Name: Isolement et cytométrie de flux Analyse de Human Endocervical Gamma Delta cellules T (Vidéo) | JoVE Journal
Uploaded: 2017-02-06T10:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 10 s
Description: Apprenez à isoler et analyser les lymphocytes gamma delta T intraépithéliaux endocervicaux humains par cytométrie de flux. Cette méthode permet d'étudier les réponses immunitaires locales et de développer des stratégies de prévention des infections.

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Nous remercions les participants à l&#39;étude Miami WIHS pour leur volonté de participer à ce travail. Les données contenues dans ce manuscrit ont été recueillies par Interagency HIV Study des femmes Miami (WIHS). Le contenu de cette publication relève de la seule responsabilité des auteurs et ne représentent pas la position officielle de la National Institutes of Health (NIH). Ce travail a été soutenu par l&#39;Institut national des allergies et des maladies infectieuses et de l&#39;étude des infections interagences VIH des femmes (WIHS) [subvention numéro U01 AI103397], Institut national des allergies et des maladies infectieuses, National Institutes of Health [numéro de subvention P30AI073961], le Centre national pour l&#39;avancement Sciences translationnelle et l&#39;Institut national sur la santé des minorités et les disparités en santé, Institut national de la santé [numéro de subvention UL1TR000460 et 1KL2TR000461], et l&#39;Institut national de la santé infantile et du développement humain, l&#39;Institut national de la santé [numéro de subvention K23HD074489].

activités d&#39;étude ont eu lieu à l&#39;Université de Miami Unité de recherche sur le VIH, en collaboration avec l&#39;étude des femmes Miami Interagency HIV (WIHS) et le Centre de Miami for AIDS Research (CFAR) Conseil d&#39;examen .Institutional (Université de Miami Miller School of Medicine) l&#39;approbation a été obtenue avant au recrutement et à toutes les procédures d&#39;évaluation ou d&#39;études connexes. 1. Endocervical Brush Collection Sample NOTE: Les participants ont subi un examen vaginal effectué par MD ou un gynécologue formé et la collecte des lymphocytes intraépithéliaux ont été réalisées en cours d&#39;examen au spéculum en insérant cytobrosse. <ol><li> Caractéristiques des participants <ol><li> Recruter les participantes qui sont âgés de 18 à 45 ans, sexuellement actives, pas enceinte et non sur les médicaments contraceptifs ou avec un dispositif intra-utérin. </li><li> Avant l&#39;examen vaginal, demandez aux participants sont soumis à un tirage de 10 ml de sang en verttop vacutainers d&#39;héparine pour périphérique de cellules mononucléaires du sang (PBMC) l&#39;isolement. pour servir de contrôle pour l&#39; analyse intraépithéliale endocervical 9. </li></ol></li><li> Collecte des échantillons endocervicales <ol><li> Insérer un spéculum stérile de taille appropriée dans le vagin sans lubrification. Utilisez un eau chaude pour faciliter l&#39;insertion du spéculum et de la gaze stérile pour nettoyer le mucus. La position du spéculum permet la visualisation complète de l&#39;os et exocol. </li><li> Insérez la brosse endocervicale dans le canal endocervical jusqu&#39;à ce que seuls les poils les plus proches de la main sont visibles. Tourner dans le sens horaire de la brosse pour 360 °. Transférer le pinceau dans un tube de 15 ml contenant 5 ml de milieu IMDM. </li><li> Immédiatement après la collecte, placez le tube contenant cytobrosse sur la glace. Pour obtenir une viabilité élevée des cellules intraépithéliales recueillies, livrer le cytobrosse au laboratoire et processus dans 1 h. </li></ol></li></ol><ol><li> tube Vortex contenant cytobrosse endocervical application 4 courts (10 secondes) coups. </li><li> Centrifuger le tube contenant cytobrosse, pendant 10 min à 250 x g. </li><li> Retirez délicatement le cytobrosse du tube (ne pas perturber le culot sur le fond du tube) et ajouter 1 ml de milieu de IMDM et placer le tube sur la glace. </li><li> Placer le cytobrosse sur le tamis cellulaire de 100 mm au-dessus du tube de 50 ml. </li><li> Laver le cytobrosse avec 20 ml IMDM. </li><li> Tube à centrifuger pendant 10 min à 250 x g. </li><li> Décanter le surnageant et les cellules granulées remettre en suspension dans 1 ml de IMDM et se combinent avec le culot déjà remis en suspension décrite au point 2.3. </li><li> Compter les cellules en utilisant un compteur de cellules automatisé 10 ou dénombrer les cellules en utilisant un hémocytomètre en combinant 10 pl de la suspension cellulaire avec 10 pi de colorant bleu trypan. pipeter doucement monter et descendre dix fois pour mélanger les cellules et le colorant. Charge 10 pidu mélange dans l&#39;ouverture de l&#39;une ou l&#39;autre des deux chambres hémocytomètre. Comptez toutes les cellules dans les cinq domaines de la grille. Gardez un décompte séparé des cellules viables et non viables. Déterminer la viabilité des cellules en utilisant la formule suivante:% de cellules viables = cellules non viables totales x 100 cellules / numéro de la cellule. Déterminer la concentration subséquente de cellules par ml (et le nombre total de cellules) en utilisant les calculs suivants. Nombre de cellules par ml = x nombre total de cellules comptées (facteur de dilution / nombre de carrés comptés) x 10.000 cellules / ml. </li><li> Congeler cellules endocervicales isolées à l&#39;aide de milieu de congélation contenant 10% de DMSO et 90% de FBS. </li></ol> 3. cytométrie de flux <ol><li> Resuspendre 1-3 x 10 5 cellules endocervicales dans un tampon de 100 ul FACS (PBS contenant 1% de sérum albumine bovine </li><li> Ajouter 1 pl / 10 6 , LIVE / DEAD Fixable kit Cell Stain Morte jaune et des anticorps pour des marqueurs de surface aux concentrations décrites dans le tableau 1. </li><li> Incuber les cellules pendant 30 min à 4 ° C, à l&#39;abri de la lumière. </li><li> Ajouter 1 tampon FACS mL et les cellules et les tubes de centrifugation pendant 5 min à 350 xg </li><li> Resuspendre culot cellulaire dans 300 pi 1% de paraformaldehyde. </li><li> Préparer des commandes de compensation en utilisant des billes et des anticorps utilisés pour la coloration par addition de 100 ul de tampon FACS et une chute des bourrelets et la même concentration d&#39;anticorps utilisés pour la coloration de l&#39;échantillon. </li><li> Acquérir des perles et des échantillons colorés sur un cytomètre de flux, équipé de 405 nm, 488 nm et 635 nm lasers. </li></ol> 4. Endocervical Gamma delta T cellule d&#39;isolement <ol><li> Isolement des perles magnétiques <ol><li> Re-suspendre endocervical culot cellulaire (≤10 7 cellules total), décrit dans 2.6, dans 40 pi de tampon inclus dans le kit de microbilles gamma delta TCR référencé dans la table des matières et réactifs. </li><li> Suivez les instructions du kit pour deux étapes protocole de coloration: d&#39;abord, l&#39;esprith anti-TCR gamma delta haptène-anticorps et, deuxièmement, avec anti-haptène microbilles-FITC </li><li> Après une incubation de 15 min à 4-8 ° C, laver les cellules en ajoutant 1 ml de tampon et centrifuger à 300 g pendant 10 min. Décanter le surnageant en retournant le tube, et appuyez sur sec à l&#39;aide d&#39;un morceau de papier. </li><li> Remettre en suspension le culot cellulaire dans 500 pi de tampon fourni et préparer la colonne magnétique en le plaçant dans le séparateur magnétique approprié selon le protocole du fournisseur. </li><li> Appliquer la suspension de cellules sur la colonne et recueillir des cellules non marquées qui passent à travers et colonne de lavage 3x avec une quantité appropriée de tampon (500 pi). Effectuer les étapes de lavage par addition d&#39;un tampon à trois reprises, à chaque fois une fois que le réservoir de la colonne est vide. Collecter effluent total. Ceci est la fraction de cellules non marquées, negative </li><li> Supprimer la colonne forment le séparateur magnétique et la pipette 1 ml de tampon sur la colonne et immédiatement débusquer fraction avec l&#39;étiquette magnétiquementcellules ed en appliquant fermement le piston fourni avec la colonne. REMARQUE: isolé des cellules T gamma delta sont déjà colorées par fluorescence pour l&#39;analyse de cytométrie en flux depuis microbilles anti-haptène magnétiquement marqués sont conjugués avec FITC fluorescent de colorant. </li></ol></li><li> cellule tri <ol><li> Pour le tri cellulaire, étiquette cellules endocervicales avec la viabilité filière et panel d&#39;anticorps tel que décrit dans la section 3. </li><li> Mettre en place des portes électroniques sur le live, CD45 + CD3 + et gamma delta cellules positives et effectuer un tri cellulaire. </li></ol></li></ol>

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Les auteurs ne sont pas une association commerciale ou autre qui pourrait constituer un conflit d&#39;intérêts (par exemple, stocks pharmaceutiques propriété, de conseil, de membres du conseil consultatif, les brevets pertinents, ou le financement de la recherche).

Évaluation de la femme inférieure génitale vulnérabilité de la muqueuse des voies est une composante essentielle des études cliniques portant sur le risque d&#39;acquisition et de la transmission du VIH. Typiquement FGT vulnérabilité à l&#39; infection à VIH est évaluée en mesurant les modulateurs immunitaires solubles dans les sécrétions génitales (cytokines, des chimiokines et des peptides antimicrobiens) 12, 13. Cependant, ces biomarqueurs sont seulement indi...

Nous avons développé une méthodologie de l&#39;aide d&#39;échantillons de pinceau endocervical pour évaluer les cellules GD T intraépithéliale. Le canal endocervical est bordée par une seule couche d&#39;épithélium. Lymphocytes intraépithéliaux représentent les lymphocytes de première ligne résidant dans la couche épithéliale qui peut rapidement initier des réponses immunitaires lors de la rencontre des microbes pathogènes 7, 8. Comprendre les événements immunologiques du compartiment intraépithéliale endocervical est important pour la conception de stratégies efficaces pour prévenir les infections, y compris le VIH. Notre méthode peut être appliquée à des échantillons endocervicaux humains fraîchement récoltés ainsi que des cellules endocervicales congelés pour explorer davantage le rôle des cellules T GD intraépithéliale chez les femmes infectées par le VIH ou à risque d&#39;infection par le VIH. L&#39;objectif principal de ce protocole est de découvrir des événements immunologiques nouveaux dans le compartiment intraépithéliale endocervical et évaluatles réponses des lymphocytes T e GD comme un marqueur de la muqueuse de la vulnérabilité chez les femmes infectées par le VIH. Les lacunes importantes dans les connaissances autour de l&#39;immunité de FGT sont partiellement en raison de la difficulté dans la collecte et le traitement des échantillons muqueux avec succès. En outre, l&#39;hétérogénéité complexe des cellules immunitaires de la muqueuse, et leur interconnexion avec l&#39;autre, sont des défis majeurs pour l&#39;identification des mesures cliniquement pertinentes qui reflètent l&#39;état et la capacité du système immunitaire. Nous avons développé une méthode pour obtenir des cellules intraépithéliales hautement purifiées GD T qui peuvent être analysées plus en utilisant des technologies hautement multiplexées, unicellulaires qui peuvent être critiques pour identifier les mécanismes sous-jacents de l&#39;immunité FRT.

<table><tbody><tr><td>Cytobrush Plus GT&nbsp ;</td><td>(CareFusion, San Diego, CA, États-Unis</td><td></td><td></td></tr><tr><td>IMDM, Iscove’s Modified Dulbecco’s Medium&nbsp ;</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>12440061</td><td></td></tr><tr><td>compteur automatisé de cellules Beckman Coulter (l’analyseur de viabilité cellulaire de la série Vi-CELL</td><td>Beckman Coulter</td><td>496178</td><td></td></tr><tr><td>DMSO, le diméthylsulfoxyde de sodium.</td><td>Sigma Aldrich&nbsp ;</td><td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>FBS, Sérum de veau fœtal</td><td>Invitrogen, Gibco</td><td>26140-079</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Invitrogen, Gibco</td><td>10010023</td><td></td></tr><tr><td>BSA</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A-9647</td><td></td></tr><tr><td>LIVE/DEAD Kit de coloration jaune à cellules mortes fixable&nbsp ;</td><td>Life</td> <td>Technologies,L349S9</td><td></td></tr><tr><td>1 % paraformaldéhyde</td><td>Sigma Aldrich&nbsp ;</td><td>D6148</td><td></td></tr><tr><td>Cytomètre en flux Fortessa&nbsp ;</td><td>Becton Dickinson</td><td></td><td></td></tr><tr><td>UltraComp eBeads</td><td>eBioscience</td><td>01-2222-42</td><td></td></tr><tr><td>ArC Amine Perles de Compensation Réactive (Life Technologies, Grand Island, NY, USA)</td><td>Life Technologies</td><td>A10346</td><td></td></tr><tr><td>Anti-TCR gamma/delta MicroBead Kit&nbsp ;</td><td>Milteny Miltenyi Biotec Inc.</td><td>130-050-701</td><td></td></tr><tr><td>Colonne</td><td></td> MS <td>103-042-201</td><td></td></tr><tr><td>Séparateur</td><td></td> MACS <td>4124</td><td></td></tr></tbody></table>

isolement et cytométrie de flux analyse de human endocervical gamma delta cellules t

Isolation and Flow Cytometric Analysis of Human Endocervical Gamma Delta T Cells

L&#39;appareil reproducteur (FRT) système immunitaire muqueux femelle sert de la première ligne de défense. Une meilleure connaissance de la muqueuse génitale est donc essentiel pour la compréhension de la pathogénicité des différents agents pathogènes, y compris le VIH. delta Gamma cellules (GD) T sont le prototype de cellules «non conventionnelles» T et représentent un relativement petit sous-ensemble de cellules T définies par leur expression de récepteurs de cellules T (TCR hétérodimères) composées de chaînes gamma et delta. Ce qui les distingue des cellules T classiques et bien mieux connus auxiliaires CD4 + et de cellules T cytotoxiques CD8 + qui sont définis par les TCR alpha-bêta. GD cellules T montrent souvent la localisation spécifique des tissus et sont enrichis dans l&#39;épithélium. GD cellules T orchestrent la réponse immunitaire à l&#39;inflammation, la surveillance de la tumeur, les maladies infectieuses, et l&#39;auto-immunité. Ici, nous présentons une méthode pour isoler de manière reproductible et d&#39;analyser les lymphocytes humains endocervicales intraépithéliale GD T. Nous have des échantillons de cytobrosse endocervicales utilisés par des femmes participant à interagences VIH Étude de l&#39;infection des femmes (WIHS). La connaissance de GD cellules T interactions dans les conditions dans lesquelles il est une insulte à la muqueuse vaginale pourrait être appliquée à toute étude clinique dans laquelle la muqueuse vulnérabilité est abordée, y compris le développement de plus de microbicides.In vaginale, les connaissances sur les réponses des cellules muqueuses GD T a potentiel d&#39;application de GD T immunothérapie à base de cellules dans le traitement de maladies infectieuses.

Récemment, nous avons analysé les cellules intraépithéliales endocervicales GD T et nous avons été le premier à signaler à propos de la perte de cellules endocervical delta gamma T dans le VIH des femmes infectées 9, 11. Ici, nous décrivons le protocole d&#39;isoler et d&#39;analyser le sous-ensemble de cellules endocervical delta T gamma. Comme on le voit sur la figure 1, les cellules GD T peuvent être facilemen...

Nous décrivons ici une méthode d’isolement permettant d’obtenir des lymphocytes intra-épithéliales endocervicals humains pour l’analyse des lymphocytes T gamma delta intra-épithéliaux. Ce protocole peut être étendu pour la purification des lymphocytes T gamma delta endocervicaux par billes magnétiques ou par tri cellulaire.

Isolement et cytométrie de flux Analyse de Human Endocervical Gamma Delta cellules T

The female reproductive tract (FRT) mucosal immune system serves as the first line of defense. Better knowledge of the genital mucosa is therefore ...

Les objectifs généraux de cette procédure sont d'isoler et de caractériser une population inhabituelle de cellules intraépithéliales, les lymphocytes T gamma delta, à partir d'un échantillon de brosse endocervicale humaine. Cette méthode peut aider à répondre à des questions clés concernant la compréhension des événements immunitaires au sein du compartiment intraépithélial endocervical, afin de faciliter la conception de stratégies efficaces pour prévenir les infections. Le principal avantage de cette technique est qu'elle fournit un outil puissant et efficace pour l'étude des lymphocytes T gamma delta intraépithéliaux endocervicaux, in vitro.La procédure sera démontrée par Laura Romero, une chargée de recherche sénior de mon laboratoire. Immédiatement après le prélèvement, placez le tube contenant le cytobrossage sur de la glace. Dans l'heure suivant le prélèvement, vortexez le tube contenant le cytobrossage pendant quatre impulsions de 10 secondes chacune.Ensuite, centrifuger le tube et retirer soigneusement la brosse sans perturber la palette. Puis, ajouter un millilitre de milieu IMDM aux cellules et placer le tube sur de la glace. Placer la cytobrosse au-dessus d'un tamis cellulaire de 100 millimètres dans un tube conique de 50 millilitres, et rincer la brosse avec 20 millilitres de milieu IMDM frais.Centrifuger le lavage. Resuspendre le culot dans un millilitre de milieu IMDM frais, puis rassembler ce lavage avec les cellules présentes dans le tube initial de collecte au cytobrossage. Pour analyser les cellules endocervicales par cytométrie en flux, aliquoter de une à trois fois 10 à la puissance 5 cellules dans 100 microlitres de tampon fax par tube de cinq millilitres, puis marquer les cellules avec les anticorps et le colorant de viabilité d'intérêt pendant 30 minutes à quatre degrés Celsius à l'abri de la lumière.À la fin de l'incubation, laver les cellules dans un millilitre de tampon fourni avec le kit. Après centrifugation des cellules, éliminer complètement le surnageant. Utiliser des billes et les anticorps témoins IgG appropriés pour régler les contrôles de compensation.Ensuite, chargez le premier tube et définissez la fenêtre sur la population totale de cellules endocervicales dans un nuage de points de diffusion avant par rapport à la diffusion latérale, puis excluez les doublets cellulaires. Excluez les cellules mortes selon leur expression du colorant de viabilité, en ciblant les cellules vivantes positives pour CD45 et positives pour CD3. Les cellules positives pour gamma delta un et gamma delta deux sont définies comme les sous-populations de cellules positives pour CD3 exprimant le TCR gamma delta.Pour isoler les cellules T gamma delta par isolation magnétique, resuspendez jusqu'à 1 × 10⁷ cellules endocervicales fraîchement recueillies dans 40 µL de tampon du kit MicroBeads TCR gamma delta. Conformément aux instructions du fabricant pour le protocole de marquage en deux étapes, étiquetez les cellules avec l'anticorps anti-TCR gamma delta marqué par un haptène, puis avec les MicroBeads conjugués à la FITC anti-haptène pendant 15 minutes à une température de 4 à 8 °C. À la fin de l'incubation, lavez les cellules dans 1 mL de tampon du kit et décantez complètement le surnageant.Ressuspendre les cellules dans 500 microlitres de tampon fourni avec le kit, puis appliquer la suspension cellulaire directement sur une colonne de billes magnétiques placée dans l'aimant séparateur approprié, en récupérant l'écoulement dans un nouveau tube. Une fois que toutes les cellules ont traversé la colonne, laver la colonne trois fois avec 500 microlitres de tampon frais, puis rassembler les lavages avec les cellules récupérées. Pour collecter les cellules T gamma delta, transférer la colonne dans un tube conique et utiliser le piston de la colonne pour éluéer les cellules T à l’aide d’un millilitre de tampon frais.Pour isoler les cellules T gamma delta par tri cellulaire activé par fluorescence, marquez les cellules avec un colorant de viabilité, dans le panel d'anticorps comme vient de l'être démontré. Ensuite, triez les cellules selon leur viabilité, et leur positivité pour CD45, CD3 et gamma delta. Une population unique de cellules T exprimant gamma delta V1 peut être facilement détectée dans des échantillons cellulaires humains d'endocol utérin.L'analyse phénotypique détaillée des cellules positives pour CD3 et gamma delta une fois sélectionnées révèle que la majorité de ces cellules sont négatives pour CD4 et CD8. La séparation par billes magnétiques des cellules endocervicales, comme vient de l'être démontré, permet d'obtenir une population purifiée à près de 98 % de ces cellules TCR gamma delta. Ce degré de pureté peut également être atteint par tri cellulaire activé par fluorescence, ce qui valide l'utilisation de l'une ou l'autre technique pour l'isolement des lymphocytes T gamma delta endocervicaux.Curieusement, l'analyse des cellules intraépithéliales endocervicales et des cellules T gamma delta, prélevées chez des patientes infectées par le VIH et des témoins donneurs sains, montre une légère diminution du nombre et de la viabilité de ces cellules importantes chez les individus infectés par le VIH. Une fois maîtrisée, cette technique peut être réalisée en deux à trois heures si elle est effectuée correctement. Lors de la réalisation de cette procédure, il est important de se souvenir de traiter rapidement l'échantillon et de maintenir les cellules sur de la glace tout au long de l'ensemble du protocole afin de préserver une bonne viabilité cellulaire.Après avoir suivi cette procédure, d'autres méthodes, telles que le tri de cellules uniques combiné à une PCR multiplex à haut débit et haute sensibilité, peuvent être réalisées afin de répondre à des questions supplémentaires concernant les voies inflammatoires et de signalisation au sein du compartiment intraépithélial endocervical. Après son développement, cette technique a ouvert la voie aux chercheurs dans le domaine du VIH et des maladies infectieuses pour explorer de nouveaux marqueurs cellulaires de la vulnérabilité muqueuse. Après avoir visionné cette vidéo, vous devriez avoir une bonne compréhension de la préparation des lymphocytes intraépithéliaux à partir d'un échantillon de brosse endocervicale humain.

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Immunology and Infection

Immunologie et infection

Une méthode pour développer des cellules T γδ à partir des cellules mononucléées du sang périphérique (PBMC) est décrite. PBMC dérivés des lymphocytes T γδ sont stimulés et étendu en utilisant le zolédronate et l'interleukine-2 (IL-2). L'expansion à grande échelle de cellules T γδ peuvent être appliquées à l'immunothérapie cellulaire autologue de cancer.

Expansion du sang périphérique humain cellules T γδ utilisant zolédronate

Cette vidéo présente un protocole pour l’isolement par marquage magnétique d’une population à faible concentration de cellules T CD4+Vδ1+γδ à partir de cellules mononucléées du sang périphérique humain (PBMC). En utilisant une combinaison d’anticorps anti-Vδ1 conjugués à la FITC, de microbilles magnétiques anti-FITC et de billes superparamagnétiques enrobées d’anticorps anti-CD4, les lymphocytes T CD4+Vδ1+ peuvent être purifiés avec succès de la population PBMC.

Isolement sélectif de lymphocytes T CD4+ Vδ1+ γδ à partir de cellules mononucléées de sang périphérique humain

L’utilisation du prélèvement par cytobrosse pour collecter les lymphocytes et les monocytes de l’endocol est une technique peu invasive qui fournit des échantillons pour l’analyse de l’immunité de l’appareil génital féminin. Dans ce protocole, nous décrivons la collecte d’échantillons de cytobrosses et l’isolement de cellules immunitaires pour les tests de cytométrie en flux.

Collection, isolement, et cytométrie en flux analyse des échantillons Endocervical humain

Ici, nous fournissons un protocole optimisé pour l’isolement et le clonage de l’entité rare des lymphocytes T périphériques Vδ1+CD4+ qui est, comme nous l’avons montré récemment, un progéniteur extrathymique des lymphocytes T αβ. Cette technique permet d’isoler quantitativement, de cloner et d’étendre efficacement ces cellules en culture ex vivo.

Isolement et<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Culture de Vδ1<sup&gt; +</sup&gt; CD4<sup&gt; +</sup&gt; cellules γδ T, un extrathymique αβT cellules progénitrices

Présenté ici est une méthode simple pour l'isolement et le flux analyse cytométrique de cellules mononucléaires du sang périphérique gliome infiltrant qui donne des données quantitatives en fonction du temps sur le nombre et le statut activation des cellules immunitaires qui entrent dans le microenvironnement de tumeur cérébrale tôt.

L&#39;isolement et la cytométrie en flux analyse des cellules mononucléaires du sang périphérique gliome infiltrant

Nous décrivons ici une méthode pour isoler et purifier les cellules dendritiques de différents compartiments anatomiques dans le tractus reproducteur femelle humain pour l’évaluation de leurs caractéristiques phénotypiques et fonctionnelles. Cette méthode peut être adaptée pour isoler des autres cellules immunitaires ou autres tissus muqueux, les cellules dendritiques.

Isolement de cellules dendritiques de l’appareil reproducteur féminin humain pour des études phénotypiques et fonctionnelles

Ici, un protocole pour l’isolement et la caractérisation des CD4+ T-cellule sous-ensembles de sang périphérique humain est décrite. Purifiée CD4+ T-cellules sont analysés par cytométrie de flux pour déterminer les proportions des sous-ensembles de cellule auxiliaire T-folliculaire.

Isolement des CD4+ T-cellules et analyse de circulation folliculaire T Helper (cTfh) des sous-ensembles de cellules de sang périphérique à l’aide 6-color Flow Cytometry

L’expansion clonale est une caractéristique clé de la réponse des lymphocytes T spécifiques à l’antigène. Cependant, le cycle cellulaire des lymphocytes T répondant à l’antigène a été mal étudié, en partie à cause de limitations techniques. Nous décrivons une méthode de cytométrie en flux pour analyser les lymphocytes T CD8 spécifiques de l’antigène à expansion clonale dans la rate et les ganglions lymphatiques de souris vaccinées.

Un test de cytométrie en flux basé sur l’ADN / Ki67 pour l’analyse du cycle cellulaire des lymphocytes T CD8 spécifiques de l’antigène chez des souris vaccinées

Il s’agit d’une méthode pour isoler les cellules lymphoïdes utérines de souris gestantes et non enceintes. Cette méthode peut être utilisée pour de multiples applications en aval telles que le phénotypage FACS, le tri cellulaire, les tests fonctionnels, la séparation de l’ARN et la protéomique. Le protocole montre ici comment phénotyper les cellules lymphoïdes innées utérines du groupe 1 par cytométrie en flux.

Isolement des cellules lymphoïdes innées utérines pour analyse par cytométrie en flux

L’afflux de calcium, une mesure de la signalisation des lymphocytes T, est un moyen efficace d’analyser les réponses à la stimulation des récepteurs des lymphocytes T. Ce protocole de multiplexage d’Indo-1 avec des panels d’anticorps dirigés contre les molécules de surface cellulaire tire parti des capacités très flexibles de la cytométrie en flux à spectre complet.

Analyse de l’afflux de calcium induit par le récepteur des lymphocytes T dans les lymphocytes T murins primaires par cytométrie en flux à spectre complet

Le présent protocole décrit un flux de travail expérimental qui permet l’analyse ex vivo de la stimulation des lymphocytes T humains dans un système de co-culture allogénique avec des cellules tumorales prétraitées.

Analyse de l’activité des lymphocytes T humains dans un cadre de co-culture allogénique de cellules tumorales prétraitées

Apprenez à isoler et analyser les lymphocytes gamma delta T intraépithéliaux endocervicaux humains par cytométrie de flux. Cette méthode permet d'étudier les réponses immunitaires locales et de développer des stratégies de prévention des infections.

Isolement et cytométrie de flux Analyse de Human Endocervical Gamma Delta cellules T

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