoutant 7,5% MgCl 2 (en 1 / 3x ASW). Ajouter délicatement la solution de MgCl2 dans le bol avec une pipette en plastique mL 5 standard. Remarque: Bien que les animaux finiront par devenir accoutumés à la lumière et à la manipulation physique, il peut être avantageux pour anesthésier les animaux à maintenir ou à «fixer» til se détendit état après ils sont devenus 16,21,22 allongé. </li><li> Utilisez un large alésage (&gt; 0,5 cm) de pipette en plastique pour transférer (en 1 / 3x ASW) cinq animaux de la piscine à être amputé, dans le fond d&#39;un plat de coupe de verre stérile de 100 mm de diamètre contenant 12 ppt ASW. Placer le plat sur la scène d&#39;un stéréomicroscope avec grossissement variable entre 10 - 40X. Remarque: Si les animaux ne sont pas anesthésiés et détendu pour la coupe, ils peuvent encore répondre au toucher et à l&#39;éclairage de stéréoscope et donc peut-être besoin de quelques minutes pour devenir à nouveau détendu. </li></ol> 3. Amputation <ol><li> L&#39;utilisation d&#39;un scalpel stérile, amputer la physe aboral de chaque polype, dans le but d&#39;obtenir une partie de la physe qui est à peu près aussi longtemps qu&#39;il est large et ne contenant pas de mésentère. Remarque: Le site idéal de coupe est juste aboral à la résiliation du mésentère. Au plan de coupe il y a une transition de mésentère propre à l minceines correspondant à chaque insertion mésentérique (voir la figure 1, des flèches). Absence de mésentère est critique , car elle produit des muqueuses qui peuvent faciliter «brancher» le trou 17,30. <ol><li> Placer la lame de scalpel en contact avec l&#39;animal à l&#39;emplacement désiré de l&#39;amputation. Pour ce faire, soit sans aide (freehand), ou en saisissant doucement le corps de l&#39;animal avec un # 5 forceps (style Dumont ou similaire). </li><li> Couper à travers le tissu en tirant parti de la lame incurvée du scalpel dans un mouvement «à bascule» à travers le corps. Remarque: Le tissu doit couper proprement que le scalpel est secoué et de libérer la section désirée de physe du donneur. Toutefois, si un petit morceau de tissu relie encore le corps et la physe, le couper avec le scalpel. Ne pas essayer de séparer les morceaux connectés en tirant, car cela pourrait endommager la physe. </li></ol></li><li> Retirez chaque «donneur» polype amputée de l&#39;antenne et le retourner à un sepabol taux étiqueté «amputés» mis en commun; ce jour, le bol et le retourner à la culture de réserve. Note: les polypes Amputé vont guérir la plaie aboral dans un jour et peut ensuite être alimenté normalement. Ils régénérer un physa recherche normale dans les deux semaines à quel point le physa peut être amputé de nouveau si on le souhaite. </li><li> Rincer le physa excisée qui restent dans le plat de coupe dans 12 ppt ASW, puis transférer chaque physa à un puits stérile séparé dans une plaque de culture cellulaire multi-puits qui a déjà 10 ml de 12 ppt ASW dans chaque puits. Remarque: Cet exemple utilise une plaque de six, avec chaque puits détenant 10 ml d&#39;eau de mer et cinq physa excisée. Dans l&#39;eau de mer générale devrait couvrir la physe suffisamment pour éviter l&#39;exposition à l&#39;air due à la circulation dans la manipulation et l&#39;évaporation potentielle. La plaque ou les puits doivent avoir un couvercle. </li><li> Répétez les étapes 3.1 à 3.3 pour recueillir au moins 5 physa dans chaque puits réservé pour chaque traitement expérimental. </li><li> Incuber la physe à une température qui fournide le meilleur taux de régénération pour les interrogatoires expérimentaux prévus. Placer la plaque contenant le physa dans un incubateur à température régulée, à une température fixe déterminée par le taux de régénération désiré. Remarque: Le physa va régénérer les tissus manquants et former un polype complet lorsqu&#39;ils sont incubés à des températures entre 15 et 27 ° C. Le taux de régénération est dépendante de la température à l&#39;exception des deux premières étapes. La journée moyenne pour atteindre l&#39;étape 4 pour toutes les températures est de 7 jours après la coupe et cela coïncide aussi avec la régénération à 21 ° C. A 27 ° C, l&#39;étape 4 est atteinte environ 3 jours plus tôt et à 15 ° C, l&#39;étape 4 est retardé d&#39;environ 3 d par rapport à la régénération à 21 ° C (voir également référence 10). </li></ol> 4. Évaluer la régénération avec le système de stadification Nematostella Régénération (NRSS) <ol><li> Score du physa en utilisant un microscope stéréo-composé avec magnific variablesation (10 - 80X). Note de la physe Nematostella fraîchement coupée comme au stade 0 et continuer la notation à la même heure chaque amputation de poste de jour (dpa) en utilisant le NRSS 10. Remarque: Pour les critères et les détails de mise en scène clés font référence référence 10. <ol><li> Note physa comme au stade 0 (Open Wound) si un physa fraîchement coupé apparaît comme une masse en forme de coupelle ressemblant à un ballon flasque, avec un site de plaie ouverte est susceptible visible. Remarque: Les bords de la plaie peut aussi coller ensemble dès le départ, mais le tissu sera toujours effondré et manquent de rigidité. Les bords de la plaie ouverte peuvent être observés subissant une contraction radiale que la blessure guérit. </li><li> Note physa comme au stade 1 (Wound fermé) si la plaie d&#39;amputation apparaît fermé. Remarque: l&#39;emplacement de la plaie correspondra au pôle oral avenir. La surface extérieure autour du pôle oral avenir peut commencer à afficher des arcs distincts correspondant aux endodermiques radialement symétrique insertions mésentériques sous-jacentes. </li><li> Score phYSA comme au stade 2 (radial arches) si la surface du pôle apparaît gonflé par voie orale, révélant huit arcs relief disposés selon un motif symétrique radialement et séparées par des rainures. Observer les petites bulles hémisphériques au sommet des arcs. Ils seront à peu près aussi haute que large, de passage probable, et initialement composé d&#39;une couche de cellules ectodermiques unique. Remarque: Dans certains cas blebs double couche peuvent se stabiliser. Remarque: À ce ou tard met en scène une couche de mucus peut apparaître pour encapsuler le physa (Figure 2) dans une «gaine» membraneuse. Ce matériau d&#39;encapsulation doit être enlevée pour faciliter la notation. </li><li> Note physa comme au stade 3 (Tentacle) si les bourgeons des tentacules contenant des couches de tissus endodermiques et ectodermiques sont formés de manière stable à l&#39;extrémité orale d&#39;au moins quelques arcs radiaux. Remarque: Les tentacules sont plus longs que larges et sont peu mobiles. Le physa montrera une augmentation, mais l&#39;inflation variable de sorte que rudiment mésentère peut devenir visible étendant à partir de l&#39;insertion mésentérique dans la cavité du corps (cœlentéron). </li><li> Note physa comme au stade 4 (mésos linéaires) si le physa contient huit, mésos visibles distincts qui se prolongent dans le cœlentéron d&#39;insertions dans la paroi du corps, avec des longueurs orales-aboral qui sont plus de deux fois leur largeur radiale mesurée à partir de là où ils semblent se connecter au pharynx à son extrémité aboral (de enterostome). Remarque: Quatre ou moins mésos ont des bords libres internes &quot;plissés&quot;. Le pharynx est visible. Plus de huit tentacules sont visibles, motile et parfois ils se contractent dans le corps. </li><li> Note physa comme au stade 5 (prédominance plissés mésos) si la physe a plus de quatre mésos avec plissage, et le plissage est plus complète et sinueuse qu&#39;à l&#39;étape 4. L&#39;animal a une apparence adulte presque «normal», mais il n&#39;y a pas visible cellules gonadiques. </li></ol></li></ol>

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Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Utilisation de Nematostella comme un modèle de cicatrisation des plaies et la régénération devient de plus en plus populaires. Par conséquent, il est important d&#39;être en mesure de visualiser les modèles morphologiques d&#39;un protocole particulier avant les analyses cellulaires et moléculaires efficaces peuvent être affectées et comparées. Nematostella ont un haut degré de régénération &quot;flexibilité&quot;, être en mesure de réformer presque toute structure manquante amputée en tout lieu, à des...

L&#39;observation de la régénération en une seule hydra a été l&#39;événement séminal dans l&#39;avènement de la biologie comme une science expérimentale 1,2. La régénération reste un phénomène de extraordinairement large appel au biologiste et laïc semblables. Le potentiel pour les biologistes du développement, des cliniciens, des chercheurs en sciences biomédicales et des ingénieurs de tissus pour comprendre et surmonter les limites de la régénération humaine rend la régénération de la biologie plus intrinsèquement intéressante. Maintenant, avec l&#39;utilisation des nouvelles technologies telles que le séquençage du génome et le gain et la perte d&#39;outils de fonction, le champ est prêt à taquiner les mécanismes en dehors de régénération et de comprendre finalement comment diverses espèces peuvent se régénérer tandis que d&#39;autres ne peuvent pas. Le degré de similitude dans les réponses moléculaires, cellulaires et morphologiques reste à élucider, mais jusqu&#39;à présent, il semble que les réponses de base chez les animaux qui peuvent se régénérer est plus semblable que aurait été imagined seulement il y a 3 ans. Cnidaires en particulier, sont facile à régénérer la quasi-totalité de leurs parties du corps au milieu d&#39;un large éventail de la diversité morphologique. Du polype solitaire d&#39;eau douce, Hydra ainsi que les petits polypes marins qui construisent d&#39;immenses récifs coralliens, les siphonophores coloniales complexes, comme l&#39;Homme-O-War portugais, la régénération est souvent un mode de reproduction, en plus d&#39;un mécanisme de la réparation ou la réforme des parties du corps endommagées ou perdues résultant de blessures et de la prédation. Que les diverses espèces de cnidaires utilisent des mécanismes similaires ou différents pour la régénération est une question fondamentalement intéressante 4-6. Nous, et d&#39; autres ont mis au point l&#39;anthozoaire, Nematostella vectensis comme un modèle pour la régénération 7-17. Nous avons récemment développé un système de mise en scène pour décrire la régénération d&#39;un corps entier d&#39;un morceau morphologiquement uniforme du tissu bissectrice des Aboral extrémité du polype 10. Alors que les polypes Nematostella peuvent se régénérer quand bissectrice à tous les niveaux, nous avons choisi de couper les adultes à une position aboral dans la région la plus morphologiquement simple, la physe, en partie parce que cela est proche du plan normal de la fission naturelle et asexuée 18, et aussi parce qu&#39;il permet l&#39;observation et des analyses moléculaires de la façon dont un corps entier est remonté à partir des composants les plus simples morphologiques. Le système de stadification Nematostella Régénération (NRSS) fournit un ensemble relativement simple de repères morphologiques qui pourraient être utilisés pour marquer les progrès de tout aspect de la régénération par une physa amputée, dans des conditions normales de culture ou expérimentalement perturbé des situations telles que les petits traitements de molécules, les manipulations génétiques ou l&#39;altération de l&#39;environnement. Comme prévu, le NRSS est de plus adopté comme un échafaudage morphologique sur lequel les événements cellulaires et moléculaires de la régénération peuvent être référencées10. Enfin , notre méthode de coupe produit un trou béant de plusieurs ordres de grandeur supérieure à la ponction de point de broches utilisé dans une étude récente 17, mais les deux plaies à guérir dans environ 6 heures. Documenter les phases visuellement saisissantes et distinctes de fermeture de la plaie devrait suggérer des approches expérimentales pour expliquer l&#39;apparente indépendance de la taille d&#39;une blessure et le temps qu&#39;il faut pour fermer. Ainsi, une compréhension visuelle plus profonde du processus d&#39;amputation aboral, fourni par ce protocole, aidera d&#39; autres investigations dans ce système de régénération de modèle et d&#39; élargir l&#39;application de ce système de mise en scène en utilisant Nematostella vectensis.

<table><tbody><tr><td>Nematostella vectensis, adultes</td><td>Laboratoire de biologie marine (MBL)</td><td></td><td>fournisseur à but non lucratif</td></tr><tr><td>Plat de culture en verre, 250 mL Plat de culture en verre</td><td>741004</td><td></td><td>250 mL</td></tr><tr><td>Plat de culture en verre, 1 500 mL</td><td>Pipette de transfert en</td> polyéthylène <td>741006</td><td>1 500 mL</td>de Carolina Biological</tr><tr><td>Supply, 5 mL ; mL</td><td>USA Scientific&nbsp ;</td><td>1022-2500</td><td>perçage étroit, pipette de transfert en</td></tr><tr><td>polyéthylène graduée, effilé</td><td>Samco</td><td>202-205</td><td>coupé 1 pouce de pointe pour faire un gros calibre</td></tr><tr><td>Scalpel jetable</td><td>Feather Safety Razor Co. Ltd</td><td>n° 10</td><td>la lame doit être incurvée</td></tr><tr><td>#5 Dumont Pince à épiler à pointe fine</td><td>Roboz</td><td>RS5045</td><td>fournisseurs alternatifs disponibles</td></tr><tr><td>Boîte de Pétri en pyrex, diamètre 100 mm</td><td>Corning</td><td>3160</td><td>peut remplacer d’autres plaques de Petri en verre</td></tr><tr><td>Plaque stérile à 6 puits</td><td>Corning Falcon&nbsp ;</td><td>353046</td><td>ou similaire d’un autre fabricant</td></tr><tr><td>Plaque stérile à 12 puits</td><td>Nunc&nbsp ;</td><td>150628</td><td>ou similaire d’un autre fabricant</td></tr><tr><td>Plaque stérile à 24 puits</td><td>Cellstar, Greiner bio-one</td><td>662-160</td><td>ou similaire d’un autre fabricant Kit d’artémias</td></tr><tr><td>hathery</td><td>Bay de San Francisco ; drsfostersmith.com</td><td>CD-154005</td><td>option pour l’élevage d’artémias</td></tr><tr><td>plat de cuisson en pyrex</td><td>commun dans les épiceries</td><td></td><td>option pour l’élevage d’artémias</td></tr><tr><td>mélange d’eau de mer artificielle 50 gal ou plus&nbsp ;</td><td>Instant Ocean ; drsfoster-smith.com</td><td>CD-116528</td><td>d’autres marques peuvent suffire</td></tr><tr><td>Bac en plastique pour la préparation ASW</td><td>divers</td><td></td><td>courants Poubelle en plastique de 25 gallons OK</td></tr><tr><td>Carboy en polypropylène</td><td>Carolina Biological Supply</td><td>716391</td><td>Pour le stock de travail de ASW @ 12 ppt</td></tr><tr><td>Bécher, gradué, 4 000 mL</td><td>PhytoTechnology Laboratories</td><td>B199</td><td>Pour la dilution de 36 ppt ASW à 12 ppt</td></tr><tr><td>Stéréomicroscope et source lumineuse</td><td>divers&nbsp ;</td><td></td><td>avec grossissement continu de 1 à 40X</td></tr></tbody></table>

induire complète polyp régénération du aboral physa de la mer anémone starlet nematostella vectensis

Inducing Complete Polyp Regeneration from the Aboral Physa of the Starlet Sea Anemone Nematostella vectensis

Cnidaires, et plus particulièrement Hydra, ont été les premiers animaux présentés pour régénérer des structures endommagées ou coupées, et en fait de telles études sans doute lancé l&#39; enquête biologique moderne à travers le travail de Trembley il y a plus de 250 ans. Actuellement , l&#39;étude de la régénération a vu une résurgence en utilisant les deux organismes régénérateurs &quot;classiques&quot;, comme l&#39;hydre, planaria et Urodèles, ainsi qu&#39;un éventail d&#39;espèces couvrant la gamme des métazoaires d&#39;élargissement, des éponges par les mammifères. Outre son intérêt intrinsèque comme un phénomène biologique, de comprendre comment la régénération fonctionne dans une variété d&#39;espèces va nous informer si les processus de régénération ont des caractéristiques et / ou des espèces communes ou des mécanismes cellulaires et moléculaires spécifiques au contexte. La starlette anémone de mer, Nematostella vectensis, est un organisme modèle émergent pour la régénération. Comme Hydra, Nematostella est membre du phylum antique, cnidaires, mais à l&#39; intérieur til anthozoa de classe, un clade jumeau du hydrozoaires qui est évolutivement plus basale. Ainsi , les aspects de la régénération dans Nematostella sera intéressant de comparer et contraster avec ceux d&#39;Hydra et d&#39; autres cnidaires. Dans cet article, nous présentons une méthode pour bisect, observer et classer la régénération de la fin aboral de l&#39;adulte Nematostella, qui est appelé le physa. Le physa subit naturellement la fission comme un moyen de reproduction asexuée, et soit la fission naturelle ou amputation manuelle du physa déclenche re-croissance et la réforme des morphologies complexes. Ici , nous avons codifié ces changements morphologiques simples dans un système de stadification Nematostella Régénération (la NRSS). Nous utilisons la NRSS pour tester les effets de la chloroquine, un inhibiteur de la fonction lysosomale qui bloque autophagy. Les résultats montrent que la régénération des structures polype, en particulier les mésos, est anormal lorsque l&#39;autophagie est inhibée.

La progression des événements morphologiques pendant la régénération en physa coupée est représentée sur la figure 1A, qui comprend des vues représentatives de physa à chaque étape NRSS. Le site typique physa de coupe est indiquée sur l'adulte (pointes de flèches). Les photographies de la figure 1A montrent la régénération progressive des structures orales et le corps de physa fraîchement coupée par polype complètement formé. Figure 1B, C</strong...

Ici, nous montrons comment induire et surveiller la régénération chez l’anémone de mer starlette Nematostella vectensis, un anthozoaire cnidaire modèle. Nous montrons comment amputer et catégoriser la régénération à l’aide d’un système de stadification morphologique, et nous utilisons ce système pour révéler une nécessité d’autophagie dans la régénération des structures polypes.

Induire complète Polyp Régénération du aboral Physa de la mer Anémone Starlet Nematostella vectensis

Cnidarians, and specifically Hydra, were the first animals shown to regenerate damaged or severed structures, and indeed such studies arguably launched ...

L’objectif global de cette procédure est d’illustrer la série prévisible de changements morphologiques qui se sont produits lors de la régénération d’un polype complet à partir d’une minuscule section de tissu prélevée à l’extrémité aborale de Nematostella vectensis Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés en biologie de la régénération, telles que la façon dont les cellules au site d’une plaie se réorganisent et se déploient pour refaire les structures manquantes. J’ai d’abord eu l’idée de cette méthode parce que je voulais voir comment des polypes relativement complexes pouvaient se reconstituer en commençant par le moins d’informations morphologiques possible. La démonstration visuelle de cette méthode est essentielle car la progression du stade après la blessure initiale est parfois masquée par une muqueuse.Généralement, les personnes novices dans cette méthode auront du mal à obtenir une séparation complète du tissu au site de la plaie, en raison de la nature molle, collante et gélatineuse du polype. Commencer cette procédure par le conditionnement de Nematostella vectensis comme décrit dans le protocole textuel. Il est particulièrement important lors de l’utilisation de cette technique que les animaux sélectionnés soient de la même taille et aient le même historique de culture, comme une alimentation identique et d’autres paramètres de condition.Retirez la parabole des animaux sélectionnés de l’incubateur à la lumière de la pièce au moins une heure avant l’amputation. À l’aide d’une pipette en plastique de gros calibre, transférez les cinq animaux de la piscine à amputer dans le fond d’un plat de découpe en verre stérile de 100 millimètres de diamètre contenant de l’eau de mer artificielle à une salinité de 12 parties pour mille. Placez la parabole sur la platine d’un stéréomicroscope avec un grossissement variable entre 10 et 40x.Choisissez des polypes de taille identique et d’environ la même longueur et placez-les dans un bol séparé de la colonie pendant trois jours avant l’amputation. À l’aide d’un scalpel stérile, amputez la physe aborale de chaque polype pour obtenir une section de la physe à peu près aussi longue que large et ne contenant pas de mésentère. Pour ce faire, placez la lame du scalpel en contact avec l’animal au site d’amputation souhaité.Faites-le soit sans aide, soit en saisissant doucement le corps de l’animal avec une pince numéro cinq. Coupez le tissu en tirant parti de la lame incurvée du scalpel dans un mouvement de balancement sur le corps. Retirez chaque polype amputé du donneur de la boîte et remettez-le dans un bol séparé étiqueté Pooled amputees.Après avoir daté le bol, remettez-le en culture mère. Rincez les physes excisées qui restent dans le plat de découpe dans de l’eau de mer artificielle à une salinité de 12 parties pour 1 000. Ensuite, transférez chaque physe dans un puits stérile séparé dans une plaque de culture cellulaire multi-puits contenant 10 millilitres d’eau de mer artificielle à une salinité de 12 parties pour 1 000 dans chaque puits.Répétez ces étapes pour recueillir au moins cinq physes dans chaque puits à réserver pour chaque traitement expérimental. Placez la plaque contenant la physe dans un incubateur à température régulée à une température fixe déterminée par le taux de régénération souhaité. Mesurez la physe à l’aide d’un microscope stéréo composé à grossissement variable.Notez la Nematostella physa fraîchement coupée au stade zéro, et continuez à noter à la même heure chaque jour après l’amputation, ou DPA, à l’aide du NRSS. Classez la physe au stade zéro si une physe fraîchement coupée apparaît sous la forme d’une masse en forme de coupe ressemblant à un ballon flacide avec un site de plaie ouvert qui est probablement visible. Marquez une physe au premier stade si la plaie d’amputation semble fermée.Marquez une physe à la deuxième étape si la surface du pôle auditif semble gonflée, révélant huit arcs surélevés disposés selon un motif radialement symétrique et séparés par des rainures. Au deuxième stade, observez de petites bulles hémisphériques au sommet des arcades qui sont à peu près aussi hautes que larges, probablement transitoires et initialement composées d’une seule couche de cellules ectodermiques. Au fur et à mesure que la physe vieillit, elle peut s’enfermer dans du mucus, qui doit être soigneusement retiré avec des pinces.Marquez une physe au troisième stade si les bourgeons des tentacules contenant des couches de tissu endodermique et ectodermique sont formés de manière stable à l’extrémité auriculaire d’au moins quelques arcs radiaux. Classez un physe au quatrième stade si le physe contient huit mésentères visibles distincts qui s’étendent dans un coelenteron à partir d’insertions dans la paroi corporelle avec des longueurs aborales auditives qui sont plus de deux fois leur largeur radiale mesurée à partir de l’endroit où ils semblent se connecter au pharynx à son extrémité aborale, ou entérostome. Enfin, classez une physe au stade cinq si la physe a plus de quatre mésentères avec plissage, et que le plissage est plus plein et sinueux qu’au stade quatre.Au cinquième stade, l’animal a une apparence adulte presque normale, mais il n’y a pas de cellules gonadiques visibles. Ce groupe de Nematostella physa témoins traitées avec 0,1 pour cent de DMSO s’est complètement régénéré au stade cinq. Les physes traitées à la chloroquine n’ont cependant pas réussi à former complètement des mésentères complets.Un gros plan montre à la fois la présence et l’absence de plissage dans les mésentères d’une physe qui a été incubée dans la chloroquine. Ce graphique illustre les résultats globaux du traitement à la chloroquine. Tout traitement entre 10 et 50 micromolaires provoquait des défauts similaires, principalement l’absence de reformation complète des mésentères en ce sens que les mésentères n’avaient pas de plissage.Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée en moins d’une heure pour chaque plaque de six puits contenant 30 physes coupées. Le pointage est rapide, il faut peut-être une demi-heure pour chaque plaque répétée. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon d’amputer le physe pour visualiser les changements morphologiques qui se produisent lors de la régénération d’un polype complet à partir d’une minuscule section de tissu aboral.Le principal avantage de cette technique est qu’elle fournit des étapes morphologiques dans lesquelles identifier les événements moléculaires sous-jacents à la régénération d’un polype complet à partir d’une tasse de tissu visuellement uniforme. Lors de la tentative de cette procédure, il est important de se rappeler de préconditionner les animaux en fonction de leurs antécédents nutritionnels, de les couper en deux pour exclure le mésentère adulte et de normaliser la taille des physes en régénération pour réduire les variations au sein des traitements. À la suite de cette procédure, les effets de mutations génétiques ou de perturbations de la voie de signalisation avec de petites molécules, par exemple, ont pu être évalués.Ou les changements morphogénétiques pourraient être corrélés à l’analyse microscopique de l’auto-prolifération, au traçage de la lignée ou à l’expression des gènes du site deux. Cette technique permettra aux chercheurs dans le domaine de la biologie de la régénération d’explorer la biologie cellulaire, les voies de signalisation et les processus morphogénétiques qui sous-tendent la remarquable capacité de régénération de cet organisme modèle.

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JoVE Journal

Developmental Biology

Biologie du développement

Méthodes qui produisent des embryons morphant sont indispensables pour étudier les mécanismes de développement et les réseaux de régulation génétique. L'étoile de mer Patiria miniata est un système de modèle émergent de ces études. Nous présentons ici un protocole pour obtenir des gamètes, la production de cultures d'embryons, et la micro-injection rapide de zygotes de cette espèce.

Une méthode pour micro-injection de Patiria minata zygotes

La planaire Schmidtea mediterranea est un excellent modèle pour l’étude des cellules souches et la régénération des tissus. Cette publication décrit une méthode pour éliminer sélectivement un organe, le pharynx, en exposant les animaux à l’azoture de sodium chimique. Ce protocole décrit également les méthodes de suivi de la régénération du pharynx.

Amputation chimique et la régénération du Pharynx dans le planaire Schmidtea mediterranea

Le géant cilié, Stentor coeruleus, est un excellent système pour étudier la régénération et la guérison des plaies. Nous présentons des procédures pour établir des cultures de cellules de Stentor de cellules individuelles ou des fragments de cellules, induisant la régénération de cellules de coupe, chimiquement induisant la régénération de la bande de membranellar et appareil oral, imagerie et analyse des cellules régénération.

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Les cellules sanguines de la drosophile, ou hémocytes, circulent entre les sites résidents et la circulation.  Chez la larve, les hémocytes résidents (sessiles) se localisent dans des microenvironnements inductifs, les poches hématopoïétiques, tandis que les hémocytes circulants se déplacent librement dans l’hémolymphe. L’objectif de ce protocole est l’isolement et la quantification standardisés de ces deux populations d’hémocytes, distinctes sur le plan comportemental mais interchangeables.

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