11 novembre 2016
Ici, nous décrivons les paramètres pour surveiller en parallèle la bioluminescence circadienne et l’activité sécrétoire des cellules d’îlots de Langerhans humains et des myotubes primaires. Pour cela, nous avons utilisé l’administration d’un gène lentiviral d’un rapporteur d’horloge à noyau de luciférase, suivie d’une synchronisation in vitro et d’une collecte du milieu d’écoulement par périfusion cellulaire continue.
L’objectif global de cette procédure est l’évaluation parallèle de la bioluminescence circadienne et de l’activité sécrétoire de cellules endocrines primaires humaines cultivées et synchronisées in vitro. Cette méthode peut aider à étudier le modèle temporel de la sécrétion cellulaire et comment elle peut être régulée par des horloges circadiennes autonomes cellulaires. Le principal avantage de cette technique est qu’elle nous permet de surveiller l’activité des luciférines circadiennes en tant que rapporteur et de collecter simultanément le milieu d’écoulement pour mesurer les niveaux d’hormones et de myokines sécrétées. Pour introduire des rapporteurs de bioluminescence circadienne dans les cellules primaires par transduction lentivirale, transférez d’abord les boîtes de Pétri de 3,5 cm contenant des myoblastes humains à 30 % à 50 % de confluence dans une armoire à flux laminaire. Remplacez le milieu de myoblaste humain par 2 mL de milieu de croissance. Ensuite, transduisez la culture cellulaire primaire en pipetant une solution de lentivirus dans la boîte pour obtenir une multiplicité d’infection égale à trois. Incuber les cellules pendant la nuit dans un incubateur de culture tissulaire. Changez de support le lendemain. Pour réaliser une synchronisation in vitro, ajoutez 10 micromolaires d’activateur de l’adénylyl cyclase dans 2 mL de milieu par boîte de Pétri de 3,5 cm contenant les cellules primaires préalablement transfectées. Incuber les cellules pendant 60 minutes à 37
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Cette étude décrit des méthodes permettant de surveiller la bioluminescence circadienne en parallèle avec l'activité sécrétoire de cellules insulaires humaines et de myotubes primaires. L'approche implique une livraison génique par lentivirus d'un rapporteur luciférase du rythme circadien, suivie d'une synchronisation in vitro et d'une perfusion cellulaire continue pour la collecte du milieu.
La mesure parallèle de l'expression des gènes de l'horloge circadienne et de la sécrétion hormonale dans des cultures primaires de cellules humaines permet une interrogation directe de la régulation temporelle dans les systèmes endocriniens et musculaires humains. Cette approche renforce la confiance prédictive dans la validation des cibles en reliant les oscillateurs moléculaires circadiens aux produits fonctionnels de sécrétion. L'intégration de ces mesures au stade de la découverte soutient l'avancement ajusté au risque des programmes métaboliques et de chronobiologie à travers l'ensemble du portefeuille.
Cette méthode établit un lien entre la phase initiale de découverte et la recherche préclinique en permettant la vérification d'hypothèses sur la régulation circadienne dans des cellules primaires humaines, soutenant ainsi la validation des cibles et la continuité translationnelle.