Name: Mise en place de cellules tétraploïdes proliférative de fibroblastes humains non transformés (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-01-08T14:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 4 s
Description: Découvrez comment établir des cellules tétraploïdes prolifératives à partir de fibroblastes humains normaux sans population diploïde. Cette méthode utilise la démécocolcine et la technique de shake-off pour étudier l'instabilité chromosomique et la carcinogenèse.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Nous remercions Mme Matsumoto pour l’assistance technique.

1. Culture cellulaire <ol><li> Obtenir les cellules pour induire tétraploïdie. À ce jour, il a été confirmé que cette technique peut être appliquée sur les lignées cellulaires de fibroblastes humains TIG 1, BJ, IMR-90 et de la télomérase immortalisation TIG-1 (TIG-HT). </li><li> Cultiver les cellules dans du milieu essentiel minimal avec modification α ou tout autre milieu de culture cellulaire approprié pour le type de cellules à étudier additionné de 10% (v / v) de sérum de fœtus bovin inactivé par la chaleur (FBS) par mise en incubation dans un 5% (v / v) une atmosphère de CO2 à 37 ° C. cellules Passage tous les 3 ou 4 jours de ne pas dépasser la densité de subconfluent. REMARQUE: Le niveau de doublement de la population (PDL) doit être calculé chaque fois à repiquage pour évaluer la croissance cellulaire et l&#39;âge de la cellule. PDL peut être calculé à partir du nombre de cellules ensemencées dans une boîte (N1) et le nombre de cellules récoltées à côté des passages (N2) à l&#39;aide de la formule suivante (X est la première PDL). PDL = X + (log N1 - log N2) / log 2 </li></ol> 2. Induction et Estaétablis- des cellules tétraploïdes à partir de diploïdes Fibroblastes <ol><li> Provoquer tétraploïdie sans shake-off. NOTE: Certaines souches de cellules (par exemple TIG-1) peut devenir presque complètement tétraploïde par un traitement continu avec démécolcine (DC) comme suit. <ol><li> cellules Passage dans une ou deux boîtes de 100 mm le jour avant le traitement pour induire tétraploïdie. En règle générale, la préparation de 5 x 10 5 à 1 x 10 6 cellules par boîte pour l&#39; induction de cellules tétraploïdes. </li><li> Traiter des cellules en croissance exponentielle dans un milieu contenant 0,1 pg / ml à courant continu pendant 4 jours. </li><li> Remplacer DC milieu contenant un milieu exempt de drogue et incuber les cellules dans un 5% (v / v) atmosphère de CO 2 à 37 ° C. Les cellules reprennent généralement la prolifération dans 1 semaine. </li></ol></li><li> Provoquer tétraploïdie avec shake-off. REMARQUE: La plupart des cellules deviennent un mélange de populations diploïdes ou tétraploïdes à la suite du traitement simple en courant continu décrit ci-dessus (2.1). Par conséquent, certaines modifications de la pROCÉDURE pour éliminer une population diploïde sont nécessaires comme suit (Figure 1). <ol><li> cellules Passage dans plusieurs T75 Gourde le jour avant le traitement pour induire tétraploïdie. Habituellement, préparer au moins 5 x 10 6 cellules (1 x 10 6 cellules par flacon) pour l&#39; induction de cellules tétraploïdes. </li><li> Traiter les cellules en croissance exponentielle avec un milieu contenant 0,1 pg / mL DC pendant 16 - 18 h pour arrêter les cellules en mitose. Le temps requis pour arrêter les cellules en mitose peut dépendre des cellules cibles et devrait être déterminée par des expériences préliminaires pour obtenir autant de cellules mitotiques que possible. Par exemple, les cellules à croissance plus lente devraient être traitées avec DC pour plus de temps que les cellules à croissance rapide. NOTE: Si les cellules sont traitées pendant trop longtemps dans cette étape, ils pourraient subir un glissement mitotique et adhérer à la surface de la boîte, ce qui rend impossible la collecte de cellules en mitose par shake-off à l&#39;étape suivante. </li><li> Recueillir les cellules en mitose DC-arrêtés par la méthode shake-off, dans which cellules en mitose lâchement adhérées sont collectées par agitation douce de flacons et le lavage avec du milieu puis par centrifugation (300 xg, 5 min). Compter le nombre de cellules par une méthode appropriée dans cette étape. </li><li> Réensemencer cellules mitotiques recueillies dans des boîtes de culture de 60 mm et de traiter les cellules avec 0,1 pg / mL DC pendant 3 jours. Graine plus de 1 x 10 6 cellules en mitose par boîte, parce que moins de 10% des cellules peut survivre à ce traitement. </li><li> Remplacez DC milieu contenant un milieu exempt de drogue et d&#39;attendre pour les cellules de reprendre la prolifération, qui se produit habituellement dans 1 semaine. </li></ol></li><li> Passage des cellules de manière similaire à des cellules diploïdes d&#39;origine. </li></ol> 3. Examen de l&#39;ADN ploïdie NOTE: Ceci est une procédure bien établie et un manuel technique devrait être renvoyée à des procédures détaillées et des conseils techniques. <ol><li> Récolte des cellules (5 x 10 5 - 1 x 10 6) par incubation des cellules avec une solution concontenant 0,05% de trypsine et 0,02% d&#39;EDTA pendant 10 min à 37 ° C et on neutralise la trypsine par un milieu contenant 10% de FBS. </li><li> centrifuger les cellules dans le milieu et les laver par remise en suspension dans 5 ml de solution saline tamponnée au phosphate (PBS) suivie par une centrifugation (300 x g, 5 min). </li><li> Préparer des cellules pour l&#39;analyse de l&#39;ADN par une des deux méthodes suivantes <ol><li> Procédé d&#39;analyse de cellules non fixées 10 Remarque: Cette méthode peut être réalisée en utilisant un kit disponible dans le commerce pour l&#39;analyse du cycle cellulaire. Les échantillons préparés avec cette méthode doivent être analysés immédiatement, parce que les cellules ne sont pas fixés dans la procédure et colorées noyaux seront endommagés au fil du temps. <ol><li> Laver les cellules avec 40 mM de tampon citrate contenant 250 mM de saccharose. traiter ensuite les cellules avec 250 ul de 0,1% (v / v) de Nonidet P40 et 30 pg / ml de trypsine dans 200 pl de 40 mM de tampon citrate contenant 250 mM de saccharose pendant 10 min à température ambiante. </li><li> Ajouter 200 pi de 0,5 pg / ml de trypsine inhibitor et 0,1 pg / ml de RNase A dans 40 mM de tampon citrate contenant 250 mM de saccharose, et on incube les cellules pendant 10 min à température ambiante. </li><li> Ajouter 200 ul de 0,4 mg / mL d&#39;iodure de propidium (PI) dans un tampon de citrate 40 mM contenant 250 mM de saccharose, et on incube les cellules pendant 10 min à température ambiante pour colorer des noyaux cellulaires. </li></ol></li><li> Procédé pour analyser des cellules fixées <ol><li> Fixer les cellules avec 80% d&#39;éthanol en mettant en suspension les cellules dans 1 ml de PBS, en ajoutant 4 ml de EtOH à 100%, goutte à goutte tout en mélangeant la suspension de cellules et en le laissant à température ambiante pendant 30 min. Les cellules de cette fixatif peuvent être conservés à -20 ° C pendant plusieurs semaines. </li><li> Laver les cellules en les remettant en suspension dans 5 ml de PBS puis par centrifugation (300 x g, 5 min). Traiter les cellules avec 0,5 mg / ml de RNase A et les colorer avec 50 pg / ml d&#39;iodure de propidium (PI) (475 pl de 0,5 mg / ml de RNase A et 25 ul de 1 mg / mL de PI) pendant 30 min à température ambiante. </li></ol></li></ol></li><li> Analyser le contenu d&#39;ADN de til cellules en utilisant un cytomètre de flux avec un laser de 488 nm et un filtre d&#39;émission de canal rouge (longue passe&gt; 610 nm). Analyser un échantillon de référence préparé à partir de cellules diploïdes d&#39;origine en même temps pour évaluer la ploïdie des cellules cibles. <ol><li> En variante, ajouter des perles de fluorescence standard pour évaluer le rapport d&#39;intensité de fluorescence des cellules diploïdes par rapport aux billes. Utilisez la «hauteur d&#39;impulsion de largeur d&#39;impulsion par rapport à « l&#39; option de la cytométrie de flux pour distinguer entre les cellules et amas de cellules diploïdes 11 tétraploïdes simples. </li></ol></li></ol> 4. Examen des Comtes chromosomiques et analyse caryotype NOTE: Ce sont toutes des procédures bien établies et un manuel technique ou les protocoles du fabricant devraient être soumises à des procédures détaillées et des conseils techniques. <ol><li> Traiter les cellules en croissance exponentielle avec 0,1 pg / mL DC pendant 4 h pour arrêter les cellules en métaphase. </li><li> Préparer des lames chromosomiques. <ol><li&gt; cellules de récolte (au moins 5 x 10 5 cellules) par trypsinisation et suspendre dans un milieu contenant du FBS. </li><li> centrifuger les cellules dans un milieu (300 xg, 5 min) et on traite avec une solution hypotonique (5 ml de 0,075 M de KCl) à 37 ° C pendant 10 min. </li><li> Fix et suspendre les cellules dans le fixateur de Carnoy (méthanol: acide acétique = 3: 1). </li><li> Étaler des cellules sur une lame de verre en laissant tomber un petit volume (25 - 35 ul) de la suspension cellulaire. Des mesures supplémentaires telles que l&#39;exposition à la vapeur d&#39;eau chaude pourraient être nécessaires pour améliorer le chromosome se propager. </li></ol></li><li> Cellules Stain pour comptage des chromosomes ou l&#39; analyse du caryotype ou fluorescence multicolore hybridation in situ (MFish). <ol><li> compte chromosomiques. <ol><li> les cellules tache avec une solution de Giemsa à 5% (ou 5 ug PI / ml contenant 0,5 mg / ml de RNase A pour la microscopie par fluorescence) pendant 15 - 20 min. </li><li> photographier numériquement au moins 50 cellules métaphasiques. </li><li> Comptez le nombre de chromosomes par cellule en utilisant un softwa d&#39;analyse d&#39;imagere après séparation manuelle de toucher et de chevauchement des chromosomes à l&#39;aide d&#39;un logiciel de retouche photo. Bien que le nombre de chromosomes peut être marqué manuellement, pointage informatisé est recommandé. </li></ol></li><li> analyse du caryotype NOTE: Cette analyse doit être effectuée par un technicien qualifié ou une entreprise professionnelle. <ol><li> Cellules Stain selon une technique G-banding standard de 12. </li><li> Analyser les chromosomes de faire Caryogamies standard de 12. </li></ol></li><li> mFISH REMARQUE: Cette étape est facultative et doit être effectuée si nécessaire. <ol><li> Cellules Stain en utilisant des sondes FISH multicolores pour les chromosomes humains selon le protocole du fabricant 13. </li><li> Analyser les chromosomes en utilisant un microscope à fluorescence avec des filtres adaptés et d&#39; un logiciel d&#39;analyse mFISH 13. </li></ol></li></ol></li></ol>

<ol><li>Rabinovitch, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Predictors+of+progression+in+Barrett%27s+esophagus+III%3A+baseline+flow+cytometric+variables%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Gastroenterol%22%5BJournal%5D)">Predictors of progression in Barrett's esophagus III: baseline flow cytometric variables.</a> Am. J. Gastroenterol. 96 (11), 3071-3083 (2001).</li>
<li>Galipeau, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((NSAIDs+modulate+CDKN2A%2C+TP53%2C+and+DNA+content+risk+for+progression+to+esophageal+adenocarcinoma%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Med%22%5BJournal%5D)">NSAIDs modulate CDKN2A, TP53, and DNA content risk for progression to esophageal adenocarcinoma.</a> PLoS Med. 4 (2), e67(2007).</li>
<li>Olaharski, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tetraploidy+and+chromosomal+instability+are+early+events+during+cervical+carcinogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Carcinogenesis%22%5BJournal%5D)">Tetraploidy and chromosomal instability are early events during cervical carcinogenesis.</a> Carcinogenesis. 27, 337-343 (2006).</li>
<li>Liu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((p53-independent+abrogation+of+a+postmitotic+checkpoint+contributes+to+human+papillomavirus+E6-induced+polyploidy%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">p53-independent abrogation of a postmitotic checkpoint contributes to human papillomavirus E6-induced polyploidy.</a> Cancer Res. 67, 2603-2610 (2007).</li>
<li>Davoli, T., de Lange, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+causes+and+consequences+of+polyploidy+in+normal+development+and+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Cell+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">The causes and consequences of polyploidy in normal development and cancer.</a> Annu Rev Cell Dev Biol. 27, 585-610 (2011).</li>
<li>Fox, D., Duronio, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endoreplication+and+polyploidy%3A+insights+into+development+and+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Endoreplication and polyploidy: insights into development and disease.</a> Development. 140, 3-12 (2013).</li>
<li>Fujiwara, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytokinesis+failure+generating+tetraploids+promotes+tumorigenesis+in+p53-null+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Cytokinesis failure generating tetraploids promotes tumorigenesis in p53-null cells.</a> Nature. 437, 1043-1047 (2005).</li>
<li>Ganem, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytokinesis+failure+triggers+hippo+tumor+suppressor+pathway+activation%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Cytokinesis failure triggers hippo tumor suppressor pathway activation.</a> Cell. 158 (4), 833-848 (2014).</li>
<li>Kuznetsova, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromosomal+instability%2C+tolerance+of+mitotic+errors+and+multidrug+resistance+are+promoted+by+tetraploidization+in+human+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+cycle%22%5BJournal%5D)">Chromosomal instability, tolerance of mitotic errors and multidrug resistance are promoted by tetraploidization in human cells.</a> Cell cycle. 14 (17), 2810-2820 (2015).</li>
<li>Vindeløv, L., Christensen, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detergent+and+proteolytic+enzyme-based+techniques+for+nuclear+isolation+and+DNA+content+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Detergent and proteolytic enzyme-based techniques for nuclear isolation and DNA content analysis.</a> Methods Cell Biol. 41, 219-229 (1994).</li>
<li>Darzynkiewicz, Z., Juan, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+content+measurement+for+DNA+ploidy+and+cell+cycle+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Protoc+Cytom%22%5BJournal%5D)">DNA content measurement for DNA ploidy and cell cycle analysis.</a> Curr Protoc Cytom. , Chapter 7: Unit 7.5(2001).</li>
<li>Knutsen, T., Bixenman, H., Lawce, H., Martin, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromosome+analysis+guidelines+preliminary+report%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Genet+Cytogenet%22%5BJournal%5D)">Chromosome analysis guidelines preliminary report.</a> Cancer Genet Cytogenet. 52 (1), 11-17 (1991).</li>
<li>Liehr, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multicolor+FISH+probe+sets+and+their+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Histol.+Histopathol%22%5BJournal%5D)">Multicolor FISH probe sets and their applications.</a> Histol. Histopathol. 19 (1), 229-237 (2004).</li>
<li>Ohshima, S., Seyama, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formation+of+bipolar+spindles+with+two+centrosomes+in+tetraploid+cells+established+from+normal+human+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Cell%22%5BJournal%5D)">Formation of bipolar spindles with two centrosomes in tetraploid cells established from normal human fibroblasts.</a> Hum. Cell. 25 (3), 78-85 (2012).</li>
<li>Ohshima, S., Seyama, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment+of+proliferative+tetraploid+cells+from+normal+human+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Front.+Oncol%22%5BJournal%5D)">Establishment of proliferative tetraploid cells from normal human fibroblasts.</a> Front. Oncol. 3, 198(2013).</li>
<li>Ohshima, S., Seyama, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment+of+proliferative+tetraploid+cells+from+telomerase-immortalized+normal+human+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22Genes%2C+Chromosome+Cancer%22%5BJournal%5D)">Establishment of proliferative tetraploid cells from telomerase-immortalized normal human fibroblasts.</a> Genes, Chromosome Cancer. 55 (6), 522-530 (2016).</li>
<li>Di Leonardo, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((DNA+rereplication+in+the+presence+of+mitotic+spindle+inhibitors+in+human+and+mouse+fibroblasts+lacking+either+p53+or+pRb+function%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">DNA rereplication in the presence of mitotic spindle inhibitors in human and mouse fibroblasts lacking either p53 or pRb function.</a> Cancer Res. 57, 1013-1019 (1997).</li>
<li>Andreassen, P., Lohez, O., Lacroix, F., Margolis, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tetraploid+state+induces+p53-dependent+arrest+of+nontransformed+mammalian+cells+in+G1%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Tetraploid state induces p53-dependent arrest of nontransformed mammalian cells in G1.</a> Mol. Biol. Cell. 12, 1315-1328 (2001).</li>
<li>Vogel, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Crosstalk+of+the+mitotic+spindle+assembly+checkpoint+with+p53+to+prevent+polyploidy%5BTitle%5D)+AND+%22Oncogene%22%5BJournal%5D)">Crosstalk of the mitotic spindle assembly checkpoint with p53 to prevent polyploidy.</a> Oncogene. 23, 6845-6853 (2004).</li>
<li>Aylon, Y., Oren, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((p53%3A+Guardian+of+ploidy%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Oncol%22%5BJournal%5D)">p53: Guardian of ploidy.</a> Mol. Oncol. 5 (4), 315-323 (2011).</li>
<li>Uetake, Y., Sluder, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+cycle+progression+after+cleavage+failure+%3A+mammalian+somatic+cells+do+not+possess+a+%26%2334%3Btetraploidy+checkpoint%26%2334%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell cycle progression after cleavage failure : mammalian somatic cells do not possess a &#34;tetraploidy checkpoint&#34.</a> J. Cell Biol. 165, 609-615 (2004).</li>
<li>Ganem, N., Pellman, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Limiting+the+proliferation+of+polyploid+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Limiting the proliferation of polyploid cells.</a> Cell. 131, 437-440 (2007).</li>
<li>Ho, C., Hau, P., Marxer, M., Poon, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+requirement+of+p53+for+maintaining+chromosomal+stability+during+tetraploidization%5BTitle%5D)+AND+%22Oncotarget%22%5BJournal%5D)">The requirement of p53 for maintaining chromosomal stability during tetraploidization.</a> Oncotarget. 1 (7), 583-595 (2010).</li>
</ol>

Les auteurs déclarent qu&#39;ils ont aucun intérêt financier en compétition.

Un problème majeur dans l&#39;induction de tétraploïdie à partir de cellules diploïdes par des agents chimiques, soit par des inhibiteurs de la cytokinèse ou par des inhibiteurs de la broche, est que les cellules deviennent souvent un mélange de populations diploïdes ou tétraploïdes et les cellules tétraploïdes doivent être séparés des cellules diploïdes. La plupart des approches communes pour l&#39;isolement d&#39;une population tétraploïde exempte de cellules diploïdes utilisent FACS ou le clonage par dilution limite....

Polyploidy a été observée non seulement dans les tissus des espèces de mammifères spécialisés, mais également dans une variété d&#39;états pathologiques tels que le cancer et les maladies dégénératives. ( La plupart des cellules polyploïdes tétraploïdes) sont souvent observées dans les lésions précancéreuses de tissus humains, tels que l&#39; œsophage 1,2 ou squameuses lésions intra - épithéliales de Barrett du col 3,4, et ont été considérés comme étant la source des cellules aneuploïdes malignes dans les tissus 5 , 6. Bien qu&#39;il soit suggéré que la conversion de tétraploïdes à des cellules aneuploïdes pourrait être un événement crucial dans les premières étapes de la tumorigenèse, les mécanismes impliqués dans ce processus ne sont pas complètement comprises. Ceci est en partie parce qu&#39;aucun modèle in vitro a été disponible , où les cellules humaines polyploïdes non transformées peuvent se propager. Certains chercheurs ont induit tétraploïdie dans les cellules épithéliales humaines non transformées par la génération de cellules binucléées par inhibiting cytokinesis 7-9. Dans ce procédé, cependant, les cellules diploïdes inutiles doivent être éliminées par tri cellulaire activé par fluorescence (FACS) 7,8 ou le clonage par dilution limitante 9. Parce que ces procédures sont laborieuses et pas facile à réaliser, des méthodes plus simples à mettre en place des cellules tétraploïdes non transformées sont souhaitées pour la recherche dans ce domaine. Dans le présent rapport, nous décrivons un protocole pour établir des cellules tétraploïdes prolifératives de fibroblastes humains normaux ou des fibroblastes humains télomérase immortalisés par des procédures relativement simples. Les procédures utilisent la broche poison démécolcine (DC) pour arrêter les cellules diploïdes en mitose, et les cellules mitotiques recueillies par secouer sont encore traités avec DC. les cellules mitotiques diploïdes traitées avec courant continu pour convertir le temps prolongé dans les cellules G1 tétraploïdes, et ces cellules proliférer les cellules tétraploïdes que, après un arrêt de croissance pendant plusieurs jours après le retrait du médicament. Ce protocole prévoitune méthode efficace pour créer un modèle utile pour étudier la relation entre l&#39;instabilité chromosomique et le potentiel oncogénique de cellules humaines polyploïdes.

<table><tbody><tr><td>MEM-&alpha ;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M8042-500ML</td><td></td></tr><tr><td>Trypsine-EDTA</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>T4174</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>172012-500ML</td><td></td></tr><tr><td>Solution de démécolcine (10 &mu ; g/mL dans HBSS)</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D1925-10ML</td><td></td></tr><tr><td>BD CycleTES Plus Kits de réactifs d’ADN</td><td>BD Biosciences</td><td>#340242</td><td>Pour l’examen de la ploïdie de l’ADN par cytométrie en flux</td></tr><tr><td>Sonde FISH multicolore du chromosome humain 24XCyte</td><td>MetaSystems</td><td>#D-0125-060-DI</td><td>Un ensemble de filtres et un logiciel spécialisés pour l’analyse mFISH sont nécessaires</td></tr><tr><td>Système d’imagerie Isis avec logiciel mFISH&nbsp ;</td><td>Un</td> kit de <td>sonde spécialisé MetaSystems</td><td></td> est nécessaire</tr></tbody></table>

mise en place de cellules tétraploïdes proliférative de fibroblastes humains non transformés

Establishment of Proliferative Tetraploid Cells from Nontransformed Human Fibroblasts

<classe p='jove_content'>Les cellules polyploïdes (principalement tétraploïdes) sont souvent observées dans les lésions prénéoplasiques des tissus humains et leur instabilité chromosomique a été considérée comme responsable de la cancérogenèse dans ces tissus. Bien que les cellules polyploïdes prolifératives soient nécessaires à l’analyse de l’instabilité chromosomique des cellules polyploïdes, la création de telles cellules à partir de cellules humaines non transformées est plutôt difficile. L’induction de la tétraploïdie par des agents chimiques entraîne généralement un mélange de populations diploïdes et tétraploïdes, et la plupart des études ont utilisé le tri cellulaire activé par fluorescence ou le clonage en limitant la dilution pour séparer les cellules tétraploïdes des cellules diploïdes. Cependant, ces procédures sont longues et laborieuses. Le présent rapport décrit un protocole relativement simple pour induire des cellules tétraploïdes prolifératives à partir de fibroblastes humains normaux avec une contamination minimale par des cellules diploïdes. En bref, le protocole comprend les étapes suivantes : arrêter les cellules en mitose par la démécolcine (DC), collecter les cellules mitotiques après secousse, incuber les cellules collectées avec DC pendant 3 jours supplémentaires et incuber les cellules dans un milieu sans médicament (elles reprennent leur prolifération en tant que cellules tétraploïdes en quelques jours). Selon le type de cellule, la collecte de cellules mitotiques par secousse peut être omise. Ce protocole fournit une méthode simple et réalisable pour établir des cellules tétraploïdes prolifératives à partir de fibroblastes humains normaux. Les cellules tétraploïdes établies par cette méthode pourraient être un modèle utile pour étudier l’instabilité chromosomique et le potentiel oncogénique des cellules humaines polyploïdes.

Dans notre expérience, TIG-1 cellules peuvent être presque complètement tétraploïde par un traitement simple et continu avec 0,1 pg / mL DC pendant 4 jours (figure 2A). En revanche, d&#39;autres souches fibroblastiques, tels que BJ ou IMR-90 et des cellules TIG Ht, est devenu un mélange de diploïdes et les populations tétraploïdes suivant le même traitement, et l&#39;isolement des cellules en mitose par la méthode d&#39;agitation d&#39;arrêt est nécessaire au cours de tr...

Bien que des cellules polyploïdes prolifératives soient nécessaires pour analyser l’instabilité chromosomique des cellules polyploïdes, la création de telles cellules à partir de cellules humaines non transformées n’est pas facile. Le présent rapport décrit des procédures relativement simples pour établir des cellules tétraploïdes prolifératives exemptes d’une population diploïde à partir de fibroblastes humains normaux.

Mise en place de cellules tétraploïdes proliférative de fibroblastes humains non transformés

Polyploid (mostly tetraploid) cells are often observed in preneoplastic lesions of human tissues and their chromosomal instability has been considered to ...

L’objectif global de cette procédure est d’établir des cellules tétraploïdes prolifératives, exemptes d’une population diploïde, à partir de fibroblastes humains normaux. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés dans le domaine de la recherche sur la cancérogenèse, telles que la façon dont les cellules aneuploïdes se développent dans les premiers stades de la cancérogenèse. Le principal avantage de cette technique est que des cellules tétraploïdes prolifératives, exemptes d’une population diploïde, peuvent être établies par des procédures relativement simples.Bien que certaines souches deviennent complètement tétraploïdes par un simple traitement avec du poison fuseau, la démécolcine, la plupart doivent être manipulées avec la méthode de secousse pendant ce traitement pour imiter une population diploïde. Pour commencer l’induction de la tétraploïdie sans la méthode de secousse, passez environ cinq fois 10 aux cellules cultivées dans une boîte de 100 millimètres. Incuber le plat dans une atmosphère à 5 % de dioxyde de carbone à 37 degrés Celsius pendant 24 heures.Après cela, traitez les cellules à croissance exponentielle avec un milieu contenant 0,1 microgramme par millilitre DC.Incuber dans une atmosphère de dioxyde de carbone à 5 % à 37 degrés Celsius pendant quatre jours. Remplacez ensuite le milieu contenant du DC par un milieu sans médicament. Incuber dans 5 % de dioxyde de carbone à 37 degrés Celsius jusqu’à ce que la prolifération reprenne.Pour induire la tétraploïdie en utilisant la méthode de secousse, faites passer les cellules cultivées dans des flacons T-75, en vous assurant que chaque flacon contient au moins une fois 10 à 1/6 de cellules. Incuber les flacons dans une atmosphère à 5 % de dioxyde de carbone à 37 degrés Celsius pendant 24 heures. Le lendemain, traitez les cellules avec un milieu contenant des DC pendant 16 à 18 heures pour les arrêter en mitose comme indiqué dans le protocole de texte.Après l’incubation, vérifiez les cellules dans une fiole sous le microscope à contraste de phase inversé. Ensuite, secouez doucement chaque flacon pour commencer la collecte des cellules mitotiques faiblement adhérentes. Il faut éviter toute manipulation imprudente, telle que des secousses violentes ou le contact avec la surface du ballon par la pointe de la pipette.Ne pas contaminer les cellules mitotiques avec des cellules d’interface collées. Lavez délicatement les flacons avec un fluide chaud et transférez les cellules dans des tubes à centrifuger. Utilisez un compteur de cellules atomiques pour compter le numéro de cellule.Après le comptage des cellules, centrifuger à 300 fois g pendant cinq minutes. Réensemencez les cellules mitotiques collectées dans des boîtes de culture de 16 millimètres. Traitez ensuite les cellules plaquées avec un milieu contenant 0,1 microgramme par millilitre de courant continu.Incuber dans 5 % de dioxyde de carbone à 37 degrés Celsius pendant trois jours.Après cela, remplacez le milieu contenant du DC par un milieu sans médicament. Incuber dans une atmosphère à 5 % de dioxyde de carbone à 37 degrés Celsius jusqu’à ce que la prolifération reprenne. Pour l’analyse de la ploïdie de l’ADN, lavez les cellules avec du PBS.Ajoutez ensuite une solution contenant 0,05 % de trypsine et 0,02 % d’EDTA dans les cellules. Incuber pendant 10 minutes à 37 degrés Celsius. Après cela, transférez la suspension cellulaire dans un tube à centrifuger.Et neutralisez la trypsine en ajoutant un milieu contenant 10 % de sérum de veau fœtal. Centrifugez les cellules dans le milieu à 300 fois g pendant cinq minutes. Remettez les cellules en suspension dans cinq millilitres de PBS.Puis centrifuger à nouveau à 300 fois g pendant cinq minutes. Ensuite, mettez les cellules en suspension dans un millilitre de PBS. Ajoutez quatre millilitres d’éthanol à 100 % goutte à goutte en mélangeant.Laissez reposer la suspension à température ambiante pendant 30 minutes pour fixer les cellules. Après cela, centrifugez les cellules dans une solution fixatrice à 300 fois g pendant cinq minutes. Et remettre en suspension les cellules dans cinq millilitres de PBS.Centrifugez la suspension à 300 fois g pendant cinq minutes. Traitez ensuite les cellules avec 475 microlitres de solution d’ARN de 0,5 milligramme par millilitre. Ajouter 25 microlitres d’un milligramme par millilitre de solution de propidium iodé pour colorer les cellules.Et puis mélangez. Laissez reposer la suspension à température ambiante pendant 30 minutes. Ensuite, utilisez un cytomètre en flux avec un laser de 488 nanomètres et un filtre d’émission de canal rouge pour analyser le contenu en ADN des cellules.Analysez également un échantillon de référence préparé à partir de cellules diploïdes authentiques pour évaluer la ploïdie des cellules cibles. Pour commencer, traitez les cellules à croissance exponentielle avec un milieu contenant 0,1 microgramme par millilitre de courant continu pendant quatre heures pour arrêter les cellules en métaphase. Après cela, récoltez au moins cinq fois 10 pour 1/5 de cellules par trypsinisation.Suspendez les cellules récoltées dans un milieu contenant du FBS. Centrifugez la suspension à 300 fois g pendant cinq minutes. Ajoutez ensuite cinq millilitres d’une solution de chlorure de potassium à 0,075 molaire.Incuber à 37 degrés Celsius pendant 10 minutes. Une fois l’incubation terminée, centrifugez la suspension à 300 fois g pendant cinq minutes. Remettez les cellules en suspension dans cinq millilitres de fixateur de Carnoy.Ensuite, centrifugez la suspension à 300 fois g pendant cinq minutes. Ensuite, aspirez le surnageant et remettez en suspension les cellules dans 0,5 millilitre de fixateur de Carnoy. Déposez 30 microlitres de suspension cellulaire sur une lame de verre.Enfin, colorez et analysez les cellules via le comptage des chromosomes ou l’analyse du caryotype. Dans cette étude, des cellules tétraploïdes prolifératives, exemptes d’une population diploïde, sont cultivées à partir de fibroblastes humains normaux. Bien que certaines souches cellulaires puissent devenir complètement tétraploïdes par un traitement continu avec des cellules conductrices, la plupart des cellules doivent être traitées avec la méthode de secousse au cours du traitement par cellules souches pour éliminer une population diploïde.Les résultats représentatifs de l’induction de la tétraploïdie dans trois souches de fibroblastes sont présentés ici. La souche TIG-1 devient presque entièrement tétraploïde par un simple traitement continu avec des DC. Cependant, ce traitement fait que les souches BJ et TIG-hT deviennent un mélange de populations diploïdes et tétrapodes. Par conséquent, l’isolement des cellules mitotiques par la méthode de secouage est nécessaire pendant le processus de traitement.Un comptage chromosomique est effectué dans les cellules tétraploïdes établies. Comme on peut le voir, le nombre de chromosomes modaux est de 92 pour les cellules TIG-1 et BJ, et de 91 pour les cellules TIG-hT. Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée en deux semaines si elle est correctement exécutée.Lors de la tentative de cette procédure, il est important de ne pas oublier de secouer doucement les flacons lors de l’étape de secousse, afin de ne pas provoquer de contamination des cellules mitotiques par les cellules d’interface adhérentes.

establishment-proliferative-tetraploid-cells-from-nontransformed

Research

Recherche

JoVE Journal

Developmental Biology

Biologie du développement

Nous démontrons le protocole pour la génération de cellules souches pluripotentes induites à partir des cellules somatiques humaines en utilisant des lentivirus médiée par la livraison des facteurs humains Oct4, Sox2, Nanog, et Lin28. Pluripotence a été confirmée par la morphologie et la présence de cellules souches embryonnaires (ES) de cellules de marqueurs spécifiques.

Génération de cellules souches pluripotentes induites par la reprogrammation des fibroblastes humains avec les lentivirus TF Stemgent Homme Set

Carcinome associé fibroblastes (CAF) riche en myofibroblastes présents dans le stroma tumoral, jouent un rôle majeur dans la conduite progression tumorale. Nous avons développé un modèle xengraft coimplantation tumeur pour générer expérimentalement CAF à partir de fibroblastes humains mammaires. Le protocole décrit comment établir myofibroblastes CAF qui acquièrent une capacité de promouvoir la tumorigenèse.

Génération expérimentale de carcinome Associated fibroblastes (CAF) à partir des fibroblastes mammaires

Nous présentons un protocole de reprogrammation efficace des cellules somatiques humaines dans l'homme cellules souches pluripotentes induites (hiPSC) en utilisant des vecteurs rétroviraux codant Oct3 / 4, Sox2, Klf4 et c-myc (OSKM) et l'identification des hiPSC correctement reprogrammé par coloration en direct avec des Tra 1-81 anticorps.

Colonies sélectionner et isoler de l&#39;homme cellules souches pluripotentes induites à partir de fibroblastes adultes Reprogrammed

Ici, nous vous présentons notre méthode établie pour reprogrammer des cellules somatiques humaines dans CSPi humaines sans transgène avec le virus de Sendai, qui montre des résultats cohérents et une efficacité accrues.

Génération efficace d&#39;origine humaine souches pluripotentes à partir de cellules somatiques humaines avec Sendai-virus

Nous décrivons un protocole pour la dérivation de cellules souches pluripotentes humaines induites par des facteurs lentiviraux, reprogrammées et caractérisées et leur conversion dans des conditions de qualité clinique présumées.

Préparation et caractérisation d&#39;un libre-Transgene humain souches pluripotentes induites lignée cellulaire et la conversion en des conditions définies de qualité clinique

Génération de cellules souches pluripotentes induites offre des perspectives fascinantes pour la dérivation de la greffe autologue. Toutefois, la progression à travers un état pluripotent et laborieux re-différenciation entrave encore la traduction clinique. Nous décrivons ici la dérivation des fibroblastes humains adultes et leur conversion directe dans des cellules progénitrices neurales induites et la différenciation ultérieure dans les lignées neurales.

Dérivation des adultes fibroblastes humains et de leur conversion directe dans les cellules progénitrices neurales extensible

La dérivation robuste des cellules de la tige pluripotente induite par l'homme (hiPS) a été réalisée en utilisant une reprogrammation médiée par vecteur de virus Sendai non-intégrant (SeV) des fibroblastes dermiques. La maintenance cellulaire de hiPS et l'expansion clonale ont été réalisées en utilisant des conditions de culture sans xénon et chimiquement définies avec une matrice recombinante de la laminine humaine 521 (LN-521) et un milieu E8 (E8) essentiel.

Intégration de la dérivation libre de cellules souches pluripotentes induites par l&#39;homme à l&#39;aide de Laminin 521 Matrix

Ici, nous décrivons une méthode cliniquement pertinente, haute efficacité, exempte d’engraissement pour reprogrammer les fibroblastes humains primaires sur les cellules souches pluripotentes induites à l’aide de mis à jour l’ARNm codant pour des facteurs de reprogrammation et mature microARN-367/302 imite. Est également inclus les méthodes pour évaluer l’efficacité de reprogrammation, développez colonies clonales iPSC et confirmer l’expression du marqueur de pluripotence TRA-1-60.

Base d’ARN reprogrammation des fibroblastes humains de primaires sur les cellules souches pluripotentes induites

Cet article décrit une méthode pour produire l'antigène fonctionnel induit par l'antigène-spécifique pluripotent cD8MD- cellules T positives uniques utilisant le système de co-culture D'OP9/DLL1.

Utilisation de cellules souches pluripotentes induites par l'homme pour la génération de lymphocytes T spécifiques à l'antigène tumoral

Ce protocole démontre l'induction d'un programme hémogène dans les fibroblastes dermiques humains par l'expression forcée des facteurs de transcription GATA2, GFI1B et FOS pour produire des cellules hématopoïétiques de tige et d'ancêtre.

Reprogrammation hémogénique des fibroblastes humains par expression forcée des facteurs de transcription

La reprogrammation cellulaire nécessite l'introduction de gènes clés, qui régulent et maintiennent l'état cellulaire pluripotent. Le protocole décrit permet la formation de colonies de cellules souches pluripotentes induites (iPSC) à partir de fibroblastes dermiques humains sans méthodes virales/intégratrices, mais en utilisant des ARN non modifiés (NM-ARN) combinés à des facteurs d'évasion immunitaire réduisant les mécanismes de défense cellulaire.

Isolement des fibroblastes dermiques humains adultes de la peau abdominale et génération de cellules souches pluripotentes induites à l'aide d'une méthode de non-intégration

Découvrez comment établir des cellules tétraploïdes prolifératives à partir de fibroblastes humains normaux sans population diploïde. Cette méthode utilise la démécocolcine et la technique de shake-off pour étudier l'instabilité chromosomique et la carcinogenèse.

Mise en place de cellules tétraploïdes proliférative de fibroblastes humains non transformés

Explorer plus de vidéos