Name: Efficace et Antibody Étiquetage par Strain promu Azide-alcyne cycloaddition spécifique du site (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2016-12-23T14:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 6 s
Description: Apprenez à introduire des sondes chimiques de manière spécifique dans des fragments d'anticorps par incorporation génétique d'acides aminés contenant des azides. Cette méthode utilise la cycloaddition azide-alcyne promue par contrainte (SPAAC) pour une bioconjugaison efficace.

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1. Construction du plasmide <ol><li> Construire un plasmide d&#39;expression (pBAD-HerFab-L177TAG) qui expriment le gène d&#39;anticorps cible (pBAD-HerFab-WT) avec son 6 -tag, et remplacer le codon pour la leucine-177 avec le codon ambre (TAG) 27, en utilisant la technique de mutagenèse dirigée classique. Voir le tableau des matériaux. </li><li> Construire un plasmide d&#39;expression (pEVOL-AFRS) contenant les gènes codant pour l&#39;ARNt Tyr évolué et aminoacyl-ARNt synthétase (aaRS) paire. Utilisez le vecteur plasmidique spécialement conçu, pEVOL, pour l&#39;incorporation efficace de UAAs. Les protocoles d&#39;information plasmidique et clonage détaillés sont décrits dans le rapport précédent. 28 </li><li> Obtenir un ADN de plasmide de haute qualité en utilisant des kits disponibles dans le commerce pour la préparation du plasmide. Le rapport 260/280 de ~ 1,8 est optimal pour l&#39;ADN purifié. Si nécessaire, effectuer une électrophorèse sur gel d&#39;agarose 1% pour vérifier la pureté de l&#39;ADN. </li></ol><ol><li> électroporation <ol><li> Ajouter chaque ADN de 1 pl de pEVOL-AFRS 28 et pBAD-HerFab-L177TAG à 20 souche Escherichia coli ul DH10β. Mélanger délicatement, à l&#39;aide d&#39;une pipette. Les plasmides peuvent être transformées ensemble ou dans des réactions indépendantes. </li><li> Pour 0,1 cm cuvettes, définir les paramètres d&#39;électroporation à 25 pF et 2,5 kV. </li><li> Insérez la cuvette dans la glissière de la chambre choquante. Poussez la glissière dans la chambre jusqu&#39;à ce que la cuvette soit fermement en contact avec les électrodes de la chambre. </li><li> Pulse, une fois en appuyant sur le bouton d&#39;impulsion jusqu&#39;à ce que les bips de la machine d&#39;électroporation. </li><li> Ajouter 1 ml de super bouillon optimal avec la répression catabolique (SOC) contenant 2% (p / v) de tryptone, 0,5% (p / v) d&#39; extrait de levure, 10 mM de NaCl, 2,5 mM de KCl, 10 mM de MgCl2 et 20 mM de glucose à la cuvette et de transférer rapidement le mélange dans un tube à essai. Incuber les cellules pendant 1 h à 37 ° C sous agitation.</li><li> Étaler transformé des cellules de E. coli sur le bouillon Lysogénie (LB) des plaques d&#39; agar contenant des antibiotiques appropriés (35 pg / ml de chloramphénicol et 100 pg / ml d&#39; ampicilline pour sélectionner pEVOL-AFRS et pBAD-HerFab-L177TAG, respectivement). Incuber les plaques à 37 ° C pendant 12 heures. </li></ol></li><li> Préparation de la culture <ol><li> Inoculer une seule colonie transformée en 5 LB ml de milieu contenant des antibiotiques. Incuber pendant 12 h à 37 ° C avec agitation. </li></ol></li></ol> 3. Expression et purification de HerFab-L177AF <ol><li> Expression de HerFab-L177AF <ol><li> Transférer la culture primaire (5 ml) dans 200 ml de LB milieu contenant de l&#39;ampicilline (100 pg / ml) et AF (1 mM), suivi d&#39;une incubation à 37 ° C sous agitation. REMARQUE: la solution mère AF 100 mM (10 ml) a été préparée par dissolution de 206 mg AF dans 100 mM d&#39;acide chlorhydrique (10 ml, volume final). </li><li> Ajouter 2 mL de 1,6 M arabinose (16mM concentration finale) lorsque la culture atteint la phase logarithmique (DO 550 = 0,8, OD = densité optique). Incuber pendant 12 h à 30 ° C avec agitation. </li><li> Récolte des cellules par centrifugation à 11.000 xg pendant 5 min. Rejeter le surnageant et congeler le culot à -20 ° C. </li></ol></li><li> lyse cellulaire <ol><li> Remettre en suspension les pastilles cellulaires dans 20 ml de tampon de lyse contenant du Tris périplasmique 30 mM (pH 8,0), 1 mM d&#39;EDTA, 20% de saccharose et 0,2 mg / ml de lysozyme, et on incube le mélange pendant 1 h à 37 ° C. </li><li> Centrifuger le lysat cellulaire à 18 000 xg à 4 ° C pendant 15 min. Transférer le surnageant dans un nouveau tube et jeter le culot. </li></ol></li><li> Chromatographie d&#39;affinité sur Ni-NTA <ol><li> Ajouter la suspension de Ni-NTA de résine dans chaque tube de centrifugeuse (400 ul de résine pour une culture de 200 ml), et mélanger doucement à 4 ° C pendant 1 h. </li><li> Verser la suspension dans une colonne de polypropylène et laver la résine trois fois avec 5 ml bu de lavageffer contenant 50 mM de NaH 2 PO 4 (pH 8,0), 20 mM d&#39; imidazole et 300 mM de NaCl. </li><li> Éluer l&#39;anticorps cible avec 300 pi de tampon d&#39;élution contenant 50 mM de NaH 2 PO 4 (pH 8,0), 250 mM imidazole et 300 mM de NaCl. </li><li> Déterminer la concentration de la protéine mutante par Bradford Protein Assay 29 ou en mesurant l&#39;absorbance à 280 nm. Calculer le coefficient d&#39;extinction (75866 M -1 cm -1) pour HerFab-L177AF à 280 nm par le calculateur de coefficient d&#39;extinction de la protéine en utilisant le coefficient d&#39;extinction (2471 M -1 cm -1) pour AF. REMARQUE: La séquence d&#39;acides aminés de HerFab peut être trouvé dans le site web du NCBI (GI: 783282791 et GI: 783282792). </li></ol></li></ol> 4. Conjugaison Purifié HerFab-alcyne L177AF avec des sondes en utilisant la souche favorisée par cycloaddition de l&#39;azide-alcyne (SPAAC) <ol><li> Ajouter 20 pi de Cy5.5-Azadibenzocyclooctyne (Cy5.5-Adibo) dans H 2 O (20081; M concentration finale) à une solution de 10 pi de HerFab-L177AF (10 pM concentration finale) dans un tampon phosphate contenant 10 mM de Na 2 HPO 4 (pH 7,0) et NaCl 100 mM. NOTE: Comme alternatives, cyclooctyne difluoré (DIFO) et bicyclo [6.1.0] nonyne dérivés (BCN) sont également disponibles pour la même application. </li><li> Laisser la réaction de cycloaddition souche promu se dérouler pendant 6 h à 37 ° C. Si une sonde sensible à la lumière (par exemple, Cy5.5) est utilisé, couvrez le récipient de réaction avec une feuille d&#39;aluminium. </li><li> Purifier le HerFab marqué selon l&#39;étape 5. </li></ol> 5. Purification de Étiqueté HerFab <ol><li> Ajouter 500 ul d&#39;échantillon à une colonne filtre rotatif centrifuge. </li><li> Centrifuger la colonne de centrifugation à 14 000 xg à 4 ° C pendant 15 min. </li><li> Jeter l&#39;effluent et de transfert purifiés échantillon de la colonne de centrifugation dans un tube de centrifugation de 1,5 ml. </li><li> Comme une alternative à l&#39;étape 5.1- 5.3, effectuez purification par dialyse contre le même tampon. </li><li> Stocker le étiqueté HerFab purifié à 4 ° C. </li></ol> 6. SDS-PAGE Analyse des Étiqueté HerFab <ol><li> Ajouter 5 ul SI tampon d&#39;échantillon de protéine contenant 106 mM de Tris-HCl, 141 mM de base Tris (pH 8,5), 2% SI, 10% de glycerol, EDTA 0,51, 0,22 mM SERVA Bleu G250, et 0,175 mM de rouge de phénol à 13 pi de HerFab marqué purifié (7,8 uM ou 0,38 mg / ml) en présence (+) ou absence (-) de 2 ul de dithiothréitol (DTT, 100 mM de concentration finale). Laisser incuber le mélange à 95 ° C pendant 10 min. </li><li> Fixer le Bis-Tris gel SDS-PAGE Cassette 4-12% à la cellule d&#39;électrophorèse et d&#39;ajouter un tampon en cours d&#39;exécution. Chargez les échantillons de protéines conjugués et le marqueur pré-tachée poids moléculaire. Effectuer une électrophorèse sur gel pendant 35 min à 200 V. Remarque: Conservez la cellule d&#39;électrophorèse dans l&#39;obscurité pendant toute la période pour réduire au minimum la photo-blanchiment du fluorophore. </li><li> Après électrophorèse, transfertle gel à un scanner de gel fluorescent, et de numérisation pour l&#39;émission de fluorescence à la longueur d&#39;onde appropriée. Pour Cy5.5, utilisez le mode Cy5 dans le logiciel du scanner. </li><li> Colorer le gel avec une tache de protéine commerciale. </li></ol>

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Les auteurs n’ont rien à divulguer.

L&#39;incorporation génétique d&#39;acides aminés non naturels dans des protéines présente plusieurs avantages par rapport à d&#39;autres procédés utilisés pour la modification des protéines. 1-3 Un des avantages importants est son applicabilité générale à tout type de protéine. En principe, il n&#39;y a pas de limitation dans la sélection d&#39;une protéine cible et un site cible de la protéine. Toutefois, le remplacement d&#39;un résidu structurellement ou fonctionnellement importante avec une SAU peut entr...

Etant donné que la constitution génétique de p -methoxyphenylalanine dans Escherichia coli a été signalé, plus de 1 100 acides aminés non naturels (UAAs) ont été incorporés avec succès dans diverses protéines. 1-3 Parmi ces UAAs, les acides aminés contenant des groupes fonctionnels bioorthogonal ont été largement étudiés et représentent la plus grande proportion. Les groupes fonctionnels utilisés dans les bioorthogonal UAAs comprennent une cétone, un azoture 4, 5 alcyne, 6 cyclooctyne, 7 tétrazine, 8 α, β-insaturé , un amide, un norbornène 9, 10 transcyclooctene, 11 et bicyclo [6.1.0] -nonyne. 11 Bien que chaque groupe fonctionnel a ses avantages et ses inconvénients, les acides aminés contenant du azoture ont été le plus largement utilisé pour la protéine conjugaison. p -Azidophenylalanine (AF), l&#39; un des acides aminés contenant azido, est facilement disponible, et son incorporation efficiency est excellent. des protéines mutantes contenant cet acide aminé peut être mis à réagir avec des alcynes par cycloaddition catalysée par le cuivre ou avec cyclooctynes ​​par SPAAC. 12-20 Récemment, biopharmaceutiques ont attiré une grande attention dans l&#39;industrie pharmaceutique. Le conjugué anticorps-médicament (ADC) est une classe d&#39;anticorps thérapeutiques qui sont avantageuses en raison de leur aptitude pour la thérapie ciblée pour le traitement des cancers humains 21 et d&#39;autres maladies. Plus de 50 ADCs sont actuellement en essais cliniques, et le nombre augmente rapidement. Dans le développement de VPA, de nombreux facteurs doivent être considérés pour maximiser l&#39;efficacité et minimiser les effets secondaires. Parmi ces facteurs, la réaction de conjugaison efficace et spécifique de site afin de former une liaison covalente entre un anticorps et d&#39;un médicament est critique. L&#39;efficacité et la spécificité souhaitée dans la réaction de conjugaison peut être obtenue par la conjugaison avec un groupe fonctionnel dans un bioorthogonall&#39;acide aminé non naturel qui est spécifiquement incorporé à un anticorps. 22-26 Ici, nous rapportons un protocole à site spécifiquement incorporer AF dans un fragment d&#39;anticorps et le conjugué fragment d&#39;anticorps mutant avec une sonde biochimique.

<table><tbody><tr><td colspan="4">1. Construction plasmidique </td></tr><tr><td>plasmid pBAD_HerFab_L177TAG</td><td></td><td></td><td>Contient éventuellement le codon stop ambré (TAG) à la position souhaitée. Ko, W. et al. Marquage efficace et spécifique au site par cycloaddition azide-alcyne promue par la souche. BKCS. 36 (9), 2352-2354, doi : 10.1002/bkcs.10423, (2015)</td></tr><tr><td>plasmide pEvol-AFRS</td><td></td><td></td><td>Young, T. S., Ahmad, I., Yin, J. A. et Schultz, P. G. Un système amélioré pour la mutagenèse non naturelle des acides aminés dans les E. coli. J. Mol. Biol. 395 (2), 361-374, doi : 10.1016/j.jmb.2009.10.030, (2010)</td></tr><tr><td>DH10B</td><td>Invitrogen</td><td>C6400-03</td><td>Expression Host</td></tr><tr><td>Plasmid Mini-prep kit</td><td>Nucleogen</td><td>5112</td><td>200/pack</td></tr><tr><td>Agarose</td><td>Intron biotechnology</td><td>32034</td><td>500&nbsp ; g</td></tr><tr><td>Bromure d’éthidium</td><td>Alfa Aesar</td><td>L07482</td><td>1 g</td></tr><tr><td>LB Bouillon</td><td>BD Difco</td><td>244620</td><td>500&nbsp ; g</td></tr><tr><td colspan="4"><fort>2. Préparation de la culture</td></tr><tr><td colspan="4">2.1 Électroporation</td></tr><tr><td>Micro pulseur</td><td>BIO-RAD</td><td>165-2100</td><td></td></tr><tr><td>Micro cuvette d’émetteur</td><td>BIO-RAD</td><td>165-2089</td><td>0.1&nbsp ; cm espace entre électrodes, paquet de 50</td></tr><tr><td>Ampicilline sodique</td><td>Wako</td><td>018-10372</td><td>25 g</td></tr><tr><td>Chloramphénicol</td><td>Alfa Aesar</td><td>B20841</td><td>25 g</td></tr><tr><td>Agar</td><td>SAMCHUN</td><td>214230</td><td>500 g</td></tr><tr><td>SOC moyen</td><td>Sigma</td><td>S1797</td><td>100 mL</td></tr><tr><td colspan="4"><fort>3. Expression et purification de HerFab-L177AF</td></tr><tr><td colspan="4">3.1 Expression de Herfab-L177AF<</td></tr><tr><td>em>p-azido-L-phénylalanine (AF)</td><td>Bachem</td><td>F-3075.0001</td><td>1 g</td></tr><tr><td>L(+)-arabinose, 99 %</td> <td>Acros</td><td>104981000</td><td>100 g Acide</td></tr><tr><td>chlorhydrique, 35~37 %</td><td>SAMCHUN</td><td>H0256</td><td>500 mL</td></tr><tr><td colspan="4">3.2 Lyse cellulaire</td></tr><tr><td>Tris(hydroxymethyl)aminomethane, 99</td><td> %SAMCHUN</td><td>T1351</td><td>500 g</td></tr><tr><td>EDTA Sel disodique dihydraté, 99,5</td> %<td>SAMCHUN</td><td>E0064</td><td>1 kg</td></tr><tr><td>Saccharose</td><td>Sigma</td><td>S9378</td><td>500 g</td></tr><tr><td>Lysozyme</td><td>Siyaku</td><td>126-0671</td><td>1 g</td></tr><tr><td colspan="4">3.3 Chromatographie d’affinité Ni-NTA</strongRésine ></td></tr><tr><td>Ni-NTA</td><td>QIAGEN</td><td>30210</td><td>25 mL</td></tr><tr><td>Colonne en polypropylène</td><td>QIAGEN</td><td>34924</td><td>50/paquet, capacité de 1 mL</td></tr><tr><td>Imidazole, 99 %</td><td>SAMCHUN</td><td>I0578</td><td>1 kg</td></tr><tr><td>Phosphate de sodium monobasique, 98 %</td><td>SAMCHUN</td><td>S0919</td><td>1 kg</td></tr><tr><td>Chlorure de sodium, 99 %</td><td>SAMCHUN</td><td>S2907</td><td>1 kg</td></tr><tr><td colspan="4"><fort>4. Conjugaison de HerFab-L177AF purifié avec des sondes d’alcyne à l’aide de la cycloaddition d’azote-alcyne (SPAAC)</td></tr><tr><td>Cy5.5-ADIBO&nbsp ;</td><td>FutureChem</td><td>FC-6119</td><td>1 mg</td></tr><tr><td colspan="4"><fort>5. Purification des filtres centrifuges HerFab</td></tr><tr><td>Amicon Ultra 0,5 mL</td><td>MILLIPORE</td><td>UFC500396</td><td>96/paquet, 500 &#956 ; L capacité</td></tr><tr><td colspan="4"><fort>6. Analyse SDS-PAGE de HerFab et de gel fluorescent marqués Scanning</td></tr><tr><td>1,4-Dithio-DL-thréitol, DTT, 99,5 %</td> <td>Sigma</td><td>10708984001</td><td>10 g</td></tr><tr><td>NuPAGE LDS Sample Buffer, 4x</td><td>Thermofisher</td><td>NP0007</td><td>10 mL</td></tr><tr><td>Tampon courant MES</td><td>Thermofisher</td><td>NP0002</td><td>500 mL</td></tr><tr><td>Nupage Novex 4-12 % SDS PAGE</td><td>gels Thermofisher</td><td>NO0321</td><td>12 puits</td></tr><tr><td>Coomassie Brilliant Blue R-250</td><td>Wako</td><td>031-17922</td><td>25 g</td></tr><tr><td>Typhoon 9210 imageur à mode variable</td><td>Amersham Biosciences</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

efficace et antibody Étiquetage par strain promu azide-alcyne cycloaddition spécifique du site

Efficient and Site-specific Antibody Labeling by Strain-promoted Azide-alkyne Cycloaddition

Il existe actuellement de nombreux outils chimiques disponibles pour introduire des sondes chimiques, dans les protéines à étudier leur structure et leur fonction. Une méthode utile est la protéine par conjugaison génétiquement l&#39;introduction d&#39;un acide aminé non naturel contenant un groupe fonctionnel bioorthogonal. Ce rapport décrit un protocole détaillé pour l&#39;anticorps conjugaison spécifique au site. Le protocole expérimental comprend les détails de la constitution génétique d&#39;un acide aminé contenant un azoture, et la réaction de conjugaison par cycloaddition de l&#39;azide-alcyne souche promu (SPAAC). Cette réaction de contrainte favorisée par procède par simple mélange des molécules qui réagissent à un pH physiologique et à la température et ne nécessite pas de réactifs supplémentaires tels que le cuivre (I), les ions cuivre et des ligands chélateurs. Par conséquent, cette méthode est utile pour la conjugaison des protéines en général et le développement de conjugués anticorps-médicaments (ADC).

Dans cette étude, un fragment d'anticorps est spécifique de site conjugué à un fluorophore par incorporation d' un acide aminé contenant un azoture dans le fragment et on fait réagir le fragment d'anticorps mutant avec une cyclooctyne tendue (figure 1). HerFab a été sélectionné en tant que le fragment d'anticorps cible dans laquelle AF a été incorporé comme un acide aminé contenant un azide. Pour choisir le résidu dans HerFab pour le remplacement de fibrillation auricula...

Ici, nous présentons un protocole pour introduire des sondes chimiques spécifiques au site dans un fragment d’anticorps en incorporant génétiquement un acide aminé contenant de l’azoture, puis en couplant l’azoture avec une sonde chimique par cycloaddition azide-alcyne promue par souche (SPAAC).

Efficace et Antibody Étiquetage par Strain promu Azide-alcyne cycloaddition spécifique du site

There are currently many chemical tools available to introduce chemical probes into proteins to study their structure and function. A useful method is ...

L’objectif global de cette procédure est d’introduire des sondes chimiques spécifiques dans un fragment d’anticorps en incorporant génétiquement un acide aminé contenant de l’azoture. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la biologie chimique, telles que la modification, l’ingénierie et la conjugaison des protéines. Le principal avantage de cette technique est que votre sonde ou bouillon cible peut être introduit localement dans des protéines ou des anticorps par simple mélange.Après avoir construit les plasmides, ajoutez un microlitre de chacun à 20 microlitres de la souche DH10-bêta d’E.Coli à une concentration de deux fois 10 à huit cellules par microlitre dans un tube à centrifuger de 1,5 millilitre. À l’aide d’une pipette, mélangez délicatement la solution. Placez ensuite 20 microlitres de la solution mélangée dans une cuvette propre.Réglez la machine d’électroporation sur 25 microfarads et 2,5 kilovolts. Insérez ensuite la cuvette dans la glissière de la chambre de choc. Poussez la glissière dans la chambre jusqu’à ce que la cuvette entre en contact ferme avec les électrodes de la chambre.Appuyez une fois sur le bouton d’impulsion jusqu’à ce que la machine d’électroporation émette un bip. Après cela, ajoutez rapidement un millilitre de milieu SOC dans la cuvette. Transférez ensuite le mélange dans un tube à essai.Incuber en secouant à 37 degrés Celsius pendant une heure. Une fois l’incubation terminée, étalez les cellules E.Coli transformées sur des plaques de gélose au bouillon de lysogénie contenant des antibiotiques appropriés. Incuber les plaques à 37 degrés Celsius pendant 12 heures.Une fois l’incubation sur plaque terminée, inoculer une seule colonie transformée dans cinq millilitres de milieu LB contenant des antibiotiques. Incuber en secouant pendant 12 heures à 37 degrés Celsius. Transférez ensuite la culture primaire dans 200 millilitres de milieu LB avec 100 microgrammes par millilitre d’ampicilline et un millimolaire AF. Incuber en secouant à 37 degrés Celsius pendant au moins trois heures.Ajouter deux millilitres d’arabinose 1,6 molaire lorsque la culture atteint une densité optique de 0,8 à 550 nanomètres. Ensuite, incubez en secouant à 30 degrés Celsius pendant 12 heures. Lorsque l’incubation est terminée, récoltez les cellules par centrifugation à 11 000 fois g pendant cinq minutes.Jetez le surnageant et congelez la pastille à moins 20 degrés Celsius. Lorsque vous êtes prêt à lyser les cellules, remplacez la pastille en suspension dans 20 millilitres de tampon de lyse paraplasmique dans un tube de centrifugation frais. Incuber le mélange à 37 degrés Celsius pendant une heure.Ensuite, centrifugez le lysat cellulaire à 18 000 fois g pendant 15 minutes à quatre degrés Celsius. Transférez le surnageant dans un tube frais et jetez la pastille. Ajoutez ensuite 400 microlitres d’une suspension de résine Ni-NTA.À l’aide d’un rotateur, agitez doucement le tube pendant une heure à quatre degrés Celsius. Une fois le mélange terminé, versez la suspension dans une colonne de polypropylène. Lavez la résine trois fois avec cinq millilitres de tampon de lavage.Éluer l’anticorps cible avec 300 microlitres de tampon d’élution. Après cela, déterminez la concentration de la protéine mutante comme indiqué dans le protocole textuel. Commencez par ajouter 10 microlitres d’une solution de 10 micromolaires de HerFab-L177AF dans un tampon de phosphate contenant 10 millimolaires de phosphate de sodium dibasique et 100 millimolaires de chlorure de sodium dans un tube de centrifugation frais.Ajoutez ensuite 20 microlitres d’une solution de 200 micromolaires d’azadibenzocyclooctyne Cy 5.5 dans de l’eau. Après cela, couvrez le récipient de réaction avec du papier d’aluminium. Laissez la réaction de cyclo-édition favorisée par la coloration se dérouler pendant six heures à 37 degrés Celsius.Une fois la réaction terminée, ajoutez 30 microlitres d’échantillon et 450 microlitres de tampon phosphate pour laver le colorant Cy 5.5 libre dans une colonne de centrifugation de filtre. Centrifuger la colonne de centrifugation à 14 000 fois g pendant 15 minutes à quatre degrés Celsius. Jetez le flux, puis transférez l’échantillon purifié dans un tube de microcentrifugation de 1,5 millilitre.Conservez l’HerFab purifié étiqueté à quatre degrés Celsius, à moins qu’il ne soit prêt pour l’analyse. Commencez par ajouter 13 microlitres de HerFab purifié à 7,8 micromolaires dans un tube frais. Ajoutez ensuite cinq microlitres de tampon d’échantillon de protéine LDS.Incuber le mélange à 95 degrés Celsius pendant 10 minutes. Après l’incubation, fixez la cassette de gel Bis-Tris SDS-PAGE à 12 % à la cellule d’électrophorèse. Ajouter un tampon de fonctionnement.Ensuite, chargez les échantillons de protéines conjuguées dans le calibreur de poids moléculaire pré-coloré. Effectuez une électrophorèse sur gel pendant 35 minutes à 200 volts. Une fois l’électrophorèse terminée, transférez le gel dans un système de documentation et d’analyse du gel.Recherchez Cy 5,5, puis colorez le gel avec une coloration protéique commerciale. Dans cette étude, le fragment d’anticorps Her-Fab est conjugué à un site spécifique avec un Ce qui est accompli en incorporant un acide aminé contenant de l’azoture dans le fragment, puis en faisant réagir le fragment d’anticorps mutant avec un cyclooctyne déformé. L’analyse SDS-PAGE est effectuée pour les protéines mutantes exprimées avec et sans l’acide aminé contenant de l’azoture.Comme on peut le voir, le fragment d’anticorps complet n’a été obtenu qu’en présence de l’acide aminé. La conjugaison de l’anticorps contenant l’acide aminé est évaluée par réaction avec un dérivé de l’azadibenzocyclooctyne lié à Cy 5.5, Cy 5.5, et analysée par SDS-PAGE. Les images de fluorescence montrent une conjugaison du fragment d’anticorps mutant avec Cy 5.5 alors qu’aucune conjugaison n’a été observée chez le témoin.Une fois que vous avez correctement exprimé et purifié votre protéine avec de l’acétylphénylalanine, la protéine peut être efficacement marquée avec une sonde avec la souche. Parce que la réaction de marquage ne nécessite aucun réactif supplémentaire, vous pouvez introduire la sonde dans votre protéine cible en mélangeant simplement la sonde avec votre protéine. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon d’introduire une sonde chimique spécifique au site dans un fragment d’anticorps en incorporant génétiquement un acide aminé contenant de l’azoture.

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