Name: Reliable Méthode dévaluation de la germination des graines, dormance, et la mortalité sous conditions de terrain (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-06T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 3 s
Description: Découvrez une méthode robuste pour évaluer la germination, la dormance et la mortalité des graines en conditions de terrain. Ce protocole utilise des bandes de graines étiquetées et le test au chlorure de tétrazolium pour quantifier le comportement des graines.

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Ce travail a été soutenu par le grand concours du programme de subventions pour l’évaluation des risques en biotechnologie n° 2006-39454-17438 à A. Snow, K. Mercer et H. Alexander du National Institute of Food and Agriculture du ministère de l’Agriculture des États-Unis. Des expériences utilisant cette méthode ont été menées et soutenues par la station de terrain de l’Université du Kansas, une unité de recherche du Kansas Biological Survey et l’Université du Kansas. Les auteurs tiennent à remercier P. Jourdan et E. Regnier pour les critiques utiles sur les versions antérieures de ce manuscrit. De plus, ce travail a été facilité par les contributions du personnel de la station de terrain de l’Université du Kansas, de la ferme Waterman de l’Université d’État de l’Ohio (OSU), du Centre de germoplasme des plantes ornementales de l’USDA de l’OSU et du laboratoire de biologie des semences du Département d’horticulture et de sciences des cultures de l’OSU, en particulier E. Renze, S. Stieve, A. Evans, et E. Grassbaugh, pour le soutien technique.

1. Recueillir des semences à partir des espèces multiples ou croisements contrôlés d&#39;une espèce unique Note: Cet exemple semences utilisées à partir de 15 types croisées au sein du annuus Helianthus des espèces (de tournesol) en utilisant sauvage, hybride, et les types de cultures que la maternelle (productrice de semences) parent. <ol><li> À la fin de la saison de croissance, de recueillir des têtes de graines matures dans des sacs étiquetés. Nettoyer les graines de la balle et la place des semences dans des enveloppes étiquetées avec des parents de type croix en format standard (ie, x maternelle paternelle). </li><li> graines en vrac ainsi que dans de grandes enveloppes en utilisant des quantités égales de semences à partir d&#39;un nombre égal de types de croix parentales identiques. Par exemple, 100 graines de 10 types croisées avec les mêmes parents maternels et paternels. Etiqueter les enveloppes avec identifiant (type croisé) information. Ces grandes enveloppes sont maîtres de semences pour une utilisation dans le remplissage des bandes d&#39;enterrement dans la section 2. </li></ol><table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody&gt; <tr><td></td><td colspan="3"> Parent maternelle </td></tr><tr><td> Parent Paternal </td><td> Wild: wXw </td><td> F 1: WXC </td><td> Culture: CXC </td></tr><tr><td> Wild: wXw </td><td> 0% wXw </td><td> 25% F 1 xW † </td><td> 50% CXW † </td></tr><tr><td> BC: WxF1 ou F1xW </td><td> 12,5% WxBC </td><td> 37,5% de F 1 XBC </td><td> 62,5% CxBC </td></tr><tr><td> F 1: WXC </td><td> 25% WXF 1 † </td><td> 50% F 1 1 xF </td><td> 75% CxF 1 † </td></tr><tr><td> F 2: F 1 xF 1 </td><td> 25% WXF 2 </td><td> 50% F 1 2 xF </td><td> 75% CxF 2 </td></tr><tr><td> Culture: CXC </td><td> 50% WXC † </td><td> 75% F 1 xC † </td><td> 100% CXC </td></tr></tbody></table> Tableau 1. Parental croix types produites à partir de types de croix hybrides main pollinisation. tournesol culture sauvage ont été produites avec pollinisation manuelle pour une utilisation dans l&#39; expérience de l&#39; enfouissement des semences. Pour tous les types croisés, le parent maternel apparaît en premier et le parent paternel listé seconde. types Cross marqués † font partie des paires réciproques de type cross avec les mêmes allèles% des cultures, mais différents-parents maternels. Le tableau a été précédemment publié dans: Pace, BA et al. (2015) 15. 2. Créez des bandes personnalisées Burial de semences NOTE: Pour cet exemple, nous avons eu trois traitements de la date d&#39;enlèvement et 15 répétitions, donc nous avions besoin de 45 bandes au total. Cet exemple utilise 15 compartiments par bande, nous requis suffisamment de tissu de polyester à mailles fines ou des moustiquaires pour abriter 15, 7 x 10 cm compartiments. Voir Figure 1. <ol><li> Commencez par couper une bande de 20 x 105 cm de tissu pour chaque bande de semences. </li><li> Mesurer et marquer les compartiments, puis plier le tissu en deux. En utilisant un high température pistolet à colle, sceller une courte (10 cm) fin. Une fois que la colle se refroidit légèrement, mais pas complètement, appuyez sur les côtés de tissu ensemble pour créer un joint. ATTENTION: la colle et la colle des conseils d&#39;armes à feu à haute température peuvent provoquer des brûlures en cas de contact avec la peau est prolongée. </li><li> lignes de colle à partir du bord plié à l&#39;extrémité courte ouverte à chaque marque du compartiment. Appuyez sur les deux côtés de tissu ensemble le long des lignes de colle pour assurer des joints sans trous entre les compartiments. Graines migration entre les compartiments contribuent à l&#39;erreur expérimentale. NOTE: Maintenant que les compartiments ont été créés, le bord déplié doit rester ouvert et prêt à recevoir les semences et leurs informations d&#39;identification (croix de nom de type). </li><li> Aléatoirement attribuer des types de traverses de semences à des compartiments pour chaque bande. <ol><li> Remplir les compartiments de semences avec un nombre uniforme de graines (20 pour chaque compartiment sont utilisés dans cet exemple). Pour les étiquettes, utiliser des marqueurs permanents industriels sur coupe à ajustement fléchettes de jardin en plastique de sorte qu&#39;ils soient en mesure derésister à l&#39;enterrement. NOTA: Les méthodes d&#39;étiquetage alternatifs peuvent être utilisés. </li><li> Après chaque compartiment est rempli de semences et son étiquette, sceller le compartiment immédiatement avec le pistolet à colle à haute température. Continuez jusqu&#39;à ce que la bande de graine entière est complètement étanche. Etiqueter bande globale dans le premier compartiment avec répliquée, bloc et / ou des informations de traitement. NOTE: Pour notre étude, puisque nous avons eu des absorptions temporelles, des blocs, et de reproduire des bandes dans des blocs, nous avons inclus toutes ces informations. </li><li> Vérifier les écarts entre les compartiments et place de la colle au besoin avant de passer à la bande suivante. </li></ol></li></ol><img alt="Figure 1" src="/files/ftp_upload/54663/54663fig1.jpg" /> Figure 1. Burial bande de semences schématique. Exemple de bande d&#39;enfouissement montrant l&#39; identification de type croisé pour des compartiments individuels. parent maternelle apparaît en premier avec le parent paternel énumérés seconde. Les couleurs indiquent différentes filiation maternelle,jaune pour les sauvages, bleu pour hybride F 1, et rouge pour les cultures. <a href="http://ecsource.jove.com/files/ftp_upload/54663/54663fig1large.jpg" target="_blank">S&#39;il vous plaît cliquer ici pour voir une version plus grande de cette figure.</a> 3. Enterrez bandes de semences dans le domaine <ol><li> Creusez parcelles à la profondeur spécifiée à des bandes de maison. Attribuer des bandes à des blocs individuels dans lesquels les bandes sont disposées de façon aléatoire pour permettre la date de retrait à utiliser comme l&#39;intrigue principale et de l&#39;identité du compartiment (dans cet exemple, type croisé) que l&#39;intrigue secondaire dans l&#39;analyse. </li><li> Couvrir les bandes avec de la terre. Cut métal tissu de matériel de maille soit 10 cm plus grande que les parcelles et les placer sur les bandes enterrées. Utilisez U-goupilles pour fixer les bords et les bords de tissu de recouvrement avec de la terre. NOTE: Ce revêtement est à l&#39;exclusion de fouisseurs prédateurs de graines. Comme une autre option, Mercer et al. 13 construit et boîtes de tissu de matériel qui entouraient les bandes de graines dues à la pression de gopher intense dans leur loca de terrain enterréstion). </li><li> Placez les drapeaux d&#39;arpenteur de couleur pour distinguer l&#39;emplacement de la bande et de suppression des dates pour compléter les dossiers écrites claires. </li></ol> 4. Creuser Strips et évaluer semences <ol><li> Déterrez bandes de graines affectées à une date de retrait donné. Maintenir les bandes dans un environnement frais et humide jusqu&#39;à ce qu&#39;ils atteignent le laboratoire où l&#39;évaluation des semences aura lieu. Ceci peut être réalisé en enroulant les bandes de papier journal humide et en les plaçant dans un dispositif de refroidissement pour le transport ou d&#39;expédition jusqu&#39;au lendemain. </li><li> Rincer la boue et le sol à partir de bandes dans l&#39;eau jusqu&#39;à ce que les bandes sont assez propre que les débris externe graines non obscures. </li><li> Utilisez des ciseaux pour couper ouvert un compartiment à la fois. Comptez les graines germées et les supprimer. Comptez les graines clairement mortes (par exemple, en décomposition, ou graines putréfiés). Placez les graines non germées sur étiquetés, papier buvard Petri taille humide pour mieux distinguer les graines non germées, dormantes, et morts. <ol><li> Placez des boîtes de Petri avec non germéesgraines dans un ensemble de chambre de croissance pour les conditions de germination standards: 25 ° C jour / 10 ° C 12 h / nuit. Laissez les graines d&#39;une semaine à germer. Tout ne, compte en tant que viable, mais non germés, car ils ne germent pas dans des conditions de terrain. </li></ol></li><li> Après le traitement de la chambre de croissance, le test reste des graines non germées pour la viabilité en utilisant du chlorure de tétrazolium (TZ) 13. Pour ce faire , préparer une solution pour cent du TZ approprié pour les espèces étudiées à l&#39; aide du manuel AOSA Testing tétrazolium 14. Dans cet exemple, une solution à 1% est utilisé. <ol><li> Couper les graines non germées en deux et placez une moitié étaient l&#39;embryon et l&#39;endosperme sont visibles dans une boîte de Pétri contenant une solution assez TZ pour couvrir les semences (graines peuvent flotter, cela est correct). </li><li> Placez les plats TZ Petri dans un incubateur réglé à 30 ° C et attendre 3 heures. Note: Des températures plus élevées entraînent une réaction plus rapide, si on le souhaite, mais overstaining est un risque. </li></ol></li> &lt;li&gt; Retirer des boîtes de Petri de l&#39;incubateur et évaluer. Les graines qui ont souillé rouge dans leurs embryons sont germinatif, tandis que les semences non colorées sont morts. Consultez le tétrazolium Testing Handbook AOSA pour plus de détails sur les cas marginaux distinctifs et espèces particulières. </li></ol>

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</ol>

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Nous présentons ici des méthodes d&#39;utilisation des bandes d&#39;enfouissement des semences pour observer la germination des graines, la dormance et la mortalité des stocks de semences diverses à des périodes de temps prédéterminés dans le domaine. Les avantages de l&#39;utilisation des bandes plutôt que des paquets individuels se trouvent dans (1) la vitesse de la bande et la construction du compartiment sur la création de paquets individuels; et (2) la facilité et la rapidité d&#39;élimination des compartiments mul...

L&#39;objectif global de cette méthode est d&#39;évaluer de façon fiable la survie des graines au fil du temps dans des conditions de terrain. Les banques de semences du sol sont une réserve de graines dispersées, encore non germés viables distribués soit sur la surface du sol, dans la litière de surface, ou dans le profil du sol, qui peuvent persister ou transitoirement pendant de nombreuses années 1,2. Lorsque inhumation des méthodes similaires à celles présentées ici de semences ont été appliqués à une étude de 17 ans en utilisant plusieurs dizaines d&#39; espèces, des graines viables ont été trouvées dans la plupart des espèces testées 3. La dormance des graines est un bloc à la germination des graines jusqu&#39;à ce que la combinaison appropriée de conditions pour la survie des semis se pose 4. Restant en sommeil peut permettre à des graines pour survivre dans des conditions difficiles, telles que les basses températures de l&#39;hiver, la limitation des nutriments, ou la sécheresse saisonnière, jusqu&#39;à ce qu&#39;un déclencheur externe pour la dormance libération permet à la germination. Déclencheurs de dormance libération peut varier d&#39;une exposition à froid prolongées, composés laissés par fire, ou une attaque physique sur le manteau de la graine par abrasion ou contact avec les acides de l&#39; estomac des animaux 5. Comme germination indices peuvent être genres ou espèces spécifiques et résultent souvent de la sélection naturelle passé, la germination des graines mésadapté est celle qui se produit à un moment inapproprié, et peut entraîner la mort des graines ou des semis ou la croissance des semis pauvres. Alors que la dormance a été classé dans un certain nombre de types basés sur les mécanismes de levée de dormance (par exemple, la dormance physique, dormance physiologique), 6 graines dormance reste l&#39; un des moins compris les sujets en biologie végétale. Ainsi, les études sur le terrain qui permettent d&#39;évaluer l&#39;état des semences ou des groupes de semences dans des conditions écologiques pertinents individuels ont un pouvoir explicatif plus élevé que celles qui reposent simplement sur des tests de germination standard dans le laboratoire. Exploitation des caractéristiques des semences connues peut donner un aperçu des mécanismes de dormance. Le contrôle de la dormance des graines est complex, y compris le contrôle génétique des facteurs physiologiques et morphologiques. Alors qu&#39;une pleine compréhension de l&#39;ampleur des mécanismes de dormance n&#39;a pas encore été élucidé, un modèle général a émergé, impliquant une relation de rétroaction entre les deux hormones végétales acide gibbérellique (GA) et de l&#39; acide abscissique (ABA) 7. Dans ce modèle généralisé pour les graines avec une composante physiologique de leur dormance, GA sert en tant que signal pour la levée de dormance, tandis que l&#39;ABA sert à maintenir l&#39;état de dormance. Effets génétiques maternels ainsi que l&#39;environnement de la croissance maternelle peut influencer la dormance et d&#39; autres traits de semences, telles que la taille, à travers les tissus générés maternellement et signaux de développement 8. généré maternellement structures externes (ou revêtements de semences) peut maintenir la dormance, parfois en combinaison avec des signaux physiologiques. Depuis revêtements de semences d&#39;origine maternelle sont contrôlés par les gènes de la plante mère, ils peuvent ne pas refléter réelle génétique nucléaire de la graine. Nous nous avonsed l&#39; intégralité des akènes Helianthus annuus d&#39;un tableau d&#39;hybride de culture sauvage traverse pour démêler ces effets génétiques maternels contre embryonnaires sur les caractéristiques des semences 9,10. Ainsi, les plans d&#39;étude qui incluent diverses espèces, types croix, ou génotypes peuvent glaner des informations sur la l&#39;écologie et de la génétique de la dormance des graines, la germination et la survie. Un exemple important de la façon dont la germination des graines et la survie des phénotypes peuvent affecter la dynamique des populations peut être vu dans les zones hybrides cultures-sauvage. Sélection lors de la domestication des plantes cultivées élimine la plupart dormance et réduit la capacité d&#39;une graine pour survivre en dehors de la saison de croissance. Pourtant, le flux de gènes, ou l&#39;hybridation, entre les types cultivées et sauvages dans les zones hybrides culture sauvage peuvent réintroduire les allèles des cultures (ou variants génétiques) dans une population sauvage, avec des effets potentiels sur la dynamique de la banque de semences. Les hybrides entre parents cultivés et sauvages potentiellement trouvés dans les zones hybrides culture sauvage peut posséderune variété de phénotypes de dormance intermédiaires, avec seulement quelques phénotypes attendus pour survivre en dehors des conditions de la culture (par exemple, les mois d&#39;hiver) 11. Le but de ce manuscrit est de montrer comment, en utilisant la méthode de la bande d&#39;enfouissement des semences, nous pouvons évaluer la germination, la dormance et la survie d&#39;une gamme de types de semences à différentes périodes de temps pour étudier leur variation naturelle dans des conditions de terrain. Dans notre exemple, nous avons utilisé des graines de tournesol de 15 types hybrides croisés cultures sauvage depuis que nous sommes intéressés par les effets génétiques maternels et embryonnaires sur les caractéristiques des semences.

<table><tbody><tr><td>Enveloppes pour petites pièces de monnaie</td><td>N’importe Enveloppes</td><td></td><td></td></tr><tr><td>pour pièces de monnaie Enveloppes pour pièces de monnaie Enveloppes pour pièces de monnaie de grande taille</td><td>N’importe quelle</td><td></td><td></td></tr><tr><td>moustiquaire en polyester à mailles fines N’importe</td><td>quel</td><td></td><td></td></tr><tr><td>pistolet</td><td></td><td></td><td></td>à colle</tr> à haute température N’importe <tr><td></td><td>quel</td><td></td><td></td></tr> marqueur <tr><td>permanent industriel</td><td>N’importe quel</td><td></td><td></td></tr><tr><td>étiquettes de jardin en plastique</td><td>N’importe quelles</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ciseaux</td><td>N’importe quelle</td><td></td><td></td></tr><tr><td>pelle</td><td>N’importe quel</td><td></td><td></td></tr><tr><td>tissu dur en maille métallique</td><td>N’importe quel</td><td></td><td></td></tr><tr><td>drapeau d’arpenteur, plusieurs couleurs N’importe</td><td>Quel</td><td></td><td></td></tr><tr><td>journal humide</td><td>N’importe Quelle</td><td></td><td></td></tr><tr><td>glacière</td><td>N’importe</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Papier buvard</td><td>N’importe quelle</td><td></td><td></td></tr><tr><td>boîte de Pétri</td><td>N’importe quelle</td><td></td><td></td></tr><tr><td>chambre de croissance à température contrôlée</td><td>Toute</td><td></td><td></td></tr><tr><td>lame de rasoir</td><td>N’importe quelle</td><td></td><td></td></tr><tr><td>boîte de Pétri</td><td>N’importe quel</td><td></td><td></td></tr><tr><td>chlorure de tétrazolium</td><td>N’importe quelle</td> eau N’importe quelle <td></td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>chaleur incubateur</td><td>N’importe quel</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

reliable méthode d&#39;évaluation de la germination des graines, dormance, et la mortalité sous conditions de terrain

Reliable Method for Assessing Seed Germination, Dormancy, and Mortality under Field Conditions

Nous décrivons des techniques pour approximer la dynamique des banques de graines au fil du temps en utilisant Helianthus annuus comme exemple d’espèce d’étude. Des bandes de tissu en polyester perméable et de colle peuvent être pliées et collées pour construire une bande de compartiments qui abritent les graines et les informations d’identification, tout en permettant le contact avec le lixiviat du sol, l’eau, les micro-organismes et la température ambiante. Les bandes peuvent être construites avec une large gamme de nombres et de tailles de compartiments et permettent au chercheur d’héberger une variété de génotypes au sein d’une même espèce, de différentes espèces ou de graines qui ont subi différents traitements. Contrairement aux sachets de graines individuels, les bandes sont plus facilement récupérées en tant qu’unité. Bien que des paquets répliqués puissent être inclus dans une bandelette, différentes bandes peuvent agir comme des blocs ou être récupérées à différents moments pour observer le comportement des graines au fil du temps. Nous avons utilisé un pistolet à colle à haute température pour délimiter les compartiments et scellé les bandes une fois que la graine et les étiquettes identifiant le bloc et les temps de retrait ont été insérés. Les bandes de semences ont ensuite été enterrées dans le champ à la profondeur souhaitée, l’emplacement étant indiqué pour un enlèvement ultérieur. Les prédateurs d’animaux fouisseurs ont été efficacement exclus à l’aide d’une couche de tissu métallique à la surface du sol. Après l’intervalle de temps choisi pour l’enterrement, les bandes ont été déterrées et les graines ont été évaluées pour la germination, la dormance et la mortalité. Bien qu’il soit évident que les graines mortes peuvent souvent être distinguées des graines vivantes non germées à l’œil nu, les graines dormantes ont été identifiées de manière concluante à l’aide d’un test colorimétrique standard au chlorure de tétrazolium pour vérifier la viabilité des graines.

Types Croix avec variés maternelle pourcentage filiation et culture allèle (tableau 1) différaient entre les dates de retrait en pour cent germée, non germés, et les semences mortes (Fig. 2 et 3). L&#39; utilisation de tests de TZ de graines non germées, nous avons trouvé quelques graines vraiment dormantes au deuxième retrait (début du printemps) (tableau 2), alors que toutes les graines non germées par le troisième ret...

Nous présentons ici un protocole d&#39;évaluation de la survie des semences, la germination et la dormance dans des conditions de terrain à l&#39;aide enfouis, des bandes de semences étiquetées et chlorure de tétrazolium (TZ) les tests de viabilité.

Reliable Méthode d&#39;évaluation de la germination des graines, dormance, et la mortalité sous conditions de terrain

We describe techniques for approximating seed bank dynamics over time using Helianthus annuus as an example study species. Strips of permeable polyester ...

L'objectif général de cette procédure est d'observer directement et de quantifier la germination des graines, la mortalité et la dormance en conditions naturelles au fil du temps. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de l'écologie des graines, comme la manière dont différentes espèces ou écotypes contribuent individuellement aux plantules de la génération suivante. Ou encore, comment chaque graine contribue au stock persistant de graines dans le sol.Le principal avantage de cette technique est qu'un nombre quelconque de dispositifs expérimentaux, d'espèces, de traitements ou de dates de prélèvement peut facilement être mis en place sur le terrain et récupéré sous forme de réplicat complet après plusieurs semaines ou mois d'enfouissement. Commencez par découper une bande de tissu de 20 x 105 cm pour chaque bande de graines. À l'aide d'un mètre ruban, délimitez des compartiments sur la bande.Pliez le tissu en deux, puis utilisez un pistolet à colle à haute température pour appliquer de la colle sur une extrémité courte. Laissez la colle refroidir légèrement, puis appuyez les deux côtés l'un contre l'autre afin de former un joint. Appliquez des lign

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La dévastation des cultures céréalières par moisissures infectant les semences a incité de nombreux efforts de recherche afin de mieux comprendre les interactions plante-pathogène. Pour étudier les semences fongiques interactions dans un environnement de laboratoire, nous avons développé une méthode robuste pour la quantification de la reproduction des champignons, la biomasse et contamination par les mycotoxines en utilisant des essais biologiques du noyau.

Quantification de la colonisation fongique, sporogénèse, et la production de mycotoxines utilisant Bioassays noyau

Cette vidéo montre le test d’inhibition de la croissance des plantules chez la plante Arabidopsis thaliana. L’impact d’une concentration accrue d’éliciteur de peptides immunitaires sur la croissance des plantules est déterminé.

Mesure de l’inhibition de la croissance des plantules induite par le système immunitaire

Nous présentons la procédure pour assembler une literie de manteau essai de semences (ARA) de Arabidopsis thaliana graines. L'ARA s'est révélée être un outil puissant pour explorer génétiquement in vitro et la façon dont la germination des contrôles de l'endosperme de graines en dormance des graines et en réponse à des signaux lumineux. L'ARA est en principe applicable en vertu d'une situation où l'endosperme est soupçonné d'influencer la croissance embryonnaire.

Un tégument Literie dosage à explorer génétiquement<em&gt; In Vitro</em&gt; Comment la germination des contrôles endosperme des semences dans<em&gt; Arabidopsis thaliana</em

Une approche robuste et flexible pour confirmer la résistance aux herbicides dans les populations de mauvaises herbes est présentée. Ce protocole permet de déduire les niveaux de résistance aux herbicides et de les appliquer à un large éventail d’espèces de mauvaises herbes et d’herbicides avec des adaptations mineures.

Protocoles pour les essais la résistance aux herbicides robuste chez différentes espèces de mauvaises herbes

L’objectif de cette étude était de déterminer les effets de l’eau de Javel et de chlore stérilisation au gaz sur la germination des graines d’une gamme d’Arabidopsis génotypes cultivés sur des milieux stériles. Stérilisation optimisé protocoles ont été développés pour prévenir la croissance des contaminants microbiens, tout en assurant la survie des graines satisfaisante.

Méthode normalisée pour la stérilisation à haut débit des graines d’Arabidopsis

Champignons du charbon causent de nombreuses maladies agricoles dévastateurs. Ils sont dispersés sous forme de téleutospores dormants qui germent en réponse à des stimuli environnementaux. Nous décrivons deux méthodes pour étudier les changements moléculaires au cours de la germination : augmentation de la respiration pour détecter l’activation métabolique de mesure et l’évaluation changeant des événements moléculaires en isolant les téleutospores aux stades morphologiques distincts.

Germination des téliospores chargée de l’enquête à l’aide de l’analyse Microrespiration et Microdissection

Nous fournissons une méthode pour identifier les modulateurs de la transpiration foliaire par le criblage à grande échelle d'une bibliothèque composée.

Identification de nouveaux régulateurs de la transpiration végétale par le dépistage thermique à grande échelle à Helianthus Annuus

Cette étude présente des méthodologies pour étudier les mécanismes pathomorphologiques et moléculaires sous-jacents à l’interaction entre le pois chiches etla rhizoctonia bataticola. La méthode du papier buvard est utile pour étudier rapidement les réponses du génotype de pois chiches, tandis que la méthode à base de pot malade peut être utilisée pour imposer simultanément la sécheresse et l’infection à R. bataticola et dépister les génotypes tolérants.

Analyses de la maladie de la pourriture des racines sèches chez les pois chiches : une méthodologie détaillée

Un protocole à haut débit pour la stérilisation de surface des graines d’Arabidopsisthaliana (Arabidopsis) est fourni, optimisant les étapes de manipulation des liquides avec un simple dispositif d’aspiration construit avec une pompe à vide. Des centaines d’échantillons de semences peuvent être stérilisés en surface en une journée.

Méthode à haut débit, robuste et très flexible dans le temps pour la stérilisation de surface des graines d’Arabidopsis

Ce protocole vise à fournir des procédures détaillées pour la collecte, la fixation et la conservation d’échantillons de plantes mycohétérotrophes, en appliquant différentes techniques de microscopie telles que la microscopie électronique à balayage et à transmission, la microscopie optique, confocale et à fluorescence pour étudier la colonisation fongique dans les tissus et les graines des plantes germées avec des champignons mycorhiziens.

Techniques de microscopie pour interpréter la colonisation fongique dans les tissus végétaux mycohétérotrophes et germination symbiotique des graines

Ce protocole combine la stérilisation standardisée de la surface des graines avec la germination contrôlée afin de permettre l’isolement reproductible du microbiote associé aux graines de tomate lors de la transition de la graine vers les semis. Cette approche favorise la récupération des micro-organismes cultivables sous-représentés dans les graines sèches et soutient des études comparatives culturomanes lors du développement précoce des semis.

Isolement du microbiote associé aux graines de tomate par germination contrôlée et culture comparative

Découvrez une méthode robuste pour évaluer la germination, la dormance et la mortalité des graines en conditions de terrain. Ce protocole utilise des bandes de graines étiquetées et le test au chlorure de tétrazolium pour quantifier le comportement des graines.

Reliable Méthode d'évaluation de la germination des graines, dormance, et la mortalité sous conditions de terrain

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