Name: Les expériences sur le terrain de lécologie Pollinisation: le cas de Lycoris sanguinea Var. sanguinea (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-11-25T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 19 s
Description: Découvrez les méthodes d'expérimentation sur le terrain en écologie de la pollinisation avec Lycoris sanguinea var. sanguinea. Cette technique permet d'évaluer l'efficacité des pollinisateurs et d'analyser les fréquences des visiteurs floraux.

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Les auteurs remercient les trois relecteurs anonymes pour leurs commentaires utiles sur le manuscrit. Ce travail a été en partie soutenu par la subvention pour les boursiers de la JSPS (26.11613).

NOTE: Cet article est basé sur nos travaux précédents 30. Certaines parties sont reproduites avec la permission de la Société botanique du Japon et Springer Japon. 1 . Observation des visiteurs floraux <ol><li> Sélection des champs d&#39;observation <ol><li> Rechercher dans les zones où les matières végétales sont distribués, et de sélectionner les sites d&#39;étude des candidats à l&#39; aide des ressources fiables, comme des livres d&#39;images, des revues spécialisées, etc. Ajustez le nombre de sites d&#39;étude pour répondre aux objectifs de recherche (par exemple, un large éventail d&#39;emplacements pour la comparaison des visiteurs de fleurs à travers le Japon). </li><li> Vérifiez l&#39;emplacement des populations de candidats sélectionnés et les distances entre les points de départ pertinents, tels que les instituts de recherche et d&#39;hébergement, si la recherche à long terme est nécessaire. </li><li> estimer à peu près chaque taille de la population en comptant le nombre d&#39;individus végétaux dans une unité de surface. Sélectionnez grandes populations pour l&#39;expérience manipulées en utilisant de nombreuses personnes de l&#39;usine. </li><li> Pré-observation des visiteurs floraux <ol><li> Décidez qui ciblent les individus dans chaque zone sera observée pendant le même intervalle de temps, en fonction des densités de population. Sélectionnez 5-10 fleurs fraîchement ouvertes ou de casser les bourgeons des fleurs cibles, et rejeter les dégradés qui ont déjà été ouvertes. </li><li> Démarrez l&#39;observation visuelle pour la période d&#39;une journée entière, parce que les fleurs pouvaient être visités par divers pollinisateurs en temps différentes gammes 31,32. </li><li> Sur les feuilles d&#39;enregistrement, enregistrer le nom de l&#39;espèce des visiteurs floraux et le temps de chaque visite par heure par fleur. </li><li> Observer de près si les visiteurs floraux touchent les anthères et / ou stigmates; si elles le font, enregistrer les visiteurs que les pollinisateurs. Si les visiteurs floraux seulement visiter les fleurs et ne touchent pas les organes reproducteurs, les enregistrer en tant que visiteurs. </li><li> En utilisant un filet d&#39;insecte ou l&#39;aspirateur à la main, capturer les visiteurs floraux d&#39;identifier et deles conserver sous forme de spécimens (figure 1f). Tuez les visiteurs piégés rapidement avec de l&#39;acétate d&#39;éthyle ou la pression du doigt sur le thorax, et de les conserver dans un sac souple ou dans un tube en plastique ou en cas de 100% d&#39;éthanol. </li><li> Après l&#39;observation, identifier les noms spécifiques des spécimens en utilisant des caractéristiques morphologiques ou, en cas de difficultés dans l&#39;identification, demander l&#39;aide d&#39;experts pour chaque groupe taxonomique. </li></ol></li></ol></li><li> Observation sur le terrain <ol><li> Sélectionnez les sites de recherche en fonction de leur accessibilité, la taille de la population et le nombre de visiteurs floraux. Choisissez des périodes de temps qui incluent un échantillon représentatif de visiteurs floraux dans la saison de floraison, et de déterminer les périodes d&#39;observation en fonction des objectifs de recherche (par exemple, pour la recherche sur les fluctuations visitation fréquence des visiteurs floraux, de longues périodes devraient être fixés). </li><li> Préparer l&#39;équipement d&#39;enregistrement approprié, tels que des caméras vidéo numériques (par exemple, pour l&#39; enregistrement de la nuit, les caméras vidéo avec une fonction infrarouge doivent être utilisés). </li><li> Sélectionner les fleurs cibles de la même manière que pour 1.1.4. </li><li> Fixer les caméras vidéo pour trépieds en aluminium. Définissez les caméras avec trépieds devant les personnes cibles, environ 50 cm de distance. </li><li> Vérifier et modifier la quantité de lumière et la mise au point des matériaux sur les écrans des caméras avant le tournage. </li><li> Démarrez l&#39;observation visuelle et tournage vidéo en même temps pour les fuseaux horaires appropriés estimés par les pré-observations (dans le cas présent, les périodes d&#39;observation étaient pendant plus de six heures en moyenne, d&#39;environ 5:00-treize heures 00 heures ). </li><li> Identifier les noms d&#39;espèces des visiteurs et des pollinisateurs, et d&#39;enregistrer leurs noms et les temps de leurs visites sur les feuilles d&#39;enregistrement. </li><li> Capturez et identifier les visiteurs et les pollinisateurs de la même manière que dans 1.1.4.5. </li><li> Répétez les étapes 1.2.1 à 1.2.7 pour chaque observatiopériode n. Définissez les périodes d&#39;observation en fonction des objectifs de recherche et des données pré-observation. </li></ol></li><li> Analyses de données Après observation <ol><li> Identifier les noms d&#39;espèces de spécimens capturés après observation de pollinisateur de la même manière que dans 1.1.4.6. </li><li> Vérifiez les clips vidéo et notez les noms d&#39;espèces et de leur temps de séjour de la même manière que pour l&#39;observation visuelle. </li><li> Calculer les fréquences de visites par fleur par heure de chaque visiteur floral à partir des données d&#39;observation et d&#39;enregistrement vidéo visuels. Comparez ces fréquences statistiquement entre les sites et les années de chaque visiteur à l&#39; aide de méthodes statistiques appropriées sur la base des statistiques fondamentales et en utilisant un logiciel approprié, tel que R, SPSS, et / ou SAS 33-35 (par exemple, une analyse à deux voies de la variance (Anova ) avec honnête différence significative (HSD) test de Tukey dans le logiciel R). </li></ol></li></ol> 2. Ensachage et Cage Expériences<ol><li> Préparatifs de la ensachage et expériences de Cage <ol><li> Pour les expériences d&#39;ensachage, préparer les sacs qui ont de petites tailles de mailles (~ 0,5-1 mm) et les utiliser pour empêcher complètement la fleur de visite (par exemple, non-tissés sacs en tissu ont été utilisés pour les expériences d&#39;ensachage en 2011 et 2012). </li><li> Pour les expériences de la cage, préparer fil ou filet en plastique planches avec un diamètre qui permet la cible plus petits visiteurs de passer à travers, mais exclut les plus grands, et relier ces panneaux à mailles pour former une cage. Vérifiez qu&#39;il n&#39;y a pas de lacunes plus grandes que le diamètre des mailles. Ajuster la taille et la forme de cages en fonction de l&#39;espèce végétale cible et les numéros individuels. </li></ol></li><li> Expériences ensachage <ol><li> Sélectionnez 30 individus par traitement qui n&#39;ont pas les dommages causés par les herbivores ou d&#39;un environnement sévère. Pour le traitement, choisissez une seule fleur de chaque plante, ou utiliser des fleurs individuelles sur une seule plante. </li><li> Sac til cible des fleurs dans le domaine après les étiqueter avec du ruban adhésif (numéro de série et l&#39; alphabet; Figure 1g). Veillez à ne pas toucher les anthères ou les stigmates dans les sacs pour éviter la possibilité d&#39;auto-pollinisation. </li><li> Fixez soigneusement les sacs à fleurs en utilisant une chaîne souple ou fil (Figure 1d). </li><li> définir soigneusement les fleurs individuelles debout avec des supports en utilisant la chaîne douce ou d&#39;un fil pour soutenir les individus contre l&#39;inclinaison ou l&#39;effondrement sous le poids des sacs ou le vent, le cas échéant. Twist ou le vent une chaîne ou d&#39;un fil doucement autour de la tige d&#39;un individu cible, afin de ne pas créer des dommages. </li><li> Traitements dans les expériences d&#39;ensachage <ol><li> Pour le traitement &quot;Control&quot;, fixer les étiquettes aux fleurs cibles et mener aucun traitement. Permettre aux visiteurs floraux à visiter librement. </li><li> Pour le traitement &quot;de Outcrossing&quot;, couvrir les bourgeons jusqu&#39;à ce qu&#39;ils fleur, puis enlever les anthères des fleurs ensachées. Mettez un peu pollen grains provenant de plusieurs individus sur les stigmates. </li><li> Pour le traitement &quot;autofécondation&quot;, couvrir les bourgeons jusqu&#39;à ce que les fleurs sont ouvertes, et de mettre le pollen des mêmes fleurs sur leurs stigmates. Couvrir à nouveau ces fleurs traitées. </li><li> Pour le traitement &quot;Auto-auto&quot;, couvrir les papilles avec des sacs jusqu&#39;à la fin de la saison de floraison. </li><li> Pour le traitement &quot;des bourgeons de rupture&quot;, identifier les bourgeons de rupture qui ont été visités et observer l&#39;entrée ou la sortie des petites abeilles (figures 1b, c). Retirez les anthères des bourgeons de rupture pour empêcher les dépôts de pollen répétées sur la même fleur après visite par de petites abeilles, et sac ces bourgeons rapidement pour prévenir d&#39;autres visites. </li><li> Pour le traitement &quot;floraison&quot;, sac les bourgeons jusqu&#39;à l&#39;étape d&#39;ouverture pour éviter les visites à l&#39;étape de rupture des bourgeons. Après cela, retirer les sacs et permettent aux visiteurs de recueillir le nectar et le pollen. </li><li> Pour le traitement «Bud»,enlever les anthères de bourgeons non ouverts et se croiser artificiellement. Sac ces bourgeons rapidement pour éviter les visites de fleurs. </li></ol></li></ol></li><li> Les expériences de Cage <ol><li> Couvrir les individus végétaux cible avec des cages préparées. Ajustez les positions des fleurs en cage à la main pour éviter le contact et le pollen des dépôts entre stigmata différents (figure 1E). </li><li> Pour le traitement &quot;Cage&quot;, sélectionnez les individus avec des bourgeons non ouverts et mettre des étiquettes sur eux pour l&#39;identification des fleurs sélectionnées. Cage les individus avec des bourgeons marqués à rejeter les influences d&#39;avant la mise en place de cages (c. -à- insectes floraux ne peuvent pas visiter bourgeons ouverts, et seuls les effets des insectes qui visitent après le placement des cages peut être estimé). </li><li> Fixez les cages fermement au sol en utilisant des barres de fer pour empêcher l&#39;entrée par les visiteurs entre la base de la cage et le sol. </li></ol></li><li> Analyses de données After l&#39;ensachage et expériences de Cage <ol><li> Ramassez toutes les fleurs marquées à la fin de la saison de floraison (Figure 1g) en coupant et en les séparant des individus maternels. Préserver chaque échantillon marqué séparément pour éviter leur contamination. </li><li> Vérifier la présence ou l&#39;absence de fruits mis sur chaque étiqueté flower.Record les numéros de semences de chaque fruit en cas de mise en fruits. </li><li> Calculer le rapport du nombre de fruits par fleur (ratio de nouaison, défini comme le nombre de fruits divisé par le nombre de fleurs) et le nombre de graines par fruit mûr (rapport semences ensemble, défini comme le nombre de graines divisé par le nombre d&#39;ovules) en utilisant tous les numéros enregistrés. </li><li> Comparer statistiquement les rapports de fruitiers et de semences-set entre les traitements utilisant des méthodes appropriées et de logiciels, tels que ceux énumérés dans 1.3.3 (par exemple, une ANOVA avec le HSD de Tukey ou le test exact de Fisher dans le logiciel R 33). </li><li> Les recherches des matériaux en utilisant les résultats des expériences d&#39;ensachage <ol><li> Pour tester la nécessité pour les pollinisateurs des animaux, statistiquement comparer les résultats entre &quot;Control&quot; et traitements &quot;Auto-soi». </li><li> Pour estimer le degré de limitation de pollen, comparer le &quot;Control&quot; et &quot;traitements de pollinisation croisée». </li><li> Pour tester l&#39;auto-compatibilité, comparer le &quot;Outcrossing&quot; et &quot;traitements autofécondation&quot;. </li></ol></li><li> Les évaluations des influences de rupture bourgeon pollinisation <ol><li> Comparez les &quot;Control&quot; et traitements &quot;Bud&quot; pour déterminer si les stigmates des bourgeons de rupture sont reproductivement mature et si la valeur du traitement &quot;Control&quot; peut être utilisé pour le contrôle à l&#39;étape de rupture du bourgeon. </li><li> Comparez le &quot;Auto-soi» et les traitements &quot;bourgeon&quot; Rompre pour déterminer si le succès de la reproduction des fleurs pollinisées avec de petites abeilles à la rupturestade -BUD est statistiquement supérieure à celle des végétaux effectuant la autogamy (ie, pour tester l&#39;existence de la rupture du bourgeon pollinisation). Après cela, comparer ces deux traitements avec le &quot;Control&quot; pour estimer l&#39;efficacité de la pollinisation de la rupture du bourgeon pollinisation. </li><li> Comparez le &quot;Breaking bourgeon&quot;, &quot;Cage&quot; et &quot;traitements Flowering&quot; pour estimer les influences de la reproduction de la rupture du bourgeon pollinisation. </li></ol></li></ol></li></ol>

Les auteurs déclarent qu’ils n’ont pas d’intérêts financiers concurrents.

observations de fleurs et des expériences d&#39;ensachage ont été utilisées dans cette étude pour révéler les fréquences de visite et le succès reproducteur féminin de plantes, respectivement. En Dafni (1992) 38, la méthode d&#39;enregistrement vidéo a été efficace car il pourrait enregistrer le moment et la durée des visiteurs pour l&#39; analyse et de prévenir le biais d&#39;observateur. Cependant, à l&#39;époque, cette méthode exige un équipement coûteux, et les temps d&#39;observation ont été limitées par...

Interactions plantes-pollinisateurs sont des exemples de choix pour l&#39;étude de la biologie de l&#39;évolution et de l&#39;écologie. Les relations de mutualisme entre les fleurs et les pollinisateurs sont considérés comme ayant favorisé la diversification des angiospermes 1,2 à la suite de la sélection naturelle, bien que d&#39; autres facteurs biotiques et abiotiques ont également exercé une influence 3,4,5. On pense aussi que les traits floraux ont changé pour adapter aux pollinisateurs les plus efficaces et de produire plus de fruits et de graines 6. Ces croyances ont été construites si grandes études basées sur des indices différents, tels que l&#39; efficacité de la pollinisation, qui impliquent des interprétations diverses 7. Les plantes à fleurs qui ont généralisé les systèmes de pollinisation sont visités par différents types de pollinisateurs 8. Ici, un visiteur de fleurs a été définie comme une espèce animale qui ont visité pour obtenir une récompense florale et les pollinisateurs ont été définis comme des visiteurs floraux qui pollinisent.Certains de ces visiteurs portent des grains de pollen conspécifiques pour les stigmates des fleurs visitées et peuvent être classés comme pollinisateurs. D&#39;autres visiteurs peuvent aussi avoir un peu de pollen intraspécifique; ils pourraient conduire moins la pollinisation en raison de l&#39;inadéquation du comportement ou morphologiques entre les pollinisateurs et les fleurs. Ces différences comparables dans la contribution à la reproduction des plantes pourraient produire divers degrés de pression sélective sur les traits floraux 9 et pourraient provoquer la divergence adaptative des plantes à fleurs. Par conséquent, bien que la composition de la communauté des pollinisateurs et l&#39;abondance relative des espèces sont importantes 10, l&#39;évaluation précise de l&#39;efficacité de chaque visiteur est également essentiel de déterminer adaptatif et / ou les processus évolutifs des plantes. Dans cette étude, des estimations quantitatives de l&#39; efficacité des pollinisateurs, définies comme les fruits et la production de semences par la fréquence des visites, ont été déterminées 11. Le specs et la fréquence de chaque visiteur floral ont été observés, et les effets de la reproduction sur les fleurs visitées ont été estimées. L&#39;enregistrement de visites florales à travers l&#39;observation humaine est une méthode classique en écologie de la pollinisation. Cependant, cette méthode impose un lourd fardeau sur les observateurs, qui sont tenus de rester en face des plantes et de prendre des mesures précises, à long terme. Récemment, les technologies de tournage et d&#39; enregistrement ont rapidement développé, et les caméras vidéo numériques à faible coût ont permis l&#39;introduction de l&#39; enregistrement vidéo d&#39;observations pollinisatrices 12,13. Ces méthodes peuvent faciliter la collecte des informations de base sur les visiteurs floraux et pourraient aider à développer une compréhension de l&#39;écologie de la pollinisation d&#39;une espèce végétale cible. Cependant, les fréquences de visite des pollinisateurs ne sont pas nécessairement corrélés à l&#39; efficacité de leur pollinisation 7,14, et il est important d&#39;évaluer les effets qualitatifs de chaque pollinisateursur une fleur fitness. L&#39; efficacité de la Pollinisation a été estimée par le nombre de grains de pollen sur les stigmates 15,16, tube pollinique 17,18 de croissance et de fruits et / ou la production de semences 19,20. Ensachage expériences, effectuées à l&#39; aide de sacs de visiteurs exclusifs, sont les méthodes typiques pour tester l&#39; auto-compatibilité, autogamy 21,22, et la présence de apomixes 23. En outre, l&#39;évaluation de l&#39; efficacité de la pollinisation pour un certain pollinisateur dans l&#39;assemblage des visiteurs a souvent été menée dans des environnements où les autres visiteurs floraux ont été limités (ie, une cage métallique, filet, ou un sac avec un maillage assez petit pour exclure les grands pollinisateurs qui est ensemble sur les plantes à fleurs). Par exemple, des expériences d&#39;ensachage avec de petits sacs en filet ont été menées pour révéler la capacité de pollinisation des fourmis ou des thrips 24,25. En outre, des expériences d&#39;exclusion des oiseaux en utilisant une cage métallique ou d&#39;un filet ont montré les pollinisateurs efficaces des taxons Aloe26-28. Les objectifs de cette étude étaient les suivants : 1) pour introduire les méthodes utilisées dans un article précédent et 2) pour améliorer ces méthodes pour une utilisation dans d&#39; autres études sur les visiteurs floraux, leurs fréquences de visite, et leurs effets sur la condition physique des plantes Lycoris sanguinea var.. sanguinea est l&#39; une des espèces inscrites dans le genre Lycoris, qui est largement distribué dans tout le Japon et étroitement en Corée 29 et a en forme d&#39; entonnoir rouge-orange fleurs (figure 1a). Une étude antérieure a révélé que L. sanguinea var. sanguinea a été visité par plusieurs espèces d&#39; insectes, y compris une espèce d&#39;abeilles petites non identifiés et les plus grandes espèces amegilla florea 29. Cependant, la fréquence de visite et la pollinisation efficacité de ces visiteurs ont pas été identifiés. observations de pollinisateurs pour l&#39;identification des visiteurs floraux ont été effectués en premier. Visitation par de petites abeilles a été OBSErved sur les fleurs qui n&#39;a pas encore complètement ouvert (rupture des bourgeons; les figures 1b, c). Les petites abeilles déplacés précipitamment autour des anthères undehisced dans les bourgeons de rupture et pollen collecté en utilisant leurs mandibules. L&#39;hypothèse était que les petites abeilles pourraient être pollinisateurs au stade de rupture-bud parce que les écarts entre les anthères et les stigmates dans les fleurs sont plus petites que la longueur du corps des abeilles. Par conséquent, les expériences d&#39; ensachage ont été menées pour tester la capacité de la pollinisation des petites abeilles au stade de rupture du bourgeon, et en outre d&#39;examiner les stratégies de reproduction de L. sanguinea var. sanguinea. Ces bourgeons ont été mis en sac après les petites abeilles visités, ce qui a permis une estimation de la capacité de la pollinisation des abeilles. Les individus ont été mis en cage avec des bourgeons non ouverts. Une cage à petites mailles a été utilisé, à travers laquelle seules de petites abeilles pouvaient passer, ce qui permet une estimation de l&#39;efficacité de pollinisation des petites abeilles tout au long du flowestade anneau.

<table><tbody><tr><td>feuille d’enregistrement</td><td>n’importe</td><td>quelle moustiquaire</td> NA <td></td></tr><tr><td></td><td>n’importe quel</td><td></td><td></td></tr><tr><td>pooter</td> NA <td>tout</td><td></td> acétate d’éthyle NA <td></td></tr><tr><td></td><td>tout</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>100 % éthanol</td><td>tout</td> tube <td>en plastique NA</td><td></td></tr><tr><td></td><td>tout</td><td></td> boîtier en plastique NA <td></td></tr><tr><td>tout</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>souple NA sac,</td><td>n’importe le</td><td></td><td></td></tr><tr><td>(s) périphérique(s) vidéo(s) numérique(s)</td> NA, <td>tout</td><td></td>(s) trépied(s) NA<td></td></tr>, sac(<tr><td>s)</td><td></td><td></td><td></td></tr> <tr><td>NA, tout</td><td>fil</td><td>NA</td><td></td></tr><tr><td>ou carte en treillis plastique</td>, <td>tout</td> fil <td>de fer NA</td><td></td></tr>, <tr><td></td><td>tout</td><td></td> ruban d’étiquetage NA<td></td></tr>, <tr><td></td><td>tout</td><td></td> support de bâton NA <td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>toutes</td></tr><tr><td>les ficelles ou fils souples</td> NA <td>toutes</td><td></td> les pinces NA <td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

les expériences sur le terrain de l&#39;écologie pollinisation: le cas de<em&gt; lycoris sanguinea</em&gt; var.<em&gt; sanguinea</em

Field Experiments of Pollination Ecology: The Case of Lycoris sanguinea var. sanguinea

Les interactions plantes-pollinisateurs sont étudiées depuis environ cent ans. Au cours de cette période, de nombreuses méthodes de terrain ont été mises au point pour clarifier l’efficacité de la pollinisation de chaque pollinisateur des fleurs visitées. L’observation des pollinisateurs a été l’une des méthodes les plus courantes pour identifier les pollinisateurs, et des expériences d’ensachage et de cage ont été menées pour montrer l’efficacité de pollinisateurs spécifiques. Dans une étude antérieure sur Lycoris sanguinea var. sanguinea, ses pollinisateurs efficaces, la fréquence de visite de chaque visiteur floral et ses stratégies de reproduction n’ont pas été identifiés. Cette étude rapporte l’observation que de petites abeilles visitaient des fleurs partiellement ouvertes (bourgeons cassants). À notre connaissance, ce phénomène n’a pas été signalé auparavant. De plus, cette étude examine l’hypothèse selon laquelle les petites abeilles peuvent polliniser à ce stade de floraison. Cette étude démontre les méthodes de base des expériences de terrain en écologie de la pollinisation à l’aide de L. sanguinea var. sanguinea. Les observations des pollinisateurs et la vidéo numérique ont montré la fréquence de visite de chaque visiteur floral. Des expériences d’ensachage et de cage ont révélé que ces fleurs pouvaient être entièrement pollinisées et que la pollinisation par brisement des bourgeons pourrait être importante pour la pollinisation de cette espèce végétale. Les avantages et les inconvénients de chaque méthode sont discutés, et les développements récents, y compris les expériences de laboratoire, sont décrits.

Cinq populations ont été choisies pour observations pollinisatrices. Dans la phase de pré-observation, des visites de diverses espèces d&#39;insectes à fleurs d&#39;ouverture et de petites abeilles à des bourgeons de rupture ont été confirmées. Observations de visiteurs floraux ont révélé que la plupart des visiteurs à tous les cinq sites d&#39;étude étaient des individus des petites espèces d&#39;abeilles japonicum Lasioglossum. Le record du nombre total de visiteurs a montré q...

Pour révéler l&#39;efficacité des pollinisateurs d&#39;une espèce végétale donnée, plusieurs méthodes d&#39;expériences sur le terrain ont été développés. Cette étude démontre les méthodes de base d&#39;expériences sur le terrain pour la pollinisation de l&#39; écologie à l&#39; aide de l&#39;étude de cas de Lycoris sanguinea var. Sanguinea et le nouveau mécanisme de pollinisation, brisant bourgeon pollinisation.

Les expériences sur le terrain de l&#39;écologie Pollinisation: le cas de<em&gt; Lycoris sanguinea</em&gt; Var.<em&gt; sanguinea</em

Plant-pollinator interactions have been studied for approximately one hundred years. During that time, many field methods have been developed to clarify ...

L'objectif général de cette expérience est d'étudier les pollinisateurs de Lycoris sanguinea, variété sanguinea, ainsi que leurs capacités de pollinisation. Cette méthode peut aider les chercheurs dans le domaine de l'écologie de la pollinisation. Par exemple, en raison de la diminution du nombre d'observateurs à la période de floraison, l'étude se concentrera sur l'effet de pollinisateurs spécifiques par plante.Le principal avantage de cette technique est qu'elle facilite l'étude des espèces et fréquences de visiteurs floraux afin d'analyser l'efficacité de la pollinisation par des visiteurs spécifiques. Avant l'observation des visiteurs floraux, déterminez d'abord quels individus cibles dans chaque zone seront observés pendant le même intervalle de temps. Ensuite, sélectionnez de 5 à 10 fleurs fraîchement ouvertes dont les bourgeons sont en train de s'ouvrir comme fleurs cibles, et commencez l'observation visuelle sur une période d'une journée complète, car les fleurs peuvent être visitées par divers pollinisateurs à différents moments de la journée.Sur les fiches d’enregistrement, noter le nom d'espèce de chaque visiteur floral ainsi que l'heure de chaque visite par heure et par

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