Name: Imagerie en direct pour létude microtubules Instabilité dynamique dans les cancers du sein taxane-résistantes (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-02-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 2 s
Description: Découvrez l'imagerie en direct de l'instabilité des microtubules dans les cellules de cancer du sein résistantes au docétaxel. Cette méthode utilise la microscopie de déconvolution et la tubuline GFP pour visualiser la dynamique microtubulaire.

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1. Préparation des cellules pour l&#39;imagerie en direct <ol><li> La culture cellulaire et l&#39; ensemencement <ol><li> Utiliser des cellules MCF-7 du cancer du sein sélectionnées pour la résistance au docétaxel (MCF-7 TXT) et leur lignée cellulaire parentale non résistante (MCF-7 CC). Le processus de sélection et la caractérisation détaillée de ces lignées cellulaires sélectionnées ont été décrites précédemment 24. </li><li> Cultiver les cellules dans des boîtes de culture de 10 cm à 37 ° C dans un milieu composé de 90% de milieu de Eagle modifié par Dulbecco (DMEM) et 10% de sérum de fœtus bovin (FBS) et supplémenté avec des acides aminés non essentiels. Maintenir le support dans une atmosphère de CO2 à 5%. Maintenir les cellules MCF-7 TXT à 5 nM docétaxel. </li><li> cellules de semences sur des lamelles pour l&#39;imagerie en direct. 24 mm stériliser des lamelles en verre de poly-L-lysine en les rinçant à 70% d&#39;alcool, puis en les exposant aux rayons ultraviolets pendant une nuit. Placez les lamelles dans un 6 puits plaque de culture de 35 mm. PLace une lamelle dans chaque puits. </li><li> Retirez le support de la boîte de culture de 10 cm et laver les cellules avec du PBS. Ajouter 0,5 ml de trypsine-EDTA à l&#39;antenne pour détacher les cellules du plat. Ajouter 5 ml de milieu de culture à l&#39;antenne pour neutraliser la trypsine après le détachement des cellules. </li><li> Compter les cellules avec un hémocytomètre pour déterminer le nombre de cellules par unité de volume. </li><li> Ajouter environ 10 5 cellules dans chaque puits en fonction du nombre de cellules par unité de volume. Après avoir secoué doucement, mettez la plaque arrière dans l&#39;incubateur pour permettre aux cellules de se fixer aux lamelles. </li></ol></li><li> Expression de la GFP-tagged α-tubuline <ol><li> Pour doser la dynamique des microtubules, transduire les cellules avec GFP-étiqueté α-tubuline avec le contrôle de la transduction de la GFP commerciale (par exemple, BacMam) selon le protocole du fabricant. </li><li> La culture des cellules dans le puits pendant 36 h dans un incubateur à 37 ° C de la culture cellulaire afin de permettre comadhérence complète et 60% de confluence. </li><li> Calculer le volume approprié de GFP-étiqueté α-tubuline pour ajouter à chaque puits, en fonction de l&#39;équation suivante: <img alt="Équation" src="/files/ftp_upload/55027/55027eq1.jpg" /> Le nombre de cellules est le nombre total estimé de cellules dans le puits au moment de l&#39;étiquetage et de la PPC souhaitée est le nombre de particules par cellule. REMARQUE: Ensemencement des cellules MCF-7 devrait avoir doublé le nombre de cellules de 10 5 à 2 x 10 5 avec un CCP désiré de 20, le volume requis pour chaque lamelle couvre -objet est donc de 40 ul. Pour différentes cellules, le volume calculé sur la base de la formule ci-dessus peut ne pas être le meilleur. Le volume exact doit être ajustée en fonction du niveau d&#39;expression réelle de la GFP-tubuline. </li><li> Mélanger l&#39;a-tubuline plusieurs fois GFP étiqueté par inversion pour assurer une solution homogène. Ne pas vortex. NOTE: Pour le contrôle, le Null (contrôle) réactif est dépourvu de toute génétique des mammifèreséléments et peuvent être utilisés pour aider à déterminer les effets de baculovirus médiée potentiels et la fluorescence de fond. Un contrôle de la transduction de la GFP non ciblée peut également être utilisé, ce qui allume la cellule entière. </li><li> Remplacez le milieu de culture avec du milieu frais. Ajouter 2 ml de nouveau milieu, et 40 pi de GFP-étiqueté α-tubuline dans chaque puits. </li><li> Secouer doucement la plaque pour permettre un mélange complet de la GFP étiquetées α-tubuline avec le milieu de culture. Retourner la plaque dans l&#39;incubateur de culture et mettre à incuber pendant 24 h pour permettre l&#39;expression de la GFP-tubuline. </li></ol></li><li> Traiter les cellules avec le docétaxel NOTE: Cette expérience est de tester l&#39;effet du docétaxel sur microtubules instabilité dynamique. Ainsi, on traite les cellules avec la concentration souhaitée du docétaxel. <ol><li> Préparer un milieu composé de 90% de DMEM et 10% de FBS et supplémenté avec des acides aminés non essentiels. Utilisez DMEM sans rouge de phénol, car le rouge de phénol peut interférer avec le fluorescence de GFP-tubuline. Ajouter la concentration souhaitée de docétaxel (allant de 10 nM à 10 uM). La solution mère de docétaxel est de 10 mM dans le diméthylsulfoxyde (DMSO). </li><li> Préchauffer le milieu contenant du docétaxel à 37 ° C dans l&#39;incubateur de culture tissulaire. </li><li> Remplacer le milieu de culture normal avec le milieu contenant docétaxel et laisser incuber pendant 30 minutes dans l&#39;incubateur de culture tissulaire. Il devrait y avoir au moins 3 lamelles par puits pour chaque concentration de docetaxel. </li></ol></li></ol> 2. Imagerie Live Examiner microtubules Instabilité dynamique <ol><li> Mise en place du système <ol><li> Réaliser des expériences dans une chambre maintenue à 37 ° C et 5% de CO 2. Acquérir des images de fluorescence par intervalle de temps avec un système microscopique équipé d&#39;un 60X, 1,42 huile NA lentille d&#39;objectif sur un microscope à fluorescence inversé et avec une caméra CCD. </li><li> Mettre en place les cellules pour l&#39;imagerie en direct. à la fois le porte-échantillon pré-chaud etle milieu à 37 ° C. Choisissez une lamelle à examiner. Monter la lamelle d&#39;intérêt sur un porte-échantillon et incuber avec 1 ml du milieu contenant du docétaxel préparé à l&#39;étape 1.3.1. </li></ol></li><li> Imagerie en temps réel d&#39;instabilité dynamique des microtubules <ol><li> Identifier les cellules qui seront utilisées pour l&#39;imagerie. Ils doivent être à plat, ont une intensité de fluorescence élevée exprimé GFP-tubuline, et ont des structures de microtubules claires. </li><li> Choisissez une cellule dans le groupe des cellules identifiées à partir de l&#39;étape 2.2.1 d&#39;examiner d&#39;abord. Focus sur la zone périphérique de la cellule identifiée. Mettre en place le programme pour le temps d&#39;exposition et la fréquence d&#39;acquisition d&#39;image. Comme le temps d&#39;exposition est généralement de 0,5 s, les images seront acquises tous les deux s. </li><li> Permettre à un 20 minutes supplémentaires pour les étapes de 1,33 à 2.2.3. Ainsi, exactement 50 minutes après l&#39;addition du docetaxel, tel que décrit à l&#39;étape 1.3.3, commencer l&#39;imagerie (ce qui est de la normalisation). </li><li> Notez le microtubules dynamics pendant 2 min, en prenant toutes les 2 s une photo. Au total, l&#39;acquisition de 60 images pour la cellule identifiée. </li><li> Déplacer vers la cellule suivante identifiée et répétez les étapes 2.2.2 à 2.2.4. Répétez la procédure jusqu&#39;à 5 cellules ont été imagées. Il est impératif de le faire avant le temps atteint 70 min après l&#39;addition du docetaxel, tel que décrit à l&#39;étape 1.3.3. </li><li> Pour chaque condition de traitement, répétez les étapes 2.2.1 à 2.2.5 pour 3 lamelles différentes. Au total, l&#39;image 15 cellules, ce qui est assez de données pour mesurer l&#39;instabilité dynamique des microtubules. </li></ol></li></ol> 3. Traitement de l&#39;image et de l&#39;analyse des données <ol><li> Déconvolution d&#39;images <ol><li> Déconvoluer les images acquises pour obtenir une haute qualité. Ouvrir le programme de déconvolution équipé du système de microscope. </li><li> Cliquez sur &quot;Process&quot; et sélectionnez &quot;Deconvolve.&quot; Faites glisser le fichier d&#39;image à la fenêtre &quot;d&#39;entrée&quot; et cliquez sur &quot;Do.&quot; Le fichier image sera déconvoluée, etfichier déconvoluée sera enregistrée comme un nouveau fichier automatiquement. </li></ol></li><li> Génération de vidéos <ol><li> Cliquez sur le fichier d&#39;image déconvoluée à ouvrir avec le logiciel équipé. </li><li> Cliquez sur &quot;Fichier&quot; et sélectionner &quot;Enregistrer sous film.&quot; Sélectionnez le format &quot;film&quot; comme &quot;AV&quot; et le &quot;style d&#39;animation&quot; comme &quot;Forward&quot;. Réglez la &quot;qualité de compression&quot; à &quot;100%&quot; et le &quot;Frame rate&quot; à &quot;5 / seconde.&quot; </li><li> Cochez la case &quot;Animer à travers le temps&quot; et cliquez sur &quot;Faites-le.&quot; La vidéo sera générée. </li></ol></li><li> Mesure de microtubules shortening et taux de croissance <ol><li> Identifier les microtubules qui seront utilisés pour la mesure. Pour chaque cellule, seulement quelques microtubules pourront avoir leur raccourcissement ou la croissance suivie de manière claire et complète. </li><li> Examinez chaque image de la vidéo pour identifier l&#39;image qui montre la longueur de départ de l&#39;microtubules unnd cadre avec le microtubules le plus étendu ou raccourci. Mesurer la variation de longueur entre les deux microtubules et le temps écoulé entre les deux cadres. </li><li> Calculer le taux de croissance ou le raccourcissement en divisant le changement de longueur dans le temps (l&#39;unité est um / s). Pour chaque condition de traitement, suivi d&#39;au moins 10 cellules et mesurer au moins 20 microtubules. </li><li> Calculer la moyenne et l&#39;erreur standard pour chaque condition de traitement. Analyser la différence statistique entre les conditions à l&#39;aide du test de Student. Signaler les données dans une table et / ou dans un tableau. </li></ol></li></ol>

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Les auteurs déclarent qu&#39;ils ont aucun intérêt financier concurrents.

Il existe deux méthodes principales pour mesurer microtubules instabilité dynamique: in vitro et in vivo. Dans le procédé in vitro, la tubuline purifiée est utilisée pour mesurer l&#39; instabilité microtubules dynamique avec time-lapse interférence différentielle-microscopie à contraste amélioré par ordinateur. Dans le procédé in vivo, microinjecté tubuline fluorescente ou exprimé GFP-tubuline en microtubules est incorporé. La dynamique (croissance et de raccourcissement) des microtu...

<html> La principale cause de mortalité par cancer du sein est par métastase 1, 2. Taxanes, tels que le docétaxel et le paclitaxel, sont actuellement utilisés comme schémas de première intention dans le traitement du cancer du sein métastatique , 2, 3, 4, 5, 6. Ils font partie d&#39;un groupe d&#39;agents de microtubules-ciblage (ATM) qui perturbent la dynamique des microtubules. Cependant, l&#39; un des plus grands défis à l&#39; utilisation de taxanes dans le traitement curatif est le développement de la résistance de taxane dans les cellules cancéreuses, ce qui conduit à la maladie récidive 7. Représente la résistance aux médicaments pour plus de 90% de tous les décès chez les patients atteints d&#39; un cancer du sein métastatique 7. Les microtubules sont formés par la polymérisation des hétérodimères a et ß-tubulineclass = &quot;xref&quot;&gt; 8, 9. La régulation précise de la dynamique des microtubules est important pour de nombreuses fonctions cellulaires, y compris la polarisation cellulaire, de la progression du cycle cellulaire, le transport intracellulaire et la signalisation cellulaire. Dysrégulation des microtubules et leur dynamique va perturber la fonction cellulaire et provoquer la mort cellulaire 10, 11. Selon la façon dont ils provoquent cette dysrégulation, les médicaments MTA peuvent être classés comme des microtubules agents stabilisants ( par exemple, taxanes) ou agents microtubules destabalizing (ie, vinca - alcaloïdes ou colchicine site des agents de liaison) 20. En dépit de leurs effets opposés sur la masse des microtubules, à une dose suffisante, les deux classes peuvent tuer les cellules cancéreuses grâce à leurs effets sur la dynamique des microtubules 21. Les taxanes fonctionnent principalement par la stabilisation de la broche microtubules 12, conduisant àdésalignement chromosomique. L&#39;activation perpétuelle ultérieure du point de contrôle de l&#39;assemblage de broche (SAC) arrête la cellule en mitose. Prolongée mitotique arrestation provoque alors l&#39; apoptose 13, 14. Taxane interagit avec les microtubules par le biais du site de liaison du taxane sur la β-tubuline 8, 15, qui est présent seulement dans la tubuline 16 assemblé. Plusieurs mécanismes de résistance aux taxanes ont été proposées 9, 17. Ces mécanismes comprennent à la fois la multirésistance générale due à la surexpression de protéines et spécifiques de taxane de la résistance 5, 9, 18, 19 médicaments efflux. Par exemple, les cellules cancéreuses résistantes à un taxane peut avoir modifié l&#39;expression et la fonction de certaines β-tubulin isotypes 5, 9, 19, 20, 21, 22, 23. En utilisant une méthode in vivo pour mesurer microtubules instabilité dynamique, on montre que, par rapport aux parents cellules MCF-7 non résistantes, CC 17, la dynamique des microtubules des cellules MCF-7 TXT docétaxel résistantes sont insensibles à un traitement par le docétaxel. Pour mieux comprendre la fonction de MTAs et le mécanisme exact de taxane-résistance dans les cellules cancéreuses, il est essentiel de mesurer la dynamique des microtubules. Nous rapportons ici une méthode in vivo de le faire. En utilisant l&#39; imagerie en direct en combinaison avec l&#39;expression de la tubuline GFP-marqués dans les cellules, nous pouvons mesurer la dynamique des microtubules de MCF-7 TXT et MCF-7 cellules CC avec et wiThoout traitement par le docétaxel. Les résultats peuvent nous aider à concevoir des médicaments plus efficaces qui peuvent surmonter la résistance de taxane.

<table><tbody><tr><td>Dulbecco’s Modified Eagle’s Medium (DMEM)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D5796</td><td></td></tr><tr><td>Acides aminés non essentiels</td><td>Life Technologies, Invitrogen</td><td>11140-050</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Gibco, Invitrogen</td><td>12483</td><td></td></tr><tr><td>Anti-Anti (100x)</td><td>Life Technologies, Invitrogen</td><td>15240-062</td><td></td></tr><tr><td>docétaxel</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>01885-5mg-F</td><td></td></tr><tr><td>DMEM sans rouge de phénol</td><td>Gibco, Invitrogen</td><td>21063</td><td></td></tr><tr><td>Réactif CellLight *BacMam 2.0* GFP-tubuline</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>C10613</td><td>Réactif clé pour l’expression de la tubuline GFP dans les cellules</td></tr><tr><td>CellLight Réactif *BacMam 2.0* GFP</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>B10383</td><td>Contrôle</td></tr> du <tr><td>diméthylsulfoxyde (DMSO)</td><td>Sigma-Aldrich+B9 :AA9</td><td>472301</td><td>pour dissoudre le decetaxel</td></tr><tr><td>22 mm verre coveslip</td><td>Fisher Scientifics</td><td>12-545-101</td><td></td></tr><tr><td>Plaque de culture 6 puits</td><td>Greiner Bio-One International</td> Plaque <td></td>de <td>culture Celi 6 puits</td></tr><tr><td>DeltaVision Microscopy Imaging Systems</td><td>GE Health</td><td></td><td>Ce système est équipé d’une station météo pour le contrôle de la température et du CO2. Il est également équipé du logiciel Worx pour la déconvolution et le contrôle en accéléré.</td></tr><tr><td>Trypsine-EDTA (0,25 %), rouge de phénol</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>25200056</td><td></td></tr><tr><td>Bright-Line Hemacytometer Set, Hausser Scientific Hausser</td><td>Scientific, distribué par VWR</td><td>N° de fournisseur : 1492 N° VWR : 15170-172</td><td></td></tr></tbody></table>

imagerie en direct pour l&#39;étude microtubules instabilité dynamique dans les cancers du sein taxane-résistantes

Live Imaging to Study Microtubule Dynamic Instability in Taxane-resistant Breast Cancers

Les taxanes tels que le docétaxel appartiennent à un groupe d’agents ciblant les microtubules (MTA) qui sont couramment utilisés pour traiter le cancer. Cependant, la résistance aux taxanes dans les cellules cancéreuses réduit considérablement l’efficacité de l’utilisation à long terme des médicaments. Les preuves accumulées suggèrent que les mécanismes sous-jacents à la résistance aux taxanes comprennent à la fois des mécanismes généraux, tels que le développement de la multirésistance aux médicaments due à la surexpression des protéines d’efflux de médicaments, et des mécanismes spécifiques aux taxanes, tels que ceux qui impliquent la dynamique des microtubules. 
Parce que les taxanes ciblent les microtubules cellulaires, la mesure de l’instabilité dynamique des microtubules est une étape importante pour déterminer les mécanismes de résistance des taxanes et donne un aperçu de la façon de surmonter cette résistance. Dans l’expérience, une méthode in vivo a été utilisée pour mesurer l’instabilité dynamique des microtubules. La α-tubuline marquée à la GFP a été exprimée et incorporée dans les microtubules des cellules MCF-7, ce qui a permis d’enregistrer la dynamique des microtubules par laps de temps à l’aide d’une caméra sensible. Les résultats ont montré que, contrairement aux cellulesparentales MCF-7 CC non résistantes, la dynamique des microtubules des cellulesMCF-7 TXT résistantes au docétaxel est insensible au traitement au docétaxel, ce qui provoque la résistance à l’arrêt mitotique induit par le docétaxel et à l’apoptose. Cet article décrit cette méthode in vivo de mesure de l’instabilité dynamique des microtubules.

En utilisant le protocole présenté ici, nous avons étudié les effets de docétaxel sur la dynamique des microtubules de la normale (MCF-7 CC) et le docétaxel résistant (MCF-7) TXT cellules de cancer du sein. Deux séries d&#39;images montrent les effets de docétaxel (0,5 uM) sur la croissance et le raccourcissement des microtubules dans les cellules MCF-7 CC et MCF-7 TXT cellules (figure 1A). <p class="jove_content" fo:keep-t...

Dans cet article, nous rapportons un protocole décrivant une méthode in vivo pour mesurer l’instabilité dynamique des microtubules dans les cellules cancéreuses du sein résistantes au docétaxel (MCF-7TXT). Dans cette méthode, un système d’imagerie par microscopie à déconvolution est utilisé pour détecter l’expression de la GFP-tubuline dans les cellules cibles.

Imagerie en direct pour l&#39;étude microtubules Instabilité dynamique dans les cancers du sein taxane-résistantes

Taxanes such as docetaxel belong to a group of microtubule-targeting agents (MTAs) that are commonly relied upon to treat cancer. However, taxane ...

L’objectif global de cette expérience est de mesurer l’instabilité dynamique des microtubules dans les cellules cancéreuses du sein résistantes au docétaxel. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la biologie cellulaire sur l’instabilité dynamique des microtubules dans des conditions physiologiques et à la suite de divers traitements médicamenteux. Les principaux avantages de cette technique sont qu’elle fournit un protocole simple, fiable et physiologiquement applicable pour l’étude de la dynamique des microtubules dans les cellules vivantes.Avant de commencer la procédure, cultivez les cellules cancéreuses du sein dans un milieu de culture complet dans des boîtes de culture de 10 centimètres à 37 degrés Celsius et 5 % de dioxyde de carbone au degré de confluence approprié. La veille de l’expérience, rincez les lamelles de verre revêtues de poly L-lysine de 24 millimètres avec de l’alcool à 70 % et exposez-les à la lumière UV pendant la nuit. Le lendemain matin, placez un couvercle dans chaque puits d’une assiette à six puits.Ensuite, lavez les cultures avec du PBS et détachez les cellules de chaque plat avec 0,5 millilitre de trypsine EDTA. Lorsque les cellules ont commencé à se soulever du fond de la plaque, neutralisez la trypsine avec cinq millilitres de milieu de culture frais et comptez les cellules. Ajoutez ensuite environ une fois 10 fois les cinquièmes cellules dans chaque lamelle, secouez doucement la plaque et remettez les cellules dans l’incubateur pendant au moins 36 heures.Pour tester la dynamique des microtubules des cellules, mélanger plusieurs fois la solution mère de tubuline alpha marquée par GFP par inversion afin d’assurer une solution homogène sans vortex. Remplacez ensuite le milieu de culture dans chaque puits par deux millilitres de milieu frais contenant 40 microlitres de tubuline étiquetée. Agitez doucement la plaque pour permettre un mélange complet du marqueur avec le milieu de culture et remettez la plaque dans l’incubateur pendant encore 24 heures.Le lendemain, remplacez le milieu de culture par un milieu frais contenant du docétaxel et remettez la plaque dans l’incubateur pendant 30 minutes. Pendant que les cellules sont inhibées, allumez le microscope à fluorescence inversée et préchauffez le porte-échantillon à 37 degrés Celsius. Sélectionnez ensuite l’objectif à huile 60X 1.42 NA et montez la première lamelle sur le porte-échantillon.Couvrez l’échantillon avec un millilitre de milieu frais contenant du docétaxel à 37 degrés Celsius et localisez un groupe de cellules plates présentant une intensité de fluorescence élevée de tubuline alpha marquée à la GFP avec des structures microtubules clairement visibles. Concentrez-vous sur la zone périphérique de l’une des cellules de l’amas et réglez le temps d’exposition approprié dans la fréquence d’acquisition de l’image. Exactement 50 minutes après l’ajout de la première aliquote de docétaxel, commencez à enregistrer la dynamique des microtubules pendant deux minutes, obtenant une photo toutes les deux secondes.Lorsque toutes les images ont été acquises, imagez la cellule suivante comme nous venons de le démontrer, jusqu’à ce que des images pour cinq cellules au total des trois puits de chaque concentration de docétaxel aient été capturées. Lorsque toutes les images ont été acquises pour chaque concentration d’inhibiteur, ouvrez le programme de déconvolution, dans le système de microscope et cliquez sur le processus. Ensuite, sélectionnez déconvolver et faites glisser le fichier image vers la fenêtre de saisie.Cliquez sur do pour déconvolverver l’image et ouvrez le fichier d’image déconvoluée dans le logiciel du microscope. Cliquez sur fichier et enregistrez en tant que film. Définissez le format vidéo sur AV et le style d’animation sur Forward.Réglez la qualité de compression sur 100 % et la fréquence d’images sur cinq par seconde. Cochez ensuite la case Animer jusqu’au temps et cliquez sur le faire pour générer la vidéo. Dans cette expérience représentative, des cellules cancéreuses du sein normales et résistantes au docétaxel ont été traitées avec du docétaxel et imagées comme cela vient d’être démontré, mais les effets du traitement sur la croissance et le raccourcissement des microtubules, plus évidents dans les cellules non résistantes au docétaxel.En effet, la mesure du taux de croissance et de raccourcissement des microtubules dans des conditions de traitement au docétaxel de 0,5 micromolaire révèle une forte inhibition de la dynamique de la tubuline des cellules parentales mais pas résistantes au docétaxel. Une fois maîtrisé, l’ensemble du processus peut être complété en 60 heures si les techniques sont exécutées correctement. Lors de la tentative de cette procédure, il est important de ne pas oublier de sélectionner des cellules plates, avec une intensité élevée de fluorescence de la tubuline GFP, et de réduire à la fois l’intensité de la fluorescence d’excitation et la durée de l’exposition pour éviter l’évanouissement de la fluorescence GFP.Depuis son développement, cette technique a ouvert la voie aux chercheurs dans les domaines de la biologie cellulaire et du cancer pour évaluer les effets de divers agents ciblant les microtubules sur les cellules normales et cancéreuses. Après avoir regardé cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la façon de mesurer l’instabilité dynamique des microtubules dans des cellules vivantes dans diverses conditions.

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Imagerie de cellules vivantes fournit une foule de renseignements sur des cellules individuelles ou des populations entières qui est inaccessible par cellule fixe d’images seul. Ici, les protocoles d’imagerie de cellules vivantes pour évaluer les décisions de sort de cellule après un traitement par le paclitaxel drogue anti mitotique sont décrits.

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Un protocole d’imagerie des microtubules dynamiques in vivo à l’aide d’une protéine de liaison à l’extrémité sous marquage fluorescent a été présenté. Nous avons décrit les méthodes pour étiqueter, imager et analyser les microtubules dynamiques dans le neurone du microtubule latéral postérieur (PLM) de C. elegans.

In vivo Évaluation de la dynamique et de l’orientation des microtubules dans les neurones de Caenorhabditis elegans

Ici, un essai de reconstitution in vitro basé sur la microscopie TIRF est présenté pour quantifier et comparer simultanément la dynamique de deux populations de microtubules. Une méthode est décrite pour visualiser simultanément l’activité collective de plusieurs protéines associées aux microtubules sur des faisceaux de microtubules réticulés et des microtubules simples.

Visualisation simultanée de la dynamique des microtubules réticulés et simples in vitro par microscopie TIRF

Nous rapportons une technique permettant l’imagerie en direct de la dynamique des microtubules dans les cellules de glioblastome (GBM) envahissant un tissu cérébral de vertébrés. Le couplage de l’injection orthotopique de cellules GBM marquées par fluorescence dans un cerveau de poisson-zèbre transparent avec une imagerie intravitale à haute résolution permet de mesurer la dynamique du cytosquelette lors de l’invasion in situ du cancer.

Imagerie en direct de la dynamique des microtubules dans les cellules de glioblastome envahissant le cerveau du poisson zèbre

Découvrez l'imagerie en direct de l'instabilité des microtubules dans les cellules de cancer du sein résistantes au docétaxel. Cette méthode utilise la microscopie de déconvolution et la tubuline GFP pour visualiser la dynamique microtubulaire.

Imagerie en direct pour l'étude microtubules Instabilité dynamique dans les cancers du sein taxane-résistantes

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